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LABORATORIO DE GENETICA: SEMESTRE II 2009
CRONOGRAMA UNIDAD I Y II
SEMANA 1: SEPT 22- Organización. Asignación de seminarios. Biología de
Drosophila melanogaster, introducción, manejo, cultivo y ♀s
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SEMANA 2: SEPT 29OCT 01
SEMANA 3: OCT 06OCT 08
SEMANA 4: OCT 1315
SEMANA 5: OCT 2022
SEMANA 6: OCT 2729
SEMANA 7: NOV 0305
vírgenes. Cepas silvestres y mutantes Fenotipo, genotipo y
nomenclatura genética. TRABAJO PRÁCTICO: manejo de
Drosophila, morfología, ♀, ♂ y comparación entre mutantes y
normal.
EXAMEN PREVIO. Mitosis, meiosis, segregación
independiente y la excepción, politenia. Leyes de Mendel,
interacciones alélicas y proporciones genotípicas-fenotípicas.
TRABAJO
PRÁCTICO:
manejo
de
Drosophila
melanogaster.
EXAMEN PREVIO. Interacciones no alélicas. TRABAJO
PRÁCTICO: inicio de los cruces, extracción de ♀s vírgenes.
SEMINARIO: El trabajo de Mendel y sus repercusiones.
EXAMEN PREVIO. Herencia ligada al sexo. Discusión de
cruces. TRABAJO PRACTICO: Extracción, revisión y
eliminación de los progenitores en los cruces. Cromosomas
politenos. SEMINARIO: Cromosomas politenos
EXAMEN PREVIO. Ligamiento y recombinación. Discusión
de cruces. TRABAJO PRÁCTICO: Análisis de la generación
F1 e inicio de los cruces para la F2 (♀s vírgenes).
SEMINARIO: Morgan y mapas cromosómicos
EXAMEN PREVIO. Discusión de cruces. TRABAJO
PRÁCTICO: Extracción, revisión y eliminación de los
progenitores de la F2. Cromatografía de pigmentos oculares.
SEMINARIO: Pigmentos oculares.
EXAMEN PREVIO. Observación y discusión de los
cromatogramas. Análisis estadístico. TRABAJO PRÁCTICO:
Análisis de la generación F2. SEMINARIO: Elementos
genéticos transponibles en maíz
Discusión y entrega de informes.
SEMANA 8: NOV 1012
SEMANA 9: NOV 17- EXAMEN UNIDAD I.
Introducción a la unidad II. La Biología bacteriana y sus
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bacteriófagos: Escherichia coli como organismo modelo para
el análisis genético. Cultivo de E. coli y bacteriófagos en el
laboratorio. Genética bacteriana. Anotación del fenotipo y el
genotipo. Procesos de transferencia de material genético en
procariotas: transformación, conjugación y transducción.
Lineamientos generales y normas del trabajo con bacterias y
bacteriófagos en el laboratorio.
SEMANA 10: NOV 24- EXAMEN PREVIO. Titulación de un cultivo bacteriano.
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SEMANA 11: DIC 0103
SEMANA 12: DIC 0810
SEMANA 13: DIC 1517
DIC 21-ENERO 09
SEMANA 14: EN 12-14
SEMANA 15: EN 19-21
EVALUACIÓN:
Genotipo y fenotipo de cepas de Escherichia coli, normal y
mutantes. Utilización de medios de cultivo, medios selectivos
y diferenciales. TRABAJO PRÁCTICO: Titulación de un
cultivo bacteriano. Genotipo y fenotipo de cepas de E. coli.
SEMINARIO: Estructura y función del ADN
EXAMEN PREVIO. Transferencia de material genético entre
bacterias. Transformación, conjugación y transducción.
Observación, cuantificación, análisis y discusión de los
resultados de la titulación del cultivo bacteriano, y de las
siembras para la determinación de fenotipos bacterianos.
TRABAJO PRACTICO: Transferencia del material genético
entre bacterias: conjugación bacteriana. SEMINARIO:
Maduración del ARN
EXAMEN PREVIO. Estructura Fina del gen. Observación,
cuantificación, análisis y discusión de los resultados de la
conjugación bacteriana. TRABAJO PRÁCTICO: Estructura
fina del gen. Pruebas de complementación cis-trans y
recombinación de la región rII del bacteriófago T4. Entrega de
los datos de Luria y Delbruck. SEMINARIO: Estructura fina
del gen
EXAMEN PREVIO. Observación y análisis de los resultados
de las pruebas de complementación y recombinación en la
región rII del bacteriófago T4. TRABAJO PRÁCTICO
(demostrativo): Prueba de fluctuación de Luria y Delbruck.
SEMINARIO: Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR)
RECESO NAVIDEÑO
Discusión general de resultados de la Unidad II. Entrega de
informes de la Unidad II.
EXAMEN
Exámenes parciales, 30% (Total 60%)
Promedio de exámenes previos, 15%
Promedio de informes, 10%
Trabajo de laboratorio, participación en seminarios y discusiones,
15%
COORDINADORAS:
Unidad I: Profesora Yadira Rangel
Unidad II: Profesora Annamil Alvarez