Download Complejo Respiratorio Porcino (CRP)

Document related concepts

Gripe porcina wikipedia , lookup

Mycoplasma pneumoniae wikipedia , lookup

Bordetella wikipedia , lookup

Neumonía bacteriana wikipedia , lookup

Enfermedad vesicular porcina wikipedia , lookup

Transcript
PU BL I CACI ÓN TRIMESTRAL No. 23
PORCINOS
Complejo Respiratorio
Porcino (Crp)
INTRODUCCIÓN
El Complejo Respiratorio Porcino (CRP) es una entidad patológica muy
frecuente en las empresas porcinas industrializadas y no industrializadas,
causa grandes pérdidas económicas a los productores por los daños que
produce en tejidos y funcionamiento del sistema respiratorio del cerdo,
generando alta morbilidad y mortalidad en varias etapas de la vida
del cerdo, sobre todo en animales en desarrollo y engorda con mayor
incidencia entre las 12 a 20 semanas de edad (Espinoza I y cols. 2008,
I Bochev 2007), y con todo ello ineficiencia en la conversión alimenticia
y mayor tiempo al mercado, afectando la rentabilidad de la empresa.
MVZ MC José Luis Velasco Villalvazo
Asesor técnico en cerdos
Laboratorios Virbac México S. A. de C. V.
[email protected]
PORCINOS
Complejo Respiratorio
Porcino (CRP)
Es un problema multifactorial en donde participan: Medio ambiente,
Instalaciones, Inmunidad, Alimentación y los patógenos que pueden
ser bacterias y virus principalmente, y en ocasiones están presentes los
parásitos.
Los cambios bruscos de temperatura con rangos muy amplios durante
el día, humedad relativa alta, sobrepoblación, diferencias mayores a 2
semanas de edad en cerdos de la misma nave son asociados frecuentemente
con altos porcentajes de cerdos portadores de Streptococcus suis
Los agentes patógenos participantes se
dividen en Primarios y Secundarios;
Primarios son aquellos que inicialmente se instalan en el sistema
respiratorio del cerdo provocando las primeras lesiones y generando
infección como: Mycoplasma hyopneumoniae, Virus del Síndrome Respiratorio
y Reproductivo Porcino (vPRRS), Circovirus Porcino (PCV2) o Virus de
la Influenza Porcina (IP), quienes predisponen a una co-infección con
patógenos secundarios que se encuentran en la flora bacteriana del
epitelio respiratorio como saprofitos y que aprovechan el desequilibrio
para generar mayor daño y complicar los signos de la enfermedad.
2
PORCINOS
PORCINOS
VIRUS Y BACTERIAS PRIMARIOS Y SECUNDARIOS
FRECUENTES EN EL COMPLEJO RESPIRATORIO PORCINO
Virus
vPRRS
Circovirus (PCV2)
Virus de Aujezky
Virus de la influenza porcina
Virus de la fiebre porcina clásica
Coronavirus respiratorio porcino
Bacterias
1°
1°
2°
1°
2°
2°
1°
2°
2°
2°
2°
2°
2°
Mycoplasma hyopneumoniae
Actinobacillus pleuropneumoniae
Bordetella bronchiseptica
Streptococcus suis
Pasteurella multocida
Haemophilus parasuis
Salmonella choleraesuis
Eileen L Thacker (2008) Proceedings, The 15th congress of FAVA, I. Bochev (2007).
Sin embargo existe otra clasificación en la que se considera en el primer modelo como agente
inicial a mycoplasma o un virus que afectan las defensas del tracto respiratorio facilitando la
agresión de las bacterias al epitelio respiratorio, un segundo modelo consiste en que la bacteria
que produce daño no es un habitante del epitelio respiratorio y el modelo 3 es que el patógeno que
causa daño no es una bacteria, Iglesias y Trujano, 2000.
RELACIÓN DE INTERACCIONES ENTRE AGENTES
INFECCIOSOS DEL COMPLEJO RESPIRATORIO PORCINO
Patógeno que
destruye defensas
Patógeno que
causa daño evidente
Replicación
Experimental
1
Mycoplasma hyopneumoniae
Pasteurella multocida
SI
1
Virus de Enf. de Aujeszky
Pasteurella multocida
SI
2
Virus del PRRS
Haemophilus parasuis
SI
2
Virus del PRRS
Salmonella choleraesuis
SI
3
Mycoplasma hyopneumoniae
Virus del PRRS
SI
3
Virus del PRRS
Virus de la Influenza porcina
NO
Modificado de Iglesias y Trujano 2000.
Streptococcus suis
y Pasteurella pasa desapercibida generalmente ya
que los portadores se encuentran asintomáticos
del tracto respiratorio superior, I Brochev ,2007.
