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Anexo 1
Evaluación del riesgo de plagas reglamentadas asociadas a la
vía de importación de semillas para siembra
Todas las regulaciones fitosanitarias establecidas en el anteproyecto de Norma Oficial Mexicana PROY-NOM-029-FITO-2002
requisitos y especificaciones fitosanitarios aplicables a semilla para siembra, de importación, están basadas en una evaluación para
identificar el riesgo asociado a esta vía de importación.
La evaluación de riesgo esta dirigida a las plagas reglamentadas1 asociadas a la vía de importación de semillas para siembra
contempladas en este anteproyecto.
Una vía es definida como “cualquier medio que permita la entrada o dispersión de una plaga” (FAO, 1990; revisado, 1995, 2004)
(FAO, 2004a). En las Normas Internacionales para Medidas Fitosanitarias se prevé el inicio de una evaluación de riesgo cuando
se identifica que una vía constituye un peligro potencial de plagas (NIMF 2 y 11). De tal forma que esta evaluación considera las
disposiciones previstas en la Ley Federal de Sanidad Vegetal y el cumplimiento de las obligaciones internacionales previstas en la
Organización Mundial de Comercio a través del Acuerdo para la Aplicación de Medidas Sanitarias y Fitosanitarias (SPS, 1999).
Por otro lado, para la realización de esta evaluación se tomaron como referencia los modelos de evaluación de vía de USDAAPHIS, Estados Unidos; el análisis de riesgo de importaciones del MAF – Biosecurity Nueva Zelandia; el modelo propuesto por la
FAO (Sgrillo, 2004).
Esta evaluación esta fundamentada en testimonios científicos que contemplan el mecanismo de transmisión biológico de las plagas
asociadas a las semillas para siembra, los principales hospederos y hospederos secundarios y el impacto económico potencial que
representan las plagas asociadas a la vía, así como las referencias existentes de algunos organismos internacionales de protección
fitosanitaria que actualmente aplican medidas fitosanitarias para la comercialización de productos hospederos, ya que las tienen
clasificadas como plagas cuarentenarias.
1
Plaga Reglamentada: Plaga cuarentenaria o plaga no cuarentenaria reglamentada. (Fuente: NIMF No. 5 Glosario de Términos Fitosanitarios.
FAO 2004)
Actualmente las semillas para siembra incluidas en este anteproyecto se importan bajo el cumplimiento de las medidas fitosanitarias
establecidas en hojas de requisitos fitosanitarios, que minimizan el riesgo de las plagas reglamentadas en este anteproyecto, con lo
cual se ha garantizado un nivel adecuado de protección fitosanitaria para México.
El ingreso de plagas reglamentadas a nuestro país por medio de la vía de importación de semillas para siembra repercutiría de
manera negativa en las áreas de producción donde se establezca esta semilla, ya que los productores tendrían que destinar recursos
para el manejo y control de las plagas, además de que se generarían efectos negativos en el rendimiento de las unidades de
producción y el comercio del producto, e incluso se podría traducir en el cierre de aquellos mercados en los cuales las plagas también
son reglamentadas.
Con base a la evaluación del riesgo realizada y a la información técnica recabada a la fecha, se considera que se cuenta con los
testimonios científicos suficientes de las plagas reglamentadas en este anteproyecto. Consecuentemente nos estamos apegando
y cumpliendo con el Art. 2 segundo párrafo del "Acuerdo sobre la aplicación de medidas sanitarias y fitosanitarias” de la
Organización Mundial de Comercio (OMC), donde aseguramos que las medidas fitosanitarias solo se aplican para preservar los
vegetales y están basadas en principios y testimonios científicos suficientes.
TRANSMISIÓN
PATÓGENO
HOSPEDEROS
Hospedantes principales
Acidovorax
avenae
pv. Citrullus lanatus (watermelon),
citrulli
Cucumis melo (melon)
Hospedantes alternos
Cucumis sativus (cucumber),
Cucurbita moschata (pumpkin),
Cucurbita pepo
(ornamental gourd)
IMPACTO ECONÓMICO
CABI
En la primavera de 1989 en USA, apareció la primer mancha bacteriana Transmisión
de la sandía, en cultivo comercial en Florida y progreso con la por semilla
estación,la enfermedad entonces se observó en Carolina del Sur,
Carolina del Norte, Maryland, Delaware e Indiana . (Somodi et al., 1991;
Latin y Rane, 1990). En algunos sembradios las pérdidas fueron de más
del 90% del total de la producción.Desde entonces, la enfermedad se ha
establecido en Alabama, Arkansas, California, Georgia, Iowa,
Mississippi, Missouri, Oklahoma, Oregon y Texas. La mancha bacteriana
del fruto de la sandía ha continuado amenazando a la industria de la
sandía de USA. En la mayoría de los años, la enfermedad ha ocurrido en
relativamente pocos sembradios pero ha sido devastador en muchos de
estos, algunas veces resulta en pérdidas de toda la fruta comercializable
.Las pérdidas individuales por agricultor son por arriva de los $100,000
en muchos de los casos. (D. Hopkins, Universidad de Florida, USA,
personal communication, 1997). La mancha bacteriana prevaleció en
Georgia en 1992 y se disperso ampliamente en 1994, causando pérdidas
en cientos de hectáreas distribuidas por lo menos en 10 pequeños
OTRAS
CLASIF
CLASIF
FUENTES
EPPO
USDA
estados.
Alfalfa mosaic
alfamovirus
( = Lucerne
mosaic virus)
Hospedantes principales
Apium graveolens (celery),
Apium
graveolens
var.
rapaceum (Celeriac), Capsicum
annuum (bell pepper), Cicer
arietinum
(chickpea),
Cucurbitaceae
(cucurbits),
Glycine
max
(soyabean),
Lablab purpureus (hyacinth
bean), Lactuca sativa (lettuce),
Lycopersicon
esculentum
(tomato),
Medicago
sativa
(lucerne), Nicotiana tabacum
(tobacco), Phaseolus (beans),
Solanum tuberosum (potato),
Trifolium incarnatum (Crimson
clover),
Trifolium
pratense
(purple
clover),
Trifolium
repens
(white
clover),
Viburnum opulus (Guelder
rose), Vigna radiata (mung
bean),
Vigna
unguiculata
(cowpea)
Hospedantes alternos
Cajanus cajan (pigeon pea),
Capsicum (peppers), Cercis
siliquastrum
(Judas
tree),
Coriandrum
sativum
(coriander),
Cyphomandra
betacea
(tree
tomato),
Euonymus japonicus , Eutrema
wasabi (Wasabi), Hibiscus
cannabinus (kenaf), Lavandula
latifolia (broadleaved lavender),
Pelargonium
(pelargoniums),
Phaseolus vulgaris (common
bean), Pisum sativum (pea),
Solanum
melongena
(aubergine),
Trifolium
subterraneum
(subterranean
clover), Vicia faba (broad
AMV es de importancia economica local en apio, pimienta, tomates, Transmisión
alfalfa, chícharo, papas y Trifolium spp. Este tiens un diferente impacto por semilla
economico en los diferentes tipos de cultivos y la forma en que son
cultivados.En el cultivo de forraje causa decremento del follaje y
producción de raíces (see Bailiss and Ollennu, 1986; Jones, 1992). En
climas templados este puede reducir la disponibilidad de leguminosas
perenes durante el invierno (Gibbs, 1962). La infección reduce la
floración y la producción de semillas de Trifolium subterraneum (Jones,
1992) y el rendimiento de la cosecha de Vigna angulares, el cual puede
verse reuducido por encima del 70% (Iizuka, 1990).
bean), Vigna angularis (adzuki
bean), Vinca minor (common
periwinkle),
Vitis
vinifera
(grapevine)
Hospedantes silvestres
Lotus corniculatus (bird's-foot
trefoil),
Medicago
(medic),
Solanum
nigrum
(black
nightshade),
Vicia
cracca
(Tufted vetch)
Alternaria
brassicicola
Hospedantes primarios
Armoracia
rusticana
(horseradish),
Brassica
,
Brassica juncea var. juncea
(Indian mustard), Brassica
napus var. napus (rape),
Brassica oleracea (cabbages,
cauliflowers), Brassica rapa
subsp. pekinensis (Pe-tsai),
Brassica rapa subsp. rapa
(turnip),
Brassicaceae
(cruciferous
crops),
Cicer
arietinum (chickpea), Crambe
abyssinica , Cucumis melo
(melon),
Cucumis
sativus
(cucumber), Eruca vesicaria
(purple-vein rocket), Erysimum
cheiri (wallflower), Humulus
lupulus
(hop),
Lablab
purpureus (hyacinth bean),
Linum usitatissimum (flax),
Lycopersicon
esculentum
(tomato),
Matthiola
incana
(stock),
Papaver
orientale
(Oriental poppy), Phaseolus
coccineus
(runner
bean),
Phaseolus vulgaris (common
bean),
Raphanus
sativus
(radish), Sinapis alba (white
mustard), Thymus vulgaris
(thyme), Vicia faba (broad
bean)
Aunque A. brassicicola
ocurre en ambos
oleifero y Brassicas Transmisión
vegetales (oleraceous), estas ultimas son el hospedero principal de este por semilla
patogeno, sufriendo
considerables pérdidas en el rendimiento
(Humpherson-Jones, 1992). Sin embargo, la mancha de la hoja de
canola en Alemania es principalmente causada por A. brassicicola
(Daebeler et al., 1986).
A. brassicicola causa severas pérdidas económicas en diferentes
maneras. (Humpherson-Jones, 1992; Strandberg, 1992; Rotem, 1994;
Verma y Saharan, 1994). La infección por semilla causa una reducción
en la germinación y vigor en la plantúlas, además de ocasionar dampingoff en pre y post-emergencia, y
afectar el uso y venta por
infección/infestación de semilla.Las lesiones en las hojas, tallos y
silicuas reducen el área o
superficie fotosintetica y aceleran la
senecencia de la planta. En infecciones excesivas en la semilla se
producen mermas. Este patógeno es responsable de las mayores
perdidas en la producción de oleraceous Brassicas y es el componente
más importante del impacto económico. Es desagradable a la vista
cosmética mancha o pudre la testa o cubierta de las hojas de vegetales
en Brassicas que trae como consecuencia la enfermedad a bajos
grados y la pérdida de la cosecha en ambos producción de frescos y
alamcenados. A. brassicicola frecuentemente ocurre en asociación con
A. brassicae y algunos otros patógenos de Brassicaceas. Esto confunde
la estimación precisa de las pérdidas causadas individualmente por este
patógeno en la agricultura.
A. brassicicola esta distribuida en todo el mundo, y esta establecido y
ampliamente disperso en muchos paises. (Anon., 1988; Verma y
Saharan, 1994).
Hospedantes silvestres
Artemisia
(wormwoods),
Brassica nigra (black mustard),
Callistephus chinensis (China
aster), Capsella bursa-pastoris
(shepherd's purse), Clarkia
(satin
flowers),
Crambe
maritima (Sea-kale), Gerbera
jamesonii (African daisy), Isatis
tinctoria
(Dyers
woad),
Lepidium
sativum
(garden
cress), Scorzonera , Sinapis
arvensis
(wild
mustard),
Sisymbrium officinale (Hedge
mustard), Thlaspi arvense (field
pennycress)
Alternaria
dauci
Hospedantes principales
Daucus carota (carrot)
Hospedros secundarios
Anethum
graveolens
(dill),
Apium graveolens (celery),
Brassica oleracea var. capitata
(cabbage),
Clarkia
(satin
flowers),
Cucumis
sativus
(cucumber),
Dianthus
caryophyllus
(carnation),
Gerbera
(Barbeton
daisy),
Lactuca
sativa
(lettuce),
Lycopersicon
esculentum
(tomato),
Pastinaca
sativa
(parsnip),
Petroselinum
crispum (parsley), Raphanus
sativus (radish), Scorzonera
hispanica
(oyster
plant),
Solanum
melongena
(aubergine)
La reducción la superficie de las hojas causa pérdidas por que evita el Transmisión
anclaje o desarrollo de las raices (Ellis, 1971). Hay reportes de campos por semilla
completamente destruidos por el hongo. (Neergaard, 1945). En el norte
de Carolina, la epidemia de A. dauci en zanahorias causa arriba del 90%
de defoliación y una reducción de la producción por arriba del 82%
(Strider, 1963). En la estimación de pérdidas anuales en USA de 19511960, El marchitamiento por Alternaria junto con
Cercospora
corresponden a un 2% (Neergaard, 1977). Las pérdidas severa de hojas
y peciolos por el daño de la enfermedad prohibe una cosecha
eficientemente mecanizada (Strandberg, 1992). El desarrollo de A. dauci
en el segundo año de la producción de semilla de zanahoria
frecuentemente es la regla para el disminuir el rendimiento de semilla
(Neergard, 1977).
Alternaria
japonica
Yoshii
Hospedantes principales
Brassica nigra (black mustard),
Brassica oleracea (cabbages,
cauliflowers), Brassica rapa
subsp. chinensis (Chinese
Aunque esta ampliamente dispersa en el rango de brassicaceas Transmisión
hospederas, las infecciones por A. japonica son raravez
severas, por semilla
solamente causa daños menores al establecerce en los cultivos (Petrie,
1985; Petrie et al., 1985). Este se establece en los cultivos afectandolos
con otros patogénos más serios, como Leptosphaeria maculans, Albugo
cabbage), Brassica rapa subsp.
rapa (turnip), Brassicaceae
(cruciferous crops), Raphanus
sativus (radish)
Hospedantes alternos
Erysimum cheiri (wallflower),
Iberis , Matthiola , Sinapis
arvensis (wild mustard)
Hosts (source - data mining)
Brassica napus var. napus
(rape), Brassica rapa subsp.
pekinensis
(Pe-tsai),
Lycopersicon
esculentum
(tomato)
Host stage attacked
Setaria viridis (green foxtail)
candida y Sclerotinia sclerotiorum. Degenhardt et al. (1974) reporta que
A. japonica en associación con A. brassicae pérdidas en el rendimineto
de ciertos cultivares de canola (B. campestris 'Span' y B. napus 'Zephyr')
de entre 40 y 70%; esta sólo causa pérdidas en el rendimiento de 3442%. La reducción en el contenido de aceite puede ser notado por 'Span'
y la reducción en el contenido de proteínas es establecido en 'Zephyr'.
El principal impacto económico del efecto de A. japonica es en la
germinación y subsecuentemente causa el marchitamiento de las
plantulas. Tohyama et al. (1991) nota que estas y otras especies de
Alternaria pueden poseer una amenaza para la producción de alimentos
procesados así como para las plantulas jóvenes de f Chinese radish
(Raphanus sativus var. hortensis) que es un alimento popular de la
comida ornamental de Japón.
Hospedantes (source - data
mining)
Gossypium (cotton)
Host stage attacked
Anoda cristata (Anodaweed)
El hongo es capaz de Transmisiónitirse por los cotiledones de la semilla Transmisión
e infectar plantulas. Puede sobrevivir en semilla de algodón comercial y por semilla
en residuos vegetales (Bashan y Levanony, 1987). Las temperaturas
mínimas, óptimas y máximas para el desarrollo del hongo son de 10 oC,
20 a 30 oC y 35 oC respectivamente (Shtienberg, 1996). Las esporas
son resistentes a condiciones ambientales extremas (Shtienberg, 1996 y
Holguin y Bashan, 1992). Alternaria macrospora es dispersado por el
viento dentro de un cultivo y hasta cierto grado de un campo a otro
(Shtienberg, 1993). Puede ser Transmitido localmente por una variedad
de vectores bióticos y vehículos abióticos (Holguin y Bashan, 1992).
A pesar de un manejo intensivo, el hongo puede infestar campos de
algodón y ocasionar pérdidas económicas (Shtienberg, 1996). En Israel
el hongo ha ocasionado perdidas en rendimiento hasta en un 60%
(Shtienberg, 1993).
Andean potato Hospedantes principales
latent
Solanum tuberosum (potato),
tymovirus ( = Ullucus tuberosus (Ulluco)
Potato andean
latent
tymovirus)
APLV esta restringido a la región andina de Sur América.A pesar de este Transmisión
nombre, APLV puede causar serios sintomas en infecciones secundarias por semilla
en las plantas de papa (Jones and Fribourg, 1978). Sin embargo, las
reducciones en la producción del cultivo de papa y ulluco no estan
siendo estudiadas, y ahora no es evidente la importancia del APLV en la
práctica.
Transmitido por un vector, un insecto, Epithrix sp; Coleoptera.
Transmitido en forma no persistente. Transmitidopor inoculación
mecánica, Transmitido por injertos, Transmitidopor contacto ectre
plantas, Transmitido por semilla.
Alternaria
macrospora
Zimmerm.
Transmisión Plaga
por semilla cuarenten
(VIDE)
aria
.
Anguina
agrostis
(Steinbuch,
1799) Filipjev,
1936
Hospedantes principales
Agrostis
canina
(velvet
bentgrass), Agrostis capillaris
(brown bentgrass), Agrostis
exarata , Agrostis stolonifera
var. palustris (bent grass),
Bromus
erectus
(Upright
brome(grass)),
Dactylis
glomerata
(orchardgrass),
Festuca nigrescens , Festuca
ovina (sheeps fescue), Lolium
rigidum
(rigid
ryegrass),
Phleum boehmeri , Phleum
phleoides , Phleum pratense
(timothy), Poa alpina , Poa
annua (annual meadowgrass),
Poa pratensis (smooth-stalked
meadowgrass),
Trisetum
flavescens (yellow oatgrass)
A. agrostis, es una seria plaga de bentgrass (Agrostis spp.) en ciertas Transmisión
semillas de pastos en las áreas cultivadoras del pacífico del Noroeste de por semilla
USA. Este causa el 75% de reducción en la producción de semillas de
pastos en el suroeste de Washington y en el noreste de Oregon (Apt et
al., 1960). En el oeste y sur de Australia este causa agallas en ryegrass
annual (Lolium rigidum) y es portador de la bacteria Corynebacterium
rathayi, dentro de las agallas, como consecuencia empiezan a
intoxicarse los animales que pastas causando una enfermedad conocida
como toxicidad anual del pasto ryegrass.
C. rathayi, es portado por A. agrostis en la cutícula a la superficie sana
de los pastos entonces causa las agallas en las semillas. La bacteria
infesta las agallas conteniendo toxinas localizadas principalmente en las
paredes de la agallas. Si el ganado o rebaño consume cerca de 1000
agallas, puede morir.La industria de carnes del estado de Siddiqi (1986),
Australia estuvo preocupado, por las muchas muertes del rebaño al
pastar y alimentarse de pasto infestado, y el gobierno Autraliano estuvo
autorizando grandes sumas de dinero a la investigación de este
problema.
A. agrostis ataca a Koeleria talievi, K. macrantha, K. glauca, Phleum sp.
and Bromus erecta en Ukrania; la infección esta ampliamente dispersa y
es muy severa: 20 o más agallas/panícula (Kiryanova et al., 1980). En
Valle Willamette en Oregon, USA, A. agrostis fué observado en 9% de
los campos sembrados con A. capillaris (Alderman, 1988) y en un 3% en
A. stolonifera var. palustris (Alderman, 1991). A. agrostis causa agallas
en Leymus chinensis ears, con una incidencia de 19.7% en la infección
de las plantas hospederas (Ma and Gu, 1987).
Anguina tritici
(Steinbuch,
1799)
Chitwood,
1935
Hospedantes principales
Secale cereale (rye), Triticum
(wheat), Triticum aestivum
(wheat), Triticum dicoccum ,
Triticum spelta (spelt)
Hospedantes alternos
Avena sativa (oats), Hordeum
vulgare
(barley),
Triticum
turgidum (durum wheat)
A. tritici ha sido practicamente eliminado de los campos de cereales en Transmisión
Europa utilizando la desinfestación de semilla y la rotación de cultivos. por semilla
Arriva del 100% de pérdidas han sido reportadas en trigo, con las
espigas de trigo totalmente infectadas (Paruthi et al., 1987). Reddy
(1983) sólo reporta grandes pérdidas (90%) en plántulas de trigo y 8.5%
mostraron agallas en las semillas del cereal, resultando en un 69% de
pérdidas. En China, A. tritici causa una reducción anual en el mercado de
trigo (Chu, 1945). La conversión de granos de trigo con agallas causan
pérdidas de 6.54 millones de rupias en la India (Sakhuja et al., 1990).
Paruthi y Bhatti (1988) reportan 23-48% de pérdidas y una reducción en
precio en el precio de mercado del 5% cuando las semillas de trigoy
presentan agallas y trigo para harina con el 2% de granos agallados se
consideran inaceptables. Pérdidas del 50 y 65% fueron reportadas en
trigo y arroz, repectivamente. (Leukel, 1957), y 52% de pérdidas
suceden a causa de la infestación e inoculación en los campos de trigo
destinados para el mercado (Paruthi and Bhatti, 1981). Estas pérdidas
fueron registradas en la ausencia de medidas de control, antes de la
introducción de programas fitosanitarias.
Aphelenchoid
es
besseyi
Christie 1942
(=
Aphelencoides
oryzae)
Hospedantes principales
Fragaria
ananassa
(strawberry),
Oryza
(rice
(generic
level)),
Oryza
glaberrima (African rice), Oryza
sativa (rice)
Hospedantess alternos
Allium
cepa
(onion),
Chrysanthemum
morifolium
(chrysanthemum
(florists')),
Colocasia esculenta (taro),
Cyperus iria (rice flatsedge),
Digitaria sanguinalis (large
crabgrass), Dioscorea (yam),
Dioscorea trifida , Glycine max
(soyabean),
Hibiscus
(rosemallows),
Ipomoea
batatas
(sweet
potato),
Polianthes tuberosa , Zea mays
(maize)
Hospedantes alternos
Oryza breviligulata , Setaria
viridis (green foxtail)
A. besseyi está ampliamente disperso por que la diseminación es por Transmisión
semilla, pero la importancia varia entre las regiones, países y por semilla
localidades. Dentro de las localidades, la incidencia y la serveridad de la
enfermedad puede cambiar año con año, y es influenciada fuertemente
por las practicas culturales y los tipos de arroz locales. La infección y el
daño es generalmente grande en terrrenos bajos en los sistemas de
cultivo bajo inundación que en altiplanicies naturales. Aunque las
pérdidas por arriba del 50% han sido reportadas en Mesetas de arroz en
Brasil (da Silva, 1992).
Los grandes daños en cultivares susceptibles dependen del porcentaje
de infestación de la semilla sembrada y del número de A. besseyi/
semilla infestada. Con pocas excepciones, la forma ha sido raramente
determinada a pesar de la importancia regida en el número de
infecciones locales en el cultivo. Generalmente,la población densidad/
semilla; número o peso contado. Fukano (1962) determina para el
umbral de daño económico una densidad de (300 nemátodos vivos/100
semillas).
En los 50s la cifra tipica para cultivares suceptibles en USA fueron de
17.5, 4.9 y 6.6% en diferentes años (Atkins and Todd, 1959) y de 10-30%
en Japon (Yamada and Shiomi, 1950; Yoshii y Yamamoto, 1950; Yoshii,
1951). Tsay et al. (1998) reportan pérdidas del 44.9, 34.7 y 24.2%
cuando los rangos de plantas infestadas de arroz fueron de 57, 34 y
18%, respectivamente. A. besseyi ha sido controlado en USA con
tratamiento a la semilla y el uso de cultivares resistentes y de ciclo corto
para evitar a la plaga (Hollis y Keoboon rueng, 1984). A. besseyi tambien
ha desaparecido de Japon pero ha reaparecido, el valor económico del
grano infectado (lo decolora) se ve disminuido en infecciones superiores
al 0.7% (Inagaki, 1985).
Los daños por A. besseyi han sido reportados en sistemas de cultivo de
arroz bajo inundación en Bangladesh. Más del 50% de estos terrenos
fueron infectados y el peso de las panículas en plantas excesivamente
infectadas (650 nematodos/100 semillas), la tercera parte de las plantas
infectadas tuvieron
(112 nematodos/100 semillas) (Rahman y
McGeachie, 1982; Rahman y Taylor, 1983). En contraste, los cultivares
locales en Thailandia parecieron ser tolerantes a A. besseyi y no han
sido observados síntomas, no obstante la infección esta ampliamente
dispersa (Buangsuwon et al., 1971).
Las pérdidas económicas en las Filipinas no han sido reportadas, pero la
infección varia año con año, por estación y por cultivar (Madamba et al.,
CAN
COSAVE
CPPC
EPPO
EU
IAPSC
NEPPO
Plaga
Cuarenten
aria
Europa
Turkia
Plaga
cuarenten
aria
America
Argentina
Chile
Uruguay
Plaga
cuarenten
aria
1974). Los niveles de infectación en semilla son generalmente bajos
(4.7-7% en 5 years) (Madamba et al., 1981), y los daños severos son
unicamente en altos conteos de A. besseyi (210-5300/100 semilla) no
siempre está asociado con un alto porcentaje de infestación de semilla.
Fresa
A. besseyi es una plaga importante de fresa en USA, en el sur de
Arkansas y Virginia (Brown et al., 1993).
Arabis mosaic Hospedantes principales
nepovirus
Apium graveolens var. dulce
(bleached celery), Armoracia
(horseradish),
(Sin:
Arabis rusticana
Asparagus
officinalis
mosaic virus)
(asparagus), Beta vulgaris var.
saccharifera
(sugarbeet),
Buxus sempervirens (common
boxwood),
Chamaecyparis
lawsoniana (Port Orford cedar),
Cucumis sativus (cucumber),
Cucurbita pepo (ornamental
gourd), Cyphomandra betacea
(tree
tomato),
Daphne
mezereum (mezereon), Daucus
carota
(carrot),
Dianthus
caryophyllus
(carnation),
Forsythia intermedia (Golden
bells), Fragaria vesca (wild
strawberry), Humulus lupulus
(hop), Lactuca sativa (lettuce),
Prunus avium (sweet cherry),
Prunus
domestica
(plum),
Prunus
persica
(peach),
Rheum hybridum (rhubarb),
Rubus
idaeus
(raspberry),
El (ArMV) fue reportado por primera vez en Arabis hirsuta en Inglaterra, Transmisión
Reino Unido (Smith y Markham, 1944) y posteriormente en muchas por semilla
especies cultivadas y malezas. El virus es bien caracteristico y tiene las
características típicas del género Nepovirus de la familia Comoviridae
(Goldbach et al., 1995). Es Transmitido de manera natural por el
nematodo de la daga, Xiphinema diversicaudatum y también a través de
la semilla de varios de sus hospederos naturales (Murant, 1983).
