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Red de Revistas Científicas de América Latina, el Caribe, España y Portugal Sistema de Información Científica Barrera-Violeth, José Luis; Oviedo-Zumaque, Luis Eliécer; Barraza-Álvarez, Fernando Vicente Evaluación de micorrizas nativas en plantas de plátano Hartón (Musa AAB Simmonds) en fase de vivero Acta Agronómica, vol. 61, núm. 4, 2012, pp. 315-324 Universidad Nacional de Colombia Palmira, Colombia Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=169926831003 Acta Agronómica, ISSN (Versión impresa): 0120-2812 [email protected] Universidad Nacional de Colombia Colombia ¿Cómo citar? Número completo Más información del artículo Página de la revista www.redalyc.org Proyecto académico sin fines de lucro, desarrollado bajo la iniciativa de acceso abierto 0XVD 0XVD José Luis Barrera-Violeth1* 2†3‡ 1 !2 ""# !3 !$ !% No.76-103, Código Postal 354, Montería, Córdoba, Colombia. *Autor para correspondencia: [email protected]; †luisoviedo59@ '()'+/' Rec.: 31.10.11 Acept.: 09.12.12 8!< =>? + !!#BDMusa " E cepas se obtuvieron de la colección del Laboratorio de Fitopatología de la Universidad de Córdoba, las > #! " G +HI+DJEKGlomus sp. (T1), Acaullospora sp. (T2), Scutellospora sp. (T3), una combinación de los géneros Glomus, Acaullospora ScutellosporaDJSEV>>WDJXE!DJ%E +V!? +DJSE! =<#> JYJZJ[#!>\ ##>K>+# 8#>+>#JX !"Acaullospora sp., agricultura sostenible,Glomus sp., inóculo, Scutellospora sp. ! J'!< ] '>>>' !^'+ ]'>BJ']!$ !>'WW'!]'']> ! "G+I]' IDJE]KGlomus sp. (T1), Acaullospora sp. (T2), Scutellospora sp. (T3), a genera combination of Glomus, Acaullospora and Scutellospora (T4), a chemical treatment (diammonium phosphate, WJXE!DJ%E]'']' !>]''!>'+DJSE>]! JYJZJ["'! ]''!>'+'] !\>>]''leaf K>']'>. >'JX'] the higher measurements. #$"Acaullospora sp., Glomus sp., inoculum, Scutellospora sp., sustainable agriculture. 315 J^%YDSE[`Y[p 315-324 % Las micorrizas pueden ser consideradas como organismos formados por la raíz de una planta '!! Inando estos elementos a las plantas, a la vez V > Las micorrizas vesículo-arbusculares (MVA) #= V ! simbiosis mutualísticas con las raíces de la ? > ! V D #'+ [``kE 8 interacción planta-microorganismo del suelo se consideran tres tipos de relación: patoge!' formadores de micorrizas arbusculares (MA) +!! crecimiento vegetal (PGPR o PGPB) pertenecen =V! > V>!\ >Dx++[``SE La infección de la micorriza produce cambios >!V\ +V< ! ? #!y< y! H > !!+>D" Y{{kE8>\#' principal recurso, tanto para la conservación de los ecosistemas como para la producción DxY{|kE En la naturaleza, los hongos micorrícicos son parte integral de las plantas de cultivos, #! Las micorrizas inciden en el cultivo para su óptimo crecimiento en suelos con determinados niveles de fertilidad. Los efectos de estos microorganismos tienen consecuencias !# pueden incrementar la resistencia natural de V! 316 bióticos o abióticos (Domínguez et al., 2004). En el cultivo de banano se ha demostrado la \+ materiales micropropagados (Rizzardi, 1990; Y{{SY{{X(x++ 1995; Yano-Melo et al., 1999). D[``%EV aplicaciones de pesticidas inciden negativamente en la actividad biológica de los suelos. En el departamento de Córdoba, Colombia, la aplicación no controlada de fertilizantes V'ción en la fertilidad de los suelos, efectos ! ! V > de plantas de interés agrícola. No obstante !