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GENES Y GENOMAS: ASPECTOS ESTRUCTURALES Y FUNCIONALES
Soria, Liliana A; Motter, Mariana M y Huguet, Miguel J.
Tabla 1. Resumen del contenido de ADN de algunas especies, información publicada
en Animal Genome Size Database (Gregory et al, 2007).
Gráfico 1. Tipo de secuencias que componen el genoma nuclear
Referencias: LTR: Long Interspersed Nuclear Elements, SINE: Short Interpersed Nuclear Elements,
LINE: Long Interpersed Nuclear Elements.
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Figura 1. Etapas de la expresión de un gen que codifica una proteína (Fitzgerald-Hayes
and Reichsman)
Figura 2. Estructura de una unidad de transcripción (Pierce, B)
Inicio de la Transcripción
3’
5’
-20
+1
+10
Sentido de la Transcripción
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Figura 3. Determinación de la secuencia de consenso del TATA box por comparación
de 900 genes eucariotas (Lodish y col)
Figura 4. Estructura de un promotor para la ARN polimerasa II (Pierce, B)
Figura 5. Secuencias de consenso de la región regulatoria proximal de tres genes
eucariotas (Pierce, B)
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Figura 6. Modelo general de un promotor eucariota (Lodish y col)
Figura 7. Interacción entre diferentes proteínas y factores de transcripción (Fuda y col).
Figura 8. CAP agregado en el extremo 5’ de un ARNm eucariota (Fitzgerald-Hayes
and Reichsman)
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Figura 9. Corte y agregado de la cola Poly A en el extremo 3’ de un pre-ARNm
(Pierce, B)
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Figure 10. El splicing genera un ARNm maduro (Reece, RJ)
Figura 11. La formación del spliceosome comprende la participación de varias snRNP
que requieren las secuencias de consenso del pre-ARNm, y la reacción progresa por
etapas discretas
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Figura 12. Splicing alternativo y velocidad de ARN polimerasa (adaptado de Kornblith,
A)
Figura 13. Producción de dos polipéptidos distintos a partir de dos promotores y
splicing diferente según el tejido.
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Figura 14. Con dos sitios de poliadenilación diferentes (AAUAAA) y con un patrón de
splicing alternativo se obtienen ARNm diferentes en cada tejido.
Figura 15. Dos modelos de splicing determinan dos ARNm diferentes en distintos
tejidos.
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Figura 16. Estructura general de un ARNm maduro con las regiones que participan en
la regulación post-transcripcional de la expresión génica (adaptado de Mignone et al)
Referencias: IRES: Internal ribosome entry site, AAUAAA: sitio de poliadenilación, CPE: Cytoplasmic
polyadelynation element (secuencia de consenso a la que se une la proteína CPEB y que participa en la
poliadenilación)
Figura 17. Modelos de degradación del ARNm eucariota (adaptado de Lodish et al)
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Figura 18. El ARNm es traducido simultáneamente por varios ribosomas (Polisomas)
(Lodish y col)
Figura 19. Origen y función de los micro ARNs (He y col)
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Figura 20. Estructura del operón Lac.
Figura 21. Comparación de secuencias en promotores de distintos operones de E coli
(Pierce, B)
Figura 22. Sitio de unión del complejo AMPc-CAP en el promotor de Lac (lacP)
(Pierce, B)
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Figura 23. Las secuencias de consenso del operador y de la región corriente arriba del
promotor donde se une el complejo CAP – AMPc (Griffiths y col)
Figura 24. Organización de la región promotora y operadora del operón Lac (Pierce, B)
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.
Figura 25. Terminación de la transcripción en procariotas
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Figura 26. Consecuencias de algunos tipos de mutaciones de punto localizadas dentro
del marco de lectura (Griffiths y col)
Figura 27. Sustitucion de sentido erróneo en el gen de la β-globina humana (FitzgeraldHayes and Reichsman)
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Figura 28. Representación grafica del gen de la miostatina bovina y la localización de
los distintos tipos de mutaciones halladas en distintas razas bovinas (Karim, L y col)
Figura 29. Deleción de 4 pb en el gen MDR1 en Collie (Roulet, A y col)
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