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09. CM CABRERA 2/12/05 09:00 Página 738 1130-0108/2005/97/10/738-743 REVISTA ESPAÑOLA DE ENFERMEDADES DIGESTIVAS Copyright © 2005 ARÁN EDICIONES, S. L. REV ESP ENFERM DIG (Madrid) Vol. 97. N.° 10, pp. 738-743, 2005 APC and chromosome instability in colorectal cancer C. M. Cabrera and M. A. López-Nevot1 Services of Pathology and 1Clinical Analysis. Hospital Universitario Virgen de las Nieves. Granada, Spain ABSTRACT Colon cancer is a common disease that can be sporadic or familial. An inactivated adenomatous polyposis coli (APC) suppressor gene is found in over 80% of colorectal tumors, this being an early alteration in the development of adenomatous polyps. APC function is not only critical for tumor initiation and progression, and chromosome instability (CIN) is another characteristic dependent at least partly on APC mutations. Key words: Colorectal cancer. APC. Chromosome instability. cells precisely equals the loss rate from the crypt apex. When the birth/loss ratio increases a tumor results. Colorectal tumors progress through a series of clinical and histopathological stages ranging from dysplastic crypts through small benign tumors to malignant cancers. This progression is the result of a series of genetic changes that involve activation of oncogenes and inactivation of tumor suppressor genes (4). In colorectal cancer, chromosomal instability (CIN) is the major form of genetic instability (5). Mutation of the APC gene is the earliest event yet identified in sporadic colorectal tumorigenesis, and it is estimated that > 85% of colorectal tumors have somatic mutations of the APC gene (5). Cabrera CM, López-Nevot MA. APC and chromosome instability in colorectal cancer. Rev Esp Enferm Dig 2005; 97: 738-743. APC STRUCTURE AND FUNCTION INTRODUCTION The colon is organized into cell compartments called crypts. It is widely believed that adenomas develop from normal stem cells located at the bases of normal crypts (1). The progeny of stem cells migrate up the crypt and continue to divide until they reach its mid portion. Subsequently, migrating epithelial cells stop dividing and differentiate to mature cells instead. When differentiated cells reach the top of the crypt, they undergo apoptosis and are engulfed by stromal cells or shed into the lumen. This journey from the crypt’s base to the apex lasts 3-6 days (2,3). Usually, the birth rate of colonic epithelial Recibido: 11-02-05. Aceptado: 10-05-05. Correspondencia: Carmen M. Cabrera. Servicio de Anatomía Patológica. Hospital Universitario Virgen de las Nieves. 4ª planta, edificio de Gobierno. Avenida Fuerzas Armadas, 2. 18014 Granada. Fax: 958 092 438. email: [email protected] The APC gene encodes a large multidomain protein that has many different sites for interaction with other proteins. It is present in a variety of epithelial tissues, usually in cells that are post-mitotic (6). Immunohistochemical studies show that APC is often diffusely distributed in the cytoplasm, although it can sometimes be found in the apical or lateral regions of epithelial cells (6). Studies indicate that APC participates in a variety of cellular functions including proliferation, differentiation, apoptosis, adhesion, migration, and chromosomal segregation (7). Figure 1 shows the various domains within APC that interact with other proteins. The armadillo repeat at the N-terminal portion binds to the B56 regulatory subunit of protein phosphatase 2A and APC-stimulated guanine exchange factor (8). These two proteins may be involved in the Wingless (Wnt) signaling pathway, of which APC is a component (8,9). Another important domain includes three 15-amino acid repeats that bind β-catenin, and seven 20-amino acid repeats that are required for the downregulation of β-catenin (10,11). Sites in APC have also 09. CM CABRERA 2/12/05 09:00 Página 739 Vol. 97. N.