Aunque los lechones son colonizados
inmediatamente al nacimiento, sus primeras
manifestaciones ocurren de 2 a 3 semanas
posteriores al destete, Lisebrois y Col. 1990, ya
que inicialmente la madre les protege por medio
de inmunoglobulinas contenidas en el calostro que
consumen en las primeras horas del nacimiento
La neumonía puede ser resultado de la inhalación y va disminuyendo dicha protección cuando la
o de la bacteremia, bien sea por infección inmunidad materna baja y aún es inmadura la
directa de los alvéolos pulmonares al inhalar aire inmunidad propia del lechón, adicionalmente a
contaminado o por el transporte de la bacteria esto, el lechón se encuentra sometido a un proceso
de estrés por el destete y el cambio de alimentación
por monocitos a los alvéolos.
así como por la competencia jerárquica que se da
La trasmisión de la infección por Estreptococos al llegar al destete.
Streptococcus suis es una bacteria común en las
granjas de cerdos de todo el mundo y se asocia a
problemas respiratorios frecuentemente y a otras
enfermedades como meningitis y artritis en cerdos
jóvenes. Es adquirido por el lechón al nacimiento
de las secreciones vaginales de la madre infectada
a la boca del lechón, colonizando las tonsilas poco
después del nacimiento, Pallarés y col., 2003.
Apasionados por la salud animal
Modelo de
Interacción
3
PORCINOS
Es frecuente que existan cepas de baja
patogenicidad que pueden ser activadas por
la presencia del virus del PRRS, produciendo
cuadros de meningitis, estas mismas cepas de
baja patogenicidad generalmente no producen
meningitis cuando se encuentra solo el Streptococcus
suis y sí cuando se encuentra asociado al virus de
PRRS. El virus de PRRS incrementa el impacto
patogénico de S. suis, Halbur y col., 2000.
casos agudos hay zonas necróticas circunscritas
oscuras y consolidadas, lesiones fibrinosas en
los lóbulos apicales, cardíacos y diafragmáticos.
Puede existir pleuritis fibrinosa en las mismas
zonas afectadas.
Haemophilus parasuis
Es el microorganismo causante de la
enfermedad de Glässer que está presente
y ha sido diagnosticada en todo el mundo,
Actinobacillus pleuropneumoniae
Haemophilus parasuis es un habitante común de la
La pleuroneumonía porcina es uno de los flora normal de las vías respiratorias del cerdo.
problemas de salud más importantes en las Los lechones son colonizados inmediatamente
grandes empresas productoras de cerdos. al nacimiento, sin embargo no se desarrolla la
Al igual que los estreptococos, Actinobacillus enfermedad por la protección de los anticuerpos
pleuropneumoniae se encuentra colonizando maternos recibidos en el calostro, Smart y col.
las tonsilas y tracto respiratorio superior de 1989.
los cerdos, existen muchos serotipos pero los
más importantes por su patogenicidad son Haemophilus parasuis (Hps) se encuentra asociado
los números; 1, 5, 7, 9, 11, y 12 además de los a una alta mortalidad con mucha frecuencia y
con problemas de control en explotaciones de
serotipos 3 y 6 de virulencia intermedia.
alta sanidad, es una de las principales bacterias
Los serotipos más frecuentemente aislados en involucradas en infecciones en explotaciones en
Norteamérica son 1 y 5, en los últimos años EUA, pero también como la segunda respiratoria
se han ido incrementando los aislamientos más importante en las salas de lactancia y se
del serotipo 7, Gottschalck y col., 1997. En mantiene con elevada presencia en las áreas de
México los serotipos más frecuentes son; 1, transición y engorda, Enric Marco, 2008.
5 y 7. Actinobacillus pleuropneumoniae produce
4 diferentes exotoxinas que pueden ser Al igual que otras bacterias respiratorias se
hemolíticas o citotóxicas conocidas como ApxI, encuentra asociado en co-infecciones con virus
II, III y IV, en México se han encontrado Apx I como los del PRRS, Influenza, Aujeszky, Fiebre
y Apx II, Williams y col., 2000, Enríquez y col., Porcina Clásica, Circovirus (PCV2), y algunas
bacterias, siendo una muy frecuente y mortal la
2003.
asociación con el virus del PRRS, Enric Marco
La trasmisión de la enfermedad ocurre por 2008.
la diseminación de la bacteria por animales
infectados asintomáticos o por la introducción Haemophilus parasuis es causa común de
de animales portadores que diseminan el poliserositis y artritis en cerdos jóvenes,
Actinobacillus pleuropneumoniae a través del aire, adicionalmente puede ser aislado de secreciones
ya sea por aerosoles o por el contacto directo de mucosas nasales de cerdos aparentemente
entre los mismos animales, Muñoz y col., 2010. sanos, cerdos con rinitis y en descargas de moco
nasal, así como de pulmones con neumonía
Las lesiones típicas de pleuroneumonía se y con mucha frecuencia asociado con virus o
presentan en pulmones y capas serosas. En bacterias respiratorios, Vahle J. L. y Col., 1995.