APPPC
EU
NAPPO
Lista
alerta
de
Europe
Turkey
Plaga
cuarenten
aria
Asia
America
Argentina
Plaga
cuarenten
aria
E.E.U.A.
Plaga
cuarenten
aria
Syringa
vulgaris
(lilac),
Trifolium repens (white clover),
Vitis vinifera (grapevine)
Hospedantes alternos
Alstroemeria
(Inca
lily),
Fragaria , Fraxinus (ashes),
Hordeum
vulgare
(barley),
Narcissus (daffodil), Ribes
nigrum (blackcurrant), Rubus
(blackberry, raspberry)
Hospedantes silvestres
Anagallis
arvensis
(scarlet
pimpernel), Bellis perennis
(common
daisy),
Capsella
bursa-pastoris
(shepherd's
purse), Hedera helix (ivy),
Lamium amplexicaule (henbit
deadnettle), Mentha arvensis
(Corn
mint),
Ranunculus
repens (creeping buttercup),
Sambucus
nigra
(elder),
Solanum
nigrum
(black
nightshade), Stellaria media
(common chickweed), Urtica
dioica (stinging nettle), Urtica
urens (annual nettle)
Arracacha
nepovirus
A Hospedantes primarios
Arracacia xanthorrhiza
Hospedantes alternos
Brassica campestris ssp. Rapa
Cucurbita pepo
Phaseolus vulgaris
Vigna unguiculata
Capsicum annuum
Solanum melongena
No se ha comprobado la diseminación por nemátodos y en el caso de
semillas se tierne un reporte de dispersión en Nicotiana clevelandii
aunque los datos no han sido publicados. Se cree que pueda ser
Transmitido por vectores aunque tampoco se tienen datos que lo
confirmen. Se sabe que se Transmisiónite por propagación vegetativa y
por inoculación mecánica; no se Transmisiónite por contacto entre
plantas.
Transmitido por un vector (probablemente); por la propagación
vegetativa; por un nematodo (probablemente), por la inoculación
mecánica; no Transmitido por el contacto entre las plantas; Transmitido
por la semilla (fácilmente en Nicotiana clevelandii).
Transmisión
por semilla
(VIDE)
Arracacha
nepovirus
B Hospederos primarios
Arracacia xanthorrhiza
Oxalis tuberosa
Solanum tuberosum
Hospederos alternos
Cucumis sativus
Tetragonia tetragonioides
Hospederos
alternos
no
suceptibles
Brassica campestris ssp. rapa
Phaseolus vulgaris
Capsicum annuum
Datura metel
Hyoscyamus niger
Virus Transmitido por la inoculación mecánica;
por injerto;
no
Transmitido por el contacto entre las plantas; Transmitido por la semilla
(el 5% de la tendencia en Chenopodium quinoa; tendencia del O al 12%
en Solanum tuberosum); Transmitido por el polen a la semilla (en
Solanum tuberosum Jones, 1982).
Se conoce también la dispersión por medio de tubérculos, medio por el
cual se ha diseminado de forma importante en el comercio internacional.
Esta presente y ampliamente disperso en la región de centroamerica y
américa del sur (donde se producen el arracacha, el oca y la patata;
Jones y Kenten, 1983; Atkey y Brunt, 1982); Bolivia y Perú.
http://image.fs.uidaho.edu/vide/descr034.htm
Transmisión
por semilla
(VIDE)
Asparagus
ilarvirus
2 Hospedantes principales
Asparagus
officinalis
(asparagus)
Especies
susceptibles
hospederas
Beta vulgaris
Chenopodium amaranticolor
Chenopodium murale
Chenopodium quinoa
Cucumis sativus
Glycine max
Gomphrena globosa
Nicotiana glutinosa
Nicotiana glutinosa × N.
clevelandii
Nicotiana tabacum
Ocimum basilicum
Petunia × hybrida
Phaseolus vulgaris
Vigna unguiculata
El virus no es trasmitido por
Myzus persicae. Este virus se
Transmisiónite por inoculación mecánica; por injerto; por semilla; por
polen, por polen para polinización a la plantas.
Su dispersión se reportapa en la región eurasiática y la región
norteamericana. Encontrado, pero sin evidencia de dispersión, en
Europa y Norteamérica; Dinamarca, Alemania, Italia, el Reino Unido y
los E.E.U.U.
http://image.fs.uidaho.edu/vide/descr047.htm
Transmisión
por semilla
(VIDE)
Insusceptible host species
Cucumis melo
Datura stramonium
Lactuca sativa
La enfermedad es relativamente poco reportada o estudiada en las Transmisión
ciudadas donde ocurre, como muestra de esto se considera sólo de por semilla
moderada importancia.El ajo es mayormente cultivado en áreas con
veranos secos y períodos cálidos, como límite del impacto potencial de
B. porri. Si hay condiciones frías y cálidas ocurre, sim embargo, B. porri
puede causar considerables daños al cultivo de ajo. On leek, la
enfermedad se concentra mayormente en el periodo de pos-cosecha
mejor que en el campo.
Botryotinia
porri
(H.J.F.
Beyma)
Whetzel ( =
Botrytis
byssoidea)
Hospedantes primarios
Allium (onions, garlic, leek,
etc.), Allium cepa (onion),
Allium porrum (leek)
Burkholderia
caryophylli
(Burkholder
1942)
Yabuuchi
et
al. 1993 ( =
Pseudomonas
caryophylli)
Hospedantes primarios
B. caryophylli ha causado serios daños en USA desde los primeros Transmisión
por semilla
Dianthus
caryophyllus reportes en 1940.Solamente pérdidas menores ocurren en Europa y la
región
del
Mediterraneo
en
el
presente
(EPPO/CABI,
1996c).
(carnation)
Hospedantes secundarios
Gypsophila
paniculata
(babysbreath),
Helianthus
annuus (sunflower), Limonium
sinuatum (sea pink)
EPPO
plaga
Cuarenten
aria
EU
Europa
Belarus
Plaga
cuarenten
aria
Turquia
Ukrania
Africa
Plaga
cuarenten
aria
Celery latent Hospedantes primarios
potyvirus
Apium graveolens var. dulce
(bleached
celery),
Apium
graveolens
var.
rapaceum
(Celeriac)
Hospedantes suceptibles
Amaranthus caudatus
Amaranthus hypochondriacus
Amaranthus retroflexus
La Transmisiónisión no es por medio de vectores. No lo Transmisiónite
Acyrthosiphon pisum, Aphis fabae, Cavariella aegopodii, Macrosiphum
euphorbiae, Myzus persicae, Aulacorthum circumflexum. Estos estudios
fueron reportados por Verhoyen et el al. (1976); Bos et al. (1978). El
virus fue detectado en las plantas de semillero de cultivares comerciales
del apio y de nabo. Aparentemente el virus reduce el rendimiento del
cultivo, se recomienda el uso de las plantas madre libres de virus para la
producción de semilla. La disponibilidad del antisuero facilita este control.
Distribución geográfica
El CLV está disperso en Belgica, Italia y en los países bajos.
Transmisión
por semilla
(VIDE)
Anthriscus cerefolium
http://image.fs.uidaho.edu/vide/descr185.htm
Atriplex hortensis
Beta vulgaris
Capsicum annuum
Chenopodium album
Chenopodium amaranticolor
Chenopodium foetidum
Chenopodium quinoa
Coriandrum sativum
Gomphrena globosa
Hyoscyamus niger
Nicotiana clevelandii
Nicotiana debneyi
Nicotiana glutinosa
Nicotiana megalosiphon
Nicotiana tabacum
Petunia × hybrida
Phaseolus vulgaris
Pisum sativum
Spinacia oleracea
Tetragonia tetragonioides
Trifolium incarnatum
Trigonella foenum-graecum
Vicia faba
Zinnia elegans
Insusceptible host species
Anethum graveolens
Brassica
campestris
ssp.
chinensis
Calendula officinalis
Conium maculatum
Cucumis sativus
Cucurbita pepo
Datura metel
Datura stramonium
Daucus carota
Glycine max
Heracleum sphondylium
Lactuca sativa
Lycopersicon esculentum
Nicotiana glutinosa ×
clevelandii
Nicotiana rustica
Ocimum basilicum
Pastinaca sativa
Petroselinum crispum
Physalis floridana
Solanum nigrum
Trifolium pratense
Trifolium repens
Vigna unguiculata
N.
Cercospora
kikuchii (Tak.
Matsumoto &
Tomoy.) M.W.
Gardner
Hospedantes primarios
Glycine max (soyabean)
Hospedantes alternos
Cyamopsis
tetragonoloba
(clusterbean),
Jacquemontia
tamnifolia
(Smallflower
morningglory),
Phaseolus
(beans),
Senna obtusifolia
(sicklepod), Vigna (cowpea),
Xanthium strumarium (common
cocklebur)
La mancha púrpura de la semilla ocurre en los lugares donde se cultiva Transmisión
soya alrrededor del mundo (Agarwal, 1981). La fase de enfermedad de la por semilla
semilla no afecta adversamente al rendimiento u otras carácteristicas
agronómicas (Wilcox et al., 1975), pero los síntomas de decoloración o
tinción afecta el comercio de la semilla,ya sea que sea utilizada para
siembra o para procesarla. Esto inquieta significativamente a Japón
(Suzuki, 1985) y a los Estados Unidos donde grandes proporciones de
campos con cereales son reducidos por la mancha purpura de la semilla
(Wilcox et al., 1975). Substancialmente las pérdidas de los cultivos han
sido atribuidas a la fase cubierta de la enfermedad en las regiones del
sur de Estados unidos (Walters, 1980b; Walters, 1985).
Cercospora
sojina Hara
Hospedantes primarios
Glycine max (soyabean)
Hospedantes alternos
Mucuna (velvetbeans)
P. sojina es capaz de causar grandes reducciones en el rendimiento. Los Transmisión
grandes daños afectan a los cultivares de maduración tardía (Lehman, por semilla
1928).
Desde 1966 a 1968, as pérdidas en los cultivos en USA variaron de 17 a
21% (Laviolette et al., 1970). En 1991 y 1992, comparando variedades
suceptibles y resistentes, las pérdidas variaron entre
8 y 43%,
respectivamente (Plopper et al., 1994). Desde 1952, en los estados del
oeste medio de USA,la mancha del moho de la hoja ha disminuido su
importancia y casi ha desaparecido (Bernard, 1985; Yorinori, 1980).
Aunque este es todavía común en los estados del sur, causando daños
ocasionales en los cultivares susceptibles. La dismunución en la
incidencia de la enfermedad es atribuida al uso de cultivares resistentes
y a condiciones medioambien tales desfavorables (Bernard, 1985;
Phillips and Boerma, 1981).En 1978, una nueva razo de P. sojina (raza
5) fue detectada en Georgia, causando severos daños en los cultivares
recientemente liberados; Gasoy 17 y on Bragg (Phillips and Boerma,
1981).
De 1971 a 1975, la mancha del moho de la hoja causó severos daños
(frecuentemente pérdidas en las cosechas hasta del 100%) en Brasil. De
1972 a 1975, el número de cultivares de soya suceptibles cultivados
fueron redujidos en más de un 80% del total a pocas hectáreas. En
1987-88 la temporada de plantación, las pérdidas se estimaron en
medio millón de toneladas de soya por la mancha moho de la hoja en la
región del oeste central de Brasil. La enfermedad fue favorecida por la
inusual estación húmeda y porque más del 60% de las áreas se
plantaron con el cultivar susceptible Doko, EMGOPA -301 y Tropical
(Yorinori, 1989).
La mancha del moho de la hoja de soya es una amenaza potencial en
Nigeria, Côte d'Ivoire y Cameroon, son cultivares de soya que se han ido
introduciendo para la producción comercial (Root, 1987). Un reciente
ataque fué reportado en Zimbab we (Levy et al., 1996). Las pérdidas en
el rendimien to estimadas en 3 localidads de Nigeria tienen un rango de
14.4 a 30.9% (Wala and Atiri, 1994). Estudios en Nigeria muestran que
las plantaciones retrasadas hasta despues del 1º de Juniogueron
asociadas con una alta incidencia de la enfermedad, con pérdidad arriba
del 31% (Akem and Dashiell, 1994). En otros estudios, la reducción de la
producción entre la dispersión y la no dispersión varían de 2.5 a 58.8%
(Dashiell and Akem, 1991).
De 1981 a 1994 en la región de Jiamusi,provincia de Heilongjiang, China,
la relación entre la epidemiología de la mancha frogeye de la hoja de la
soya y las condiciones meteorológicas fueron estudiadas usando análisis
de regresión stepwise y factoriales.Los modelos matemáticos pricipales
de predicción de la enferemedad fueron desarrollados con
una
confiabilidad histórica del 92.9-100% para cada uno de los métodos
respectivamente.Las líneas de correlación positivas fueron establecidos
entre las pérdidas del rendimiento y la severidad de la enfermedad en las
hojas, vainas y semillas de los cultivares susceptibles y resistentes
(Huang et al, 1998).
Cherry
rasp Hospedantes primarios
CRLV puede causar serios achaparramientos en los árboles de Transmisión
leaf nepovirus Malus
duraznos
al infectarlos, y afectar el rendimiento de la fruta y la reducción por semilla
domestica
(apple),
(=Apple Flat Prunus avium (sweet cherry), de la calidad en cerezas y manzanas. Además, los árboles viejos y las
EPPO
EU
IAPSC
Apple Virus)
Prunus cerasus (sour cherry),
Prunus mahaleb , Prunus
persica (peach)
Hospedantes
alternosRubus
idaeus (raspberry)
Hospedantes alternos
Balsamorhiza
sagittata
,
Plantago major (broad-leaved
plantain), Taraxacum
Major hosts
Citrus
cachexia
Citrus
viroid ll b,
Ccvllb ( =
Xyloporosis de
los citricos)
Citrus
rugose
ilarvirus
leaf Hosts (source - data mining)
Citrus
Hospederos
alternos
suceptibles
Catharanthus roseus
Crotalaria spectabilis
Phaseolus vulgaris (cv. Red
Kidney)
Vigna unguiculata
Citrus ringspot Hospedantes primarios
virus (Psorosis Citrus nobilis x Citrus deliciosa
de los citricos) (Kinnow
mandarin),
Citrus
reshni (Cleopatra mandarin),
Citrus sinensis (navel orange)
raíces de las plantulas algunas veces mueren. En los huertos, el CRLV
puede alcanzar niveles muy altos de infección, y en árboles plantados en
sitios previamente infectados puede empezar a infectarlos. Este
sobrevive en partes del estado de Colorado, USA, mostrando bajos
niveles (5%) pero invariablemente la enfermedad se ha incrementado en
un periodo de cerca de 6 años. En algunos distritos viejos de producción
de cerezas de Colorado la incidencia es alta donde el virus se estableció
(23% y 38% de árboles infectados). Los árboles afectados muestran un
incremento de mortalidad en inviernos duros, aunque los efectos en el
incremento del rendimiento no han sido determinados. Dentro de las
ciudades sobrevive, 15% de los árboles examinados fueron infectados
con el virus (Luepschen et al., 1974).
Sin embargo, aunque este esta en rangos relativamente bajos se
dispersa en más parte del oeste de Norte América,la enfermedad ha sido
solo usualmente de menor importancia económica y la incidencia ha sido
local y limitada, solamente pocos árboles de los huertos han sido
infectados (Hansen et al., 1974; McElroy et al. 1975; Nyland, 1976;
Hansen y Parish, 1990). Como resultado el virus es considerado como
de poca importancia económica para el conjunto de industrias de las
frutas de hueso (Hansen et al., 1982).
El viroide de la CcvIIb se disemina, fundamentalmente a través del
material de injertación y mediante las herramientas de poda.
La enfermedad afecta principalmente a tangelos y mandarinas; mientras,
naranjos y limoneros, aún cuando están infectados con el viroide,
muchas veces no muestras sintomatología.
Plaga
cuarenten
aria
Europa
Rusia
Turquia
Plaga
Cuarenten
aria
Transmisión
por semilla
Transmisión
Transmisiónisión
por semilla
En la trasmisión no están envueltos vectores. El virus es Transmitido por
inoculación mecánica, por injerto y posiblemente sea Transmitido por
semilla.
La única fuente sabida de la infección es por plantas infectadas de
cítricos. No se conoce ningún vector que Transmisiónita el virus o no se
conoce un modo de dispersión natural; su amplia dispersión en la India
es probablemente en parte debido al uso inadvertido de material
propagativo infectado al producir los árboles jóvenes para replantar o
Transmisión
por semilla
EU
Europa
Turquia
Plaga
cuarenten
Assay hosts (Local lesions or
Whole plants)
Chenopodium
quinoa
(L),
Phaseolus vulgaris (L).
Especies
hospederas
suceptibles
Catharanthus roseus
Chenopodium amaranticolor
Chenopodium quinoa
Citrus aurantifolia
Citrus aurantium
Citrus limon
Citrus medica
Citrus paradisi
Citrus sinensis
Crotalaria spectabilis
Cucumis sativus
Gomphrena globosa
Helianthus annuus
Nicotiana benthamiana
Nicotiana clevelandii
Nicotiana megalosiphon
Nicotiana rustica
Nicotiana tabacum
Petunia × hybrida
Phaseolus vulgaris
Pisum sativum
Poncirus trifoliata
Sesamum indicum
Zinnia elegans
Citrus
variegation
ilarvirus
Hospederos
mining)
Citrus
(source
-
aria
establecer nuevas huertas. El virus es Transmitido por injerto, pero no
es Transmitido por semilla o por suelo y no tiene ningún vector sabido
(Pant y Ahlawat, 1998; Thind et al., 1999) sin embargo, se ha detectado
en polen (Pant y Ahlawat, 1998). El virus es también mecánicamente
Transmisiónissible a cinco especies herbáceas.
El virus es Transmitido probablemente por un vector, en Argentina la
dispersión no está vinculada con el injerto. El virus se Transmisiónite por
inoculación mecánica y por injerto.
Se encuentra disperso en Argentina; se controla con el uso de material
propagativo libre de virus (material certificado).
data El Virus es Transmitido por inoculación mecánica, por injerto, y
posiblemente se Transmisiónita por semilla.
Probablemente esta distribuido alrededor del mundo (ocurs in most citrus
growing countries, but is not common). Está disperso en Australia y los
E.U.A.
Africa
Plaga
cuarenten
aria
Transmisión
por semilla
Clavibacter
michiganensis
subsp.
insidiosus
(McCulloch)
Davis et al.
1984
(=Corynebact
erium
insidiosum)
Hospedantes primarios
Lotus corniculatus (bird's-foot
trefoil),
Medicago
falcata
(yellow
alfalfa),
Medicago
sativa
(lucerne),
Trifolium
(clovers)
Lucerne es una variedad suceptible a C. michiganen sis subsp. Transmisión
insidiosus que aún es muy cultivado en muchas partes del mundo. Como por semilla
resultado la enfermedad repercute en una importancia económica a
donde quiera que el medioambiente favorezca el desarrollo de la
enfermedad (Dickson, 1956; Smith y Taylor, 1967; Kellock y Coster,
1968). Estos factores están relacionados con las actuales pérdidas
causadas por la rara enfermedad (Chand et al., 1987).
APPPC
EPPO
EU
IAPSC
Europa
Turquia
Asia
China
Africa
America
Uruguay
Plaga
cuarenten
aria
Clavibacter
michiganensis
subsp.
michiganensis
(Smith 1910)
Davis et al.
1984
( = Clavibacter
michiganensis
)
Hospedantes primarios
Lycopersicon
esculentum
(tomato)
Hospedantes alternos
Capsicum
annuum
(bell
pepper)
Hospedantes silvestres
Solanum
nigrum
(black
nightshade)
Desde los primeros reportes de la enfermedad en
USA en 1910,el Transmisión
cancro bacterial se ha dispersado alrededor del mundo y ha causado por semilla
serias pérdidas al mundo tanto para el tomate de invernadero como para
el tomate cultivado en los campos, en uno u otro causa la muerte en
plantas jóvenes reduciendo el valor comercial de la producción. La
reducción en el rendimiento puede estar asociada con la pérdida directa
de las plantas, reduciendo el número o tamaño de los frutos.los campos
experimentales han reportado pérdidas del 20% o más en Ontario,
Canada (Dhanvantari, 1989; Dhanvantari y Brown, 1993); 20-30% en
Francia (Rat et al., 1991); 46% en Illinois, USA (Chang et al., 1992c); y
10 veces la reducción del rendimiento después de las pérdidas de la
plantación en Queensland, Australia (Dullahide et al., 1983).
La infección de las plantas de tomate se origina principalmente de la
semilla contaminada. La enfermedad se disemina a otras plantas de
semillero y plantas por prácticas tales como poda y empaquetado para la
producción de plántulas para el
trasplante; deshojamiento y
deshojamiento en invernaderos, y generalmente por salpique del agua
causado por la lluvia, la irrigación de arriba, o los aerosoles químicos. La
infección vascular causada por el manejo del cultivo conduce a impedir
del crecimiento, pérdida de la planta porque induce a la planta a
marchitarse temprano. Aunque las poblaciones del cancro bacteriano
declinan rápidamente cuando el residuo de la cosecha se está
descomponiendo en el suelo, parecen persistir bastante tiempo en el
residuo intacto de la cosecha que queda en la superficie del suelo para
iniciar la enfermedad en la estación siguiente en plantaciones nuevas
(Gleason et el al., 1991; Chang et al., 199à). El cancro bacteriano
puede también sobrevivir en las plantas de semillero
o en los
hospedantes alternos que pueden servir como fuentes de la infección
(Strider, 1969).
Clavibacter
michiganensis
subsp.
nebraskensis
(Vidaver
&
Mandel 1974)
Davis et al.
1984
(=Corynebact
erium
michiganensis
subsp.
nebraskense)
Hospedantes primarios
Saccharum
officinarum
(sugarcane), Sorghum bicolor
(sorghum),
Sorghum
sudanense (Sudan grass), Zea
mays (maize), Zea mexicana
(teosinte)
Hospedantes alternos
Echinochloa
crus-galli
(barnyard grass), Triticale ,
Triticum aestivum (wheat)
El marchitamiento Goss's fue descubierto en Nebraska, USA, en 1969 y Transmisión
se ha dispersado gradualmente a traves de la franja maizera de USA. por semilla
Las pérdidas son menores sobre grandes áreas, pero pueden ser
severas in campos individuales (Wysong et al., 1973; Wysong et al.,
1981).
Los efectos de Erwinia stewartii [Pantoea stewartii], agente causal del
Marchitamiento bacterial de Stewart's y la infección de C. michiganensis
subsp. nebraskensis en el rendimiento de maíz fueron estudiados en
experimentos factoriales con híbridos de maíz, patógeno e incidencia de
la infección inicial fueron los principales factores. Las relaciones fueron
similares para las 2 enfermedades bacterianas pero fueron afectadas de
manera diferente por la resistencia de los hospederos. La relación entre
la severidad de la enfermedad sujeta a transformación de raíz
cuadrada(La mitad del valor de la severidad) y la incidencia fueron
lineales en hibridos resistentes y moderamente resistentes , En los
cultivares Miracle y Gold Cup el marchitamiento bacterial no empieza de
manera sistemica en esos genotipos como consecuencia a la inoculación
en el estado de la planta de formación de la 5ª. a la 7ª. hoja,
En el caso del híbrido suceptible Jubilee, la relación entre la raíz
cuadrada y la curva de la incidencia, con un rango de severidad cercano
a 25-65% hasta el 100% de incidencia, dependiendo el estado del cultivo
hospedero y cuantas plantas fueron inoculadas. El rendimiento de
hibridos resistentes y moderamente resistentes no es afectado
significativamente por la inoculación en el estado de 5 a 7 hojas. En los
hibridos suceptibles, el peso de las mazorcas o espigas y el número de
estas fueron reducidas a cerca del 1.5% pero cada uno incrementaron la
incidencia 10% cuando las plantas fueron inoculadas en el estado de 5 a
7 hojas en 1985 y cerca del 5% y 3%, respectivamente, cuando las
plantas fueron inoculadas en el estado de 3 a 5 hojas en 1986.
Clavibacter
michiganensis
subsp.
sepedonicus
(Spieckerman
n & Kotthoff)
Davis et al.
Hospedantes primarios
Lycopersicon
esculentum
(tomato),
Lycopersicon
pimpinellifolium
(currant
tomato), Solanum melongena
(aubergine),
Solanum
tuberosum (potato)
C. michiganensis subsp. sepedonicus causa muerte prematura en las Transmisión
plantas, pudre los tuberculos y hay una extensa reducción de por semilla
producción. En altos niveles de infección puede causar pérdidas totales
del cultivo. Sin embargo con prácticas de certificación de semilla de
papa, la enfermedad ocurre sólo esporádicamente y generalmente en
bajos niveles en las regiones donde la enfermedad es endémica.Las
pérdidas económicas en la producción de semilla usualmente resultan en
APPPC
CAN
COSAVE
EPPO
EU
IAPSC
1984
(=Corynebact
erium
sepedonicum)
la pérdida de la certificación y que les es necesario desinfectar el equipo
y los almacenes Los programas de certificación de semilla tienen cero
tolerancia para el “ marchitamiento anular bacteriano “ , por lo que
incluso todos los lotes que presenten indicios de la enfermedad pierden
su certificavción y en algunos países esta perdida de certificación se
extiende a todos las zonas productoras de papa.De hecho las perdidas
económicas en los cultivos son debido a la reducción del rendimiento y a
la pudrición en los almacenes, y en algunas ocasiones por la pérdidas
del mercado.
Europa
Turquia
Plaga
Cuarenten
aria
Africa
America
Argentina
Brasil
Canada
Chile
Paraguay
Uruguay
Oceania
Nva
Zelanda
Plaga
Cuarenten
aria
Hospedantes primarios
Claviceps
africana
Sorghum bicolor (sorghum)
Freder.,
Mantle & De Hospedantes alternos
Sorghum halepense (Johnson
Milliano
grass)
Hospedantes silvestres
Sorghum
Colletotrichum
acutatum
Simmonds ex
Simmonds
(=Colletotrichu
m xanthii)
Hospedantes
Acer palmatum (Japanese
maple), Anemone , Anemone
coronaria (Poppy anemone),
Apium graveolens (celery),
Capsicum (peppers), Citrus ,
Citrus reticulata (mandarin),
La enfermedad del Ergot es el principal problema económico en la Transmisión
producción de semilla hibrida F1. Es particularmente severo en líneas de por semilla
machos estériles (lineas A)
cuando florean cualquiera de los
nonsynchronous de la línea A y el resto de las líneas o condiciones
medioambientales adversas
resultan en falta del polen viable y
decaimiento del conjunto de semillas(R-lines) (Bandyopadhyay et al.,
1998). Pérdidas del 10 al 80% han sido reportadas en la producción de
semillas híbrias en la India y pérdidas anuales regulares del 12-25%
reportadas en Zimbabwe (Frederickson y Leuschner, 1997;
Bandyopadhyay et al., 1998). Iestas han sido estimadas para el ergot en
las costas de Australia en la industra de semilla por A$4 anualmente
(Bandyopadhyay et al., 1998) y en USA, la producción anual en las
costas incrementan al ergot son proyectadas en $5 million (Anon., 1999).