° 10, 2005 APC AND CHROMOSOME INSTABILITY IN COLORECTAL CANCER 739 Fig. 1.- The different domains of the APC protein. Conserved regions, such as Armadillo repeats, and regions that interact with other proteins, including tubulin, the microtubule-associated protein EB1, β-catenin, and axin/conductin, are shown. Dominios de la proteína APC. Presenta regiones conservadas como las repeticiones Armadillo; y regiones que interaccionan con otras proteínas, incluyendo tubulina, la proteína EB1 asociada a microtúbulos, β-catenina, y axina/conductina. been identified that interact with axin and conductin (12,13), two inhibitory proteins of the Wnt signaling pathway. The C terminal portion of the protein is involved in binding to microtubules and tubulin-binding protein EB1 (14). Mutational analysis of the APC gene indicates that the majority of germline mutations found in patients with familial adenomatous polyposis (FAP) are nonsense mutations, leading to the formation of a truncated protein. More than 60% of APC mutations are found in the central region (between codons 1284 and 1580) of the protein, which is called the mutation cluster region (MCR) (15). The MCR region coincides with a region in APC that is important for the down-regulation of β-catenin, which suggests that this function is important for the pathogenesis of colorectal cancer. Subsequent studies demonstrated that APC and β-catenin are important parts of the Wnt signaling pathway (Fig. 2). The greatest progress in understanding the function of APC has been made in studying its interaction with glycogen synthase kinase (GSK)-3β and β-catenin, both being essential components of the Wnt signaling pathway (5). GSK-3β makes up complexes with APC, β-catenin, and axin, and then phosphorylates β-catenin. Phosphorylation targets β-catenin for degradation via an ubiquitin-mediated proteasomal pathway (16). Truncation of APC results in the disruption of complex formation and ultimately increased cytoplasmic levels of β-catenin. Free β-catenin is translocated to the nucleus, where it interacts with T-cell factors (TCFs) (Fig. 2). TCF-4 is the predominant member of this family of transcription factors in colonic epithelial cells, and activation of this pathway upregulates oncogenes c-Myc and cyclin D1 (17,18). These findings suggest that β-catenin upregulates TCF-responsive genes critical for the proliferation and transformation of colonic epithelial cells. In this context, it is noteworthy that a gain-of-function mutation in the β-catenin gene has been identified in as many as 50% of colon tumors with an intact APC (19). APC AND CHROMOSOME INSTABILITY (CIN) Fig. 2.- The signaling pathways in the absence (A) and the presence (B) of the Wnt ligand. Fz, frizzled receptor; Dsh, dishevelled protein. Upon the binding of the Wnt ligand to its receptor Fz, the dishevelled protein is activated. Rutas de señalización en presencia (A) y ausencia (B) de un ligando Wnt. Fz, receptor frizzled; Dsh, proteína dishevelled. La unión del ligando Wnt a su receptor Fz, activa a la proteína dishevelled. REV ESP ENFERM DIG 2005; 97(10): 738-743 Recent studies have shown that the C terminus of the APC protein is involved in maintaining chromosome stability during mitosis (20,21). APC is localized in the kinetochore of metaphase chromosomes, and this localization is likely dependent on the interaction between 09. CM CABRERA 740 2/12/05 09:00 Página 740 C. M. CABRERA AND M. A. LÓPEZ-NEVOT APC and EB1. Accordingly, APC-mutant cells have an abundance of spindle microtubules that fail to connect to the kinetochore and are characterized by CIN (22). In the mouse model that involves a