# pocos los estudios enfocados en multiplicar ' #( V I \ la diversidad de micorrizas arbusculares D' $ [``%E poblacional de micorrizas asociadas con este cultivo, sus efectos en las propiedades \VD [``%E + ! +> D+#+ W [``|E 8 objetivo de la presente investigación fue evaluar los efectos de la inoculación de diferentes géneros de micorrizas nativas >+ V ! ! >\ #B tempranos del crecimiento. &' El estudio se realizó en el vivero de la Univer!^!| S| kXX| de géneros de micorrizas vesículo-arbusculares (MVA) en el Laboratorio de Fitopatología de la Universidad de Córdoba, procedentes de \#Btón (Musa AAB) en los municipios de Lorica, ! " G V!+ acuerdo con estudios realizados por Barrera D[``XE +GD[``XE 8G$8^ JG 8WJ 8WJ BJDMUSA" ^^ E8 88GG8 La obtención de las esporas se realizó \# municipios anteriormente mencionados. En cada una de ellas se tomaron 10 muestras de suelo rizosférico a 0.60 m de distancia del > 0.20 m, las cuales fueron homogeneizadas !#Y V 8 S` V > trasladadas en neveras de icopor para posterior aislamiento en el laboratorio, donde se ' ?\ 'xDY{%SE En las muestras de suelo con raíces fue\+ nivel morfológico, teniendo en cuenta la forma I '> = 'W?+DY{{`EJ!? se evaluó la colonización micorriza-raíz realizando montajes para observar en microscopio el grado de colonización interna por parte de las hifas en el tejido vegetal, así como la for!= DY{|ZE Para la multiplicación de esporas se tomó 1 kg de inóculo del sustrato obtenido \ '+ en vivero, en tres parcelas de 1 x 1 m empleando como hospedero el pasto Brachiaria decumbens, V!+ de suelo arena:limo (1:1). Este proceso de multiplicación se mantuvo por un periodo de Y[`! \? + V V presentaron una etapa de madurez avanzada <> W ! + H completamente al azar, con seis tratamientos Y`>K T1 = Glomus sp. (G), T2 = Acaullospora sp. (A), T3 = Scutellospora D E JS !nación de los géneros Glomus, Acaullospora ScutellosporaD EJXV relativo (aplicación de 40 g/planta de fosfato DWEJ%! La unidad experimental consistió en un #B!Y` >!#| kg de capacidad, con suelo previamente es++V bolsa se le inocularon 60 esporas de micorri+JYJ[JZ[` esporas de cada género para el tratamiento JS > #YX? de la inoculación. Cuatro meses luego de la inoculación se hicieron mediciones del peso >+#> #>ZY`` # # > D# > E = + porcentaje de colonización de las micorrizas en las raíces. Los datos obtenidos fueron # +D E ! J D ``XE >] {Y D Inc., 2004). ( ) Para esta característica no se encontraron diferencias (P > 0.05) entre los tratamientos JYJ[JZJSJX8 excepción del control absoluto, T6, las plantas presentaron una longitud del pseudotallo V DYEVV +!!=! V! # >!?\ vegetativo de las plantas inoculadas con las MVA, solas o combinadas, se expresa mejor ? D [``Y( +#+ [``|E 8 V>!! por las plantas inoculadas, posiblemente >> V W DJXEV V! ^G =^'DY{{SE ' DY{{kE# basados en el traslado de carbohidratos de la 317 J^%YDSE[`Y[p 315-324 -)./ 8>? ^G!# BDMusa " EJYKGlomus sp., T2: Acaullospora sp., T3: Scutellospora sp., T4: Combinación géneros; T5: suelo con aplicación de fertilizante fosfórico; T6: control absoluto. ''!bidos por el hongo hacia la planta (Figura 1). * 8Y! Vtraron diferencias (P > 0.05) entre tratamien Z`? con micorrizas en el tratamiento T4 (combinación de géneros de MVA) se presentó un ! del tratamiento T1 (Glomus sp.). Lo anterior ! V + ! ? '# \ < V# ? !