La enfermedad es significante en el mundo del cultivo de fresa (el cual es Transmisión
considerado el segundo patógeno más importante después de Botrytis por semilla
cinerea), y solo en otros pocos cultivos como las anemonas. La
enfermedad en pinos puede no ser ahora severa en años recientes, es
juzgado como el declinamiento de las reservas de papel. Información de
pequeños detalles en pérdidas económicas están disponibles. En
Francia, la enfermedad ha causado arriva del 80% de pérdidas en el
CPPC
Plaga
Cuarenten
aria
EPPO
NAPPO
Lista de
alerta
Transmisión
por semilla.
(http:
//www.iacr.b
bsrc.ac.uk/a
en/lupins/tse
ed.html)
Colletotrichum
truncatum
(Schwein.)
Andrus
&
W.D. Moore,
1934
Citrus sinensis (navel orange),
Cornus
florida
(Flowering
dogwood), Cosmos bipinnatus
(garden cosmos), Eriobotrya
japonica (loquat), Eustoma
grandiflorum , Fragaria , Hevea
brasiliensis (rubber), Lupinus
(lupins),
Malus
domestica
(apple),
Mangifera
indica
(mango), Morus (mulberrytree),
Nyssa sylvatica (tupelo), Olea
europaea subsp. europaea
(olive), Pinus (pines), Pinus
radiata (radiata pine), Prunus
domestica
(plum),
Prunus
dulcis (almond), Prunus persica
(peach),
Psidium
guajava
(guava), Tsuga heterophylla
(western
hemlock),
Vitis
vinifera (grapevine)
cultivo de fresas, especialmente en el cultivar ever-bearing (Denoyes y
Baudry, 1991). Los cultivos asperjados para el control de B. cinerea han
sufrido menos. En la UK, donde la enfermedad es estatutorialmente
notificable, la presencia forza a la quema del cultivo y a la fumigación del
suelo.
Estudios recientes en Autralia muestran que C. acutatum causa pérdidas
del 25-50% en cultivos de apio en Queensland (Wright y Heaton, 1991).
Hospedantes primarios
Aeschynomene
,
Aeschynomene
americana
(American jointvetch), Arachis
hypogaea
(groundnut),
Bryophyllum
pinnatum
(air
plant), Cajanus cajan (pigeon
pea), Capsicum annuum (bell
pepper),
Centrosema
,
Centrosema
pubescens
(Centro),
Clitoria
ternatea
(Butterfly-pea),
Crotalaria
juncea
(sunn
hemp),
Desmodium
(tick
clovers),
Glycine max (soyabean), Lens
culinaris ssp. culinaris (lentil),
Medicago sativa (lucerne),
Panax
ginseng
(Asiatic
ginseng), Phaseolus (beans),
Phaseolus lunatus (lima bean),
Phaseolus vulgaris (common
bean), Pisum sativum (pea),
Stylosanthes , Stylosanthes
La Antracnósis fue primero reportada en el cultivo de soya en Korea en Transmisión
1917. La enfermedad esta ampliamente dispersa en zonas templadas de por semilla
producción de soya pero causa pérdidas menores (Athow, 1987; Tiffany,
1951). Las pérdidas son más severas en regiones húmedas y calurosas.
En Alabama, el rendimiento fue reducido por abajo del 19.4% para 3
cultivares comparados con parcelas donde la enfermedad fue controla
con aplicaciones de fungicida (Backman et al., 1982). Las pérdidas en el
rendimiento del 30% fueron atribuidas a la antracnosis en Nigeria en
1975 (Rheenen, 1975) y sobrevive en 2 estados de Brazil donde se
detecto la enfermedad en 57% de los campos (Lehman et al., 1976). La
antracnosis en plantas maduras causa serias pérdidas, particularmente
durante el período de lluvias donde hay sobra en las ramas bajas y las
hojas están muertas.
En 1992 y 1993, C. truncatum fue asociado fue aislado de vastagos
infectados colectados en el Norte de Dakota, USA. Los cultivares
Crimson red y Brewer Chilean fueron más comunes en el area de y
ambos fueron suceptibles a la antracnosis. En 9 de 15 campos
inspeccionados por la antracnosis, la severidad fué de alta a moderada.
En 4 campos la enfermedad fue juzgada como muy severa y en 2
campos no se detecto (Venette et al., 1994).
C. truncatum ha sido desarrollado como un micoherbicida para cañàmo o
henequen (Sesbania exaltata) (Silman et al., 1991; Jackson et al., 1996a,
guyanensis , Trifolium pratense b).
(purple
clover),
Trifolium
subterraneum
(subterranean
clover), Vicia sativa (common
vetch), Vigna (cowpea), Vigna
aconitifolia (moth beans), Vigna
mungo (black gram), Vigna
radiata (mung bean), Vigna
unguiculata (cowpea), Zornia ,
Zornia diphylla
Hospedantes alternos
Abutilon theophrasti (velvet
leaf), Amaranthus hybridus
(smooth pigweed), Apocynum
cannabinum (Hemp dogbane),
Asclepias
(Silkweed),
Chenopodium album (fat hen),
Datura
stramonium
(jimsonweed),
Ipomoea
(morning glory), Polygonum
(knotweed),
Solanum
(nightshade),
Xanthium
strumarium
(common
cocklebur)
Hospedantes alternos
Gliricidia sepium (mother of
cocoa)
Desmodium tortuosum (Florida
beggarweed)
Sesbania exaltata
Commelina
benghalensis
L. (1753)
Hospederos primarios
Agave sisalana (sisal hemp),
Ananas comosus (pineapple),
Arachis hypogaea (groundnut),
Brassica napus var. napus
(rape), Camellia sinensis (tea),
Capsicum frutescens (chilli),
Citrus limon (lemon), Citrus
sinensis (navel orange), Coffea
arabica
(arabica
coffee),
Corchorus
olitorius
(jute),
La importancia económica de
C. benghalensis es relativamente
persistente en tierras cultivadas y es asociado dificilmente con el control.
C. benghalen sis compite seriamente con el arado y la plantación de
cultivos en Africa. Esta es una de las malezas más molestas así que
afecta severamente a los cultivos en el Este y sur de Africa, en caño de
azúcar en las Philippinas, maíz en la India, Indonesia, en las Philippinas
y Taiwán, en piña en Taiwan y Suiza.
Causa efectos en la cosecha de los cultivos y el rendimiento y en ambos
las condiciones medioambientales. La producción de flores en el campo
pueden retrasarce de 1 a 2 semanas y los nódulos se reducen solo
dependiendo de la intensidad de la infestación.
Transmisión
por semilla
Puede venir
asociada a
semilla
Glycine
max
(soyabean),
Gossypium hirsutum (Bourbon
cotton), Guizotia abyssinica
(niger),
Ipomoea
batatas
(sweet potato), Lycopersicon
esculentum (tomato), Manihot
esculenta
(cassava),
Momordica charantia (bitter
gourd), Musa (banana), Oryza
sativa
(rice),
Phaseolus
vulgaris
(common
bean),
Prunus armeniaca (apricot),
Prunus
persica
(peach),
Saccharum
officinarum
(sugarcane), Sorghum bicolor
(sorghum),
Vigna
radiata
(mung
bean),
Vigna
unguiculata (cowpea), Vitis
vinifera (grapevine), Zea mays
(maize)
Cowpea mild Hospedantes primarios
mottle
Arachis hypogaea (groundnut),
carlavirus
Glycine
max
(soyabean),
Lycopersicon
esculentum
(tomato), Phaseolus vulgaris
(common
bean),
Vigna
unguiculata (cowpea)
Hospedantes alternos
Calopogonium mucunoides ,
Mucuna pruriens (Buffalobean),
Phaseolus lunatus (lima bean),
Phaseolus
radiata
,
Psophocarpus tetragonolobus
(winged bean), Vicia faba
(broad
bean),
Voandzeia
subterranea
(bambara
La remosión de C. benghalensis en la India ha incrementado el
rendimiento 27% (Mehrotra y Singh, 1973). El precio del arroz se redujo
en Texas cuando las semillas de C. benghalensis contaminaron 20
semillas/kg Arroz (Palmer, 1972).
Compite con los cultivos por luz y nutrimentos, principalmente con los
que presentan poca altura como las hortalizas, lo que ocasiona una
disminución en el rendimiento del cultivo afectado. Por otra parte la
maleza es considerada como un hospedero alterno de Meloidogine
incognita y del Groundnut Rosette Virus (Holm et al., 1977).
Se establece y desarrolla en todo tipo de suelos y pH, puede
reproducirse mediante semillas y estolones en lugares húmedos (Holm
et. al., 1977; Vemon, 1983). Las semillas pueden ser diseminadas por el
agua de riego, así como también adherida a implementos agrícolas ya
que el tamaño de ésta es muy pequeño.
En el caso de su asociación con granos, la semilla de la maleza puede
movilizarse mezclada con estos (Holm et al., 1977).
Es una de las malezas más importantes en el norte de Benin y Francia,
ya que se encuentra dispersa en la mayoría de los campos cultivables
(mas del 80% de la superficie agrícola) y llega a causar pérdidas
superiores al 35% en el cultivo del algodón (Ahanchede, 1994).
La planta es usada para propósitos medicinales en muchas tribus
Africanas para tratar inflamaciones en la garganta, ojos y para
quemaduras.En la India y en las Philipinas la semilla es usada para
alimentarse durante periodos de escases.
Aunque el virus tiene una amplia distribución geografica en Africa, Asia, Transmisión
Oceania y el sur de América, los efectos en los cultivos infectados y en el por semilla
rendimiento han sido muy poco estudiados.
Este esta reportado con una menor importancia económica en el cultivo
de cowpea en Papua Nueva Guinea (Philemon, 1987), en frijoles mung y
frijoles franceses (Phaseolus vulgaris)en Tanzania (Mink y Keswani,
1987), y en frijoles franceses y soya en Brasil (Costa et al., 1983). Por
contraste el virus puede causar pérdidas del 64-80% en los campos de
cultivo en Kenya Bock et al., 1976, 1977). Este virus sólo causa clorósis
y achaparramientos en las hojas, pero las pérdidas en el rendimiento no
son registradas, de campos de cultivo de soya, bambara (Vigna
subterranea) y frijoles winged (Psophocarpus tetragonolobus) en otra
parte incluye al Côte d'Ivoire, India e Indonesia (Fauquet et al., 1979;
Fortuner et al., 1979; Dubern y Dollet, 1981; Thouvenel et al., 1982;
Fauquet y Thouvenel, 1987; Saleh et al., 1989; Reddy, 1991).
Este virus es Transmitido por un vector, un insecto; Bemisia tabaci;
Aleyrodidae. Lo Transmisiónite de manera semi-persistente. El virus es
Transmisión
por semilla
América
(VIDE)
Plaga
E.E.U.A.
cuarenten
aria
groundnut)
Hospedantes silvestres
Centrosema
pubescens
(Centro),
Desmodium
tortuosum
(Florida
beggarweed),
Stylosanthes
gracile , Tephrosia villosa
Hospedantes primarios
Glycine
max
(soyabean),
Lablab purpureus (hyacinth
bean), Phaseolus coccineus
(runner
bean),
Phaseolus
lunatus (lima bean), Phaseolus
vulgaris (common bean), Vigna
angularis (adzuki bean), Vigna
radiata (mung bean), Vigna
(
= unguiculata (cowpea), Zornia
Curtobacteriu Hospedantes silvestres
m
Ipomoea (morning glory)
flaccumfacien
s)
Curtobacteriu
m
flaccumfacien
s
pv.
flaccumfacien
s
(Hedges
1922) Collins
& Jones 1983
también Transmitido por inoculación mecánica; en algunos aislamientos
se Transmisiónitite por semilla (y otras no; Cuerno et al., 1991;
Jeyanandarajah y Burk, 1993).
http://image.fs.uidaho.edu/vide/descr252.htm
C. flaccumfaciens pv. flaccumfaciens es considerada como un serio Transmisión
patógeno del cultivo de frijol (Phaseolus) en partes de Europa y norte y por semilla
Sur América, donde esta causa la muerte de las plántulas y pérdidas en
el rendimiento de las plantas sobrevivientes. Este llega a ser un serio,
pero esporádico patógeno de soya, cowpeas y frijoles mung en USA,
Russia y Australia. Esporádicamente causa pérdidas por arriva del 19%
en soya que han sido reportadas en USA (Dunleavy, 1978; Dunleavy et
al., 1983; Dunleavy, 1984). El establecimiento de la leguminosa Zornia
spp. es seriamente afectada en Colombia.
APPPC
COSAVE
CPPC
EPPO
EU
IAPSC
NEPPO
Europa
Turkia
Asia
Africa
America
Argentina
Brazil
Chile
Paraguay
Uruguay
Plaga
Cuarenten
aria
Diaporthe
phaseolorum
var.
sojae
(Lehman)
Wehm.
(=Phomopsis
sojae)
Hospedantes primarios
Glycine max (soyabean)
Hospedantes alternos
Abelmoschus
esculentus
(okra), Allium cepa (onion),
Allium sativum (garlic), Arachis
hypogaea
(groundnut),
Capsicum frutescens (chilli),
Lespedeza , Lupinus spp. ,
La calidad de la semilla de soya se determina por su germinación y el Transmisión
aspecto general de la semilla, por lo que es de gran importancia en por semilla
muchas áreas de producción a nivel mundial. En las áreas trópicales se
tiene una alta precipitación pluvial y altas temperaturas, lo cual favorece
el desarrollo de D. phaseolorum var. sojae. El patógeno generalmente se
considera un parásito débil, pero su amplia distribución y su alta
frecuencia sugieren que debe ser tomado con precaución.
El tizón de la vaina y del tallo se ha citado frecuentemente como una
enfermedad común en Illinois, Iowa e Indiana en los Estados Unidos, y
en Ontario, Canada (Athow y Caldwell, 1954; Gerdemann, 1954;
Diaporthe
phaseolorum
var.
meridionalis
Lycopersicon
esculentum
(tomato), Phaseolus lunatus
(lima bean), Phaseolus vulgaris
(common
bean),
Vigna
unguiculata (cowpea)
Dunleavy, 1956; Hildebrand, 1956). Posteriormente, en los estados del
medio oeste Maryland y Delaware, se consideró a D. phaseolorum var.
sojae como un organismo predominante asociado con la baja calidad de
la semilla (Athow and Laviolette, 1973). A los lotes de semilla de
Louisiana, se le realizaron bioensayos para ver la presencia de
patógenos dentro de la semilla y los resultados mostraron un 97% de
infección por phaseolorum var. sojae (Ellis et al., 1974a).
Las vainas infectadas con D. phaseolorum var. sojae dejan de ser de uso
vegetal (Mehlembacher et al., 1977) y para ser aceptado como producto
comestible, el aceite de soya no debe contener color (Bailey, 1964). En
Illinois, las semillas de soya que mostraron síntomas de D. phaseolorum
var. sojae tuvieron menor en tamaño y volumen, menor densidad,
produjeron mala calidad de aceite y harina, y tuvieron menor viabilidad y
durabilidad que aquellas semillas que no mostraron síntomas. El aceite
de las semillas infectadas despedia un olor rancio y contenia un valor
alto de peroxido, lo que indicaba que el aceite estabá deteriorado
(Hepperly and Sinclair, 1978).
Las semillas son una importante funete de inóculo que puede perpetuar
al patógeno. El tratamiento a la semilla es considerado necesario, para la
obtención de semilla de buena calidad y obtención de semilla
asintomática (Hepperly and Sinclair, 1978).
Hospedantes primarios
Glycine max (soyabean)
Hospedantes alternos
Cajanus cajan (pigeon pea),
Gossypium hirsutum (Bourbon
cotton),
Lupinus
spp.
,
Lycopersicon
esculentum
(tomato), Phaseolus lunatus
(lima bean), Piper nigrum
(black pepper)
En Geogia, la incidencia principal causada por el cancro del tallo (D. Transmisión
phaseolorum) cuarentenado en el sur, aumento de 1.6% en plantas en por semilla
1983 a 74.2% en 1984, mostrando que puede incrementarse desde ser
insignificante a niveles epidemiólogicos en un año (Rothrock et al.,
1985). Una investigación en Florida, en 1983 detecto la enfermedad en
15 de 18 condados, con el 81% de los campos afectados en un condado
(Ploetz et al., 1986). En 1984, en 24 lugares de Mississippi, la ocurrencia
de afectación fue de 84% en los campos con indicencias de entre 0 a
50%, promediando 10% (Roy and McLean, 1984). En 1982 en uno de los
condados de Texas, el 25% de la superficie estaba fuertemente dañada,
dando como resultado pérdidas totales en algunos campos (Whitney and
Bowers, 1985). En 1983 hubo una reducción del 10 al 50% en las ventas
de semillas provenientes de cultivares susceptibles en los condados de
Florida (Ploetz et al., 1986). En 1989, debido al cancro del tallo, el cultivo
de la soya se afecto en un 7.0, 3.1 y 15% en Arkansas, Mississippi y
Tennessee, respectivamente (Sciumbato, 1993).
Se han localizado epidemias de la enfermedad en el sur de Estados
Unidos durante los 70’s y 80’s, y recientemente habido brotes en Brasil,
Paraguay y Argentina, durante los 90’s, esto en aunado al desarrollo de
los patotipos locales de diferentes virulencias, nos indica que la
enfermedad debe considerarse como un riesgo fitosanitario significativo.
El reporte de la coexistencia de ambas variedades de D. phaseolorum
(meridionalis y caulivora) en Santa Fe, Argentina, añade preocupación
sobre el potencial del riesgo fitosanitario de esta enfermedad (Pioli et al.,
2002).
La dispesión del hongo a distancias largas ocurre cuando las semillas
están infectadas, los residuos de cosecha se transportan por la
maquinaría y por los factores climáticos. El inocuo principal, las
ascosporas son liberadas del peritecio sobre los residuos de cosecha al
tiempo en que las las semillas están emergiendo. Las ascosporas
pueden dispersarse a distancias cortas a través de las gotas de lluvia o a
través del viento para distanicas más largas. (Yorinori, 1996).
D. phaseolorum var. meridionalis se asume que pudo ser intorducido a
Paraguay por la grab cantidad de semilla de soya importada de Brazil
(Sato et al., 1993).
Ditylenchus
dipsaci (Kühn,
1857) Filip'ev,
1936
(=Ditylenchus
fragariae)
Hospedantes primarios
Allium (onions, garlic, leek,
etc.), Allium cepa (onion),
Allium porrum (leek), Allium
sativum (garlic), Avena sativa
(oats), Begonia , Beta vulgaris
var. saccharifera (sugarbeet),
Cannabis
sativa
(hemp),
Fragaria
ananassa
(strawberry), Gladiolus hybrids
(sword
lily),
Hyacinthus
orientalis (hyacinth), Medicago
sativa (lucerne), Narcissus
(daffodil),
Narcissus
pseudonarcissus (wild lent lily),
Nicotiana tabacum (tobacco),
Phaseolus
(beans),
Phlox
drummondii (Annual phlox),
Phlox paniculata , Pisum
sativum (pea), Polyphagous
(polyphagous), Secale cereale
(rye),
Solanum
tuberosum
(potato), Trifolium pratense
(purple
clover),
Trifolium
repens (white clover), Tulipa
(tulip), Vicia faba (broad bean),
Zea mays (maize)
Hospedantes alternos
D. dipsaci es uno de los más devastadores nemátodos fitoparásitos, Transmisión
especialmente en regiones templadas. fuera de control , este puede por semilla
causar completas fallas en los cultivos hospederos como el ajo, cebollas,
cereales, leguminosas, fresas y plantas hornamentales, especialemente
flores de bulbos .
D. dispaci esta asociado algunas veces con otros patógenos. Por
ejemplo es Transmisiónisor de Corynebacterium insidiosum en plantas
de alfalfa (Hawn, 1963). En infecciones experimentales en cebolla con
D. dipsaci y Peronospora schleidenii juntas fueron 36.5% más agresivas
que con sólo los nematodos (Yakimenko y Efremenko, 1973).
Sturhan y Brzeski (1991) indican que en infestaciones agresivas, las
pérdidas en los cultivos son del 60-80% son no inusuales. En Italia
arriva del
60% de plantulas de cebollas mueren antes de ser
trasplantadas. En ajos, las pérdidas del 50% fueron reportadas por Italia
y más del 90% para Francia y Polonia.
Allium cepa var. aggregatum
(shallot), Apium graveolens
(celery), Brassica napus var.
napus
(rape),
Carduus
acanthoides (Welted thistle),
Crocus
sativus
(saffron),
Cucurbitaceae
(cucurbits),
Dianthus
caryophyllus
(carnation), Helianthus annuus
(sunflower),
Hydrangea
(hydrangeas), Ipomoea batatas
(sweet potato), Lens culinaris
ssp.
culinaris
(lentil),
Onobrychis viciifolia (sainfoin),
Petroselinum crispum (parsley),
Phaseolus coccineus (runner
bean), Triticum (wheat)
Hospedantes silvestres
Astrantia , Avena sterilis (winter
wild oat), Bergenia , Brassica
rapa subsp. rapa (turnip),
Chenopodium
murale
(nettleleaf goosefoot), Cirsium
arvense
(creeping
thistle),
Convolvulus
arvensis
(bindweed), Hieracium pilosella
(mouse-ear
hawkweed),
Lamium
album
(white
deadnettle),
Lamium
amplexicaule
(henbit
deadnettle),
Lamium
purpureum (purple deadnettel),
Myriophyllum
verticillatum
(whorled watermilfoil), Nerine
sarniensis
,
Ranunculus
arvensis
(Corn
buttercup),
Raphanus raphanistrum (wild
radish),
Stellaria
media
(common
chickweed),
Taraxacum officinale complex
(dandelion)
Hospedantes primarios
Erwinia
stewartii
Zea
mays
(maize),
Zea
(Smith 1898) mexicana (teosinte)
Dye 1963
Hospederos alternos
Agrostis gigantea (black bent),
Cucumis sativus (cucumber),
Dactylis
glomerata
(orchardgrass),
Digitaria
,
Panicum
capillare
(tumble
panicgrass),
Panicum
dichotomiflorum
(smooth
witchgrass), Poa pratensis
(smooth-stalked
meadowgrass),
Setaria
lutescens
,
Sorghum
sudanense (Sudan grass),
Tripsacum
dactyloides
,
Tripsacum zea , Triticum
aestivum (wheat)
Las pérdidas económicas en maíz por
P. stewartiihan sido Transmisión
inconsecuentes en Norte América para los pasados 50 años excepto por semilla
para pocos, pequeños brotes esporádicos y pocas extensivas epidemias
en híbridos de maices dulces (Pepper, 1967; Anderson, 1986; Anderson
y Buzzell, 1986; Pataky et al., 1996; Pataky et al., 2000b). La importancia
económica de la enfermedad en Norte América es principalmente para
los niveles adecuados de resistencia incorporada dentro de los maices
híbridos donde ocurre la enfermedad. El marchitamiento Stewart's causo
pérdidas económicas sustanciales en 1930s antes de desarrollar
cultivares resistentes (Pepper, 1967). Severas pérdidas por el
marchitamiento Stewart's fueron reportadas en Italia en 1940s y la
enfermedad recurrió como un importante problema en 1980s (Anon.,
1983; Mazzucchi, 1984).
En maices dulces, las pérdidas económicas pueden ser significantes
para los híbridos susceptibles y moderadamente susceptibles que son
cultivados en áreas donde el vector habita. Las pérdidas en maices
dulces donde el marchitamiento de Stewart's afecta los niveles de
resistencia o suceptibilidad de los cultivares y su cultivo cuando las
plantas son infectadas (Suparyono and Pataky, 1989). Las pérdidas
economicas con infecciones sistemicas reducen el rendimiento cerca de
0.8% con solo el 1% de incidencia de plantas infectadas sistemicamente
desde que eran plantulas (Freeman y Pataky, 2001). Las pérdidas no
ocurren o son minimás en hibridos resistentes o moderadamente
resistentes; sin embargo los rangos de pérdidas frecuentemente van del
40 al 100% cuando sucede en híbridos de maices dulces cultivados bajo
condiciones epidemicas y estos son infectados en estado de 5 hojas.
(Pataky and Eastburn, 1993).
El marchitamiento de Stewart's puede tener efectos económicosy como
resultado imponer regulaciones fitosanitarias. Los efectos económicos en
la regulación fitosanitaria son principalmete para el comercio de la
semilla. Solo en áreas donde el escarabajo del maiz y P. stewartii esten
presentes, resulta más utilizado el germoplasma de maiz para la
resistencia y el control al marchitamiento Stewart's.
Foxtail mosaic Hospedantes principales
potexvirus
Setaria italica (foxtail millet)
Chenopodium quinoa (quinoa)
El virus no se Transmisiónite
Transmisiónite por semilla.
por
inoculación
mecánica,
se
Hospedantes primarios
Fusarium
Las esporas se pueden dispersadas otras plantas o las demás áreas por Transmisión
por semilla
oxysporum
Lycopersicon
esculentum el viento, agua o a a través del movimiento del suelo. Si el hongo
f.sp. radicisalcanza la fruta, puede contaminar la semilla, cuando la humedad del
Transmisión
por semilla
(VIDE)
(tomato)
lycopersici
Jarvis
&
Shoemaker
suelo es alta y la temperatura es relativamente baja. Así como causar
marchitamiento vascular, el hongo puede infectar otras partes de la
planta cerca del suelo para inducir putrefacciones de la raíz y del
vástago. La esporulación de F. oxysporum f.sp. lycopersici en la
superficie del vástago de las plantas de tomate y la subsecuente
diseminación aérea disemina al inoculo ha sido reportada. El hongo
sobrevive en la semilla enviada a través de Canadá y almacenada hasta
por 12 semanas. El tratamiento con NaOCl o NaHCl no desinfesta
totalmente a la semilla infestada
Hospederos primarios
Avena sativa (oats), Hordeum
vulgare
(barley), Secale cereale (rye),
Triticale , Triticum (wheat),
Triticum aestivum (wheat)
Hospederos alternos
Poaceae (grasses), Zea mays
(maize)
H. avenae el la plaga principal del trigo, avena y cebada.Es la mayor Transmisión
restricción biotica para la producción de cereal en el norte y oeste de la por semilla
India y el sureste de Australia. Las pérdidas anuales por el nemátodo de
los cereales en trigo fueron estimadas en A$70 millones en Australia,
US$4.5 millones en Europa, US$9 millones en la India. En USA, H.
avenae ocupa el 16o. lugar con base al impacto económico entre las
plagas exóticas, con pérdidas calculadas por US$312 miliones.