mutation at codon 1628 of the APC gene (APC1638), this mutation truncates the C-terminal portion of APC responsible for CIN-related functions but retains the β-catenin regulatory domain (20). Consequently, embryonic stem (ES) cells isolated from homozygous APC1638T animals were CIN (20). However, the corresponding mice were viable and tumor-free. In contrast, the classic mouse model APCMin that carries a nonsense mutation at codon 850 truncated the region required to regulate β-catenin. The heterozygous APC+/Min animals develop numerous adenomas in their intestinal tract (23). These observations underscore the importance of the selective advantage provided by the loss of βcatenin control in tumor formation, and argue against the ability of chromosomal instability to initiate the oncogenic process. REV ESP ENFERM DIG (Madrid) CONCLUSION The fact that genomic defects in so many genes can lead to CIN, at least in yeast, suggests a heterogeneous basis for CIN in tumors, with many genes each playing a role in a small proportion of cases. Accordingly, CIN may be so common in tumors precisely because there are so many genes that, when mutated, can lead to this phenotype. Therefore, in colorectal tumors, chromosomal instability as observed is not only originated by APC mutations, and probably other mitotic checkpoint genes can be involved in this process. REFERENCES 1. 2. 3. CHROMOSOME INSTABILITY IN TUMOR INITIATION 4. Colorectal cancer is one of the best understood systems for the study of the genetics of cancer progression. Two types of genetic instability have been identified, with chromosomal instability predominating (24,25). The molecular basis for CIN is just beginning to be explored (26). A large number of gene alterations can give rise to CIN in Saccharomyces cerevisiae (27,28). These genes include those involved in chromosome condensation, sister-chromatid cohesion, kinetochore structure and function, and microtubule formation and dynamics as well as checkpoints that monitor the progress of the cell cycle. To date, the only genes implicated in aneuploidy in human tumor cells are those of the latter class. Heterozygous mutations in the mitotic spindle checkpoint gene hBUB1 were detected in a small portion of colorectal tumors with the CIN phenotype (29). Mutations in hBUB1 can function in a dominant-negative manner in both mouse and human cells, conferring an abnormal spindle checkpoint when expressed exogenously (29,30). These results also confirmed cell-fusion studies that indicate that the CIN phenotype has a dominant quality and it might only require a single mutational “hit” to produce CIN (31). Most APC mutations observed in patients lead to the truncation of the encoded protein, with loss of the carboxyl-terminal sequences that interact with microtubules (20). However, some well characterized human colon cancer cell lines with APC mutations have chromosome complements that have remained perfectly stable and invariable over thousands of cell divisions in vitro (31,32). Therefore, it is unlikely that APC inactivation itself triggers CIN in human colorectal cancer. 6. 5. 7. 8. 9. 10. 11. 12. 13. 14. 15. 16. 17. 18. 19. 20. Bach SP, Renehan AG, Potten CS. Stem cells: the intestinal stem cell as a paradigm. Carcinogenesis 2000; 21: 469-76. Lipkin M, Bell B, Shelrock P. Generation time of epithelial cells in the human colon. Nature 1962; 195: 175-7. Shorter RG, Moertel CG, Titus JL. Cell kinetics in the jejunum and rectum of man. Am J Dig Dis 1964; 9: 760-3. Cruz-Bustillo Clarens D. Molecular genetics of colorectal cancer. Rev Esp Enferm Dig 2004; 96: 48-59. Chung DC. The genetic basis of colorectal cancer: insights into critical pathways of tumorigenesis. Gastroenterology 2000; 119: 854-65. Midgley CA, White