\> #D'+#[`YYE >Dx++ 2004). 8 ! V # las plantas a las condiciones del sustrato, BX%Z> sarrollo de los géneros nativos de Glomus sp. ScutellosporV= al. (1996) los valores óptimos de éste varían XX%X ZY| 8 SX Y[` > # pseudotallo entre tratamientos, no obstante los tratamientos inoculados con micorrizas, T1 (Glomus sp.), T2 (Acaullospora sp.), T3 (Scutellospora sp.), T4 (combinación de géneros ^GEJXDWE al control absoluto sugiriendo la importan^G# Resultados obtenidos en banano (Musa AAA) x+D[``SEV efecto de la micorrización sobre el desarrollo vegetal se mantiene durante la fase de vivero, =!<?>+ +, '= presentaron diferencias (P < 0.05) entre tratamientos (Cuadro 2). Los tratamientos con inoculación de micorrizas superaron en general al tratamiento con aplicación de >+ DJXE ! DJ%E #JSD! de géneros de MVA) donde se registraron la efectividad de las micorrizas arbusculares ! 8G$8^ JG 8WJ 8WJ BJDMUSA" ^^ E8 88GG8 0./8>? ^G!#DE# BDMusa" E 1 *,' .2 34 52 64 72 84 .42 .94 T1: Glomus sp. (G) 1.74 [S| 2.62 [|% Z`| 3.22 3.31 3.33 T2: Acaullospora sp.(A) 1.93 2.05 ab 2.61 2.65 2.95 3.22 3.23 3.26 T3: Scutellospora D E 1.52 2.40 a 2.70 2.74 3.02 3.09 3.26 Z[| JSK^+D E 2.16 2.53 a 2.71 2.90 3.10 3.23 3.32 3.36 T5: (DAP) 2.01 2.42 a 2.49 2.64 [{| 3.15 3.19 3.30 2.93 3.03 3.10 3.14 T6: (Control absoluto) GDE (Tratamientos) 1.15 14.2 ns 1.30 b 15.1 2.31 2.62 12.7 21.3 ns ns ** 17.6 ns 9.1 [S| 2.6 ns ns ns G: Glomus sp.; A: Acaullospora ( KScutellospora ( K+Glomus sp. + Acaullospora sp.+ Scutellospora sp.; DAP: suelo con aplicación de 40 g de fosfato diamónico por planta. W>JDW``XE(KW! \ DW``YE(K!\ (GK\ 09/ 8>? ^G!'=+DE #BDMusa" E 1 +, , ) ) T1: Glomus sp (G) 94.7 a* 35.0 b T2: Acaullospora sp(A) 66.6 cc [[| T3: Scutellospora D E 79.2 b 26.4 cb JSK^+D E 105.1 aa 47.3 a T5: (DAP) 66.2 cc 22.0 c T6: (Control absoluto) 57.6 cc 19.2 c GDE 13.5 16.1 (Tratamientos) ** ** G: Glomus sp.; A: Acaullospora ( KScutellospora ( K!Glomus sp. + Acaullospora sp.+ Scutellospora sp.; DAP: suelo con aplicación de 40 g de fosfato diamónico por planta. W>JDW ``XE(W!\ DW``YE(GK\ $ D[``|E V ! de las plantas cuando se utilizó inóculo nativo procedente del mismo agroecosistema ! #'+ DY{{{EV! menos móviles, como el fósforo, depende del volumen de suelo explorado por el sistema de raíces absorbentes. En este caso la raíz micorrizada tiene ventaja sobre la no mico+VII V absorbentes, lo cual favorece el crecimiento ( ), Para esta característica se encontraron > \ DW ``XE - 8Z! V tratamiento T5 (aplicación de DAP) se presen J%D!EVgiere una baja relación entre la micorrización +# Elsen et al. (2001) observaron resultados similares en trabajos con banano e indicaron V!! ++!\+ >+V !!#\ nutrientes, sin extender su longitud radical. 8 V + + \ se presentan efectos negativos o neutrales sobre el crecimiento radical. Por el contrario, 319 J^%YDSE[`Y[p 315-324 03/ Efecto de géneros nativos de MVA sobre la + DE # B DMusa " E de vivero. 05/ Efecto de la aplicación de géneros nativos de MVA !#>D2E# B DMusa " E de vivero. 1 1 Área foliar 9 ( ), T1: Glomus sp. (G) 16.5 c* T1: Glomus sp. (G) |SY! T2: Acaullospora sp.(A) 21.7 b T2: Acaullospora sp.