En Australia, una población de 2 huevos por gramo de suelo es
considerado como el nivel del umbral económico para el caso de trigo.
En poblaciones iniciales de 2 huevos por gramo de suelo se reduce un
20% el rendimiento del trigo y 4 huevos por gramo de suelo reducen 35%
el rendimiento del trigo.En climas templados el umbral económico para
Avena, trigo y cebada es de 0.2, 1 y 5 huevecillos + juveniles por gramo
de suelo. El grado de daño depende de la población inicial, tipo de suelo,
condiciones climáticas, especie de cultivo y variedad e interacción con
patógenos secundarios. Para datos adicionales sobre semilla consultar a
Meagher (1982) y Brown (1984, 1987).
Hospederos primarios
Heterodera
glycines
Glycine max (soyabean)
Ichinohe, 1952
Hospederos alternos
Beta
vulgaris
(beetroot),
Cajanus cajan (pigeon pea),
Glycine , Kummerowia striata
(Japanese
lespedeza),
Lespedeza cuneata (Sericea
lespedeza), Lupinus (lupins),
Lupinus albus , Lycopersicon
esculentum
(tomato),
Phaseolus vulgaris (common
bean), Pisum sativum (pea),
Vicia villosa , Vigna aconitifolia
(moth beans), Vigna angularis
Las pérdidas reportadas en el cultivo de soya varian de 10-70% en Transmisión
Japón (Ichinohe, 1955; Inagaki, 1977). Todas las áreas de cultivo de por semilla
soya en USA están en riesgo y el nemátodo se dispersa sin cesar dentro .
de las áreas que no han sido contaminadas. Las pérdidas en el suroeste
de USA fueron estimadas en US$88.4 millones en 1990 (Sciumbato,
1991). Wrather et al. (1997) a condicición de estimar las pérdidas de las
10 ciudades más sobresalientes en producción de soya concluyó que H.
glycines está ampliamente disperso y fúe la más importante restricción
para la producción.
Heterodera
avenae
Wollenweber,
1924
COSAVE
CPPC
EPPO
Ukrania
America
Argentina
Chile
Paraguay
Uruguay
Plaga
cuarenten
aria
CAN I
(adzuki bean), Vigna mungo
(black gram), Vigna radiata
(mung bean)
Hospederos silvestres
Aeschynomene indica (Indian
jointvetch),
Fabaceae
(leguminous plants), Geranium
(cranesbill),
Lamium
amplexicaule
(henbit
deadnettle),
Penstemon
,
Sesbania exaltata , Stellaria
media (common chickweed),
Verbascum thapsus (Aaron'srod)
Lettuce
mosaic
potyvirus
Hospedantes primarios
Lactuca sativa (lettuce)
Hospedantes secundarios
Carthamus
tinctorius
(safflower), Cicer arietinum
(chickpea), Cichorium endivia
(endives),
Eustoma
grandiflorum , Pisum sativum
(pea),
Spinacia
oleracea
(spinach)
Hospedantes silvestres
Sonchus (Sowthistle), Stellaria
media
(common
chickweed),Sinapis
arvensis
(wild mustard)
IIAPSC
Europa
Turquia
Plaga
cuarenten
aria
confinada
bajo
control
oficial
LMV esta ampliamente dispersa, probablemente como resultado del
comercio de semilla de lechuga. Este es el principal patógeno en lechuga
en Europa y en USA (California Florida). La sobrevivencia de la industria
de lechuga en el valle Salinas en California fue amenazado en 1940s y
1950s después de la introducción de semilla indicada (Grogan, 1980). En
reicientes ataques del virus en Florida, con incidencia del cerca del
100%, fueron atribuidos al inculmiento de reglas para certificación de
semilla (Raid et al., 1996).
El virus toma una mayor importancia en endive (Cichorium endivia) en
Europa (Dinant and Lot, 1992). Este ha sido reportado infectando
espinacas (Provvidenti y Schroeder, 1972), chicharos, (Provvidenti,
1973), cártamo (Klisiewicz, 1966) y garbanzo (Bosque-Perez y
Buddenhagen, 1989) en USA pero parece ser que con una menor
importancia en esa cosecha.
El virus es Transmitido por un incecto vector, Aphis gossypii,
Macrosiphum euphorbiae, M. gei, Myzus persicae; Aphididae. La
Transmisiónisión es no persistente. El virus se Transmisiónite por
inoculación mecánica, por semilla (3-10%); por polen a la semilla.
Distribución geográfica
Probablemente distribuido alrededor del mundo (donde Lactuca sativa es
cultivada).
http://image.fs.uidaho.edu/vide/descr440.htm
Transmisión
por semilla
(VIDE)
Listronotus
bonariensis
( = Hyperodes
bonariensis)
Major hosts
Hordeum
vulgare
(barley),
Lolium
multiflorum
(Italian
ryegrass),
Lolium
perenne
(perennial ryegrass), Poaceae
(grasses), Triticum aestivum
(wheat), Zea mays (maize)
Minor hosts
Agrostis
capillaris
(brown
bentgrass),
Anthoxanthum
puelii (Annual vernalgrass),
Avena sativa (oats), Bromus
(bromegrasses),
Cynodon
(quickgrass), Festuca pratensis
(English bluegrass), Festuca
rubra (red fescue), Phleum
pratense (timothy)
L. bonariensis es una plaga seria en Nueva Zelanda (Ferro, 1976; Transmisión
Goldson and Emberson, 1980; Goldson et al., 1982). Los adultos y larvas por semill
del insecto son oligophagos, alimentándose de la mayoría de las
especies representativas de la familia Poaceae. La plaga puede dañar
severamente a especies de pastos, particularmente a Lolium perenne. El
potencial alto de migración de los adultos puede alcanzar pastos de
cualquier edad logrando grandes infestaciones. Por otro lado, los pastos
recién sembrados son los más seriamente afectados, especialmente en
estaciones secas.
En cultivares de pastos de vida corta como son: Manawa, Patoe and
Tama; se han registrado perdidas de más del 98%. Los cultivares de vida
largo como son (Ariki and Ruanui), Dactylis glomerata and Phleum
pratense son los menos afectados. El ataque de la segunda generación
de larvas frecuentemente es enmascarado por el crecimiento del pasto.
La larva causa daños severos al establecerse en maíz y trigo, y es una
plaga importante ene stos cultivos en Waikata, South Auckland y Bay of
Plenty, áreas del norte de Nueva Zelanda.
L. bonariensis es de importancia económica en Sudamérica, lugar de
origen del insecto (Chadwick, 1963), asimismo, el insecto fue una de las
mayores plagas de cebada, trigo y avena en la región de Wairarapa,
Nueva Zelanda en 1974-80 (Cromey et al., 1980).
El costo económico de L. bonariensis en 7 millones de hectáreas de
pastura en Nueva Zelanda fue evaluado por Prestidge et al. (1991). El
daño a L. perenne (perennial ryegrass) resulto en la reducción del
número de animales que un campo puede alimentar y la necesidad de la
renovación de pastura a un costo estimado de NZ$ 46,202 millones
anualmente. Otro de los costos atribuibles a L. bonariensis incluye los
asociados con la reducción en la salud de los animales debido a cambios
en la calidad de la pastura. Estas perdidas económicas totales fueron de
NZ$ 78,251 millones anuales, lo cual hace que L. bonariensis sea el
insecto plaga más importante en Nueva Zelanda.
El potencial de L. bonariensis como vector de los virus cocksfoot mottle
sebemovirus y ryegrass mosaic rymovirus (RgMV) fue investigado en
laboratorio a 20°C por Smales et al. (1995). Un individuo de este gorgojo
transmitio RgMV a L. perenne y un virus desconocido para D. glomerata.
L. bonariensis puede dispersarse localmente por si mismo mediante el
vuelo.
Internacionalmente su movimiento probablemente sería por semillas de
pasto (L. bonariensis fue introducido en Australia como adulto en semilla
de ryegrass), y posiblemente en otras semillas (cereales). En teoría,
podría ser dispersado en raíces de plantas de hospederos de la plaga, y
las pupas pueden ser introducidas en suelo (EPPO, 1992).
Magnaporthe
grisea
(Hebert) Barr
[teleomorph]
(Pyricularia
grisea)
Hospedantes primarios
Oryza sativa (rice)
Hospedantes alternos
Poaceae (grasses), turfgrasses
Hospedantes silvestres
Lolium
multiflorum
(Italian
ryegrass),
Lolium
perenne
(perennial ryegrass)
Aunque es probable que la amplia dispersión de esta enfermedad de la Transmisión
quemadura o marchitamiento de la panoja del arroz (causada por por semilla
Thanatephorus cucumeris), el quemado del arroz, por la gran capacidad
de este para reducir el rendimiento, es comunmente la más importante
enfermeda del arroz en el mundo. Pinnschmidt et al. (1994) ha revisado
recientemente lo ocurrido en relación a la infeción y la pérdida en el
rendimiento.
Los ataques severos pueden completamente destruir los sebradios de
arroz y de toda la cosecha. Despúes ataca las hojas y causa
achaparramiento de la plantas y reduce el número de panículas y el peso
individual de los granos. Ila infección en los vástagos termina por
barrenar las panículas, luego la infección llega al cuello (por consiguiente
el grano se perfora) resultando en un “rompimiento del cuello”.Pérdidas
por arriva del 70% han sido reportadas en los cultivos atacados por el
barrenado del tallo (Chin, 1975). En la misma manera, la infeción de la
panícula resulta en granos pulverizados, granos estériles o pérdidas de
la cosecha. El rompimiento de la panícula y el cuello sólo reduce el
rendimiento de la panoja del arroz,la densidad del volumen del grano e
incrementa el rompimiento del grano (Candole et al., 1999).
Adicionalmente los ataques al pecíolo de las hojas resultan en la muerte
prematura de las hojas y y la pérdida de la capacidad fotosintética. Otros
estudios han revelado que el rompimiento del pecíolo de las hojas
incrementan la respiración de la planta y reducen el máximo nivel de
fotosíntesis a baja saturación luminosa y inicial lumnosidad se use
eficientemente (Pinnschmidt et al., 1994).
Pseudomonas
andropogonis
(Smith 1911)
Stapp 1928
Hospedantes primarios
Sorghum bicolor (sorghum),
Sorghum halepense (Johnson
grass), Sorghum sudanense
(Sudan grass), Trifolium repens
(white clover), Vicia sativa
(common vetch)
Hospedantes alternos
Bougainvillea
,
Ceratonia
siliqua (locust bean), Cicer
arietinum (chickpea), Dianthus
caryophyllus
(carnation),
Gypsophila
paniculata
(babysbreath),
Limonium
sinuatum (sea pink), Ruscus ,
Strelitzia , Trifolium pratense
En general, B. andropogonis es relativemente el menor problema de las Transmisión
enfermedades del sorgo. El estriado bacterial de la hoja es considerada por semilla
de baja a intermedia prioridad en la enfermedad del sorgo en oeste de
Africa (Hullake y Esele, 1992). Aunque no es un serio problema, este se
considera que
incremento importancia en Argentina en 1992
(Teyssandier, 1992). La enfermedad raramente se observa en Sorgo en
USA (Frederiksen y Duncan, 1992). La enfermedad es solo de poca
preocupación en la producción de maíz (Ullstrup, 1960; Wehlburg, 1962;
Vidaver y Carlson, 1978).
La mancha negra del trébol blanco (Trifolium repens) fue establecida
como una de las más prevalentes enfermedades que se estableció y
sobrevivio por la incidencia de las especies del patógeno y este modelo
de asociación de mancha de la hoja fue un complejo de la enfermedad
en trébol blanco en el Norte de Carolina durante 1990 y 1991 (Nelson y
Campbell, 1992).
Este no es indicado como un patógeno de importancia económica en otrs
hospederos.
(purple
clover),
Trifolium
subterraneum
(subterranean
clover),
Tulipa
(tulip),
Vaccinium (blueberries), Zea
mays (maize)
Pea
early Hospedantes primarios
browning
Lupinus luteus (yellow lupin),
tobravirus
Medicago sativa (lucerne),
Phaseolus vulgaris (common
bean), Pisum sativum (pea),
Vicia faba (broad bean)
Hospedantes silvestres
Solanum
nigrum
(black
nightshade)
Asociada con (no verdaderos
hospedantes)
Beta vulgaris var. saccharifera
(sugarbeet), Cucumis sativus
(cucumber),
Eschscholzia
californica , Medicago lupulina
(black
medick),
Trifolium
pratense
(purple
clover),
Trifolium repens (white clover),
Tropaeolum majus (common
nasturtium).
Plántulas débiles, muerte de plantulas e infestación de semilla en areas
infestadas por PEBV en el cultivo de chicharo causa reducciones en el
rendimiento. La importancia del PEBV en chicharo comercial en tierras
bajas es que fueron introducidos entonces los programas de certificación
en 1959 y permanecen vigentes ( control de calidad de la semilla). Bos y
van der Want (1962) recomiendan que los cultivares suceptibles no
deben ser cultivados en la áreas donde se conoce sse encuentra
presente el PEBV. Muchos agricultores en Inglaterra, UK, evitan cultivar
chicharo en tierras infectadas, pero siembrar cultivares precoces en
tierras ligeras
es tan a menudo esencial para satisfacer los
requerimentos de los procesos comerciales para continuar cosechando.
Los síntomas severos del BBYBV en Italy (Russo et al., 1984) implican
que pueden haber ocurrido pérdidas en el rendimiento (Jellis et al.,
1998).
Fiederow (1983) establece que la inoculación mecánica con PEBV
solamente reduce el cultivo de semilla de haba con un porcentaje del
27%. EL BBTMV (Broad bean true mosaic comovirus) solamente causa
pérdidas en el rendimiento del 44%, pero plantas co infectads con el
PEBV y con el BBTMV sufren el 77% de pérdidas en el rendimiento.
Es Transmitido por un vector; el nemátodo; Trichodorus teres, T.
pachydermus en los Países bajos; T. anenome, T. primitivus, T.
viruliferus en U.K; Trichodoridae. El virus es Transmitido por inoculación
mecánica; por semilla (37% en Pisum sativum cv. Rondo).
Distribución geográfica
Disperso en Belgica, Italia, Moruecos, los Países bajos, Suiza, y UK.
http://image.fs.uidaho.edu/vide/descr571.htm
Transmisión
por semilla
Pea
Stem Hospedantes primarios
Necrosis Virus Chenopodium amaranticolor
Gomphrena globosa
Lathyrus odoratus
Phaseolus vulgaris
Pisum sativum
Sesamum indicum
El virus es Transmitido por un vector, un hongo; Olpidium spp;
Plasmodiophorales. Virus Transmitido por inoculacion mecánica, no
trasnmitido por contacto entre plantas, Transmitido por semilla.
Transmisión
por semilla
(VIDE)
(VIDE)
Pea
seedborne mosaic
potyvirus
( = Pea leafroll virus)
Hospedantes primarios
Lens culinaris ssp. culinaris
(lentil), Pisum sativum (pea)
Hosts (source - data mining)
Vicia faba (broad bean)
Peach rosette Hospedantes primarios
mosaic
Prunus persica (peach), Vitis
nepovirus
labrusca (fox grape), Vitis
vinifera (grapevine)
Hospedantes alternos
Vaccinium
corymbosum
(blueberry), Vitis
Hospederos silvestres
Taraxacum
PSbMV puede provocar reducción en el peso de la semilla con un Transmisión
porcentaje alto hasta del 36% (Chiko y Zimmer, 1978; Khetarpal y Maury, por semilla
1987). Por eso la introducción del PSbMV a traves de la transmisión por
semilla, seguida de la Transmisiónisión por afidos vectores, poseen el
potencial para provocar grandes pérdidas económicas.La reducción de la
comercialización de la semilla infectada de chicharo puede contribuir a
largas pérdidas financieras, y la inhabilitación para la importación y
exportación de semilla infectada (Shukla et al., 1994).
Transmitido por un vector, un insecto, Acyrthosiphon pisum, Aphis
craccivora, A. fabae, Dactynotus escalanti, Macrosiphum crataegarius,
Rhopalosiphum padi; Aphididae. Transmisión no persistente. Virus
transmitido por inoculación mecánica, transmitido por semilla (up to
100% in Pisum sativum, especially when testa is split, but little seed
transmission in Vicia faba, V. narbonensis and V. pannonica).
Esta distribuido probalbemente alrrededor del mundo. Ampliamente
disperso en China.
Transmisión
por semilla
PRMV es el principal patógeno que afecta al cultivos y este causa la
carencia de duraznos y seveas pérdidas en la producción (arriva del
60%) y la muerte de cultivare susceptibles de
Vitis labrusca
(especialmente el cultivar Concord) y de numerosos hybridos Francesamericanos (Ramsdell et al., 1995).
El virus es Transmitido por un nemátodo vector, Xiphinema americanum,
Longidorus diadecturus; Dorylamidae. El virus es Transmitido por
inoculación mecánica, por injerto, no se Transmisiónite por el contacto
entre las plantas, Transmitido por semilla
Ampliamente disperso en Canada y los E.E.U.U (Ontario y Michigan,
respectivamente).
http://image.fs.uidaho.edu/vide/descr579.htm
Transmisión
por semilla
(VIDE)
EPPO
EU
Europe
Russia
America
Plaga
cuarenter
naria
Canada
Plaga
cuarenter
naria
Confinada
bajo
control
oficial
Peanut mottle Hospedantes primarios
potyvirus
Arachis hypogaea (groundnut),
Cassia
bicapsularis
,
Cyamopsis
tetragonoloba
(clusterbean), Glycine max
(soyabean), Lupinus (lupins),
Phaseolus (beans), Phaseolus
vulgaris (common bean), Pisum
(pea), Pisum sativum (pea),
PeMoV primero se establecio infectando cacahuate y soya en Georgia, Transmisión
USA (Kuhn, 1965), pero este entonces ha sido reportado en cultivos de por semilla
cacahuate (y en algunas ciudaddes en otras especies leguminosas, en
Africa (Burkina Faso, Egypt, Kenya, Niger, Sudan, Sudáfrica, Tanzania,
Uganda y Zambia), Asia (India, Indonesia, Israel, Japón, Malaysia,
Filipinas y Taiwan), Australasia (Australia) y Sur América (Argentina y
Colombia), Norte América (Canada y USA) y el Caribe (Cuba). Este tiene
una distribución geografica ampliamente dispersa es probablemente por
la Transmisiónisión de semilla de cacahuate, como a este se le permitio
Senna occidentalis (coffee
senna), Senna tora (sicklepod),
Sesamum indicum (sesame),
Vigna unguiculata (cowpea),
Voandzeia
subterranea
(bambara groundnut)
Hospederos silvestres
Cassia (sennas), Crotalaria ,
Desmodium (tick clovers)
previa e inadvertidamente la diseminación internacional al surtirse de
semilla contaminada. Aunque principalemte es patógeno de cacahuate
,el PeMoV tambien se establece de manera natural en soya (Glycine
max), frijol (Phaseolus vulgaris), chicharo (Pisum sativum), caopí (una
especie de garbanzo;Vigna unguiculata), lupinus azul y lupinus blanco
(Lupinus spp.), cacahuate bambara (Voandzeia subterranea), algunos
cultivos forrajeros (Alysicarpus vaginalis, Cyamopsis tetragonoloba,
Stylosanthes spp., Trifolium spp.) y especies de malezas severas
(Cassia spp., Crotalaria spp. y Desmodium canum); PeMoV ha sido solo
reportado en sésamo (Sesamum sp.) en Indonesia. El virus se
Transmisiónite por semilla a niveles por arriva del 8.5% en cultivares de
cacahuate, también en más del 1% en frijo, cacahuate bambara , caopí
(un tipo de garbanzo) y lupinus; este no se Transmisiónite por semilla en
soya.
Pepper
mild Hospedantes primarios
mottle
Capsicum
annuum
(bell
tobamovirus
pepper), Capsicum frutescens
(chilli)
Hospedantes alternos
Capsicum
(peppers),
Lycopersicon
esculentum
(tomato), Physalis angulata
(cutleaf groundcherry)
PMMV causa pérdidas considerables en el redimiento ( 20-30%) en Transmisión
cultivos a campo abierto y en el cultivo de chile bajo cubierta puede bien por semilla
causar pérdidas significativas en la calidad de los frutos (e.g., Conti and
Marte, 1983; Marte y Wetter, 1986; Alonso et al., 1989). Además de una
variación casual infectar y en plantas adyacentes minimizar la infección
secundariamente por dispersión en cultivos protejidos solo resulta en una
eminente reducción del potecial de rendimiento. Incluso la raza leve
usada para protección cruzada de los cultivos en Italia tiene efectos
debilitadores en las plantas protejidas (Cartia et al., 1985).
Las infecciones totales pueden ocurrir en cultivos a campo abierto
resultando en una gran reducción del rendimiento de la fruta
comercializable (Conti y Marte, 1983; Marte y Wetter, 1986)
Transmisiónitted by means not involving a vector. Virus Transmisiónitted
by mechanical inoculation; Transmisiónitted by grafting; Transmisiónitted
by contact between plants; Transmisiónitted by seed; not
Transmisiónitted by pollen.
Hospedantes primarios
Periconia
circinata
(L. Sorghum bicolor (sorghum)
Mangin) Sacc.
Hospederos alternos
Sorghum
almum
(Columbusgrass),
Sorghum
halepense (Johnson grass)
En ensayos progresivos de 10 años en una estación experimental de Transmisión
Texas y 9 años en otra muestran pérdidas por arriva del 50-60% debido por semilla
a la enfermedad del milo cuando variedades susceptibles son cultivadas
en suelo infectado.
Hospedantes primarios
Zea mays (maize)
Hospederos alternos
Avena
sativa
(oats),
El mildiu velloso de las Filipinas esta confinado en algunas partes de Transmisión
Asia. Este es el principal problema en las Filipinas donde las pérdidas por semilla
en maíz fueron estimadas nacionalmente en un t 8% en 1974-75
(Exconde, 1976). La pérdida en el rendimiento estudiada muestra
pérdidas del 100% (Exconde y Raymundo, 1974). La enfermedad es
Peronoscleros
pora
philippinensis
(W. Weston)
C.G.
Shaw,
Transmisión
por semilla
(VIDE)
Saccharum
officinarum
(sugarcane),
Saccharum
spontaneum (wild sugarcane),
Sorghum bicolor (sorghum),
Sorghum halepense (Johnson
grass), Zea mexicana (teosinte)
generalmente más severa en la India, pero pérdidas por arriva del 60%
han sido reportadas (Bonde, 1982; Payak, 1975).
En estudios de campos experimentales con clones de caña de azúcar
Phil.6723 se muestran pérdidas del rendimiento del 36% asociadas con
el mildiu velloso de las Filipinas (P. philippinensis (Husmillo, 1982).
Hospedantes primarioss
Peronospora
farinosa (Fr.) Beta vulgaris var. saccharifera
Fr.
(sugarbeet),
Chenopodium
(Goosefoot), Spinacia oleracea
(spinach)
De las áreas de crecimiento de la quinoa en Sudamérica, el moho suave
causado por peronospora farinosa es la enfermedad más importante. La
enfermedad está constantemente presente en estas áreas y se
considera como endémica. A pesar de la importancia de esta
enfermedad, poco se sabe de la especialización de la epidemiología y
del anfitrión, y la estructura de la población del patógeno. Las oospores
se han detectado en semillas y hojas marchitadas pero no se sabe si el
patógeno es homo- o heterotalico.
(Phytopathology 90:S17, 2000).
Se concluye que el moho suave de la quinoa puede ser transmitido por
la semilla.
1978
www.seedtest.org/upload/cms/user/Abstracts32
A Dictionary of Plant Pathology
Autor:Paul Holliday
Editorial Cambridge University Press
Pag. 329
La enfermedad ataca a hojas, ramás, tallos e inflorecencias o panojas,
infecta durante cualquier estado fenológico del cultivo. Los daños son
mayores en plantas jóvenes (ramificación a panojamiento), provoca
defoliación, afectando el normal desarrollo y fructificación de la quinua
Danielsen et al. (2000a) encontraron que el mildiu bajo condiciones de
alta presión de enfermedad reduce los rendimientos de 33 a 58% en
varios cultivares de quinua: Utusaya, LP-4B, La Molina 89, Blanca de
Juli, Kancolla, Jujuy, Amarilla de Maranganí e Ingapirca. Utusaya, cultivar
de los salares bolivianos, fue el más afectado con una pérdida de 99%.
Generalmente, las condiciones ambientales con alta humedad favorecen
el desarrollo del mildiu. La enfermedad se presenta en la mayoría de los
lugares donde se cultiva la quinua, ello, por la gran diversidad genética
del patógeno (Danielsen et al., 2000b) y su amplio rango de adaptabilidad.
Esta enfermedad se halla distribuida en todos los lugares o países donde
se cultiva quinua, Sudamérica, Norteamérica y Europa.
Transmisión
por semilla
The fungus survives as oospores in the soil or as mycelium in the seeds.
The infected plants produce sporangia on their lower surface which can
infect other neighbouring plants.
Hospedantes primarios
Peronospora
manshurica
Glycine max (soyabean)
(Naumov)
Syd.
ex Hospederos silvestres
Glycine soja
Gäum.
(
=
Peronospora
sojae)
Phaeoisariopsi
s
griseola
(Sacc.)
