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EXAMEN DE HECES EN FRESCO
Y COPROCULTIVO
Práctica 9
1. Observación directa
• Consistencia:
▫ Formada
▫ Semiformada
▫ Pastosa
▫ Líquida
• Trozos duros separados
F
o
r
m
a
d
a
• Cilíndrica compuesta de fragmentos.
• Cilíndrica con grietas en la superficie.
• Cilíndrica lisa y suave.
Semiformada
Pastosa
Líquida
• Bultos blandos con bordes definidos
• Fragmentos blandos, bordes
irregulares y consistencia pastosa.
• Acuosa, sin pedazos sólidos,
totalmente líquida.
1. Observación directa
• Consistencia:
▫ Formada
▫ Semiformada
▫ Pastosa
▫ Líquida
• Color
▫ Café
▫ Marrón
▫ Negro
▫ Amarillo
• Restos alimenticios
• Moco
• Sangre
2. Determinación de pH
Portaobjetos + papel pH
+
1 Muestra
Ácido 1 – 6
Neutro 7
Básico 8-14
3. Preparación de la emulsión
Tubo split
3. Preparación de la emulsión
Tubo split + 2 mL SS
0.5 Mx
Limpiar el tubo con algodón y
cloro
0.5 g de
heces
2 mL
Solución
salina
Homogenizar con el vortex
Centrifugar 5 min
Descartar sobrenadante
(beaker con cloro)
4. Siembra en medios de cultivo
• Agar XLD
• Agar SS
• Agar McConkey
• Sembrar los microorganismos, utilizando
un asa
• Incubar a 37°C / 24-48 h
5.1 Preparación del frotis (lamina 1)
Colocar una gota de la
suspensión de heces
Colocar un portaobjetos
Observar en 40x
Material vegetal
Bacterias
Jabones
Cristales
5.2 Preparación del frotis (Lamina 2)
Hacer un frote delgado con
la suspensión de heces
Dejar secar al aire
Fijar al mechero
Teñir con Gram
Tinción de Gram
• Cristal violeta (1 minuto)
▫ Lavar
• Lugol (1 minuto)
▫ Lavar
• Alcohol-acetona (3-5 segundos)
▫ Lavar
• Safranina (1 minuto)
▫ Lavar
Observación
• Muestra de heces (características
macroscópicas)
• Siembra de las cajas (McConkey, XLD y
SS)
• Frote 1: 40x
• Frote 2: 100x (teñido con Gram)