(A) 742.4 b T3: Scutellospora D E 19.3 cb T3: ScutellosporaD E |Z{k! JSK^+D E 16.2 c JSK^+D E 913.7 b T5: (DAP) 31.6 a T5: (DAP) T6: (Control absoluto) 22.7 b T6: (Control absoluto) GDE (Tratamientos) 9.40 ** G: Glomus sp.; A: Acaullospora ( KScutellospora sp.; K!Glomus sp. + Acaullospora sp.+ Scutellospora sp.; DAP: suelo con aplicación de 40 g de fosfato diamónico por planta. *Promedios con letras distintas dentro de una misma columna son estadística>JDW``XE(W! \ DW``YE(GK\ x++D[``SE! > \ de la raíz en Musa AAA clon Gran Enano, con respecto al control sin inoculación con MVA, V# ! de explorar horizontes fértiles, así como un <<= 8D[``YEDY{{XEV+#> : 8 # # > DW ``XE se encontró en las plantas del tratamiento T5 (aplicación de DAP) (Cuadro 4), seguido del tratamiento T4 (combinación de esporas de micorrizas) Estos resultados muestran V=< adaptación al sustrato en comparación con #?V V!nativa para la obtención de mejores plantas #!< >># la región cafetera de Colombia, donde se recomienda aplicar mezclas de hongos micorrizógenos de los géneros Glomus, Acaulospora Entrophosforase con la siembra del cultivo #D+[``%E 320 GDE (Tratamientos) YZ%|` 740.0 b 15.3 ** G: Glomus sp.; A: Acaullospora ( KScutellospora sp.; K!Glomus sp. + Acaullospora sp.+ Scutellospora sp.; DAP: suelo con aplicación de 40 g de fosfato diamónico por planta. *Promedios con letras distintas dentro de una misma columna son estadística>JDW``XE(W! \ DW``YE(GK\ 8S! V plantas inoculadas con los géneros Glomus (T1), Acaullospora DJ[E Scutellospora (T3) #> !DJ%EV V ! + ! > !V \ + V < diferentes órganos (Barea et al., 1997). Esto es importante en el caso de las plantas de # V ! una etapa inicial de desarrollo del sistema radicular necesario para los procesos de !'<\ >>DY{{|E Como se sabe, la aplicación de hongos micorrícicos arbusculares favorece el desarrollo \ \ #!V<\>?'< el crecimiento de las plantas. " #D2EDE> fue diferente entre tratamientos (P < 0.05) D XE 8 > # plantas en el T4 (combinación de géneros de ^GE!V'^G# de su efecto directo en la nutrición de las 8G$8^ JG 8WJ 8WJ BJDMUSA" ^^ E8 88GG8 02/ Efecto de la aplicación de géneros nativos de MVA !#>D2/g) de plantas # B DMusa " E condiciones de vivero. 1 9<) T1: Glomus sp. (G) 4.3 ab T2: Acaullospora sp.(A) 4.1 b T3: Scutellospora D E 4.9b ab JSK^+D E {| T5: (DAP) 5.3 ab T6: (Control absoluto) 3.6 b GDE |k` ** (Tratamientos) G: Glomus sp.; A: Acaullospora ( K Scutellospora sp.; K ! Glomus sp. + Acaullospora sp.+ Scutellospora sp.; DAP: suelo con aplicación de 40 g de fosfato diamónico por planta. *Promedios con letras distintas dentro de una misma columna son estadísticamente difeJDW``XE(W!\ DW``YE(GK\ ! \ diante los cuales aumenta la proporción de V #>DxY{{{E >?\<! D" Y{{%E 8 V de las plantas en todos los tratamientos micorrizados superó a las plantas en el testigo !V!VDXE= J' x D[``[E ! < \ especialmente en la fase de vivero. Leigh et D[``{EV!\ hongos micorrícicos en cultivos vegetales es#'< ' <V se establecen entre las estructuras de estos hospederas. ;+ 8=! plantas del T4 (Figura 2). En los tratamientos de aplicación individual de MVA se destacó el T1 (Glomus E= V V? encuentra ampliamente distribuido en estos suelos, independientemente del grado de fertilidad (Guerrero et al., 1996). Este autor HVGlomus tiene un amplio rango de adaptación a diferentes condiciones abióticas, BX`%XW #'+ DY{{{E #'+D[``kE encontraron resultados similares a los de la ! V 250 Esporas x 300g suelo-1 a 200 b 150 c c 100 50 d d T5 (dap) T6 (Testigo) 0 T1 (G) T2 (A) T3 (S) T4 (G+A+S) Tratamientos -)9/=Y[`?