4
PORCINOS
Es un microorganismo muy importante en el
CRP, Pasteurella multocida es el agente que con
mayor frecuencia es aislado e identificado en
pulmones de cerdos neumónicos en los últimos
100 años y frecuentemente combinado con
agentes virales y continúa actualmente sin
evidencias de disminución, Richard F Ross, 2007.
Pasteurella multocida desarrolla cepas toxigénicas
como la A y la D, es un patógeno que
normalmente no causa lesiones importantes
de forma individual, sin embargo asociado a
otros patógenos como Bordetella bronchiseptica
es el organismo más importante en la rinitis
atrófica. También se ha comprobado por
muchos autores que la cepa toxigénica A
causa lesiones importantes asociada a otros
patógenos como Virus de la Influenza Porcina,
Virus de la Enfermedad de Aujeszky, Virus del
cólera porcino, generando pleuritis y abscesos
pulmonares, Richard F Ross, 2007.
patógeno sólo produce rinitis no progresiva que
generalmente no produce afectaciones severas,
sin embargo cuando genera grandes estragos
en los cornetes nasales del cerdo es cuando
se encuentra asociada a Pasteurella multocida
produciendo la Rinitis Atrófica Progresiva,
y aún más cuando se encuentran asociados
a otros virus o bacterias, sin embargo esta
sola asociación entre Bordetella bronchiseptica
y Pasteurella multocida pueden generar grandes
pérdidas económicas por la mortalidad y bajo
rendimiento en los cerdos afectados, Espinoza
I. y col.,2008, De Jong M.F. 2006
Mycoplasma hyopneumoniae
Se une a los cilios y a la superficie epitelial
por adhesión a las proteínas, resultando en
aglutinación, daño y pérdida de los cilios
que permite la co-infección con bacterias
secundarias, muerte de células epiteliales y
reducción de la función del aparato mucociliar.
Entre las bacterias que producen infecciones
respiratorias en EUA, Mycoplasma hyopneumoniae
Bordetella bronchiseptica
es el segundo más importante después de
Es otra bacteria involucrada con frecuencia en Pasteurella multocida, Opriessnig et al., 2011.
el CRP, sin embargo su presencia como único
Apasionados por la salud animal
Pasteurella multocida:
Zonas de Afectación pulmonar en el
Complejo Respiratorio Porcino
5
PORCINOS
TRANSMISIÓN DEL COMPLEJO RESPIRATORIO PORCINO
En las enfermedades respiratorias la transmisión
vía aerosoles es muy frecuente, el contacto
directo entre animales por medio de gotas de
saliva o secreciones nasales que suelen ser muy
efectivas sobre todo, por las costumbres de
investigación que tienen los cerdos y que todo
lo tocan con sus trompas y la alta densidad de
población que con frecuencia se tiene en las
granjas.
La sobrepoblación es un factor predisponente
muy importante, los factores medioambientales
como; los cambios en el rango de temperatura,
el polvo, la contaminación del aire, acumulación
de amoniaco, y algunos otros factores como la
insuficiencia de agua o alimento contribuyen a
que se desencadenen problemas respiratorios.
FACTORES PREDISPONENTES A INFECCIONES RESPIRATORIAS
Hatos muy grandes con variaciones importantes de edad en los mismos corrales o jaulas
Frecuente movimiento y ajuste de cerdos entre corrales
Introducción de animales de reemplazo infectados
Cambios climáticos bruscos con mal manejo de la ventilación
Fases de alimentación inadecuadas para cada etapa de desarrollo o producción
Falta de agua o flujos inadecuados de la misma
Modificado de I Bochev, 2007
PATOGENIA DEL CRP
Afectación del
aparato
muco-ciliar
IP, PCV2, PRCV,
PRV, M hyop,
B.b
Inducen
Supresión
inmunitaria
PCV2, PRRS,
PRV
Incremento
de la replicación
viral o
crecimiento
bacteriano
Infección
inicial por
virus o
bacterias
del TR
Alteran la
respuesta de
Citocinas
IP, PCV2,
PRCV, PRRS
Mhyop
Co-infección
Alteran la
función de los
macrófagos
PCV2, PRRS
Mhyop
Enfermedad
Respiratoria
Severa
TOS,
FIEBRE,
LETARGIA,
ANOREXIA
Enfermedad
Respiratoria
Transitoria
Eliminación de la infección
6
Subclínica
Morbilidad
30-70%
Mortalidad
4-6%
CRP
Clínico
PORCINOS
FISIOPATOLOGÍA DEL SISTEMA RESPIRATORIO
El efecto potenciador de Mycoplasma para otras bacterias había sido
establecido primeramente para Pasteurella multocida (Ciprián y cols.,
1988), sin embargo el sinergismo entre Mycoplasma y vPRRS ahora es
más importante.