S, Howitt R, Save V, Dunlop MG, Hall PA, et al. APC expression in normal human tissues. J Pathol 1997; 181: 426-33. van Es JH, Giles RH, Clevers HC. The many faces of the tumor suppressor gene APC. Exp Cell Res 2001; 264: 126-34. Seeling JM, Miller JR, Gil R, Moon RT, White RT, Virshup DM. Regulation of beta-catenin signaling by the B56 subunit of protein phosphatase 2A. Science 1999; 283: 2089-91. Kawasaki Y, Senda T, Ishidate T, Koyama R, Morishita T, Iwayama Y, et al. Asef, a link between the tumor suppressor APC and G-protein signaling. Science 2000; 289: 1194-7. Rubinfeld B, Souza B, Albert I, Muller O, Chamberlain SH, Masiarz FR, et al. Association of the APC gene product with beta-catenin. Science 1993; 262: 1731-4. Su LK, Vogelstein B, Kinzler KW. Association of the APC tumor suppressor protein with catenins. Science 1993; 262: 1734-7. Behrens J, Jerchow BA, Wurtele M, Grimm J, Asbrand C, Wirtz R, et al. Functional interaction of an axin homolog, conductin, with betacatenin, APC, and GSK3 beta. Science 1998; 280: 596-9. Kishida S, Yamamoto H, Ikeda S, Kishida M, Sakamoto I, Koyama S, et al. Axin, a negative regulator of the Wnt signaling pathway, directly interacts with adenomatous polyposis coli and regulates the stabilization of beta-catenin. J Biol Chem 1998; 273: 10823-6. Su LK, Burrell M, Hill DE, Gyuris J, Brent R, Wiltshire R, et al. APC binds to the novel protein EB1. Cancer Res 1995; 55: 29727. Miyoshi Y, Nagase H, Ando H, Horii A, Ichii S, Nakatsuru S, et al. Somatic mutations of the APC gene in colorectal tumors: mutation cluster region in the APC gene. Hum Mol Genet 1992; 1: 229-33. Rubinfeld B, Albert I, Porfiri E, Fiol C, Munemitsu S, Polakis P. Binding of GSK3β to the APC-β-catenin complex and regulation of complex assembly. Science 1996; 272: 1023-6. He TC, Sparks AB, Rago C, Hermeking H, Zawel L, da Costa LT, et al. Identification of c-myc as a target of the APC pathway. Science 1998; 281: 1509-12. Tetsu O, McCormick F. Beta-catenin regulates expression of cyclin D1 in colon carcinoma cells. Nature 1999; 398: 422-6. Sparks AB, Morin PJ, Vogelstein B, Kinzler KW. Mutational analysis of the APC/β-catenin/TCF-pathway in colorectal cancer. Cancer Res 1998; 58: 1130-4. Fodde R, Kuipers J, Rosenberg C, Smits R, Kielman M, Gaspar C, et al. Mutations in the APC tumor suppressor gene cause chromosomal instability. Nat Cell Biol 2001; 3: 433-8. REV ESP ENFERM DIG 2005; 97(10): 738-743 09. CM CABRERA 2/12/05 09:00 Página 741 Vol. 97. N.° 10, 2005 APC AND CHROMOSOME INSTABILITY IN COLORECTAL CANCER 21. Kaplan KB, Burds AA, Swedlow JR, Bekir SS, Sorger PK, Nathke IS. A role for the Adenomatous polyposis coli protein in chromosome segregation. Nat Cell Biol 2001; 3: 429-32. 22. Green RA, Kaplan KB. Chromosome instability in colorectal tumor cells is associated with defects in microtubule plus-end attachments caused by a dominant mutation in APC. J Cell Biol 2003; 163: 949-61. 23. Su LK, Kinzler KW, Vogelstein B, Preisinger AC, Moser AR, Luongo C, et al. Multiple intestinal neoplasia caused by a mutation in the murine homolog of the APC gene. Science 1992; 256: 668-70. 24. Lengauer C, Kinzler KW, Vogelstein B. Genetic instabilities in human cancers. Nature 1998; 396: 643-9. 25. Sen S. Aneuploidy and cancer. Curr Opin Oncol 2000; 12: 82-8. 26. Maser RS, DePinho RA. Connecting chromosomes, crisis, and cancer. Science 2002; 297: 565-9. 27. Kolodner RD, Putnam CD, Myung K. Maintenance of genome sta- 28. 29. 30. 31. 32. 