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Cursos y Tópicos
Semestre 2017-1
1. Título del curso o tópico
Técnicas Selectas de Biología Molecular
2. Tutor responsable
Nombre del Tutor TORRES QUIROZ JOSE FRANCISCO
Entidad
Instituto de Fisiología Celular
Teléfono
(55) 56225628
Correo electrónico [email protected]
3. Integrantes
Integrante
Rol
Horas
TORRES QUIROZ JOSE FRANCISCO Tutor responsable
6
ONGAY LARIOS LAURA
Profesor invitado (Externo)
9
TORRES MACHORRO ANA LILIA
Profesor invitado (Externo)
6
GONZALEZ PEDRAJO BERTHA
Profesor invitado (Externo)
3
MORENO ALVAREZ PAOLA
Profesor invitado (Externo)
3
RAMIREZ SALCEDO JORGE
Profesor invitado (Externo)
3
CORIA ORTEGA ROBERTO
Profesor invitado (MDCBQ)
9
RECILLAS TARGA FELIX
Profesor invitado (MDCBQ)
3
LICONA LIMÓN PAULA
Profesor invitado (MDCBQ)
3
ARCINIEGA CASTRO MARCELINO
Profesor invitado (MDCBQ)
3
4. Observaciones del Coordinador del curso o tópico
5. Características para impartir el curso o tópico
Lugar en donde se realizará el tópico
Aula A del Instituto de Fisiología Celular, UNAM
Horario en que se realizará el tópico
Viernes de 9am a 12pm
Número de sesiones
17
Máximo de alumnos que puede aceptar 15
6. Métodos de evaluación
Método
Porcentaje Cantidad
Participación en clase
10 %
Presentación de un proyecto
50 %
1
Trabajo escrito
40 %
1
7. Introducción / justificación del curso o tópico
Actualmente las técnicas de biología molecular son empleadas en laboratorios de investigación de diversas áreas, sin
embargo, algunas veces el usuario no comprende del todo cuales son los fundamentos. Por otro lado muchos de los
estudiantes que se incorporan al postgrado solamente conocen las técnicas empleadas en sus laboratorios y les es
difícil entender otras técnicas que se incluyen en artículos o se revisan en libros y que son necesarias para poder
tener una formación integral.
Recientemente se han desarrollado nuevas técnicas de biología molecular que se basan en técnicas ya conocidas y
es necesario tener este conocimiento para aplicarlas de la mejor manera.
8. Objetivos
El objetivo de este curso es revisar los fundamentos teóricos en los cuales se basan las técnicas clásicas de Biología
Molecular. Con esto se pretende que el alumno sea capaz no sólo de entender como se han desarrollado estas
técnicas sino también poder modificarlas para algún aprovechamiento particular. Un claro ejemplo de esto es el uso
de “kits” comerciales para diferente aspectos de biología molecular.
9. Temario del curso o tópico
Temario:
Viernes 13 de Agosto de 2016.
Presentación del curso. Dr. Francisco Torres
1. Electroforesis.
a) Principios de la electroforésis.
b) Geles de Agarosa.
c) Aplicaciones de la electroforésis.
Viernes 20 de Agosto de 2016.
2. Extracción de Ácidos Nucleicos. Dr. Roberto Coria.
a) Extracción de DNA cromosomal.
b) Extracción de DNA extracromosomal.
c) Extracción de RNA.
Viernes 27 de Agosto de 2016.
3. Hibridación de Ácidos Nucleicos. Dr. Roberto Coria.
a) Soportes de retención de ácidos nucleicos.
b) Hibridación tipo Southern.
c) Hibridación tipo Northern.
d) Marcaje de sondas.
Viernes 2 de Septiembre de 2016.
4. Amplificación de DNA. Dra. Laura Ongay Larios.
a) Reacción en cadena de la polimerasa (PCR).
b) RT-PCR.
Viernes 9 de Septiembre de 2016.
5. Amplificación de DNA. Dra. Laura Ongay Larios.
a) PCR en tiempo real.
Miercoles 14 de Septiembre 2016.
6. Secuenciación de DNA. Dra. Laura Ongay Larios
a) Método químico.
b) Método enzimático.
Viernes 23 de Septiembre de 2016.
7. Técnicas de DNA Recombinante. Dra. Ana Lilia Torres Machorro
a) Restricción
b) Ligación
c) Mutagénesis dirigida
Viernes 30 de Septiembre de 2016.
8. Análisis de proteínas. Dra. Ana Lilia Torres Machorro.
a) Western Blot.
b) ELISA.
Viernes 7 de Octubre de 2016.
9. Transformación y Sistemas de expresión en procariontes. Dra. Bertha Gónzalez Pedrajo.
a) Métodos e transformación.
b) Vectores de expresión.
c) Genes reporteros.
Viernes 14 de Octubre de 2016.
10. Sistemas de expresión en eucariontes. Dra. Paola Moreno Álvarez
a) Métodos de transfección.
b) Transfecciones estables.
c) Transfecciones transitorias.
d) Vectores de expresión.
Viernes 21 de Octubre de 2016.
11. Interacciones Proteína-DNA. Dr. Felix Recillas Targa.
a) Digestiones con DNAsa.
b) Inmunoprecipitación de la cromatina.
c) Footprinting
Viernes 28 de Octubre de 2016.
12. Generacion y tipos de modelos geneticos en vertebrados. Dra. Paula Licona
a) Clasificación: transgénicos/knock in/knock out.
b) Sistema CRISPR/Cas9.
Viernes 4 de Noviembre de 2016.
13. RNAi. Dr. Luis Vaca Domínguez.
a) Antecedentes del RNAi.
b) Principios del RNAi.
c) Aplicaciones.
Viernes 11 de Noviembre de 2016.
14. Sistemas de interacción proteína-proteína. Dr. Roberto Coria.
a) Sistema de doble-híbrido.
b) Sistema de un solo híbrido.
c) Ensayo de complementación de fragmentos de proteína
Viernes 18 de Noviembre de 2016.
15. Microarreglos. Dr. Jorge Ramírez Salcedo.
a) Principios de los microarreglos.
b) Microarreglos con DNA-DNA.
c) Microarreglos con DNA-RNA.
Viernes 25 de Noviembre de 2016.
16. Bioinformática. Dr. Marcelino Arciniega Castro.
Viernes 2 de Diciembre de 2016.
17. Presentación de trabajos finales.
10. Bibliografía
El curso se basará en las revisiones de artículos y protocolos especializados de las técnicas que conforman el
programa con el apoyo de la siguiente bibliografía general:
- Bloom, Freyer Miicklos. Laboratory DNA Science. 1996. Benjamin/Cummings Plubishing Company, INC.
- Sambrook and Rusell. Molecular Cloning. 2001. Cold Spring Harbor Laboratory Press.
Circuito de Posgrado, Ciudad Universitaria
Delegación Coyoacán, C.P. 04510, México D.F.
Tel: (55) 5623•7006
[email protected]