Cambios anatómicos
La forma más común del Circovirus (PCV2) es el síndrome de desmedro
(emaciación) multi-sistémico porcino y se asocia con frecuencia con el
virus del PRRS replicándose principalmente en los histiocitos y en los
macrófagos generado inmunosupresión, la sintomatología que genera
el Circovirus es parecida a la que se presenta en el CRP, sin embargo
la diferencia es que se presenta en animales jóvenes (8-16 semanas de
edad), y no se acompaña de tos ni de fiebre.
Cerdo afectado por Complejo
Respiratorio Porcino
Apasionados por la salud animal
Destrucción del epitelio respiratorio por Mycoplasma produciendo
ciliostasis, El virus del PRRS destruye a los macrófagos alveolares y genera
neumonía intersticial aguda, inicialmente muchos de los daños suceden
a nivel microscópico como infiltrados peribronquiales y perivasculares
de monocitos. La interacción entre Mycoplasma y el virus de la Influenza
Porcina dañan el epitelio ciliar y abren la puerta para la afectación por
otras bacterias, Thacker , 2001.
Las alteraciones encontradas en
pulmones a la necropsia son:
Cuando está presente mycoplasma existe;
engrosamiento cráneo- ventral de los lóbulos
pulmonares principalmente en lóbulo cardiaco
y apical que adquieren una estructura densa
de rojo purpura a rojo marrón o grisáceo de
consistencia metálica, áreas con atelectasias
parecidos a los presentados cuando está
presente el virus de la influenza porcina sólo.
Cuando está presente el virus de PRRS se puede
ver moteado el tejido pulmonar con áreas café
claro a obscuro, los nódulos linfáticos están
agrandados especialmente los cervicales,
mediastínicos e inguinales, acumulación de
exudado necrótico en los alvéolos. Cuando
Pasteurella multocida está presente se pueden
observar el lóbulo apical y las áreas anteriores
diafragmáticas de rojo oscuro a gris y en otras
partes rojo rosado con coloración casi normal
de los pulmones y puede existir pleuritis en
ocasiones. Sí está involucrado S. suis puede
haber presencia de abscesos. App causa
Pulmones afectados de
cerdos muertos por Complejo
Respiratorio Porcino
7
PORCINOS
neumonía fibrinosa hemorrágica necrotizante con áreas de afectación
más extensas y severas con importante deposición de fibrina en la pleura
visceral resultando en su adhesión con la parietal, Schwartz ,2002;
Taylor, 2006.
SIGNOS CLÍNICOS
Debido al origen múltiple etiológico del Complejo Respiratorio Porcino,
se presentan diversas manifestaciones clínicas y no existe un periodo
específico de incubación, el signo más notable es la tos y su intensidad
es muy importante para el diagnóstico que es como se describe a
continuación:
0 Cerdos en movimiento sin presencia de tos
1 Menos del 10% de cerdos exhibe tos esporádica
2 Del 10 al 15% de cerdos presentan tos y se mantiene durante el movimiento
3 Más del 50% de cerdos presentan tos
Modificado de I Bochev, 2007
El grado de inmunidad de las hembras es muy importante para el
desarrollo de la enfermedad sobre todo el de las primíparas, generalmente
la enfermedad inicia repentinamente en forma aguda entre las semanas
16-20 de edad y los signos clínicos son: Fuerte depresión, fiebre, falta de
apetito, tasa respiratoria acelerada, esfuerzos espiratorios, emaciación
rápida, la tos seca esporádica es signo de que está presente mycoplasma,
la tos húmeda y productiva paroxística “de perro” es más frecuente
cuando está presente el virus de la influenza porcina, y aún es peor el
panorama cuando se encuentra presente Actinobacillus pleuropneumoniae.