741 bility in Saccharomyces cerevisiae. Science 2002; 297: 552-7. Nasmyth K. Segregating sister genomes: the molecular biology of chromosome separation. Science 2002; 297: 559-65. Cahill DP, Lengauer C, Yu J, Riggins GJ, Willson JKV, Markowitz SD, et al. Mutations of mitotic checkpoint genes in human cancers. Nature 1998; 392: 300-3. Bardelli A, Cahill DP, Lederer G, Speicher MR, Kinzler KW, Vogelstein B, et al. Carcinogen-specific induction of genetic instability. Proc Natl Acad Sci USA 2001; 98: 5770-5. Lengauer C, Kinzler KW, Vogelstein B. Genetic instability in colorectal cancer. Nature 1997; 386: 623-7. Abdel-Rahman WM, Katsura K, Rens W, Gorman PA, Sherr D, Bicknell D, et al. Spectral karyotyping suggests additional subsets of colorectal cancers characterized by pattern of chromosome rearrangement. Proc Natl Acad Sci USA 2001; 98: 2538-43. APC e inestabilidad cromosómica en el cáncer de colon C. M. Cabrera y M. A. López-Nevot1 Servicios de Anatomía Patológica y 1Análisis Clínicos. Hospital Universitario Virgen de las Nieves. Granada RESUMEN El cáncer de colon es una enfermedad frecuente que puede ser esporádica o familiar. La inactivación del gen supresor de tumores APC (adenomatous polyposis coli) se ha encontrado en más del 80% de los casos descritos de tumores colorrectales, apareciendo como una alteración temprana durante el desarrollo del pólipo adenomatoso. La inactivación del gen APC no es únicamente crítica en el proceso de iniciación y desarrollo del tumor, sino que igualmente la inestabilidad cromosómica (CIN) es otra característica dependiente al menos en parte de la presencia de mutaciones en APC. Palabras clave: Cáncer de colon. APC. Inestabilidad cromosómica. INTRODUCCIÓN El colon está organizado en compartimentos de células que constituyen las denominadas criptas colónicas. Está ampliamente aceptado que las lesiones adenomatosas se desarrollan a partir de las células stem o células madre localizadas en la base de las criptas (1). La progenie de células madre migra a través de las criptas y continúa dividiéndose hasta que alcanza la porción media de las mismas. En ese momento, las células paran de dividirse y comienzan a diferenciarse en células epiteliales maduras. REV ESP ENFERM DIG 2005; 97(10): 738-743 Cuando las células diferenciadas alcanzan la superficie externa de la cripta sufren un proceso de muerte por apoptosis y son entonces eliminadas por células estromales o se desprenden hacia el lumen de la cripta. Este viaje desde la base de la cripta hasta su ápice dura alrededor de 3-6 días (2,3). Normalmente, la tasa de nacimiento de células epiteliales colónicas iguala a la tasa de pérdida, pero si esta tasa se incrementa entonces se origina un proceso neoplásico. Los tumores de colon atraviesan por diferentes estadios clínicos e histopatológicos, que van desde la formación de las criptas displásicas hasta la formación de tumores benignos, y carcinomas. Esta progresión es el resultado de una serie de cambios genéticos que implica la inactivación de genes supresores de tumores y la activación de oncogenes (4). La inactivación del gen APC es el evento más tempranamente identificado en el cáncer de colon esporádico, y se estima que más del 85% de los tumores de colon presentan mutaciones somáticas de APC (5). APC: ESTRUCTURA Y FUNCIÓN El gen APC codifica una proteína de gran tamaño con numerosos dominios y diferentes sitios de interacción 09. CM CABRERA 742 2/12/05 09:00 Página 742 C. M. CABRERA Y M. A. LÓPEZ-NEVOT con otras proteínas. Esta proteína está presente en diferentes tejidos epiteliales, normalmente en células que experimentan procesos post-mitóticos (6). Los estudios inmunohistoquímicos muestran que APC aparece de forma difusamente distribuida en el citoplasma celular, aunque también se ha encontrado en las regiones apicales y laterales de las células epiteliales (6). La proteína APC participa en procesos celulares diversos que incluyen proliferación, diferenciación, apoptosis, adhesión, migración y segregación cromosómica (7). La figura 1 muestra varios de los dominios que