Ferraris
( = Isariopsis
griseola)
Hospedantes primarios
Phaseolus (beans), Phaseolus
vulgaris (common bean)
Hospederos alternos
Desmodium
(tick
clovers),
Lablab purpureus (hyacinth
bean), Phaseolus acutifolius
(tepary
bean),
Phaseolus
coccineus
(runner
bean),
Phaseolus lunatus (lima bean),
Vigna angularis (adzuki bean),
Vigna mungo (black gram),
Vigna radiata (mung bean),
Vigna umbellata (Rice- bean),
Vigna unguiculata (cowpea)
Aunque esta ampliamente dispersa alrrededor del mundo, la enfermedad Transmisión
raramente causa significantes pérdidas económicas.Las Oosporas por semilla
incrustadas en las semillas causan pequeños efectos adversos en la
germinación, pero pueden causar problemas para la producción de
semilla reduciendo visiblemente la calidad de la semilla. La enfermedad
se estableció 50% de 825 campos sobrevive en Iowa (Dunleavy et al.,
1984),y un 25% de 104 campos sobreviendo en Brazil (Lehman et al.,
1976). En pérdidas del rendimiento estudiadas comparando cultivos
asperjados con fungicida y cultivos no tratados que fueron naturalmente
infectados, muestran un porcentaje de reducción del rendimiento del
11.8% para culti vares susceptibles y no hubo reducción en cultivares
resistentes (Dunleavy, 1987). Pérdidas del 10% fueron reportadas
cuando cultivares resistentes y suceptibles fueron comparados (Bernard,
1989). Pérdidas del 10% han sido solo reportadas para Romania
(Rosca, 1975). Aunque el patógeno se Transmisiónite por semilla, no hay
diferencias significativas en el rendimiento pero si en la sanidad de las
semillas (Hildebrand y Koch, 1951).
P. griseola es principaltmente de importancia en el tropico y el Transmisión
por semilla
subtropico, causando defoliación prematura y manchado de las vainas.
En el centro y este de Africa, Phaseolus vulgaris es un importante
recurso de proteínas y la ancha angular de la hoja es considerada un a
de las más importantes enfermedades (Trutman et al., 1992). En Etiopia
la enfermedad causa pérdidas en el cultivo del 50-60% (Golato y
Meossi, 1972).
Inoculaciones experimentales en Brasil muestran pérdidas en el
rendimiento de 51-70% y pueden ocurrir cuando P. griseola y Ascochyta
sp. Construyen un complejo de la enfermedad (Mora et al., 1985).
Temperatura de 24°C y períodos alternados de alta y baja humedad
relativa causan epidemias desarrollando la enfermedad y ocasionando
severas pérdidas en el rendimiento en algunas regiones de Brasil
(Sartorato, 1988).
Mientras que la enfermedad es considerada de menor importancia en las
áreas de producción de frijol en el norte de USA, este puede, no obstante
puede causar epidemias cuando las condiciones son favorables para el
establecimiento y desarrollo de la enfermedad. En 1954, pérdidas del
50% o más fueron reportadas en diversas plantaciones de frijol en el
EPPO
NEPPO
Plaga
caurenten
aria
centro de Wisconsin, USA. La enfermedad no fue observada otra vez en
Wisconsin hasta 1973 cuando cuando las plantas en muchos campos de
frijol red kidney fueron establecidos en una estación recien infectada
(Hagedorn and Wade, 1974).
En las ciudades Europeas donde la enfermedad esta frecuentemente
establecida, esta fue de alguna importancia econçomica en Hungria y
Yugoslavia en 1970s (EPPO, 1997).
Phialophora
cinerescens
(Wollenw.)
J.H.F. Beyma
(=Verticillium
cinerescens)
Hospedantes primarios
Dianthus
caryophyllus
(carnation)
Hospederos alternos
Dianthus plumarius
Phoma lingam Hospedantes primarios
(Tode) Desm. Brassica , Brassica juncea var.
juncea
(Indian
mustard),
Brassica napus var. napus
(rape), Brassica nigra (black
mustard), Brassica oleracea
(cabbages,
cauliflowers),
Brassica oleracea var. botrytis
(cauliflower), Brassica oleracea
var.
capitata
(cabbage),
Brassica rapa ssp. oleifera
(turnip rape), Brassica rapa
subsp.
rapa
(turnip),
Brassicaceae
(cruciferous
crops)
Hospedantes silvestres
Alliaria , Compositae (Plants of
the daisy family), Gentianales ,
Iberis , Lobularia , Matthiola ,
Siguendo la primera descripción en Francia alrededor de los años 50’s, Transmisión
P. cinerescens se ha dispersado atraves de las áreas Europeas de por semilla
producción de clavel y es ahora considerada una de los más serios
patógenos de estos cultivos comercialmente para la producción de flores
bajo invernaderos.La enfermedad es de gran importancia económica en
muchas áreas de cultivo de clavel en Europa. Esta se ha dispersado a
otros continentes.En Colombia, esta es ahora reconodica como uno de
las 2 más importantes patógenos de clavel; el otro es Fusarium
oxysporum f.sp. dianthi Arbelaez, 1988a, 1993).
Los esquejes pueden albergar infecciones latentes, este hongo es
facilmente introducido dentro de nuevas áreas y simultáneamente se
establece este es extremadamente difícil de erradicar .Traspasa
relativamente el constante y favorable medio ambiente de los
invernaderos,el clavelse marchita por el gran potencial de rápida
dispersión, como resultado fuertes pérdidas.
L. maculans se encuenra a través del mundo y causa manchado de la Transmisión
hoja y de los vastagos en brassicas, nabo, rábano y cancro del tallo y por semilla
pierna negra de la semilla de aceite de canola (Brassica napus var.
oleifera or B. rapa).
Las infecciones en los tallos puede reducir la producción de semilla si la
infección llega a ser severa causa senecencia prematura o el
albergamiento del patógeno. En el pasado, la enfermedad ha causado
considerables pérdidas en los cultivos por la infección en hojas y tallos
(Henderson, 1918), y más recientemente en semilla de los cultivos de
brassicas (Humpherson-Jones, 1983).
La vasta mayoría de las pérdias del rendimiento causado por la
enfermedad han sido reportadas como las más importantes
economicamente y como los que más extensamente hospedan (semilla
de aceite de canola). Actulmente en Europa, Norte América y Australia,
devastaciones totales de los cultivos han ocurrido por la muerte de las
plántulas, aunque esto es raro. En cultivos densos,la pérdidas del
rendimientoson usualmente del 0-10% pero pueden frecuentemente
llegar de un 30-50% en campos indiviales (Gladders y Musa, 1979;
Gugel y Petrie, 1992; Hall et al., 1993; Barbetti y Khangura, 1999; Zhou
EPPO
EU
Europa
Turkia
America
Plaga
cuarenten
aria
confinada
bajo
control
oficial
Onagraceae
,
Raphanus
(radish), Sinapis arvensis (wild
mustard), Thlaspi arvense (field
pennycress)
et al., 1999).
Esto es una confusión para establecer la importancia del grupo B (L.
biglobosa) en la protección del cultivo.En Canada, el grupo B
generalmente no es considerado como un patógeno serio. La estructura
de la población de L. maculans en diferentes regiones, el clima,
cultivares resistentes y prácticas culturales influyen en el impacto
económico de la enfermedad.
El seguimiento de la tabla muestra el tipo de semilla para aceite de
canola cultivada en diferentes regiones y los típicos rendimientos como
considerablemente variables - en importante consideración para la
decisión sobre el impacto de L. maculans es significante y si esta
requiere la aplicación de fungicidas.
El tipo de semilla para aceite de canola y el tipico rendimiento en
diferentes regiones ( datos de 1999/2000 )
Phytomonas
staheli
McGhee
&
McGhee, 1979
Hospedantes primarios
Cocos
nucifera
(coconut),
Elaeis guineensis (African oil
palm)
En principio, algunos cocoteros y plantaciones de palma para aceite de Transmisión
coco Centro y Sudamérica estaban en riego de infección por P. staheli por semilla
dado que el vector plagar (hemiptera: Lincus sp.) está ampliamente
disperso en esta parte del mundo y puede ser fácilmente encontrado en
palmas nativas de varios géneros.(Couturier y Kahn, 1989, 1992).
En el pasado, la poda y la incineración de plantas infectadas fueron
medidas preferentemente en una curva de dispersion de la plaga.
Cientos y cientos de palemras infectadas fueron destruidas en Colombia
a lo largo de 1960-1970s (Lopez et al., 1975) y en Surinam (Slobbe,
1977; Slobbe et al., 1978). Las pérdidas económicas fueron enormes,
pero no hay datos disponibles.
Plasmopara
halstedii
(Farl.) Berl. &
De Toni
(= Plasmopara
helianthi
Hospedantes primarios
Helianthus annuus (sunflower)
Hospedantes silvestres
Xanthium strumarium (common
cocklebur)
La mayoría, si no es que todas, las plantas infectadas sistemicamente Transmisión
una a otra mueren prematuramente o dificilmente producen semilla por semilla
viable, estos factores no contribuyen al rendimiento. Además la
reducción la producción de semilla puede solo ser debido al damping-off
pre- o post-emergente causado por un mildiu muy severo en la plántulas
bajo condiciones muy favorables, los síntomas a menudo se disimulan
y/o se menosprecian. La severidad de la enfermedad puede variar
considerablemente de acuerdo a la región, edad, manejo del cultivo y el
cultivar(combinación de patotypos). La incidencia del mildiu velloso del
girasol en el campo puede variar en orcentajes de cerca del 50% o
alcanzar porcentajes arriva del o 95% (Sackston, 1981). En Europa,
despues de la primera aparición en 1941, la enfermedad incremento
rápidamente y para 1977 esta era la principal enfermedad en todos los
países productores de girasol (Sackston, 1981). Similarmente, el
incremento dramático de la incidencia de la enfermedad ocurrido en
EU
IAPSC
Plaga
cuarenten
aria
Norte América cuando el patógeno se disperso rápidamente en el norte
en muchos terrrenos (USA y Canada) (Sackston, 1981) y ahora este
contribuye considerablemente a la pérdidas de la producción (Gulya,
1996). As En otros continentes, la enfermedad esta dispersa en Sud
America, en Africa y puede establecerce en Australia.
Pleospora
betae (Berl.)
Nevodovsky
(=Pleospora
bjoerlingii)
Hospedantes primarios
Beta vulgaris var. saccharifera
(sugarbeet)
Hospedantes alternos
Spinacia oleracea (spinach)
Plum
pox Hospedantes primarios
potyvirus
Prunus armeniaca (apricot),
Prunus
domestica
(plum),
(=Sharka
Prunus dulcis (almond), Prunus
Virus)
persica (peach)
Hospedantes alternos
Juglans regia (walnut), Prunus
avium (sweet cherry), Prunus
besseyi , Prunus salicina
(Japanese
plum),
Prunus
spinosa (blackthorn), Prunus
tomentosa (Nanking cherry
tree)
Hospedantes silvestres
Prunus cerasifera (myrobalan
plum), Prunus glandulosa
P. betae es una de las principales causas de pudrición de remolacha Transmisión
azucarera en el almacen. Una investigación por parte de Estados por semilla
Unidos en 1974-75 se estimaron pérdidas apróximadamente de 8
millones de kg de azúcar en Red River Valley en el norte de Minnesota y
norte de Dakota y estas fueron atribuidas a la pudricion del producto en
el almacen (Whitney y Duffus, 1991). P. betae es de importancia
económica, es causante de marchitamiento de las plántulas e infección
de las hojas de remolacha azucarera, es parte de un complejo de
patógenos. Esta es considerada como el agente causal más importante
de marchitamiento de plantulas en el norte y oeste de Europa (Gates y
Hull, 1954).
Németh (1994), Kegler y Hartmann (1998) y Nemchinov et al. (1998a)
han revisado la importancia del virus plum pox en la producción de
grutos de hueso de Europa. La enfermedad del virus Sharka es
particularmente seria en las áreas de producción de frutas del centro y
este de Europa. Durante la decada pasada, este se ha dispersado
progresivamente en algunos países del Mediterráneo como Egypto
(Wetzel et al., 1991a; Mazyad et al. 1992), España (Llácer et al., 1985) y
Portugal (Louro y Monte Corvo, 1986). Esta se ha reportado también
para Chile (Herrera et al. 1998). La infeccion viral puede causar
considerables pérdidas, de cerca del 83-100% en variedades altamente
susceptibles (Kegler y Hartmann, 1998; Nemchinov et al. 1998a;
Waterworth y Hadidi, 1998). Las ciruelas Europeas pueden mostrar caída
prematura de frutos, mientras que las ciruelas japonesas y los duraznos
muestran manchas y los albaricoques muestran serias deformaciones. El
impacto de la enfermedada es, siempre, modulado por la gran extensión
de variabilidad en la suceptibilidad/tolerancia mostrada en los cultivares
individuales de especies de prunus hospederas. Los frutos de cereza
sufren caida prematura de fruro y las hojas se desarrollan con clorosis y
necrosis o deformaciones. (Nemchinov et al., 1998a).
Transmitido por un vector; un insecto; Aphis craccivora, A. spiraecola,
Brachycaudus helichrysi, B. cardui, Myzus persicae, M. varians, Myzus
(Phorodon)
humuli;
Aphididae.El
vector(s)
natural
principal:
Brachycaudus helichrysi , Myzus persicae, Myzus humuli (Phorodon).
No Transmitido por Aphophora, Edwardsonia plebeja, Hyalopterus pruni,
Lecanium corni, Lygus pratensis, Macrosteles laevis, Myzus cerasi,
Olianus quinquecostatus, Paratetranychus pilosus, Typhlocyba rosae.
Transmisión
por semilla
COSAVE
(VIDE)
EU
EPPO
IAPSC
Europa
Rusia
Turquia
Ukrania
Africa
E.E.U.A.
America
Argentina
Brazil
Canada
Paraguay
Uruguay
Oceania
Nva
Zelanda
Plaga
cuarenten
aria
Transmitido de una manera no-persistente. El virus se Transmisiónite
por inoculación mecánica; por injerto; no Transmitido por el contacto
entre las plantas; por la semilla (en albaricoques (Nemet y Kolber,
1983)); no Transmitido por el polen.
Distribución geográfica
Probablemente está distribuido alrededor del mundo. Ampliamente
disperso en la región Africana, Euroasiatica y en la región del
mediterráneo;
Albania, Austria, Bulgaria, Chipre, Checoslovaquia
antigua, Egipto, Francia, Alemania, Grecia, Hungría, Italia, Luxemburgo,
Polonia, Portugal, Rumania, España, Siria, Turquía, el Reino Unido, la
URSS antigua, la Yugoslavia antigua.
Chile
Plaga
cuarenten
aria
confinada
bajo
control
oficial
http://image.fs.uidaho.edu/vide/descr630.htm
Potato
T
trichovirus
(=Potato Virus
T)
Hospedantes
primariosSolanum tuberosum
(potato)
Hospedantes alternos
Oxalis tuberosa (oca), Ullucus
tuberosus (Ulluco)
No se sabe que el PVT tenga una importancia económica en papa o que
otros tubérculos Andeanos cultivados sean infectados por este.
El virus se Transmisiónite por inoculación mecánica; por injerto; no se
Transmisiónite por el contacto entre plantas; por semilla (10-72% en
solanaceas hospederas); por el polen a la semilla.
Ampliamente dispersa en la región de centro y Sudamérica; Bolivia y
Peru.
Transmisión EPPO
por semilla EU
(VIDE)
Europa
Rusia
America
Canada
http://image.fs.uidaho.edu/vide/descr648.htm
Oceania
New
Zealand
Plaga
cuarenten
aria
Prunus
necrotic
ringspot
ilarvirus
(=Rose Yellow
Mosaic Virus)
Hospedantes primarios
Cucumis sativus (cucumber),
Prunus cerasus (sour cherry),
Prunus
domestica
(plum),
Prunus dulcis (almond), Prunus
persica
(peach),
Rubus
(blackberry, raspberry)
Hospederos alternos
Corylus
avellana
(hazel),
Humulus lupulus (hop), Malus
domestica (apple), Prunus
(stone fruit), Prunus amygdalus
, Prunus armeniaca (apricot),
Prunus avium (sweet cherry),
El PNRSV puede afectar severavente la producción de durazanos Transmisión
reduciendo el número de brotes florales y la calidad y cantidad de la por semilla
producción con pérdidas por arriva del 95% en el cultivo .(Schmitt et al.,
1981; Lazarova-Topchiiska, 1984; Wood et al., 1997). Reducciones en la
producción y el rendimiento fueron observados en cerezas dulces y
agrias (Kajati and Szonyegi, 1966; Hilsendengen, 1999), y
aproxidamente pérdidas del 25% fueron reportadas en almendras
afectadas por el mosaico del almendro, un complejo de enfermedades en
conjunto con el PNRSV asociado (Martelli and Savino, 1997).
No es Transmitido por un vector. El virus es Transmitido por inoculación
mecánica; por injerto; no Transmitido por el contacto entre las plantas;
por semilla (arriva del 80% en Prunus pennsylvanica pero mucho
menos en melocotón); por el polen a la semilla y por el polen a la planta
polinizada.
http://image.fs.uidaho.edu/vide/descr658.htm
Transmisión
por semilla
(VIDE)
Prunus mahaleb , Prunus
serrulata (Japanese flowering
cherry), Rosa (roses)
Pseudomonas Hospedantes primarios
caricapapayae Carica papaya (papaw)
Robbs 1956
Pseudomonas
cichorii
(Swingle
1925) Stapp
1928
(=Pseudomon
as endiviae)
Hospedantes primarios
Apium graveolens (celery),
Chrysanthemum
(daisy),
Chrysanthemum coronarium ,
Chrysanthemum
morifolium
(chrysanthemum
(florists')),
Chrysanthemum vestitum ,
Cichorium endivia (endives),
Cichorium
endivia
subsp.
endivia (endives), Cichorium
endivia var. crispum (Winter
endive), Cichorium intybus
(chicory), Gerbera (Barbeton
daisy),
Gerbera
jamesonii
(African daisy), Hibiscus rosasinensis (China-rose), Lactuca
sativa (lettuce), Pelargonium
(pelargoniums),
Vigna
angularis (adzuki bean)
Hospedantes alternos
Abelmoschus
esculentus
(okra), Agaricus , Allium
sativum
(garlic),
Arracacia
xanthorrhiza , Barleria cristata ,
Brassica napus var. napus
(rape), Brassica oleracea var.
botrytis (cauliflower), Brassica
oleracea
var.
capitata
(cabbage), Brassica rapa ssp.
oleifera (turnip rape), Brassica
rapa subsp. chinensis (Chinese
cabbage), Brassica rapa subsp.
pekinensis (Pe-tsai), Calendula
officinalis
(Pot
marigold),
Bacteria transmitida por semilla.
(Fuente: Detección de patógenos, insectos y malezas de interés
cuarentenario en semillas.)
Bajo condiciones medioambientales favorables para el patógeno, la Transmisión
enfermedad provocada por P. cichorii causa daños severos en el por semilla
hospedero y puede resultar en brotes severos en el vivero o el campo
durante inviernos cálidos en Florida, USA, puede adelantar la dispersión
de la enfermedad afectando a cientos de huertos (Jones et al., 1983;
Chase y Brunk, 1984; Uddin y McCarter, 1996). La enfermedad causada
por P. cichorii puede aparecer esporádicamente con el paso del tiempo
y entonces causar ataques severos tanto como los ataques de la
mancha bacteriana de la lechuga en California (Grogan et al. 1977) y la
'pierna café del tallo del apio’ en Florida, USA (Pernezny et al., 1994).
Los ataques severos de la enfermedad en lechuga conlleva to pérdidas
del 100% se han venido reportando en California (Grogan et al., 1977),
Italia (Bazzi y Mazzucchi, 1979) y Portugal (Ferreira Pinto y Oliveira,
1993). En Italia y en Francia, P. cichorii es un problema recurrente en
endivia (Cichorium endivia) y lechuga (Allex y Rat 1990; D'Ascenzo et al.,
1997). En Florida, el “tallo café del crisantemo solo ocurre cada 5 0 6
años mientras que la mancha de la hoja ocurre anualmente (Pernezny et
al., 1994).
Transmisión
por semilla
Plaga
Cuarenten
aria
para
Argentina
Ausente
en el
País
Camellia , Capsicum (peppers),
Capsicum
annuum
(bell
pepper), Carthamus tinctorius
(safflower), Centaurea cyanus
(cornflower), Citrullus lanatus
(watermelon), Coffea arabica
(arabica coffee), Cyclamen ,
Daucus carota (carrot), Ficus
lyrata
,
Glycine
max
(soyabean), Hedera helix (ivy),
Helianthus
,
Hydrangea
(hydrangeas),
Lycopersicon
esculentum (tomato), Magnolia
grandiflora
(Southern
magnolia), Malus domestica
(apple), Mentha arvensis (Corn
mint),
Monstera
deliciosa
(ceriman), Musa (banana),
Nicotiana tabacum (tobacco),
Ocimum
basilicum
(basil),
Panax
ginseng
(Asiatic
ginseng), Papaver nudicaule
(Iceland
poppy),
Papaver
orientale
(Oriental
poppy),
Pernettya
mucronata
,
Phaseolus vulgaris (common
bean), Potentilla (Cinquefoil),
Primula polyantha , Prunus
persica (peach), Pyracantha
(Firethorn), Pyrus communis
(European pear), Ranunculus
acris
(Meadow
buttercup),
Rhododendron catawbiense ,
Scindapsus
,
Solanum
melongena
(aubergine),
Spathiphyllum
,
Triticum
aestivum (wheat), Viburnum ,
Xanthosoma
brasiliense
(Tahitian
spinach)Senecio
vulgaris (common groundsel)
En muchos reportes, la porción de plantas atacadas por P. corrugata es Transmisión
Pseudomonas Hospedantes primarios
por semilla
corrugata (ex Lycopersicon
esculentum de cerca del 5-10% (Lai et al., 1983; Caroll et al., 1992; Scortchini,
Scarlett et al. (tomato)
1997),pero en algunos cultivares este puede llegar arriva del 50%
1978) Roberts
&
Scarlett
Hospedantes alternos
1981
Capsicum
annuum
(bell
pepper),
Chrysanthemum
vestitum
,
Geranium
(cranesbill)
(Scarlett et al., 1978).Bajo condiciones favorables para la enfermedad,
pérdidas económica severas o la pérdida total del cultivo pueden ocurrir
en los campos cultivados (Fiori et al., 1983a; Bayaa y Warrak, 1990;
Alippi et al., 1993; Catara y Albanese, 1993; Sesto et al., 1996), pero
esto es raro. En atques adicionales las plantas se pueden recuperar de
la enfermedad y cultivarse normalmente. (Scarlett et al., 1978).
Esta enfermedad ha sido observada solamente una vez en pimiento y
aparecido en un área donde necrosis de la médula del tomate fue
endémico en ese año (Lopez et al., 1994).
Pseudomonas Hospedantes primarios
savastanoi pv.
Glycine max (soyabean)
glycinea
(=Pseudomon
as glycinea)
La enfermedad es común que se establezca en lugares fríos, en Transmisión
regiones templadas del mundo donde se cultiva soya.Los porcentajes por semilla
mínimos de pérdidas son del 18% en Korea y USA (Cho y Yoo, 1977;
Williams y Nyvall, 1980). La enfermedad no ha causado significantes
pérdidas económicas en más áreas del mundo donde hay resistencia (4
genes identificados) o plantas tolerantes. Kennedy y Alcorn (1980) han
dado detalles a cerca de las pérdidas de US $54.5 millones de dolares
para cada año 1975, 1976, y 1977 en Iowa, USA. Sin embargo, Aunque
la precisión de estas personalidades han sido cuestionadas.
Pseudomonas
marginalis pv.
marginalis
(Brown 1918)
Stevens 1925
(=Bacterium
marginale
Hospedantes primarios
Allium cepa (onion), Allium
sativum
(garlic),
Anemone
coronaria (Poppy anemone),
Apium graveolens (celery),
Beta vulgaris (beetroot), Beta
vulgaris var. cicla , Brassica
nigra (black mustard), Brassica
oleracea
(cabbages,
cauliflowers), Brassica oleracea
var.
botrytis
(cauliflower),
Brassica oleracea var. capitata
(cabbage),
Brassica
rapa
subsp. pekinensis (Pe-tsai),
Capsicum
annuum
(bell
pepper), Cichorium (chicory),
Cucumis sativus (cucumber),
Daucus
carota
(carrot),
Dianthus
caryophyllus
(carnation), Helianthus annuus
(sunflower),
Hyacinthus
orientalis (hyacinth), Lactuca
sativa (lettuce), Lactuca sativa
var. capitata , Lobelia erinus
Pérdidas en los cultivos por arriva del 40% debido a la pudrición de las Transmisión
cabezuelas en brocoli han sido reportadas para Canada por Hildebrand por semilla
(1989). Wimalajeewa et al. (1987) reporta un 35% de pérdidas en el
rendimiento del cultivo y arrava del 10% en tránsito y almacen por la
pudriciñon de cabezuelas en brocoli. Problemas serveros en el
rendimiento y almacenaje con cebollas han sido reportados para Nueva
Zelanda (Wright y Hale, 1992).
Surgieron pérdidas económicas por la reducción en el mercado del
cultivo, la presencia de la enfermedad en el almacen y la disminución del
rendimiento. No hay datos disponibles de la importancia económica de la
pudrición en el cultivo en campo y en el almacen causada por el grupo
de las bacterias fluorescentes del género pseudomonas, que incluyen a
P. marginalis pv. marginalis en el área Europa. En muchos casos esta
solo aparece como un patógeno oportunista.
(Dwarf
blue
lobelia),
Lycopersicon
esculentum
(tomato), Nicotiana tabacum
(tobacco), Nigella damascena
(Love-in-a-mist),
Onobrychis
viciifolia
(sainfoin),
Petroselinum crispum (parsley),
Phaseolus coccineus (runner
bean),
Phaseolus
vulgaris
(common bean), Philodendron
bipinnatifidum
,
Populus
(poplars), Prunus amygdalus ,
Prunus
persica
(peach),
Raphanus sativus (radish),
Rheum hybridum (rhubarb),
Solanum tuberosum (potato),
Ullucus tuberosus (Ulluco),
Zingiber officinale (ginger)
Hospederos alternos
Aconitum
napellus
,
Agapanthus africanus (African
blue lily), Allium chinense
(rakkyo), Ananas comosus
(pineapple),
Armoracia
rusticana
(horseradish),
Chrysanthemum vestitum ,
Dahlia pinnata , Eutrema
wasabi
(Wasabi),
Iris
germanica
(German
iris),
Papaver somniferum (Opium
poppy), Primula (Primrose),
Syngonium
,
Syngonium
podophyllum (Arrowhead vine)
Pseudomonas Hospedantes primarios
syringae pv. Apium graveolens (celery)
apii
(Jagger
1921) Young
et al. 1978
Los daños causados por este patógeno pueden presentarse
inmediatamente después de haber sembrado las semillas, y al
proporcionarle humedad para su germinación la bacteria se multiplica
rápidamente e invaden los tejidos, causando la muerte de las semillas y
por consiguiente reducen el porcentaje de germinación. Una vez que se
ha desarrollado la plántula, la bacteria puede infectarla y causarle
manchas y tizones en las hojas cotiledonarias o en las hojas verdaderas
y finalmente inducen la muerte de las plántulas.