SINTOMAS DEL CRP
Anorexia
Disminución en el consumo de alimento
Fiebre
Disminución en la ganancia de peso
Tos
Disminución en la tasa de crecimiento
Disnea
Morbilidad del 30 al 70%
Letargia
Mortalidad > 6%
Modificado de I Bochev, 2007
Control y Tratamiento
8
El control se conforma por medidas higiénicas extremas como la
desinfección y limpieza a profundidad de todas las áreas de la granja,
utilización del sistema Todo dentro/Todo fuera, alojamiento de animales
de edades similares, disminución en el movimiento de cerdos de un
corral a otro (ajustes), Poblaciones de cerdos de acuerdo a la capacidad
de las instalaciones respetando los espacios
por animal, manejo de temperatura adecuada
a cada etapa de producción, alimentación de
acuerdo a cada etapa y flujo constante de agua
limpia. Vacunación contra las enfermedades
prevalentes involucradas en el CRP, como son;
Mycoplasma, PRRS con un programa adecuado
a cada granja, PCV2, Influenza Porcina, Aujeszky
en la zonas donde se aplique aún, Actinobacillus
pleuropneumoniae, etc.
bebida principalmente, o en casos agudos vía
inyectable, con resultados favorables.
Por su fragilidad e inestabilidad a la humedad,
cambios de temperatura la Amoxicilina necesita
de ser protegida para su administración en el
alimento o en el agua de bebida, y para ello se
conocen procesos hidrofóbicos e hidrofílicos
siendo estos últimos los más efectivos para
conservar la integridad y efectividad del
antibiótico
SOLUCIONES ANTIMICROBIANAS
PARA LAS NEUMONÍAS PORCINAS
PROCESO STAVIBAC®
Se pueden implementar programas preventivos
de medicación en el alimento con antibióticos
que ayuden a disminuir la manifestación de
bacterias oportunistas que complican el curso
de la enfermedad entre los que podemos incluir
Amoxicilinas (no en el caso de Mycoplasma),
Florfenicol, Enrofloxacina, Doxiciclina o algunas
otras tetraciclinas o antibióticos que tienen
una cobertura amplia y que ayudan a disminuir
el impacto de bacterias como Pasteurella
multocida, Actinobacillus pleuroneumoniae, Bordetella
bronchiseptica,
Mycoplasma
hyopneumoniae,
Streptococcus
suis,
Salmonella
choleraesuis,
Haemophilus parasuis principalmente.
Es un proceso exclusivo de Laboratorios Virbac
con patente mundial en el que se produce
una amoxicilina de granulometría especial y
estabilizada que ha sido tratada para eliminar la
posible humedad, cada gránulo con el proceso
Stavibac® tiene una matriz polimérica cubierta
con una capa protectora, estos gránulos son
hidrofílicos y no se altera la liberación de la
amoxicilina ni su biodisponibilidad, poseen
un diámetros de 380 µm, todo ello permite
conservar las características de la Amoxicilina
durante la fabricación de alimento en harina
o en pellets, durante el transporte, así como
durante el almacenamiento.
Ante un brote y manifestaciones del Complejo
Respiratorio Porcino se debe poner especial
atención en la sintomatología y en su caso utilizar
antibióticos inyectables de manera táctica
como pueden ser; Florfenicol, Enrofloxacina,
Amoxicilina u otros que nos pueden ayudar
a disminuir las pérdidas por mortalidad, es
también muy recomendable la aplicación de
Antiinflamatorios no esteroideos para disminuir
las molestias de dolor y fiebre e incrementar el
consumo de alimento y agua en casos graves.
AMOXICILINA
Es un antibiótico ß-lactámico de amplio
espectro que por su alta eficacia contra los
principales patógenos que afectan al cerdo,
es ampliamente utilizada en la producción
porcina a través del alimento o en el agua de
Tamaño
similar
Amoxicilina con proceso
STAVIBAC®
Medida: 300 a 500 µm
Apasionados por la salud animal
PORCINOS
Partícula de harina
Medida: 200 a 800 µm
Amoxicilina estandar
Medida: menor a 50 µm
9
PORCINOS
FLORFENICOL
le permite penetrar en altas concentraciones
Es un antibiótico de la familia de los fenicoles a las células del tejido infectado y eliminar
exclusivamente de uso veterinario, con una eficazmente las bacterias Gram + o Gram -,
estructura similar al tianfenicol, pero con así como rickettsias, espiroquetas, clamidias y
un espectro antimicrobiano más amplio, Mycoplasmas, entre otros.
mayor actividad y potencia, que no produce
anemia aplásica en humanos. Su inclusión en NAC (N-Acetil-Cisteína)
el alimento tiene una acción muy rápida, se La N- Acetilcisteína es un mucolítico potente
distribuye ampliamente en suero, pulmones y que actúa rompiendo los puentes disulfuro
tracto gastrointestinal de los cerdos.
del moco, disminuyendo la viscosidad,
haciéndolo más fluido y fácil de expulsar por
DOXICICLINA
los cilios respiratorios, es efectivo aun en
Es un antimicrobiano semisintético de muy presencia de pus, además de que reduce la
amplio espectro, bacteriostático, del grupo adhesividad bacteriana al epitelio respiratorio
de las tetraciclinas de segunda generación con y la colonización, disminuye la lesión hepática
vida media mayor que el de otras tetraciclinas causada por algunas micotóxinas, y ayuda a la
(19.5 horas), es de alta liposolubilidad lo que mejoría clínica en infecciones virales.