presenta la proteína APC, y sus regiones de interacción con otras proteínas. En el extremo amino-terminal (N) presenta la región conservada de repeticiones Armadillo, que interacciona con la subunidad reguladora B56 de la proteína fosfatasa-2A y con el factor intercambiador de guanina estimulado por Asef (8). Estas dos proteínas están implicadas en la vía de señalización Wingless (Wnt), de la cual es componente la proteína APC (8,9). Otro dominio importante incluye tres repeticiones de 15 aminoácidos que interactúan con la proteína β-catenina, y siete repeticiones de 20 aminoácidos que se requieren para la regulación negativa de β-catenina (10,11). Igualmente la proteína APC presenta sitios de unión con axina y conductina (12,13), dos proteínas inhibidoras de la ruta de señalización Wnt. La región carboxi-terminal (C) participa en la unión con microtúbulos y con la proteína de unión a microtúbulos EB1 (14). El análisis mutacional de APC revela que la mayoría de las mutaciones germinales encontradas en pacientes con poliposis familiar hereditaria (FAP) son mutaciones sin sentido que generan codones stop y por tanto proteínas truncadas. Más del 60% de las mutaciones encontradas en APC se concentran en una región central de la proteína (entre los codones 1284-1580) que recibe el nombre de mutation cluster region (MCR) (15). La región MCR coincide con la región de APC que interviene en las funciones dependientes de β-catenina, lo cual sugiere que esta función es muy importante en la patogénesis del cáncer colorrectal. Diferentes estudios han demostrado que la proteína APC y β-catenina son partes importantes de la vía de señalización intracelular Wnt (Fig. 2). Gracias al estudio de la interacción de la proteína APC con la glucógeno-sintetasa quinasa-3β (GSK-3β) y con β-catenina ambas partes esenciales de la vía Wnt, se ha podido conocer el papel que desempeña APC en el desarrollo del cáncer de colon (5). La GSK-3β se encuentra formando un complejo con APC, β-catenina y axina. La fosforilación de β-catenina por la enzima GSK-3β, hace que β-catenina sea diana para su degradación proteolítica vía ubiquitina-proteasoma (16). Las formas de proteína APC truncadas producen la alteración del complejo, con lo cual la β-catenina no es degradada y se acumula en el citoplasma celular. La β-catenina libre es translocada al núcleo celular, donde interacciona con los factores TCFs (Fig. 2). El factor TCF4 es el miembro predominante de esta familia de factores de transcripción en células epiteliales de co- REV ESP ENFERM DIG (Madrid) lon; mediante la activación de esta vía se aumenta la expresión de oncogenes como c-Myc y ciclina D1 (17,18). Estas observaciones sugieren que β-catenina produce el aumento de expresión de genes dependientes de los factores de transcripción TCFs críticos en la proliferación y transformación de las células epiteliales colónicas. En este contexto es importante notar que las mutaciones que producen ganancia de función génica de β-catenina se han identificado en un 50% de los tumores de colon con el gen APC no mutado (19). Actuando por tanto β-catenina como un oncogen. PAPEL DE APC EN LA INESTABILIDAD CROMOSÓMICA (CIN) Estudios recientes han mostrado que el extremo carboxi-terminal (C) de la proteína APC está implicado en el mantenimiento de la estabilidad cromosómica durante el proceso de mitosis (20,21). APC se localiza en el cinetocoro de los cromosomas en metafase, y esta localización es dependiente de su interacción con la proteína EB1. De acuerdo con ello, aquellas células mutantes para APC tienen una gran abundancia de microtúbulos que son incapaces de unirse al cinetocoro y por lo tanto son responsables del fenotipo de inestabilidad cromosómica observado en estas células (22). En el modelo de ratón