Los daños también se pueden presentar en cualquier otra etapa del
Transmisión
por semilla
(EPPO)
desarrollo fenológico del hospedero.
Bacteria transmitida por semilla.
(Fuente: ficha técnica de EPPO)
El Dr. Gilbertson’s, en sus estudio sobre patógenos de semillas,
demostró que esta bacteria se trasmite por semilla. (Fuente:
Phytopathology 1999, Vol. 89, No. 1, pag. 28.
Pseudomonas Hospedantes primarios
syringae pv. Aconitum napellus , Consolida
delphinii
ambigua (rocket larkspur)
(Smith 1904)
Young et al.
1978
En 1924, de acuerdo a M.K. Bryan, la enfermedad due ampliamente
distribuida en Estados Unidos y particularmente desvasto a cultivos en la
costa este y en poco tiempo ha invadido todos los estados de de dicho
país. El autor sugiere control con una mezcla alcalina de caldo bordeles,
asimismo, el material enfermo deberá ser colectado y quemado (citado
por Stapp, 1961)
Bacteria transmitida por semilla.
(Fuente: Detección de patógenos, insectos y malezas de interés
cuarentenario en semillas.)
Transmisión
por semilla
Pseudomonas
syringae pv.
primulae (Ark
&
Gardner
1936) Young
et al. 1978
Hospedantes primarios
Primula (Primrose), Primula
auricula
(garden
auricula),
Primula
obconica
(Top
primrose), Primula polyantha
Las lesiones de hojas jóvenes son pequeñas y aguadas llegando a ser
irregularmente circulares y de color café en hojas de mayor edad y
rodeadas por halos amarillos. Éstos pueden coalecer y matar grandes
áreas u hojas completas (Elliott, 1951).
Bacteria transmitida por semilla.
(Fuente: Detección de patógenos, insectos y malezas de interés
cuarentenario en semillas.)
La India la regula y requiere que se declare a la semilla libre de esta
bacteria.
(Fuente: http:/agricoop.nic.in/gazette/1Amendment2006.doc)
Transmisión
por semilla
Pseudomonas
syringae pv.
lachrymans
(Smith
&
Bryan) Young
Dye & Wilkie
1978
(=Pseudomon
as
lachrymans)
Hospedantes primarios
Benincasa hispida (wax gourd),
Citrullus lanatus (watermelon),
Cucumis
auguria
(gerkin),
Cucumis
melo
(melon),
Cucumis sativus (cucumber),
Cucurbita moschata (pumpkin),
Cucurbitaceae
(cucurbits),
Luffa acutangula (angled luffa),
Sechium edule
La mancha angular de la hoja es la enfermedad bacteriana más Transmisión
ampliamente dispersa de las cucurbitáceas. Ésta ha sido reportada en un por semilla
amplio rango de cucúrbitaceas alrededor del mundo. Infecciones
tempranas resultan en reducciones significativas del rendimiento,
número y peso de los frutos. Se concluyó que las pérdidas en el cultivo
no están correlacionadas con el cambio en la expresión sexual de las
plantas, pero si está correlacionado con el porcentaje de flores
infectadas en pepinillo (Pohronezy et al., 1977).
Hospederos alternos
Cucurbita pepo (ornamental
gourd)
Pseudomonas
syringae pv.
maculicola
(McCulloch
1911) Young
et al. 1978
(=Pseudomon
as maculicola)
Hospedantes primarios
No existen evidencias de que
Brassica juncea var. juncea Transmisiónita por plántulas.
(Indian mustard), Brassica
nigra (black mustard), Brassica
oleracea
var.
botrytis
(cauliflower), Brassica oleracea
var.
capitata
(cabbage),
Brassica
oleracea
var.
gemmifera (Brussels sprouts),
Brassica
oleracea
var.
gongylodes (kohlrabi), Brassica
oleracea var. viridis (collards),
Brassica
rapa
subsp.
pekinensis (Pe-tsai), Brassica
rapa subsp. rapa (turnip),
Raphanus sativus (radish)
Pseudomonas
syringae pv.
pisi (Sackett
1916) Young
et al. 1978
(
=
Pseudomonas
pisi)
Hospedantes primarios
Lathyrus (Vetchling), Pisum
sativum (pea), Pisum sativum
var. arvense (Austrian winter
pea)
Hospedantes alternos
Lablab purpureus (hyacinth
bean), Lathyrus latifolius ,
Lathyrus odoratus (sweet pea),
Vicia
(vetch),
Vicia
benghalensis (purple vetch)
P. syringae pv. Maculicola se Transmisión
por semilla
Los daños a las plantas son causados por las manchas y líneas Transmisión
necróticas las cuales están presenten en las partes altas de los terrenos, por semilla
e infectan a las semilllas. La necrosis origina una reducción de la
superficie de asimilación, cuando ocurren infecciones severas en los
pédunculos, flores y vainas se marchitan y mueren.Se ha observado
damping-off en pre y post-emergencia .
Infecciones severas (alcanzan 100% de la incidencia de la enfermedad)
y pérdidas sustanciales en el cultivo han sido reportadas recientemente
solo para chicharo sembrado en invierno en el sureste de Francia, Nueva
Zelanda y SudÁfrica (Boelema, 1972; Taylor, 1972b), cuando graniza,
hay tomerntas de lluvia y cuando la escarcha prevalece. Esto ha sido
mostrado, sin embargo, otras bacterias patogenicas, Pseudomo nas
syringae pv. syringae, pueden estar involucradas en el desarrolla de la
enfermedad bajo esas condiciones (Taylor, 1972b). Ataques violentos o
epidemicos (Sin severas pérdidas en la cosecha) en Europa ocurren en
cultivares de chicharo sembrados
en primavera temprana bajo
condiciones de escarcha nocturna y alta humedad. Una marcad
influencia de esas condiciones húmedas fueron solo establecidas en
Australia. (Harris, 1964). Serios daños en alfalfa Vicia sativa fueron
reportados en Grecia en 1965 (Anon., 1965) y en Victoria, Australia,
70% de pérdidas en el rendimiento fueron observadas (Forbes y Bretag,
1991). Estas fueron notadas, sin embargo, otros patógenos como
EPPO
IAPSC
NEPPO
Europa
Turquia
Africa
Chile
Paraguay
Plaga
cuarenten
aria
Ascochyta y Mycosphaerella pinodes contribuyen a las pérdidas en
epidemias naturales del pv. pisi (Cruger, 1984). Cultivos individuales de
chicharo muestran 24-71% de reducción en la producción de semilla en
inoculaciones artificiales (Roberts, 1993). En campos experimentales, los
efectos del tizón del chicharo fueron difílies de estimar, particularmente
por el daño de los pájaros, pero ellos aparecen acompañados del rango
de variación anual para el cultivo de chicharo (Roberts et al., 1995).
Las pérdidas alrrededor de la reducción del mercado del cultivo, la
precencia de la enfermedad en vainas y semillas, posible reducción del
rendimiento y indirectamente a traves de la aplicaión de restricciones
fitosanitarias. La enfermedad como tal no se considera de gran
importancia económica en el área Europea. En el estado de f Nueva
York, USA, la enfermedad fue observada en 1979 despues de una
ausencia de 25 años (Hunter y Cigna, 1981)
Pseudomonas
syringae pv.
syringae
(=Pseudomon
as
syringae
pv. japonica)
Hospedantes primarios
Abelmoschus
esculentus
(okra),
Aconitum
(monkshoods),
Actinidia
chinensis
(Chinese
gooseberry),
Allium
cepa
(onion),
Allium
chinense
(rakkyo), Allium fistulosum
(Welsh onion), Allium porrum
(leek),
Alnus
glutinosa
(European alder), Aralia ,
Arbutus , Atriplex hortensis
(garden orache), Beta vulgaris
var. saccharifera (sugarbeet),
Betula pendula (common silver
birch), Brassica rapa subsp.
pekinensis (Pe-tsai), Calystegia
sepium
(great
bindweed),
Capsicum
annuum
(bell
pepper), Carthamus tinctorius
(safflower), Centaurea stoebe
subsp. micranthos (spotted
knapweed),
Chrysanthemum
indicum
(chrysanthemum),
Cinnamomum
camphora
(camphor
laurel),
Citrus
aurantium (sour orange), Citrus
limon (lemon), Citrus maxima
P. syringae pv. syringae está presente en muchas áreas, desde los Transmisión
trópicos hasta las zonas heladas (v.gr. Alaska). Ataca a los principales por semilla
cultivos, incluyendo frijol (Phaseolus vulgaris), caupí (garbanzo), frutas
de hueso, pomáceas, kiwis y sorgo. Las enfermadades derivadas de esta
bacteria son de gran importancia en muchos países. Por ejemplo, la
mancha café bacteriana se presenta en lugares donde se cultivan frijoles
y las enfermedades de cancros se encuentran en arboles frutales, y son
causadas por P. syringae pv. Syringae, estas están ampliamente
distribuidas y pueden ser devastadoras, causando grandes perdidas,
además de dedicar mayor tiempo y esfuerzo en proteger a las plantas.
Muchas sepas bacterianas correspondientes al grupo de P. syringae son
de núcleo-hielo activas: es decir, sirven como núcleos para la formación
de hielo. Por lo tanto causan daño por congelación a las plantas, a
temperaturas relativamente altas.
P. syringae pv. Syringae fue aislada de lesiones encontradas en plantas
de frijol rojo cultivadas en invernaderos con suelo estérilizado (Hoitink et
al., 1968). La transición de P. syringae pv. syringae a las semillas, bjo
condiciones de laboratorio fue demostrada en semillas de sorgo y fríjol
inoculadas con el patógeno (Gaudet and Kokko, 1986; Venette et al.,
1987). Otros trabajos sugieren que la semilla fue un importante medio de
dispersión para los patógenos, basados en un patrón de desarrollo de la
enfermedad en campo (Harrison and Freeman, 1965).
(pummelo),
Citrus
medica
(citron),
Citrus
reticulata
(mandarin), Citrus sinensis
(navel
orange),
Citrus x
paradisi (grapefruit), Coffea
arabica
(arabica
coffee),
Cucumis sativus (cucumber),
Cucurbita , Cucurbita maxima
(giant pumpkin), Cyamopsis
tetragonoloba
(clusterbean),
Cydonia oblonga (quince),
Cyphomandra betacea (tree
tomato), Dahlia pinnata ,
Daphne odora (Winter daphne),
Desmodium
(tick
clovers),
Diospyros kaki (persimmon),
Echinochloa
crus-galli
(barnyard grass), Erysimum
cheiri (wallflower), Forsythia
intermedia
(Golden
bells),
Fortunella (kumquats), Fragaria
vesca
(wild
strawberry),
Glycine
max
(soyabean),
Hibiscus
(rosemallows),
Hibiscus rosa-sinensis (Chinarose),
Hordeum
vulgare
(barley), Impatiens balsamina
(garden balsam), Juglans regia
(walnut), Lablab purpureus
(hyacinth bean), Lactuca sativa
(lettuce), Ligustrum ovalifolium
, Lycopersicon esculentum
(tomato), Magnolia , Magnolia
grandiflora
(Southern
magnolia), Malus domestica
(apple),
Mangifera
indica
(mango),
Matthiola
incana
(stock),
Medicago
sativa
(lucerne), Mucuna pruriens
(Buffalobean),
Musa
x
paradisiaca (plantain), Nerium
oleander (oleander), Nicotiana
tabacum
(tobacco),
Oryza
sativa (rice), Panicum (millets),
Panicum miliaceum (millet),
Passiflora edulis (passionfruit),
Pennisetum glaucum (pearl
millet), Pennisetum purpureum
(elephant
grass),
Persea
americana
(avocado),
Phaseolus coccineus (runner
bean), Phaseolus lunatus (lima
bean),
Phaseolus
vulgaris
(common bean), Philadelphus ,
Pinus radiata (radiata pine),
Piper nigrum (black pepper),
Pisum sativum (pea), Pisum
sativum var. arvense (Austrian
winter pea), Populus (poplars),
Populus balsamifera (balm of
Gilead), Populus balsamifera
subsp.
trichocarpa
(black
cottonwood), Populus nigra
(black poplar), Populus tremula
(aspen (European)), Prunus
amygdalus , Prunus armeniaca
(apricot), Prunus avium (sweet
cherry),
Prunus
cerasifera
(myrobalan
plum),
Prunus
cerasus (sour cherry), Prunus
domestica
(plum),
Prunus
laurocerasus (cherry laurel),
Prunus
mume
(Japanese
apricot tree), Prunus persica
(peach),
Prunus
salicina
(Japanese
plum),
Prunus
serrulata (Japanese flowering
cherry),
Pyrus
communis
(European
pear),
Quercus
agrifolia (California live oak),
Quercus wislizenii (Interior live
oak), Rhododendron (Azalea),
Rosa (roses), Rubus ursinus
(boysenberry), Salix (willow),
Sorghum bicolor (sorghum),
Sorghum halepense (Johnson
grass), Sorghum sudanense
(Sudan grass), Syringa vulgaris
(lilac), Trifolium alexandrinum
(Berseem clover), Trifolium
dubium
(yellow
suckling
clover), Trifolium hybridum
(Alsike
clover),
Trifolium
incarnatum (Crimson clover),
Trifolium
pratense
(purple
clover), Trifolium repens (white
clover), Trigonella foenumgraecum (fenugreek), Triticum
aestivum (wheat), Vaccinium
(blueberries), Vernicia fordii
(central China wood oil tree),
Vicia faba (broad bean), Vicia
villosa , Vigna angularis (adzuki
bean),
Vigna
unguiculata
(cowpea), Vitis , Vitis vinifera
(grapevine), Zea mays (maize)
Hospedantes secundarios
Chenopodium quinoa (quinoa)
Pseudomonas
syringae pv.
tagetis
(Hellmers
1955) Young
et al. 1978
Hospedantes primarios
Carthamus
tinctorius
(safflower), Cichorium endivia
(endives), Helianthus annuus
(sunflower),
Helianthus
tuberosus
(Jerusalem
artichoke),
Lactuca
sativa
(lettuce),
Tagetes
erecta
(African marigold), Tagetes
minuta
(stinking
Roger),
Tagetes
patula
(French
marigold),
Tragopogon
porrifolius
,
Xanthium
strumarium
(common
cocklebur), Zinnia elegans
(Zinnia)
Styer, et al, 1980, afirman que la bacteriosis de la mancha de la hoja de Transmisión
Tagetes spp.
Debe ser considerada como una enfermedad de por semilla
importancia potencial para la industria del almacigo de Estados Unidos.
Se ha demostrado la transmisión por semilla inoculada e infectada
naturalmente (Trimboli, et al, 1978; Ortiz y Fucikovsky, 1990)
Pseudomonas Hospedantes primarios
syringae pv. Lycopersicon
esculentum
tomato
(tomato)
(Okabe)
Young, Dye &
Wilkie
La Mancha o peca bacteriana es un significante recurso de pérdidas Transmisión
económicas en la industria del tomate. Las lesiones pueden producir por semilla
tomates inadecuados para el mercado de tomate en fresco. En tomates
para procesar, las lesiones
bastante profundas
pueden causar
considerables grados en la pérdida de calidad (Goode y Sasser, 1980).
La severidad de la peca bacteriana del tomate esta relativamente
condicionada a condiciones de agua en el campo. El desarrollo de la
enfermedad y dispersión solo se da a temperaturas entre 13 y 28°C y
alta humedad relativa cuando hay agua libre en las hojas. En el campo
las pérdidas en el rendimiento, varian de
75% de plantas infectadas en un estado de cultivo temprano con 5% de
plantas infectadas durante la temporada (Yunis et al., 1980).
En ataques severos de la enfermedad fueron observados en el trasplante
de tomate en plántulas comerciales de compañias del suroeste de
Turkia (Antalya) durante la primavera del 2002 y 2003. La incidencia de
la enfermedad fue más severa en el oeste de la región del mediterráneo
en la región de Turkia. La aparición de la enfermedad ocasiona
apróximadamente 20 y 25% de pérdidas en las plantulas
respectivamente. Por otra parte, en el 2003, la incidencia de la
enfermedad fue aproximadamente del
5% en 142 invernaderos
comerciales.La producción de
Tomato no fue afectada
significativament,los ataques severos no se presentaron en las plantas
de invernadero. (Basim et al., 2004).
Pseudomonas
viridiflava
( = Bacterium
viridiflavum)
Major hosts
Allium cepa (cebolla), Anethum
graveolens (eneldo), Apium
graveolens
(apio),
Apium
graveolens var. dulce (apio),
Brassica spp. , Capsicum
annuum (chile), Cucumis melo
(melon),
Cucumis
sativus
(pepino), Cucurbita maxima
(calabaza gigante), Hydrangea
(hidrangea),
Lycopersicon
esculentum (tomate)
Minor hosts
Actinidia chinensis (Chinese
gooseberry), Allium fistulosum
(Welsh
onion),
Brassica
oleracea var. botrytis (coliflor),
Brassica oleracea var. capitata
(repollo), Brassica oleracea
var.
gemmifera
(Brussels
sprouts), Calendula officinalis
(Pot
marigold),
Capsicum
frutescens (chilli), Carthamus
tinctorius
(safflower),
Chrysanthemum
indicum
(chrysanthemum),
Cichorium
endivia
(endivia),
Citrus
aurantium (sour orange), Citrus
macrophylla (alemow), Citrus
sinensis
(navel
orange),
Cyclamen
persicum
(cyclamens),
Eschscholzia
californica
,
Euphorbia
pulcherrima
(poinsettia),
Eutrema wasabi (Wasabi),
Forsythia suspensa , Glycine
max
(soyabean),
Lablab
purpureus (hyacinth bean),
Lotus corniculatus (bird's-foot
trefoil), Lupinus angustifolius
(lupin),
Medicago
sativa
(lucerne), Nicotiana rustica
(wild
tobacco),
Papaver
(poppies), Papaver nudicaule
(Iceland poppy), Passiflora
edulis (passionfruit), Pastinaca
sativa (parsnip), Petroselinum
crispum
(parsley),
Petunia
hybrida , Phaseolus coccineus
Impacto
P. viridiflava muy ocasionalmente puede causar daño significante a los
cultivos, aunque es comúnmente aislado de subpoblaciones durante las
investigaciones de patógenos más agresivos.
En febrero del 2003, en plantulas de melón en Turquía se observo una
enfermedad severa con necrosis bacterial en hojas. Primeramente se
observaron lesiones aguadas en los cotiledones de la semilla.
Subsecuentemente, pequeñas manchas café oscuro y rectangulares se
observaron sobre las hojas verdaderas de la planta en estados
avanzados de la enfermedad. La enfermedad se estimo en un 10% de
incidencia, algunas de las plantas enfermas finalmente murieron.
Mediante un análisis se identifico a la bacteria como Pseudomonas
viridiflava. Asimismo, se comprobó la patogenicidad de la bacteria en
plantulas de melón, inoculándose y reaislándose del hospedero e
induciendo los síntomas observados previamente. (Aysan, et al, 2003).
Hay otros documento que la reportan en sandía (Mirik, 2004), en kiwi
causa daños graves (Huang, 2004), cebolla (Gitaitis, 2004) y otros
hospederos.
P. viridiflava puede ser transportada como un contaminante en la
superficie de la semilla (Mariano and McCarter, 1992)
Transmisión
por semilla
Puccinia
asparagi
1805
Hospedantes primarios
DC. Asparagus
officinalis
(asparagus)
Hospedantes alternos
Allium cepa (onion), Asparagus
setaceus (Asparagus fern),
Asparagus verticillatus
Hospedantes silvestres
Asparagus asparagoides ,
Asparagus
maritimus
,
Asparagus officinalis subsp.
officinalis , Asparagus scaber
Raspberry
Ringspot
Nepovirus
Hospedantes primarios
Rubus idaeus cv. Norfolk Giant
(cv. Lloyd George es immune),
Hospederos alternos
Fragaria vesca
Narcissus pseudonarcissus
P. asparagi tiene una distribución mundial, donde el esparrago es Transmisión
cultivado (Waterston, 1965; Farr et al., 1989; Vakalounakis y Pavlou, por semilla
1999). En E.E.U.A. serios daños han sido reportados en el cultivo de
esparragos con una infestación el cultivo de hasta el 100% de plantas
infectadas (Kontaxis, 1977).
Impacto negativo en: animales y productos vegetales, y producción de
cultivos.
El virus es Transmitido por un nemátodo vector, Longidorus elongatus, L.
macrosoma; Dorylamidae. El Virus es Transmitido por inoculación
mecánica; por semilla, por polen a la semilla, por injerto,
http://image.fs.uidaho.edu/vide/descr669.htm
Transmisión EPPO
por semilla EU
(VIDE)
Europa
Turquia
Chile
E.E.U.A.
Plaga
Cuarenten
aria
Canada
Plaga
cuarenten
aria
Red Pepper
Alphacryptovir
us
Capsicum annuum,
C. frutescens
Primer reporte en Capsicum annuum, C. frutescens; desde Japón; por
Natsuaki et al. in Boccardo et al. (1983) and Milne and Natsuaki (1994).
El virus no se transmite por inoculación mecánica; transmitido por semilla
Transmisión
por semilla
(VIDE)
Rubus
Chinese
Seed-borne
Nepovirus
Rubus spp
Pues el Rubus Chinese Seed-borne nepovirus es probablemente un Transmisión
por semilla
nepovirus, es probable que se Transmita por un ematodo vector.
El virus es Transmitido por inoculación mecánica; transmitido por semilla.
Transmisión
por semilla
(VIDE)
Hospedantes primarios
Soybean
mosaic virus Glycine max (soyabean)
Solo 111 virus pueden infectar al cultivo de la soya de los cuales 35 han Transmisión
sido encontrados en soya de manera natural (Irwin y Schultz, 1981; por semilla
Gardner
&
Kendrick
(1921)
(Sin: Soybean
mosaic
poyivirus)
Demski y Kuhn, 1989) y en forma several de las cuales pueden atacar
infectando de manera mixta. El SMV es considerado uno de los virus
más significativos del mundo (Bos, 1972). Alusiones al impacto
económico directo del SMV son prevalecientes, pero incluso muy
dificilmente documentadas cuantitativamente, incluso en revisiones (Irwin
y Goodman, 1981; Irwin y Schultz, 1981), y estos son prácticamente no
disponibles en pérdidas financieras sugeridas para los agricultores. Esta
puede ser alta por Transmisiónisión por semilla y rapidamente
dispersada por afidos.La literatura incluye los efectos de los virus en
inoculaciones o plantas infectadas naturalmente singularmente o en
grupos, simplemente sugiere pérdidas potenciales, estas son, pérdidas
medias ocurridas en el cultivo y alta incidencia de la enfermedad. Para
entender mejor el daño que el SMV puede causar una de las primeras
listas de componetes de las pérdidas infringidas por el virus (1) y y
despues ver si existen otros para los posibles parámetros impuestos
para las pérdidas actualmente sustanciales en el campo (2). Pocas
indicaciones pueden ser obtenidas para la literatura a cerca de las
pérdidas actuales causadas por el virus (3) y finalmente, pérdidas
indirectas para los agricultores y la sociedad completa (4) más solo
pueden tomar en cuenta cuando se considera la importancia del virus
(Bos, 1982, 1999).
Sclerophthora
rayssiae var.
zeae
Las pérdidas pérdidas inducidas por esta enfermedad en un cultivo y Transmisión
área determinada varían en forma compleja. En general, si tres cuartas por semilla
partes o más del follage está afectado antes de la floración, entonces las
pérdididas serán totales y la formación de la mazorca se atenua
marcadamente o por completo. La reducción de la producción de grano
en campo varía desde un 20 a 90%. Las pérdidas de alrededor de 70%
ocurren solamente en cultivares altamente susceptibles y producidos en
condiciones favorables para la enfermedad (Payak, 1975). Perdidas en
producción de hasta 63% han sido registradas en el área de tarai en
Uttar Pradesh (Sharma et al., 1993).
McGregor (1978) estableció el parametro designado como el Impacto
Económico Esperado (IEE), el cual establecio las bases para la lista de
los 49 patógenos exóticos mejor ranqueados, esto de un total de 551
patógenos que poseén importancia significativa para la agricultura en los
Estados Unidos. S. rayssiae var. zeae fue ranqueada en el lugar 43 con
un IEE de US$ 53 millones, de acuerdo a los precios de 1978. El Mildiú
rayado café se desarrollo en semilleros cultivados en suelo esterlizado y
de semillas provenientes de plantas infectadas (Singh et al., 1968). Otros
intentos para desmostrar que S. rayssiae var. zeae se Transmisiónite por
semillas fueron infructuosos (Singh et al., 1970). El patógeno se
Transmisiónite mediante el viento y la lluvia (Singh and Renfro, 1971).
Hospedantes primarios
Strawberry
latent ringspot Apium graveolens (celery),
nepovirus
Asparagus
officinalis
(asparagus),
Fragaria
ananassa (strawberry), Lilium
(lily),
Narcissus
(daffodil),
Prunus armeniaca (apricot),
Prunus avium (sweet cherry),
Prunus
domestica
(plum),
Prunus
persica
(peach),
Rheum hybridum (rhubarb),
Ribes nigrum (blackcurrant),
Ribes rubrum (red currant),
Rubus fruticosus (blackberry),
Trifolium repens (white clover),
Vitis vinifera (grapevine)
Hospedantes alternos
Aesculus , Humulus lupulus
(hop),
Pastinaca
sativa
(parsnip)
Hospedantes silvestres
Capsella
bursa-pastoris
(shepherd's purse), Fragaria
vesca
(wild
strawberry),
Lamium amplexicaule (henbit
deadnettle), Stellaria media
(common chickweed), Urtica
dioica (stinging nettle)
SLRSV es reportado que infectan muchas otras especies de cultivos Transmisión
incluyendo apio, chabacano, cereza, Grosella (Ribes spp.), Espuela de por semilla
caballero o Delfinio, Gladiolo, uva, lúpulo, lili, Narciso, ojarazno o Adelfa,
olivo, perejil, chivíria, durazno, frambuesa,rubarbo, fresa y rosa.
En algunas plantas de especies cultivadas el virus induce severos
declinamientos en el vigor causando significativas pérdidas en la
productividad en ambos cuantitativa y cualitativa men (Taylor y Thomas,
1968; Walkey y Mitchell, 1969; Scotto La Massese et al., 1973; Murant y
Lister, 1987).