ACCIÓN ANTIMICROBIANA CONTRA PATÓGENOS INVOLUCRADOS EN
EL COMPLEJO RESPIRATORIO PORCINO
Amoxicilina
Florfenicol
Doxiciclina
Enrofloxacina
Actinobacillus pleuropneumoniae
Mycoplasma hyopneumoniae
Pasteurella multocida
Bordetella bronchiseptica
Haemophilus parasuis
Streptococcus suis
Salmonella choleraesuis
Escherichia coli
Mayor grado de sensibilidad
10
Menor grado de sensibilidad
PORCINOS
Bibliografía:
De Jong M.F. 2006. Progressive and Nonprogressive Atrophic
Rhinitis in: Disease of Swine, 9th Edition, 577-602.
Enríquez V.I., Godínez V.D., Martínez Z.R., Serrano L.J.J., De la
Garza M., Hamer B.R. y Guerrero B. A.L. 2003. Adhesión de
Actinobacillus pleuropneumoniae a componentes de matriz
extracelular de cerdo. Ciencia Veterinaria, Vol. 9-4: 269-293.
ESPINOSA, Ivette y MARTINEZ, Siomara. Pasteurella
multocida, Bordetella bronchiseptica y Streptococcus suis
EN EL COMPLEJO RESPIRATORIO PORCINO. Rev Salud Anim.
[online]. 2008, vol.30, n.3 [citado 2012-06-11], pp. 137-145.
Disponible en: <http://scielo.sld.cu/scielo.php?script=sci_
arttext&pid=S0253-570X2008000300001&lng=es&nrm=i
so>. ISSN 0253-570X.
Gottschalk M., Altman E., Lacouture S., De la Salle F., and
Dubreuil J.D. 1997. Serodiagnosis of Swine pleuropneumoniae
due Actinobacillus pleuropneumoniae Serotypes 7 and 4
Using Long-Chain Lipopolysaccharides. Canadian Journal of
Veterinary Research, 61:62-65
Gottschalk M. and Taylor D. J.2006. Actinobacillus
pleuropneumoniae. In : Diseases of Swine 9th Edition. Ed by
Barbara E. Straw, Jeffery L. Zimmerman, Sylvie D’ Allaire, David
J Taylor. Blackwell publishing. Pág: 563-576.
Halbur, P.G., Tanawongnuwech, G. Brown, J. Kinyon, J. Roth, E.
Thacker & B. Thacker, 2000. Efficacy of antimicrobial treatments
and vaccinations regimens for control of porcine reproductive
and respiratory syndrome virus and Streptococcus suis coinfection of nursery pigs. Journal of Clinical Microbiology Vol.
38, No. 3, 1156-1160.
cerdos inoculados con un aislado de campo y el serotipo 5
ATCC de Actinobacillus pleuropneumoniae. Arch Med Vet, 42:
57-65.
Opriessnig T., Giménez- Lirola L. G., and Halbur P.G. 2011,
Polymicrobial respiratory disease in pigs. Animal Health
Research Reviews 12 (2); 133-148. Cambridge University
Press.
Pallarés, F.J., Halbur, P.G., Schmitt, C.S., Roth, J.A., Opriessnig,
T., Thomas, P.J., Kinyon, J.M., Dee Murphy, Frank, D.E.,
Hoffman, L.J. 2003. Comparison of experimental models
for Streptococcus suis infection of conventional pigs. The
Canadian Journal of Veterinary Research; 67: 225-228.
Ross R.F., 2007. Pasteurella multocida and its role in porcine
pneumonia, Animal Health Research Reviews 7 (1/2); 13-29.
Cambridge University Press.
Smart N.L., Miniats O.P., Rosendal S. and Friendship R.M.
1989. Glasser´s disease and prevalence of subclinical
infection with Haemophilus parasuis in swine in southern
Ontario. Canadian Veterinary Journal, vol. 30. 339-343.
Schwartz K. 2002. Pathological Diagnosis of mycoplasmosis in
swine. In: Swine mycoplasmal pneumonia technical workshop.
Kansas City, MO, FDA/CVM. www.fda.gov/ohrms/dockets/
dailys/02/Mar02/031902/02N-0027_ts00006_02_vol2. ppt
(04 Jul 2012 date last accessed).
Taylor D.j., 2006. Actinobacillus pleuropneumoniae. In :
Diseases of Swine 9th Edition. Ed by Barbara E. Straw, Jeffery
L. Zimmerman, Sylvie D’ Allaire, David J Taylor. Blackwell
publishing. Pág.: 563-576.