## BDMusa" EJYKGlomus sp., T2: Acaullospora sp., T3: Scutellospora sp., T4: Combinación géneros; T5: suelo con aplicación de fertilizante fosfórico (DAP); T6: control absoluto. 321 J^%YDSE[`Y[p 315-324 género Glomus es altamente infectivo, con una alta adaptabilidad a diversas condiciones de suelo. > En esta característica, nuevamente las plantas en el tratamiento T4 mostraron el {YYDZE8 tratamiento con Glomus sp. (T1) presentó > > estructuras especiales de forma individual, {`+ con Acaullospora DJ[EScutellospora sp. (T3) mostraron porcentajes de colonización k[Xk|Z Lo anterior concuerda con la efectividad +Glomus sp. a diferentes condiciones del sustrato (Barea, 1997). El alto porcentaje de colo+ V I una simbiosis efectiva entre los tratamientos #B #V '$ D[``|E V! I<Zkk%[Y|% >!nano, cultivadas en diferentes sustratos. Por x+ + DY{{XE ' kYkS+ Glomus manihotis Glomusintra radices, respectivamente. 0 # B estadios tempranos del crecimiento en fase de vivero presentaron simbiosis con la combinación de micorrizas vesículo arbusculares nativas de los géneros Glomus, AcaullosporaScutellosporaV= porcentaje de colonización de raíces. 8<+# la inoculación de micorrizas nativas individuales se obtuvo con el género Glomus. #B> V '< ? # > favorecida con la aplicación de micorri+ 8#> estimulada por la aplicación de fosfato DWE V combinada de géneros nativos de MVA (T4) presentó mejor adaptación a las condicio- Porcentaje de colonización 100 95 90 85 80 75 70 Glomus (G) Acaullospora (A) Scutellospora (S) G+A+S Géneros de micorrizas -)3/ 8>? +<+# Bartón (Musa" EY[`? 322 8G$8^ JG 8WJ 8WJ BJDMUSA" ^^ E8 88GG8 nes del sustrato en comparación con los #?V dualmente, por tanto es una alternativa para la obtención de buenas plantas de #!<> !'=medo de la raíz, fueron afectadas de forma positiva por las aplicaciones de micorrizas, en comparación con la aplicación de W! ) Los autores expresan sus agradecimientos a K Evaluación e Implementación de Alternativas W#W#"!$!#(!B W 8+!' 8 #+ !bulación de los datos de la investigación. +G[``X\ + #+ = DJGEJ ""# Universidad de Córdoba. Colombia. 106 p. ^( + ( ( 8 2006. Efecto de la aplicación de herbicidas en condiciones de campo sobre algunas actividades ! Vegetal 6(1):64 - 76. " x Y{{k ^'+! ]'8K'(!'(B((( DEW]''+bacteria, present status and future prospects. 8WYX`YX| "x(+(+Y{{k^> + !8K< +! [ 8K x " x^ DE < \ ^ 8H p. 149 - 173. "x[``X8+ # Córdoba. En: Evaluación e implementación de ## ! > Agrícolas. Universidad de Córdoba. Montería, Córdoba. p. 52 - 53. " 8Y{{%^+tura: contexto mundial e investigación realizada en Costa Rica. Agron. Costarricense 2(1):55 - 67. Cano, T. 2001. Efecto de !, Glomus manihotisGlomus fasciculatum en el crecimien #B!8 Tesis de grado Universidad Gran Colombiana. Facultad de Ciencias Agropecuarias. 200 p. ("#+ (+xY{{|8\ # DMusa " E ! W W#!^ Universidad del Quindío. Comité de Cafeteros del 8"W[[Y[Z% ' $ [``| 8 versidad de micorrizas arbusculares en suelos >#^ ? mento de Córdoba. Tesis de Pregrado para optar ""# Universidad de Córdoba. Colombia. 101 p. 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