Hospedantes primarios
Arachis hypogaea (groundnut),
Begonia , Cicer arietinum
(chickpea), Citrullus lanatus
(watermelon), Citrus , Citrus
aurantiifolia (lime), Citrus limon
(lemon), Citrus sinensis (navel
orange), Citrus x paradisi
(grapefruit), Cucumis melo
(melon),
Cucumis
sativus
(cucumber), Cucurbita maxima
(giant pumpkin), Cucurbita
moschata (pumpkin), Cucurbita
Las pérdidas asociadas con este patógeno son muy difíciles de Transmisión
determinar como resultado de la crónica naturaleza de la enfermedad y por semilla
que no hay prácticas de control para la comparación de plantas enfermas
y plantas sanas. El patógeno es común en suelos donde cultivos
suceptibles son cultivados frecuentemente (Anderson y Welacky, 1988;
Meyer et al., 1989; Holtz y Weinhold, 1994; Rothrock, 1997). Para
infestaciones de campos de tabaco, se siguen aplicaciones con
(cloropicrin + 1,3-dicloropropano) fueron incrementadas un 18 a 33%
para cultivares con parcial resistencia y 100% para cultivars suceptibles,
las aplicaciones no incrementaron para los cultivares con completa
resistencia (Shew y Shoemaker, 1993). En algodón, y lino se incrementó
la producción a 160 kg o más se establecieron para eliminar las
poblaciones de C. elegans en la siguiente inundación de el verano
Thielaviopsis
basicola
(Berk.
&
Broome)
Ferraris
EU
Europa
Turquia
Plaga
Cuarenten
aria
Canada
Plaga
Cuarenten
aria
pepo
(ornamental
gourd), (Devay and Garber, 1997). Bodker et al. (1993) reporta que en el cultivo
Daucus
carota
(carrot), de chicharo en campos infestados con C. elegans fueron 19% más bajos
Euphorbia
pulcherrima que los campos que no tienen presente a este patógeno.
(poinsettia), Gerbera jamesonii
(African daisy), Glycine max
(soyabean),
Gossypium
(cotton), Ilex (Holly), Lagenaria
siceraria
(bottle
gourd),
Lathyrus odoratus (sweet pea),
Lens culinaris ssp. culinaris
(lentil), Lens spp. , Luffa
aegyptiaca (loofah), Lupinus
(lupins),
Lupinus
spp.
,
Medicago sativa (lucerne),
Momordica charantia (bitter
gourd), Nicotiana , Nicotiana
tabacum (tobacco), Phaseolus
(beans), Pisum sativum (pea),
Prunus (stone fruit), Prunus
avium (sweet cherry), Prunus
domestica (plum), Trifolium
(clovers), Trifolium spp. ,
Valerianella locusta (common
cornsalad), Vicia (vetch), Vicia
faba (broad bean), Vicia spp. ,
Vigna radiata (mung bean),
Vigna unguiculata (cowpea),
Viola (violet)
Hospedantes alternos
Abelmoschus
esculentus
(okra), Allium cepa (onion),
Antirrhinum
majus
(snapdragon),
Aquilegia
(columbines),
Aralia
,
Armoracia
rusticana
(horseradish), Aster , Bellis
perennis (common daisy), Beta
vulgaris
(beetroot),
Betula
pendula (common silver birch),
Brassica oleracea (cabbages,
cauliflowers), Brassica oleracea
var. botrytis subvar. cymosa
(broccoli), Brassica oleracea
var.
capitata
(cabbage),
Canavalia ensiformis (gotani
bean), Capsicum spp. , Carica
papaya
(papaw),
Catalpa
speciosa
(hardy
catalpa),
Chlorophytum
comosum
,
Cichorium
(chicory),
Coriandrum
sativum
(coriander), Coronilla varia
(crown vetch), Crossandra ,
Cyclamen
persicum
(cyclamens),
Cyperus
(flatsedge), Daphne , Digitalis
purpurea (foxglove), Dioscorea
(yam),
Dioscorea
japonica
(Japanese yam), Epipremnum
pinnatum
(Hunters-robe),
Eutrema wasabi (Wasabi),
Fuchsia hybrids , Geranium
(cranesbill),
Gomphrena
globosa (Globe amaranth),
Helianthus annuus (sunflower),
Helianthus
tuberosus
(Jerusalem artichoke), Hosta ,
Indigofera pseudotinctoria ,
Ipomoea
batatas
(sweet
potato),
Kalanchoe
blossfeldiana (Flaming katy),
Lablab purpureus (hyacinth
bean), Lactuca sativa (lettuce),
Lespedeza , Linaria (Toadflax),
Linum usitatissimum (flax),
Lychnis
,
Lycopersicon
esculentum (tomato), Matthiola
incana
(stock),
Medicago
denticulata
,
Melilotus
(melilots), Melilotus spp. ,
Mentha arvensis (Corn mint),
Mentha
arvensis
var.
piperascens (Japanese mint),
Mimosa
pudica
(sensitive
plant), Nasturtium officinale
(watercress),
Oenothera
,
Onobrychis spp. , Ornithopus
sativus (Bird's foot), Paeonia
lactiflora
(Chinese
peony),
Panax
ginseng
(Asiatic
ginseng), Panax quinquefolius
(American ginseng), Papaver
(poppies),
Pelargonium
(pelargoniums),
Peony
,
Petroselinum crispum (parsley),
Petunia hybrida , Phlox ,
Physalis (Groundcherry), Piper
nigrum (black pepper), Primula
sieboldii (Primrose), Robinia
(locust), Robinia pseudoacacia
(black
locust),
Saccharum
officinarum
(sugarcane),
Saintpaulia ionantha (African
violet),
Salvia
officinalis
(common
sage),
Senecio
(Groundsel), Sesamum indicum
(sesame), Sinningia speciosa
(gloxinia), Solanum melongena
(aubergine),
Solanum
tuberosum (potato), Syringa
vulgaris (lilac), Trigonella spp. ,
Ulmus americana (American
elm), Verbena hybrids , Vinca
major (Big periwinkle), Wisteria
floribunda (Japanese wisteria),
Zantedeschia aethiopica (Arum
lily)
Hospedantes silvestres
Acalypha
(Copperleaf),
Aeschynomene indica (Indian
jointvetch), Amaranthus (grain
amaranth), Astragalus sinicus ,
Atropa belladonna (deadly
nightshade),
Calystegia
,
Capsella
bursa-pastoris
(shepherd's purse), Cassia
(sennas), Chenopodium album
(fat hen), Convolvulus (morning
glory), Conyza canadensis
(Canadian fleabane), Cytisus
scoparius (broom), Datura ,
Datura
stramonium
(jimsonweed), Desmodium (tick
clovers), Equisetum arvense
(field
horsetail),
Erigeron
(Fleabane),
Euphorbia
(spurges), Galactia , Ipomoea
quamoclit
(Cupid's-flower),
Lamium amplexicaule (henbit
deadnettle), Lotus corniculatus
(bird's-foot trefoil), Lysimachia ,
Malva
(mallow),
Medicago
lupulina (black medick), Oxalis
(wood sorrels), Paphiopedilum
(lady's
slipper
orchid),
Petasites japonicus (creamy
butterbur),
Polygonum
(knotweed),
Portulaca
(Purslane), Stellaria media
(common
chickweed),
Strophostyles
helvola
,
Tephrosia , Ulex europaeus
(gorse)
Hospedantes primarios
Tilletia
barclayana
Oryza sativa (rice)
(Bref.) Sacc. &
Hospedantes alternos
P. Syd
Brachiaria
(signalgrass),
Digitaria , Panicum (millets),
Pennisetum glaucum (pearl
millet)
Un reciente estudio del estado del carbón de la espiga del arroz indica Transmisión
que hasta la fecha esta plaga es considerada como una enfermedad de por semilla
poca importancia, esta ha ganado importancia en los años recientes. El
patógeno está ampliamente disperso y causa pérdidas considerables
cuantitativas y cualitativas (Ram Singh et al., 1998). El carbón de la
espiga ha sido la principal enfermedad problema en Arkansas, USA,
ocasionando una extensa dispersión de la producción y pérdidas de la
calidad en algunos cultivares de arroz. La severidad en los campos
cultivados fueron fuertemente influenciados por una excesiva fertilización
con nitrogeno, especialmente en nuevos cultivares como Cypress y
LaGrue (Cartwright et al., 1996).
En estudios tempranamente en la enfermedad Padwick (1950) indica
que, como solo pocos granos en cada espiga son atacados y a menudo
solamente parcialmente, el daño causado por T. barclayana fue no
considerado como severo. Su (1933) reporta pérdidas de 2-5% en los
granos en 1 año en Myanmar. Reyes (1933) reporta que los
achaparramiento de plantas afectadas pueden incrementar las pérdidas.
Fulton (1908) observó serias decoloraciones de harina de arroz debido a
la presencia de esporas. Estas esporas se rastrearon en una muestra de
arroz con un contenido de 3-4% de granos afectados (Fulton, 1908). Más
recientemente, pérdidas altas en el rendimiento de 15% han sido
reportadas (Webster y Gunnell, 1992), pero este reporte es
insustentable.
Una comparación de rendimiento con grupos de 100 plantas sanas y
100 plantas enfermas de un campo en la India muestran una sustancial
pérdida en el rendimiento donde el carbón de la espiga fue removido de
plantas infectadas (Tyagi y Sharma, 1978).
Hospedantes primarios
Tilletia
controversa J. Agropyron
(wheatgrass),
G. Kühn
Hordeum
vulgare
(barley),
Secale cereale (rye), Triticum
(wheat), Triticum aestivum
(wheat)
Hospedantes alternos
Poaceae (grasses)
Elymus
Tobacco
ringspot virus
Hospedantes primarios
Capsicum (peppers), Capsicum
annuum (bell pepper), Citrullus
lanatus (watermelon), Cucumis
melo (melon), Cucumis sativus
(cucumber), Cucurbita pepo
El carbón del enanismo es una seria enfermedad, particularmente en Transmisión
trigo de invierno en altitudes relativamente altas. Este es muy dificil de por semilla
controlar porque la resistencia de las esporas como permanecen viables
en el suelo por muchos años y porque las aplicaciones de fungicidas a la
semilla no son efectivas.En Oregon, USA, en 1952-1953, el carbón del
enanismo dwarf bunt destruyo 50-90% de la semilla en campos de 1 año
de edad de Elymus hispidus Arrhenatherum elatius (Hordison, 1963). La
enfermedad es ocasionalmente severa en cultivares susceptibles de trigo
de invierno en el oeste de USA donde el trigo es cultivado bajo una
cubierta persistente de nieve. En 1983, Grey et al. (1986) examinó 552
tipos de trigo exportado para el Noroeste del Pacífico en USA con T.
controversa. De las pruebas muestreadas, 411 fueron encontrados
infectados, pero no contenian niveles grandes solo se encontró 1 g of
teliosporas/kg de semilla. En experimentos adicionales se estableció que
el carbón de la espiga solamente aparecen niveles de infección altos que
en los ejemplos descritos y solamente en condiciones que conducen a la
enfermedad (Grey et al., 1986). Ellos entonces concluyen que el riesgo
de Transmisiónisión de niveles altos de la enfermedad a nuevas áreas
por esos niveles de infestación mínimos. Desde Febrero de 1974, la
esportación de trigo provenientes del puerto del Pacífico para el
nororeste de China pararon las exportaciones debido a que China ha
prohibido la introducción del grano que transporte el carbón del
enanismo .
Mientras que el hongo que causa el carbón del enanismo solamente
afecta a una pequeña porción del total de la producción de trigo del
mundo, la prescencia de esta enfermedad ha tenido gran importancia
económica debido a la posibilidad de dispersión de la enfermedad en
áreas no infectadas (Mathre, 1996).
APPPC
La más importante enfermedad del tabaco es causada por el (TRSV) en Transmisión
soya. La enfermedad esta prevaleciente en la mitad del oeste de USA y por semilla
en Ontario, Canada. Entre 1943 y 1947, el rango de pérdidas del 25 a
100% fueron reportadas en la mitad del oeste de USA. Entre 1953 y
1957, el TRSV estuvo presente en pequeñas cantidades, pero en gran
número de campos sembrados (Dunleavy, 1957). Más recientemente en
E.E.U.A
COSAVE
Canada
Plaga
cuarenten
aria
EPPO
NEPPO
Europe
Turquia
Asia
China
Brasil
Chile
Paraguay
Oceania
New
Zealand
Plaga
Cuarenten
aria
Europe
Turquia
China
Africa
Tobacco
streak ilarvirus
(Sin: Tobacco
streak virus)
(ornamental gourd), Glycine
max (soyabean), Lycopersicon
esculentum (tomato), Nicotiana
tabacum (tobacco), Vaccinium
(blueberries)
Hospedantes alternos
Pelargonium
(pelargoniums),
Prunus (stone fruit), Rubus
(blackberry,
raspberry),
Solanum
melongena
(aubergine), Solanum nigrum
(black nightshade), Solanum
tuberosum
(potato),
Vitis
vinifera (grapevine)
invernaderos y en campos experimentales, el umbral dañino para la
combinación de efectos del bean pod mottle virus (BPMV) y el TRSV en
infecciones en soya fueron determinados para ser más de 20% pero
menos del 40% de la población, los efectos del TRSV son doblemente
severos a causa del BPMV (Horn et al., 1973). En una investigación
entre 1979 y 1981 en Ontario, la incidencia de la infección del TRSV en
soya fue muy baja (0.67%) (Tu, 1986). En la India, el TRSV causó
pérdida en semilla del 66% en plantas inóculadas de soya (Gopal, 1996).
Entre otros cultivos infecta dos por el TRSV, la enfermedad más
importante fué reportada en otros miembros de la fam.Fabaceae, y
miembros de la Fam. Solanaceae como el tabaco (en USA) y berenjenas
(en la India). En la India, la mancha anular simtoma causados por el
TRSV es comunes en cultivos alrrededor de Tirupati y Bangalore y
provocan pérdidas de 55-70% (Sastry y Nayudu, 1978). TRSV a veces
causa severas enfermedades en miembros de la Fam. Cucurbitaceae en
Texas y Wisconsin y en mora azul en la región del noroeste de USA.
Aunque el TRSV fue encontrado en el gén. Capsicum en México, este
fué reportado causando sólo pñerdidas menores (Campodonico y
Montelongo, 1988). En uvas para vino y árboles frutales, sin embargo
este ocasiona severos brotes inducidos por el TRSV (Uyemoto, 1975), la
importancia económica del virus es mucho mayor en otros cultivos.
Finalmente, numerosos síntomas por infecciones menores del TRSV
han sido reportados en partes del mundo de manera severa, la baja
incidencia fue debido a la importación de semillas contaminadas (por
ejemplo en hornamentales). Aunque estas no representan pérdidas
económicas. Aunque esto no representa pérdidas económicas en esas
plantas, estas si proveen oportunidades para la dispersión del virus en
otros cultivos más suceptibles donde los vectores son suceptibles.
(Reynolds y Teakle, 1976).
Hospedantes primaries
Asparagus
officinalis
(asparagus),
Capsicum
annuum (bell pepper), Cynara
scolymus (artichoke), Fragaria ,
Glycine
max
(soyabean),
Gossypium herbaceum (short
staple
cotton),
Helianthus
annuus (sunflower), Lactuca
sativa (lettuce), Lycopersicon
esculentum (tomato), Medicago
sativa
(lucerne),
Nicotiana
tabacum (tobacco), Phaseolus
El TSV esta presente en sureste de Brazil,y puede limitar le producción Transmisión
de soya en algunos años (Costa y Carvalho, 1961). Las epidemias de por semilla
soya, causadas por el TSV, fueron monitoreadas en 2 cultivares de soya
sembradas en 7 diferentes fechas en 1987-88 en Arapoti County,
Parana. Los altos niveles finales de la incidencia de la enfermedad
fueron de 60% en 1987 y 90% en 1988 (Almeida et al., 1994a). El “bud
blight” brasileño solo es una enfermedad seria en la provincia de Santa
Fe, Argentina (Laguna et al., 1988). Este está presente en USA
(Fagbenle y Ford, 1970; Kaiser et al., 1982; Sherwood y Jackson, 1985)
pero no tiene importancia económica soya porque hay variedades
resistentes y las condiciones no conducen al desarrollo de un problema.
Paraguay
Argentina
APPPC
EPPO
Canada
Plaga
cuarenten
aria
vulgaris (common bean), Pisum
sativum
(pea),
Rubus
occidentalis (black raspberry),
Solanum tuberosum (potato),
Trifolium
pratense
(purple
clover),
Vigna
unguiculata
(cowpea)
Hospedantes alternos
Carica
papaya
(papaw),
Chenopodium quinoa (quinoa),
Cicer arietinum (chickpea),
Cichorium endivia (endives),
Cucumis sativus (cucumber),
Cyphomandra betacea (tree
tomato), Dahlia , Eustoma
grandiflorum , Gladiolus hybrids
(sword lily), Melilotus alba ,
Rubus (blackberry, raspberry),
Rubus ursinus (boysenberry),
Trigonella
foenum-graecum
(fenugreek), Vigna angularis
(adzuki bean)
Hospedantes silvestres
Ageratum houstonianum (Blue
billygoatweed),
Ambrosia
psilostachya
(perennial
ragweed),
Arctium
minus
(common burdock), Clematis
vitalba (old man's beard),
Convolvulus
arvensis
(bindweed),
Plantago
(Plantain),
Raphanus
raphanistrum (wild radish),
Silybum marianum (variegated
thistle), Trifolium (clovers)
Tomato black Hospedantes primarios
ring nepovirus Allium cepa (onion), Allium
porrum
(leek),
Apium
graveolens
(celery),
Beta
vulgaris
var.
saccharifera
(sugarbeet), Brassica napus
En brotes naturales, por infección del TBRV se encuentran usualmente Transmisión
asociados con partes infectadas en el cultivo, reflejado por la distribución por semilla
del nemátodo vector. En plantas infectadas, los síntomas en las hojas, si
se presentan son a menudo dependiendo del virus aislado, genotipo de
la planta y condiciones medioambientales definidas (Murant et al., 1996).
En algunas especies de plantas el virus induce severa declianción en el
Transmisión E.E.U.A.
por semilla Europe
(VIDE)
Turkey
Canada
Plaga
Tomato
ringspot
nepovirus
var. napobrassica (rutabaga),
Brassica rapa subsp. rapa
(turnip), Capsicum (peppers),
Cucumis sativus (cucumber),
Cynara scolymus (artichoke),
Fragaria , Fragaria ananassa
(strawberry), Gladiolus hybrids
(sword lily), Lactuca sativa
(lettuce),
Lycopersicon
esculentum (tomato), Narcissus
(daffodil), Phaseolus vulgaris
(common
bean),
Prunus
persica
(peach),
Ribes
(currants), Rubus (blackberry,
raspberry),
Solanum
melongena
(aubergine),
Solanum tuberosum (potato),
Vitis vinifera (grapevine)
Hospedantes alternos
Forsythia intermedia (Golden
bells), Syringa vulgaris (lilac)
Hospedantes silvestres
Capsella
bursa-pastoris
(shepherd's
purse),
Herbaceous hosts , Lamium
amplexicaule
(henbit
deadnettle), Sambucus nigra
(elder)
vigor causando significantes pérdidas en la productividad ambas en
calidad y cantidad (Hollings, 1965; Murant, 1987; Murant y Lister, 1987;
Murant et al., 1996).
Transmitido por vector; un nematodo: Longidorus elongatus, L.
attenuatus; Dorylamidae. Transmisiónición del virus por inoculación
mecánica; Transmisiónisión a través del injerto; Transmisiónisión por
semilla (10-100% dependiendo del hospedante); Transmisiónisión por
polén a semilla, o por polén a una planta polinizada.
cuarenten
aria
Hospedantes primarios
Fragaria chiloensis (Chilean
strawberry), Malus domestica
(apple), Nicotiana tabacum
(tobacco),
Pelargonium
(pelargoniums), Prunus (stone
fruit),
Prunus
armeniaca
(apricot), Prunus avium (sweet
cherry), Prunus cerasus (sour
cherry), Prunus domestica
(plum), Prunus persica (peach),
Ribes
(currants),
Rubus
(blackberry, raspberry), Rubus
El ToRSV esta ampliamente disperso en especies de plantas perennes y Transmisión
causa severos declinamientos en la productividad tambien este es uno por semilla
de los virus más dañinos a las plantas en Norte América. El virus es
prevaleciente en dendaleon y otras malezas (Powell et al., 1982), y
puede ser diseminado a considerables distancias en semillas de
dendaleón infectadas (Rosenberger et al., 1983). Por otra parte , el
dendaleón y otras malezas perennes proveen reservorios para la
adquisición nemátodos vectores.
El ToRSV constituye un serio problema económico en áreas donde el
nemátodo vector está presente. Afortunadamente, pequeños y activos
virus dispersados y estan restringidos a ciertos tipos de suelo. En el
cultivo de frambuesas en la región del noroeste del Pacífico, por el
momento , relativamente pocos cultivos son infectados, pero donde el
APPPC
EU
APSC
EPPO
Europa
Turquia
China
Plaga
cuarenten
aria
America
Trogoderma
granarium
Everts
idaeus (raspberry), Vitis , Vitis
vinifera (grapevine)
Hospedantes alternos
Capsicum (peppers), Cornus
(Dogwood), Cucumis sativus
(cucumber),
Daphne
mezereum
(mezereon),
Fraxinus americana (white
ash), Gladiolus hybrids (sword
lily), Lilium (lily) Hydrangea
(hydrangeas),
Lotus
corniculatus (bird's-foot trefoil),
Lycopersicon
esculentum
(tomato),
Orchidaceae
(orchids), Rubus procerus ,
Sambucus
(Elderberry),
Vaccinium
corymbosum
(blueberry)
Hospedantes silvestres
Taraxacum officinale complex
(dandelion)
virus esta presente, las pérdidas en los cultivos son extensas (Converse
et al., 1970).
La reducción elk rendimiento de varios hospederos perennes dificultan el
acceso porque la respuesta a la infección varia de acuerdo al cultivar y a
la duración de la infección. En estudios del cultivo de frambuesa, entre
10 y 80% de estas los tallos fueron total o parcialmente muertas en 3
años después de que comenzo la infección. (Freeman y Stace-Smith,
1968). En otros estudios de cultivos, Converse y Stace-Smith (1971)
observaron que las frutas infectadas perdieron el 21% de peso que los
frutos normales y el rendimiento en plantas enfermas se redujo a más del
50%.
Argentina
Hospederos primarios
Arachis hypogaea (groundnut),
Cicer arietinum (chickpea),
Gossypium (cotton), Helianthus
annuus (sunflower), Hordeum
vulgare (barley), Oryza sativa
(rice),
Panicum
miliaceum
(millet), Pennisetum glaucum
(pearl
millet),
Sesamum
indicum (sesame), Sorghum
bicolor
(sorghum),
stored
products
(dried
stored
products), Triticum (wheat),
Triticum aestivum (wheat),
Vicia faba (broad bean)Zea
mays (maize)
Hospedantes alternos
Vigna unguiculata (cowpea)
T. granarium es una seria plaga de granos y semillas y en muchos Transmisión
países incluyendo USA, Australia, China, Kenya, Uganda y Tanzania, por semilla
hay regulaciones especificas cuarentenarias en las posibles
imporaciones. Poblaciones masivas del insecto se desarrollan en los
almacenes con granos y pueden incluso destruir totalmente lo
almacenado. Las infestaciones de T. granarium son bien conocidas a
gran escala en almacenes pero no aparecen documentados estos casos
de infectaciones en graneros.
Las pérdidas originadas por T. granarium, algunas veces en conjunción
con otras plagas de almacen, han sido reportadas en la literatura y se
han sumado.
En analisis de granos por ejemplo con contenido de infectación de 5 l
100% de T. granarium-imostraron que los niveles de proteína, gluten,
grasa cruda , reducen y no el contenido de azúcar, y los valores de
sedimentación decrecieron con incremento en el número de daños en el
grano. Los valores para la estabilidad de alcohol y ácidos grasos libres
incrementaron. La porción de semilla que germina varia cuando todos
los granos fueron dañados un 95% . El daño causado por la pérdida de
peso es de alrededor de 16.36% (Girish et al., 1975). Se ha demostrado
que solo T. granarium a disminuido el contenido de aceite mineral en
APPPC
Canada
Paraguay
Uruguay
Plaga
cuarenten
aria
EPPO
Plaga
cuarenten
aria
Confinada
bajo
control
oficial
CAN
COSAVE
CPPC
Africa
NEPPO
OIRSA
Europa
maíz (Jood et al., 1992).
Belarus
Rusia
Turquia
Ukraneia
China
Argentina
Brasil
Canadá
Chile
Paraguay
Uruguay
Oceania
Nueva
Zelanda
Plaga
cuarenten
aria
Turnip yellow Hospedantes primarios
mosaic
Brassica , Brassica rapa ssp.
tymovirus
oleifera (turnip rape), Brassica
rapa subsp. pekinensis (Petsai),
Raphanus
sativus
(radish), Sinapis alba (white
mustard)
Transmitido por un insecto vector; Phyllotreta y Psylloides y sus species Transmisión
(escarabajos pulga) y Phaedon cochleariae (el escarabajo mostaza) en por semilla
Europa y Pedilophorus sp en Australia; Coleoptera.
El virus se Transmisiónite por inoculación mecánica, por injerto, por
semilla (de Camelina sativa (Hein, 1984)); no se Transmisiónite por
polen.
Hospedantes primarios
Brassica napus var. napus
(rape), Capsicum annuum (bell
pepper), Fragaria ananassa
(strawberry),
Gossypium
(cotton),
Humulus
lupulus
(hop),
Lycopersicon
esculentum (tomato), Mentha
(mints), Olea europaea subsp.
europaea (olive), Solanum
melongena
(aubergine),
Solanum tuberosum (potato)
Hospedantes alternos
Abelmoschus
esculentus
V. dahliae afecta muchos cultivos muy importantes en el mundo y causa Transmisión
significantes pérdidas económicas en muchos países. La historia por semilla
muestra que V. dahliae es una especie potencial que puede sobrepasar
la resistencia de los cultivares resistentes, particularmente en algodón.
Esto ha solo mostrado que el patógeno puede atacar áreas nuevas y
causar serias pérdidas (Nachmias y Krikun, 1985).Para muchos cultivos
vulnerables seleccionados con resistencia a la marchitez en programas
de mejoramiento.
Verticillium
dahliae Kleb.