APC1638 que presenta una mutación sin sentido el codón 1628 del gen APC, se genera una proteína truncada en el extremo carboxi-terminal responsable de las funciones relacionadas con la inestabilidad cromosómica-CIN pero retiene la región de regulación dependiente de β-catenina (20). Por lo tanto, las células madre aisladas de ratones homocigotos APC1638 presentaron inestabilidad cromosómica (20). Sin embargo, los ratones que se desarrollaron fueron viables y no presentaron tumor. En contraposición, en el modelo clásico APCMin que lleva una mutación sin sentido en el codón 850 que trunca la región amino-terminal necesaria para la función dependiente de b-catenina, los animales heterocigotos APC+/Min desarrollan numerosos adenomas es el intestino (23). Estas observaciones ponen de manifiesto la ventaja selectiva que presentan las células tumorales de colon cuando pierden la función dependiente de β-catenina, y que por tanto la inestabilidad cromosómica resultante es una consecuencia de esta pérdida y no el proceso desencadenante del tumor. PAPEL DE LA INESTABILIDAD CROMOSÓMICA EN EL INICIO DEL PROCESO TUMORAL El cáncer colorrectal es uno de los mejores sistemas conocidos para el estudio de la genética de progresión tumoral. Se han identificado dos tipos de inestabilidad cro- REV ESP ENFERM DIG 2005; 97(10): 738-743 09. CM CABRERA 2/12/05 09:00 Página 743 Vol. 97. N.° 10, 2005 APC E INESTABILIDAD CROMOSÓMICA EN EL CÁNCER DE COLON mosómica, siendo la predominante (y en la mayoría del resto de tumores sólidos) la inestabilidad cromosómica (24,25). Las bases moleculares de la inestabilidad cromosómica se están empezando a conocer ahora (26). En Saccharomyces cerevisiae se han identificado un gran número de genes que pueden dar origen a un fenotipo CIN (27,28). Estos genes incluyen aquellos implicados en la condensación de las cromátidas hermanas, cohesión, estructura y función del cinetocoro, formación y dinámica de microtúbulos, y genes reguladores de la formación del huso mitótico. Este último grupo de genes está implicado en la aneuploidía de células tumorales humanas. En concreto, se han detectado mutaciones heterocigotas del gen regulador hBUB1 en una pequeña porción de tumores colorrectales con fenotipo CIN (29). Las mutaciones en el gen hBUB1 pueden funcionar de una forma dominante-negativa tanto en ratón como en células humanas (29, 30). Estos resultados se han confirmado igualmente mediante estudios de fusión celular que indican que el fenotipo CIN tiene un efecto dominante que únicamente requeriría un único evento mutacional o "hit" para producir un fenotipo CIN (31). En pacientes con cáncer de colon la mayoría de las mutaciones en APC producen una proteína truncada, REV ESP ENFERM DIG 2005; 97(10): 738-743 743 con pérdida del extremo carboxi-terminal (20). Sin embargo, algunas líneas celulares humanas de cáncer de colon bien caracterizadas con mutaciones en APC no presentan inestabilidad cromosómica después de miles de divisiones celulares in vitro (31,32). Por lo tanto es poco probable que únicamente la inactivación de APC conduzca por sí misma a un fenotipo CIN en el cáncer colorrectal humano. CONCLUSIÓN El hecho de que los defectos genómicos de diferentes genes puedan conducir a un fenotipo CIN, al menos en levadura, sugiere una base heterogénea para el fenotipo CIN, con muchos genes implicados cada uno de los cuales juega un pequeño papel en una pequeña porción de casos. Por ello el fenotipo CIN es tan frecuente en los tumores, ya que hay numerosos genes implicados que cuando mutan pueden originar este fenotipo. En los tumores de colon, la inestabilidad cromosómica observada probablemente no sea únicamente debida a la pérdida de la función de APC, sino que otros genes pueden estar implicados en este proceso.