Thacker Eileen L. 2008. Porcine Respiratory Disease Complex.
Proceedings, The 15th congress of FAVA, FAVA-OIE Joint
Symposium on Emerging Diseases, P S77-S78. 27-30 October,
Bangkok, Thailand.
I Bochev. 2007. Porcine Respiratory Disease Complex (PRDC):
A REVIEW.I: ETIOLOGY, EPIDEMIOLOGY, CLINICAL FORMS AND
PATHOANATOMICAL FEATURES. Bulgarian Journal of Veterinary
Medicine, 10, No 3, 131-146.
Thacker E. L., Thacker B.J. & Janke B.H. 2001. Interaction
between Mycoplasma hyopneumoniae and Swine influenza
virus. Journal of Clinical Microbiology, 39, No.7, 2525-2530.
Iglesias S G., y Trujano C M. 2000. Diversos Modelos que
existen en el Complejo Respiratorio Porcino, Veterinaria
México, 31 (1): 59-65.
Vahle J.L., Haynes J.S. and Andrews J.J., 1995. Experimental
Reproduction of Haemophilus parasuis infection in swine:
Clinical, Bacteriologic and morphologic findings. J Vet diagn
Invest 7: 476- 480
Lisebrois L.M., Charlebois R., Higgins R. & Nadeau M. 1990.
Prevalence of Streptococcus suis in Four to Eight week
old clinically Healthy piglets. Canadian Journal Veterinary
Research. 54: 174-177.
Marco Enric. 2008. Haemophilus parasuis y su papel en el
CRP. Jornadas Satélite: Primer Congreso de la Asociación
Nacional de Veterinarios de Porcino, Zaragoza, España, Del 5
al 6 Noviembre de 2008.
Muñoz D., Ruiz A., González M., Islas A., Díaz N. y Quezada M.
2010. Estudios hematológicos y patológicos comparativos de
Williams J.J., Torres-León M.A., Echeverría-Coello P.,
Matos-Medina M.C. 2000. Aislamiento e identificación de
Actinobacillus pleuropneumoniae en pulmones de cerdos con
pleuroneumonía crónica sacrificados en el rastro municipal de
Mérida, Yucatán, México. Revista Biomédica; 11, No 3: 175181.
Apasionados por la salud animal
Ciprián, A., C. Pijoan, T., Cruz, J., Camacho, J., Tórtora,
G., Colmenares, R. López-Revilla & M. de la Garza. 1988.
Mycoplasma hyopneumoniae increase the susceptibility
of pigs to experimental Pasteurella multocida pneumonia.
Canadian Journal of Veterinary Research, 52, No. 4, 434-438.
Yeske P., 2003. Vaccination against EP. Pig progress, special
(respiratory diseases), October 2003, 10-11.
11
Suramox®
50% Premix
Reg. S.A.G.A.R.P.A. Q-0042-337
PROCESO
STAVIBAC
Reg. S.A.G.A.R.P.A. Q-0042-350
FÓRMULA
Cada 1000 g contienen:
Amoxicilina
con
proceso
Stavibac
......................................................... 500 g
Excipiente c.b.p. .............................. 1000 g
DESCRIPCIÓN
Suramox® 50% Premix, formulado a base de
Amoxicilina revestida con proceso Stavibac
por lo que el antibiótico conserva sus
ventajas durante el proceso de peletización y
almacenamiento del alimento.
Beneficios:
•Disponibilidad al 100% de su principio
activo.
•Granulometría controlada para una perfecta
FÓRMULA
Cada 1000 g contiene:
Florfenicol................................40 g
N-Acetilcisteína........................25 g
Excipiente c.b.p................... 1000 g
DESCRIPCIÓN
Premezcla formulada a base de florfenicol, es
una premezcla antibiótica para su uso en el
alimento de cerdos y aves para la prevención
y alivio sintomático de las afecciones del
tracto respiratorio debido a la adición del
NAC, que es un potente mucolítico, así como
tratamiento de procesos patológicos
bacterianos. Actúa sobre la mayoría de las
Fortius® L.A.
REG. S.A.G.A.R.P.A. Q-0042-326
FÓRMULA
Cada 1 ml contiene:
Enrofloxacina.......................100 mg
Excipiente c.b.p................... ...1 ml
DESCRIPCIÓN
Es un antimicrobiano a base de
Enrofloxacina al 10%, de amplio espectro,
efecto bactericida y larga acción.
REG. S.A.G.A.R.P.A. Q-0042-349
INDICACIONES
Para la prevención y tratamiento de
enfermedades provocadas por gérmenes
sensibles a la Amoxicilina.