EPPO
EU
Europa
Turquia
Plagas
Cuarenten
arias
(okra),
Acer
palmatum
(Japanese
maple),
Acer
platanoides (Norway maple),
Acer
pseudoplatanus
(sycamore), Acer saccharinum
(soft maple), Albizia julibrissin
(silk tree)Ageratum , Ailanthus ,
Allium
sativum
(garlic),
Anthemis , Antirrhinum majus
(snapdragon),
Arachis
hypogaea (groundnut), Aralia
cordata (spikenard), Armoracia
rusticana
(horseradish),
Artemisia
absinthium
(Wormwood),
Aster
,
Astragalus adsurgens , Aucuba
japonica (Japanese aucuba),
Basella alba (Malabar spinach),
Benincasa hispida (wax gourd),
Berberis (barberries), Beta
vulgaris
var.
saccharifera
(sugarbeet), Brassica oleracea
(cabbages,
cauliflowers),
Brassica oleracea var. botrytis
(cauliflower), Brassica oleracea
var.
gemmifera
(Brussels
sprouts), Brassica rapa subsp.
chinensis (Chinese cabbage),
Callistephus chinensis (China
aster),
Carpobrutus
,
Carthamus
tinctorius
(safflower), Castanea sativa
(chestnut),
Chrysanthemum
indicum
(chrysanthemum),
Cicer arietinum (chickpea),
Cichorium (chicory), Cistus ,
Citrullus lanatus (watermelon),
Corchorus
olitorius
(jute),
Cotinus coggygria , Cucumis
(melons, cucuimbers, gerkins),
Cucumis
melo
(melon),
Cydonia oblonga (quince),
Cynara scolymus (artichoke),
Cytisus scoparius (broom),
Dahlia , Dahlia pinnata ,
Daphne
mezereum
(mezereon),
Euphorbia
pulcherrima
(poinsettia),
Fraxinus americana (white
ash), Fraxinus angustifolia
(narrow-leaved ash), Fraxinus
excelsior
(ash),
Fraxinus
pennsylvanica (downy ash),
Fuchsia
,
Geranium
(cranesbill), Gerbera jamesonii
(African daisy), Glycine max
(soyabean),
Hedera
(Ivy),
Helianthus annuus (sunflower),
Helichrysum
,
Hibiscus
cannabinus (kenaf), Hippophae
rhamnoides (sea buckthorn),
Hoheria populnea , Impatiens
balsamina (garden balsam),
Impatiens walleriana (Busylizzy), Koelreuteria , Lathyrus
(Vetchling), Laurus , Liatris
(gayfeathers),
Ligustrum
vulgare
(privet),
Linum
usitatissimum (flax), Lolium
(ryegrass),
Lonicera
(honeysuckles),
Lupinus
(lupins), Lupinus albus ,
Lupinus angustifolius (lupin),
Mahonia
,
Malvaviscus
arboreus , Mangifera indica
(mango), Manihot esculenta
(cassava), Matthiola incana
(stock),
Medicago
sativa
(lucerne), Nicotiana , Nicotiana
tabacum (tobacco), Osmanthus
,
Papaver
(poppies),
Peperomia obtusifolia , Persea
americana (avocado), Phlox ,
Pistacia vera (pistachio), Pisum
sativum
(pea),
Platycodon
grandiflorus
(Balloonflower),
Protea compacta , Prunus
(stone fruit), Prunus americana
(apricot), Prunus avium (sweet
cherry), Prunus domestica
(plum), Prunus dulcis (almond),
Prunus
persica
(peach),
Quercus petraea (durmast
oak), Quercus robur (common
oak),
Raphanus
sativus
(radish),
Ribes
nigrum
(blackcurrant),
Ribes
sanguineum
(Flowering
currant),
Ribes
uva-crispa
(gooseberry), Rosa (roses),
Rubus fruticosus (blackberry),
Rubus
idaeus
(raspberry),
Salvia
officinalis
(common
sage), Senecio (Groundsel),
Simmondsia
chinensis
,
Spinacia oleracea (spinach),
Tagetes , Theobroma cacao
(cocoa), Tilia (limes), Trifolium
alexandrinum
(Berseem
clover),
Ulmus
(elms),
Vaccinium myrtillus (blueberry),
Valeriana officinalis (common
valerian), Viburnum spp. , Vicia
faba (broad bean), Vigna
radiata (mung bean), Vitis
vinifera (grapevine)
Hospedantes silvestres
Amaranthus (grain amaranth),
Ambrosia (Ragweed), Atropa
belladonna
(deadly
nightshade), Capsella bursapastoris (shepherd's purse),
Chamomilla recutita (common
chamomile),
Chenopodium
album (fat hen), Datura ,
Echinops , Plantago lanceolata
(ribwort plantain), Portulaca
oleracea (purslane), Senecio
vulgaris (common groundsel),
Solanum
nigrum
(black
nightshade),
Solanum
sarrachoides , Taraxacum ,
Veronica persica (creeping
speedwell),
Xanthium
(Cocklebur)
Wheat streak Hospedantes primarios
mosaic
Avena
sativa
(oats),
rymovirus
Echinochloa
crus-galli
(barnyard grass), Hordeum
vulgare
(barley),
Panicum
capillare (tumble panicgrass),
Pennisetum glaucum (pearl
millet), Poaceae (grasses),
Setaria viridis (green foxtail),
Sorghum bicolor (sorghum),
Triticum aestivum (wheat), Zea
mays (maize)
El virus se Transmisiónite por un acaro vector; Aceria tulipae; Transmisión
Eriophyidae. El virus no se Transmisiónite congénitamente en la por semilla
progenie del vector; Transmitido por inoculación mecánica; no se
Transmisiónite por contacto entre plantas; por semilla (en bajos niveles).
Xanthomonas
axonopodis
pv.
alfalfae
(Riker et al.
1935) Vauterin
et al., 1995
(Sin:
Xanthomonas
alfalfae)
Hospedantes primarios
Glycine
max
(soyabean),
Lablab purpureus (hyacinth
bean),
Medicago
sativa
(lucerne), Medicago scutellata
(snail
medic),
Phaseolus
vulgaris (common bean), Pisum
sativum
(pea),
Trifolium
incarnatum (Crimson clover),
Trifolium
pratense
(purple
clover), Vicia benghalensis
(purple vetch), Vicia sativa
(common vetch), Vigna mungo
(black gram)
Sobre todo las pérdidas son menores por la enfermedad puede ser Transmisión
severa localmente (Stuteville y Sorensen, 1966; Stuteville y Erwin, 1990). por semilla
La mancha bacterial de la hoja de alfalfa puede afectar negativamente
de diferentes formas. El rendimiento del cultivo puede disminuir debido a
un severo achaparrimiento y pobres rendimientos. (Stuteville y Sorensen,
1966) Esta enfermedad puede disminuir la calidad del forraje de plantas
alfalfa con concentraciones de compuestos monofenolicos en las plantas
(Lenssen et al., 1992). Generalmente, X. axonopodis pv. alfalfae no
causa sobre todo grandes pérdidas, pero localmente la enfermedad
puede ser severa, especialmente en lugares cálidos con condiciones
medioambientales húmedas .(Graham et al., 1979).
Xanthomonas
arboricola pv.
juglandis
(Pierce 1901)
Vauterin et al.
1995
(=Xanthomon
as campestris
pv. juglandis)
Hospedantes primarios
En USA, el tizón bacteriano es considerado como la enfermedad más Transmisión
por semilla
Juglans (walnuts), Juglans severa para la producción de nogal. La enfermedad, cuando no es
hindsii , Juglans regia (walnut) controlada, puede causar pérdidas del 100% (Rudolph, 1933).
Hospedantes alternos
Juglans californica , Juglans
cinerea (butternut), Juglans
nigra (black walnut)
X. axonopodis pv. begoniae puede causar un serio impacto en la Transmisión
Xanthomonas Hospedantes primarios
por semilla
axonopodis
Begonia , Begonia tuberhybrida producción si no es controlada. Algunos agricultores decidieron no
pv. begoniae
continuar con la producción de begoñas como resultado de esto.
(Takimoto
1934) Vauterin
et al. 1995
begoniae
(=Xanthomon
as campestris
pv. begoniae)
Xanthomonas
axonopodis
pv.
malvacearum
(Smith 1901)
Vauterin et al.,
1995
(=Xanthomon
as campestris
pv.
malvacearum
Hospedantes primarios
Gossypium
(cotton),
Gossypium barbadense (Gallini
cotton), Gossypium herbaceum
(short
staple
cotton),
Gossypium hirsutum (Bourbon
cotton)
Hospedantes
alternosCeiba
pentandra (kapok)
Hospedantes silvestres
Jatropha curcas (Barbados nut)
Aunque el marchitamiento bacterial esta presente en toda la mayoria de Transmisión
áreas productoras de algodón del mundo, esta demerito su importancia por semilla
en 1990 debido a la extensa disponibilidad de variedades resistentes. Sin
embargo, esta posee una potencial importancia en la variabilidad del
patógeno y la aparición de nuevas razas. Reportes de Australia en 1980
indican que el marchitamiento bacterial incremento la importancia debido
a la proliferación de nuevas razas de X. axonopodis pv. malvacearum
(Anon., 1980). La enfermedad puede resurgir de forma importante si no
mantienen la variabilidad implementada en los programas, si el
tratamiento de la semilla es descontinuado, o si el cultivo de algodón se
sigue realizado.
El marchitamiento bacterial fue una de las mayores inconvenientes en la
producción de algodón cuando el cultivo fue introducido por primera vez
a África. El primer programa para resistencia fue iniciado en Sudan
(Knight, 1946). La enfermedad comenzo a prevalecer en USA durante
1950 (Schnathorst et al., 1960) y en la India en 1970 (Verma, 1986).
La severidad de la enfermedad puede estar influenciada por muchos
factores. Esta es una tendencia general para infecciones del tallo en
asociación con infecciones tempranas en hojas (Wickens y Logan, 1957).
Incrementos en los rangos de nitrogeno han sido asociados con un
decremento en la severidad de la enfermedad del tizon bacterial en
algodón (Rolfs, 1915; Presley y Bird, 1968). Los regimenes de
plantaciones pueden solo influencia la severidad. Arnold y Arnold (1960)
establecen que hubo infecciones del 8% cuando las semillas fueron
plantadas individualmente, los niveles de infección incrementaron 62%
cuando 6 semillas fueron plantadas en grupo. En Uganda, Jameson
(1950) reporta que por encima de la disponibilidad de lluvia en el primer
cuarto del año reduce la incidencia de la enfermedad. Èl mostro que la
enfermedad fue menos severa en áreas con 8-9 cm de precipitación
pluvial en Febrero. La incidencia de la enfermedad mostro un incremento
cuando la lluvia estuvo disponible en el tercer cuarto del año y fue más
severo en áreas con 12 cm o más en Agosto. Jameson y Thomas (1952)
solo consideran los efectos de la distribución de la lluvia en las
plantaciones es un factor importante en la severidad de la enfermedad.
Hospedantes primarios
Lactuca
sativa
(lettuce),
Syngonium,
Syngonium
podophyllum (Arrowhead vine)
La bacteriosis de la lechuga (Bacterial leaf spot), causado por
Xanthomonas campestris pv. vitians (Brown) Dye, es un patógeno
importante de la lechuga (Lactuca sativa L.) de distribución mundial.
Desde 1995, brotes serios de esta enfermedad se han presentado en
cultivares de lechuga en Ohio (16). La lechuga presenta dos tipos de
síntomas: (i) manchas necróticas localizadas dispersas en la superficie
de las hojas; e (ii) Infección sistémica comenzando con un color café
obscuro, y acuoso a lo largo del margen de las hojas que se expanden
hacia las venas y resulta en lesiones en forma de V o muerte regresiva
(16). X. campestris pv. vitians strains también causan manchas
necróticas en chile (Capsicum annuum L.) y tomate (Lycopersicon
esculentum Mill.) (17). (http://www.apsnet.org/phyto/pdfs/2002/102101R.pdf)
Las investigaciones de la epidemia de este organismo son limitadas. El
primer brote de esta enfermedad fue en 1918 originado de semilla
infestada de lotes comerciales (Ohata et al. 1982). Sin embargo, el
organismo no fue detectado en los lotes de semilla cuando se realizaron
las pruebas de diagnóstico. Otros estudios subsecuentemente han
demostrado que la bacteria puede ser transmitida por semilla infectada
(Ohata et al. 1982; Pernezny et al. 2001; Umesh et al. 1996). WellmanDesbians (1999) estudio la habilidad de X. c. pv. vitians para diseminarse
dentro de los invernaderos. Sembrando semilla infectada que resultó en
plantas infectadas, lo cual origino la diseminación del patógeno dentro
del invernadero vía irrigación aérea. (Wellman-Desbians 1999). Un
menor numero de semillas infectadas permite enfermar a muchos
transplantes y puede significar que el patógeno cause una epidemia
significante en campo incluso cuando los rangos de transmisión por
semilla
sean
bajos
(Penny
Eleanor
Robinson,
2003).
(http://etd.fcla.edu/UF/UFE0002852/robinson_p.pdf)
Otros estudios subsecuentemente han demostrado que la bacteria puede
ser transmitida por semilla infectada (Ohata et al. 1982; Pernezny et al.
2001;
Umesh
et
al.
1996)
(http://etd.fcla.edu/UF/UFE0002852/robinson_p.pdf)
Transmisión
por semilla
Xanthomonas Hospedantes primarios
campestris pv. Citrullus lanatus (watermelon),
cucurbitae
Cucumis
melo
(melon),
(Bryan 1926)
La bacteriosis de las cucurbitáceas (Bacterial leaf spots) es causado por
Pseudomonas syringae pv. lachramans, and Xanthomonas campestris
pv. cucurbitae. Las perdidas varían. Su presencia es esporádica. La
presencia y perdidas subsecuentes dependen del inoculo inicial,
Transmisión
por semilla
Xanthomonas
axonopodis
pv.
vitians
(Brown 1918)
Vauterin et al.
1995
(
=
Xanthomonas
vitians)
Dye 1978
Cucumis sativus (cucumber),
Cucurbita , Cucurbita maxima
(giant pumpkin), Cucurbita
moschata (pumpkin)
asociado con la semilla o con el suelo donde la enfermedad se presento
en años pasados. Una vez presente, la severidad de la enfermedad
dependerá de los síntomas iniciales, y de las condiciones ambientales
subsecuentes. La diseminación y desarrollo de la enfermedad es
promovido por el salpique del agua de lluvia y el sistema de riego aéreo.
Las perdidas del cultivo atribuidas a la bacterial leaf spots en
Pennsylvania
se
estiman
alrededor
de
0.5%.
((http://www.ipmcenters.org/cropprofiles/docs/papumpkins.html)
Se transmite en la superficie de la semilla (R. S. Lyon and R. M. Riedel
Plant
Pathology
Dept.,
Ohio
State
Univ.,
Columbus, OH 43210 (http://vegnet.osu.edu/library/librimg/gourd.htm
Xanthomonas
campestris pv.
campestris
(Pammel
1895) Dowson
1939
(=Xanthomon
as campestris)
Hospedantes primarios
Brassica juncea var. juncea
(Indian mustard), Brassica
napus
var.
napobrassica
(rutabaga), Brassica oleracea
var. alboglabra (Chinese kale),
Brassica oleracea var. botrytis
(cauliflower), Brassica oleracea
var.
capitata
(cabbage),
Brassica
oleracea
var.
gongylodes (kohlrabi), Brassica
oleracea var. sabauda (Savoy
cabbage), Brassica oleracea
var. viridis (collards), Brassica
rapa subsp. chinensis (Chinese
cabbage), Brassica rapa subsp.
pekinensis (Pe-tsai), Brassica
rapa subsp. rapa (turnip),
Erysimum cheiri (wallflower),
Matthiola
incana
(stock),
Raphanus sativus (radish)
Hospedantes silvestres
Capsella
bursa-pastoris
(shepherd's purse), Raphanus
raphanistrum
(wild
radish)
Brassica napus var. napus
(rape), Brassica nigra (black
mustard), Brassica oleracea
var.
gemmifera
(Brussels
sprouts), Brassica rapa ssp.
oleifera (turnip rape), Crambe ,
Lepidium
sativum
(garden
cress), Lepidium virginicum
(Virginian
peppercress),
Sinapis arvensis (wild mustard)
La pudrición negra es considera la enfermedad más importante de las Transmisión
cruciferas en el mundo. La enfermedad se conoce que existe en las por semilla
costas cálidas del norte de Europa y Norteamérica pero fue de vez en
cuando un problema desde 1990. Esta posee un potencial daño para los
cultivos y es considerada de poca importancia en Nueva Zelanda, y
partes de Australia.En muchas regiones del centro y este de Europa,
Asia Central (Kazakhstan), China, regiones tropicales y subtropicales de
Asia, Africa y Sudamérica cuando las brasitas son cultivadas
comúnmente y cultivadas sin rotación de cultivos, y la pudrición negra
siempre está presente. La producción de semillas en estas regiones esta
comúnmente asociada con altos niveles de Transmisiónisión por semilla
(Williams, 1980). Así mismo, el desarrollo visual de la pudrición negra es
indetectable, puede incrementar considerables daños por la pudrición
causada por Pectobacterium caratovorum (Erwinia carotovora),
Pseudomonas spp. y otros patógenos oportunistas (Djalilov et al., 1989).
Xanthomonas
axonopodis
pv.
phaseoli
(Smith 1897)
Vauterin et al.
1995
El marchitamiento comunmente puede causar significantes pérdidas en Transmisión
frijol en el trópico y el subtrópico y en climas templados. Este tiene una por semilla
amplia distribución, capacidad de reducir el rendimiento y dificultad de
control y además que utiliza semillas como medida de supervivencia y
dispersión para X. axonopodis pv. phaseoli una de los patógenos más
importe que afecta al cultivo del frijol en el mundo (Irigoyen and
Garbagnoli, 1997).
Xanthomonas
hortorum pv.
carotae
(Kendrick
1934) Vauterin
et al. 1995
(=Xanthomon
as campestris
pv. carotae)
Hospedantes primarios
Las perdidas en el rendimiento pueden ocurrirz en el cultivo de zanahoria Transmisión
por semilla
Coriandrum
sativum con una incidencia extremadamente alta de la enfermedad. Sin embargo,
(coriander), Daucus carota en general, el impacto económico de la enfermedad es mínimo y es más
importante para la calidad de la semilla.
(carrot)
Xanthomonas
oryzae
pv.
oryzae
(Ishiyama
1922) Swings
et al. 1990
(=Xanthomon
as campestris
pv. oryzae
Hospedantes primarios
Leptochloa chinensis (Chinese
sprangletop), Oryza sativa
(rice)
Hospedantes alternos
Poaceae (grasses)
Hospedantes silvestres
Cenchrus ciliaris (buffelgrass),
Cynodon dactylon (Bermuda
grass), Cyperaceae (Sedges),
Cyperus
difformis
(smallflowered nutsedge), Cyperus
Hospedantes primarios
Calopogonium
,
Lupinus
polyphyllus (Perennial lupine),
Phaseolus (beans), Phaseolus
coccineus
(runner
bean),
Phaseolus lathyroides (Phasey
bean),
Phaseolus
vulgaris
(common
bean),
Pisum
sativum
(Sin:
Xanthomonas (pea), Vigna aconitifolia (moth
campestris pv. beans), Vigna umbellata (Ricebean)
phaseoli)
Hospedantes alternos
Lablab purpureus (hyacinth
bean), Phaseolus lunatus (lima
bean), Pueraria , Strophostyles
helvola , Vigna mungo (black
gram), Vigna radiata (mung
bean),
Vigna
unguiculata
(cowpea)
El tizón de la hoja causado por esta bacteria es la enfermedad más Transmisión
dañina en arroz en el sur y sureste de Asia y Japón, particularmente por semilla
desde la introducción de variedades chaparras de alta producción. En
Japón, existen datos disponibles de que 400,000 has pueden ser
afectadas anualmente, con pérdidas del 20-30% y cerca del 50%. Sin
embargo en regiones tropicales, cuando el tizón bacteriano de la hoja
está presente, las pérdidas son sin embargo altas. Las infecciones
severas resultan en el desarrollo débil de los granos, los granos
perforados y deteriorados y composición nutricional y química (Ou,
1985). En Africa, llas pérdidas son del 2.7-41% en el rendimiento del
grano han sido determinadas (Awoderu et al., 1991).
COSAVE
CPPC
EPPO
EU
IAPSC
NEPPO
Europa
Rusia
Turquia
Africa
rotundus (purple nutsedge),
Echinochloa
crus-galli
(barnyard
grass),
Leersia
hexandra (southern cut grass),
Leersia
oryzoides
(Rice
cutgrass), Oryza (rice (generic
level)), Panicum maximum
(Guinea
grass),
Paspalum
scrobiculatum
(ricegrass
paspalum), Urochloa mutica
(tall panicum), Zizania aquatica
(annual
wildrice),
Zizania
palustris , Zoysia japonica
(zoysiagrass)
Xanthomonas
vesicatoria
(Doidge)
Dowson 1939
(=
Xanthomonas
campestris pv.
vesicatoria)
Hospedantes primarios
Capsicum
annuum
(bell
pepper),
Lycopersicon
esculentum (tomato)
Minor hosts
Capsicum
(peppers),
Lycopersicon
Argentina
Brasil
Chile
Paraguay
Uruguay
Plagas
cuarenten
arias
En Europa, X. vesicatoria esta calalogada en la lista cuarenteda A2 Transmisión
(Ravnikar et al., 2001). La mancha bacterian se desarrolla en semilleros por semilla
y en plantas maduras. En los semilleros, las infecciones pueden causar
defoliaciones severas. En plantas más viejas, las machas se presentan
en hojas, tallos y fruitos. Además de la mancha bacteriana, el tomate
también puede ser afectado por otras dos bacterias, las cuales son
imposibles de distinguir a través de los síntomas: Clavibacter
michiganensis pv. michiganensis y Pseudomonas syringae pv. tomato.
La bacteria persiste de una temporada a otra en los desechos or en
malezas hospedantes. Los métodos de control más eficientes son el uso
de semillas sanas, tratamiento de calor o esterilización química de la
semilla, además del uso de cultivos resistentes.
X. vesicatoria se ha reportado en tomate y semilla de pimiento, Gardner
and Kendrick, 1921, 1923; Bashan et al., 1982; Jones et al., 1986; Sijam
et al., 1991). La incidencia en tomate fue de hasta 60%, mientras que en
pimiento de 5% (Bashan et al., 1982).
Pohronezny y Volin (1983) notan significativas pérdidas en el
rendimiento, especialmente en frutos grandes por infecciones tempranas
por la mancha bacterial. La producción solo ha sido afectad por la
mancha bacterial directamente en el fruto.
EPPO
EU
Europa
Turquia
CONCLUSIONES

La evaluación permitió definir 109 especies como plagas cuarentenarias asociadas a la vía de importación. Todas estas
plagas cuentan con un sustento científico que evidencia la asociación biológica y por ende su posible transmisión por
semilla. Asimismo, se reporta el impacto económico que tienen en los lugares donde se encuentran presentes, lo cual es
un indicativo del impacto económico potencial que se tendría como consecuencia de su posible introducción a México; lo
anterior aunado a las diferentes especies que pueden ser afectadas por este grupo de plagas. Es importante señalar que
algunas de estas especies son reglamentadas por otras organizaciones nacionales de protección fitosanitaria.

Mediante la evaluación se obtuvo información reciente en la cual se observa que aunque las siguientes 3 plagas son
consideradas como cuarentenarias y con reportes de impacto económico en los lugares donde están presentes, éstas no
están asociadas a la vía de importación y por ende no son transmitidas por semilla; por lo cual fueron eliminadas del
anteproyecto de norma oficial mexicana:
Coleosporium tussilaginis fsp. campanulae-trachel
Phytophthora cryptogea
Mycosphaerella areola

Mediante la evaluación se obtuvo información de las siguientes 3 plagas cuarentenarias, en la cual el país de origen ha
documentado un cambio en su estatus fitosanitario, reportándola ausente de su territorio, por lo cual, a pesar de que están
asociadas a la vía de importación, éstas fueron eliminadas de las especies reguladas de dichos países, en el anteproyecto
de norma oficial mexicana:
Peronosclerospora philippinensis: No repotado en Asutralia
Wheat Streak Mosaic Rymovirus: No repotado en Francia
Fusarium oxysporum f. sp. radicis-lycopersici: No repotado en Francia

Mediante la evaluación se obtuvo información reciente en la cual no se reportan las siguientes 4 plagas cuarentenarias
como asociadas a algunos hospederos, por lo que se eliminaron de los productos en los cuales se estaban regulando en el
anteproyecto de norma oficial mexicana:
Ditylenchus dipsaci no es plaga del betabel
Tomato black ring nepovirus no es plaga de la calabaza
Tomato Ringspot Nepovirus no es plaga de la calabaza
Xanthomonas axonopodis pv. begoniae no es plaga de la Freesia
REFERENCIAS
Aysan, Y. Mirik, M., Ala, A., Sahin, F. y Cinar O. 2003. Firs report of Pseudomonas viridiflava on melon in Turkey. Plant Pathology.
Vol. 52, No. 6.
CABI, 2005 Crop Protection Compendium. Ed. CAB International. Wallingford, Oxon, United Kingdom.
Mirik, M., Aysan, Y., Cetinkaya-Yildiz, R., Sahin, F. y Saygili, H. 2004. Watermelonas a new host of Pseudomonas viridiflava ,
causal agent of leaf and stem necrosis, discovered in Turkey. Rewiew of Plant Pathology. Vol. 83 No. 11.
Huang, H.and Bovo, M. 2004. Effectiveness of copper compounds in the control of bacterial disease of Kiwifruit plants. Rewiew of
Plant Pathology. Vol. 83 No. 1.
Gitaitis, R., Sanders, F., Diaz-Perez, J. and Walcott, R. 2004. Integrated management of bacterial streak and bulb rot of onion.
Rewiew of Plant Pathology. Vol. 83 No. 6.
Trimboli, D., Fahy, P. and Kenneth, F. 1978. Apical Chlorosis and leaf spot of Tagetes spp. Caused by Pseudomonas tagetis
Hellmers. Australian Journal of Agricultural Research. Vol. 29 No. 4.
Ortiz, M. y Fucikovsky, Z. 1990. Bacteriosis del Cempoalxochitl (Tagetes spp.). Chapingo. Año XV Nos. 67-68.
Styer, D., Worf, G., and Durbin R. 1980. Occurrence in the United States of a marigold leaf spot incited by Pseudomonas tagetis.
Plant Disease. Vol. 64 No. 1.
Stapp, C. 1961. Bacterial plant pathogens. Oxford University Press, Amen House, London E.C. 4, 292 pags.
Elliott, C. 1951. Manual of bacterial plant pathogens. Second Edition. Chronica Botanica Company.
VIDE: Plant Viruses Online: Descriptions and Lists from the VIDE Database