Aves: Infecciones respiratorias, artritis,
colibacilosis, salmonelosis y estafilococosis.
Cerdos:
Estreptococosis,
nefritis
bacterias involucradas en enfermedades del
aparato respiratorio
INDICACIONES
Prevención y tratamiento de problemas
respiratorios en cerdos ocasionados por
gérmenes sensibles al Florfenicol y alivio
sintomático de las afecciones que cursan con
producción excesiva de moco.
Control de transtornos digestivos infecciosos
provocados por Salmonella spp y E. coli.
pleuroneumonía
contagiosa,
cistitis
poliserositis infecciosa e infecciones del
tracto reproductivo.
DOSIS
Lechones y engorda: Mezclar 800 g de
Suramox® 50% Premix por tonelada de
alimento durante 7 días.
Cerdas: Mezclar 800 g a 2.4 kg de Suramox®
50% Premix, por tonelada de alimento
durante 7 días.
Aves: Mezclar 400 a 800 g de Suramox® 50%
Premix por tonelada de alimento durante 7
días.
Presentación: Saco de 10 kg
florfenicol y 25 ppm de NAC). Se recomienda
por lo general durante un periodo de 7 días.
La dosificación y el tiempo de tratamiento
dependen del grado de riesgo en particular
de cada etapa o de las condiciones
particulares de cada granja.
Vía de administración:
Oral mezclado en el alimento.
Presentación: Saco de 10 kg
DOSIS
Mezclar 1 kg de Aflorac® MAXX por tonelada
de alimento (equivalente a 40 ppm de
respiratorias, infecciones gastrointestinales,
infecciones genitourinarias y algunos casos
de mastitis. Para el tratamiento de heridas y
procesos piógenos, además de otras
infecciones causadas por microorganismos
sensibles a la Enrofloxacina.
(Pasteurella
multocida,
Actinobacillus
pleuropneumoniae, Escherichia coli, Salmonella spp
y micoplasmas).
Vía de administración:
Intramuscular o subcutánea.
No se administre más de 15 ml por sitio de
aplicación.
Presentaciones: Frasco de 100 ml y 250 ml.
INDICACIONES
Antimicrobiano de amplio espectro para ser
usado en bovinos, ovinos, caprinos y
porcinos.
Para el tratamiento de infecciones
DOSIS
Administrar 3 ml/40 kg de peso (equivalente
a 7.5 mg/kg) dosis única o repetir si es
necesario a las 72 horas.
FÓRMULA
Cada 1000 g contienen:
Doxiciclina (hiclato)............... 500 g
NAC ....................................... 50 g
Excipiente c.b.p. ...................1000 g
H. paragallinarum, O. rhinotracheale y E. coli.
Cerdos: Tratamiento y control de
exacerbación de signos clínicos, de las
enfermedades provocadas por Pasteurella
multocida, Mycoplasma hyopneumoniae, Bordetella
bronchiseptica, Actinobacillus pleuropneumoniae, y
enfermedades entéricas causadas por
Lawsonia intracellularis (Ileítis).
DOSIS
En aves administrar de 300 a 400 g de
Premedox® 50% MAXX por tonelada de
alimento.
En cerdos administrar de 400 a 500 g de
Premedox® 50% MAXX por tonelada de
alimento.
La duración del tratamiento será de 8 días.
DESCRIPCIÓN
Premezcla antibiótica de amplio espectro a
base de hiclato de Doxiciclina con la
inclusión N-acetilcisteina con efecto de
potente mucolítico.
Vía de administración:
Oral mezclado uniformemente
alimento.
INDICACIONES
Para el tratamiento de los procesos
patológicos y alivio sintomático de las
afecciones
del
tracto
respiratorio,
provocados por micoplasmas y bacterias.
Control de afecciones digestivas y prevención
de la Enteropatía Proliferativa en porcinos.
Aves: Control de enfermedades respiratorias
causadas por M. gallisepticum, M. synoviae,
Si requiere de información adicional Consulte al
departamento técnico o al Médico Veterinario.
Llame sin costo a la Línea Virbac 01 800 024 75 75
PORCINOS
homogeneidad del alimento medicado que se
consigue dada la similitud de esta (300 a 500
micras) con la del alimento en harina.
El proceso de protección de la Amoxicilina
reduce considerablemente los riesgos de
diseminación de la sustancia activa,
(contaminaciones cruzadas).
•Efecto antiadhesivo.
www.virbac.com.mx
Presentación: Saco de 10 kg
Virbac México S.A. de C.V. Lote 30 manzana 1,
Parque Industrial Guadalajara, El Salto Jalisco.
C.P. 45690. Teléfono: 01 (33) 5000 2550,
Fax: 01 (33) 5000 2555. E-mail: [email protected]
en
el