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MANUAL DE CAMPO PARA IDENTIFICAR Y CONTROLAR LAS
LIMITACIONES DE SUELO, DEFICIENCIAS NUTRICIONALES Y PLAGAS
(INSECTOS Y ENFERMEDADES) DE LA CAÑA DE AZÚCAR MÁS
IMPORTANTES EN VENEZUELA
Luis O. Zérega M.
BARQUISIMETO, 2012
AGRADECIMIENTOS
Este manual se hizo posible su preparación gracias a la información aportada
por diferentes fuentes bibliográficas y profesionales como el Dr Jesús Salazar.
PRESENTACIÓN
1. LIMITANTES DE SUELO MÁS COMUNES QUE SE PUEDEN
VISUALIZAR EN CAMPO
Estas son compactación, baja estabilidad estructural, poca expresividad del
horizonte “A”, alto contenido de limo, mal drenaje y salinidad, cuyo correctivo o
manejo se sugieren al final de su descripción.
1.1) Compactación:
Se presenta cuando hay reducción del espacio poroso del suelo, limitando la
penetración y retención de agua en el suelo y el desarrollo radical (aunque
también lo puede provocar las sales, acidez, drenaje, etc. del subsuelo) que,
además de afectar la extracción de agua por la planta, también restringe la
absorción de nutrimentos al no poder explorar un mayor volumen de suelo, con
los consecuentes efectos adversos en el crecimiento, desarrollo y rendimientos
de los cultivos (Figura 1).
HORIZONTE POROSO
HORIZONTE COMPACTADO
FIGURA 1. HORIZONTE POROSO VERSUS HORIZONTE COMPACTADO
1.2) Baja estabilidad estructural
Cuando el grado de agregación o formación de terrones estables y duraderos
es débil, se señala que ese suelo u horizonte tiene una baja estabilidad
estructural (Figura 2).
Esa limitante afecta el espacio poroso antes mencionado y esta asociado
principalmente a altos contenidos de limo (> 25%), arcillas dispersivas como la
hilita y la pirofilita y bajas concentración de materia orgánica y conductividad
eléctrica del suelo. Los suelos de textura gruesa, generalmente presentan muy
baja estabilidad estructural. Este sería el segundo problema más generalizado
en Venezuela.
FIGURA 2. SUELO CON BAJA ESTABILIDAD ESTRUCTURAL
1.3) Poca expresividad o espesor del horizonte “A”
El horizonte “A” generalmente es el primer horizonte del suelo, es de color
oscuro (generalmente marrón grisáceo oscuro, grisáceo muy oscuro, marrón,
o negro) y su poco espesor puede ser provocado producto de la erosión,
durante la nivelación del terreno y/o durante los procesos formadores del
suelo. Generalmente la mayor cantidad de raíces de las plantas cultivadas y
silvestres se encuentran o crecen casi hasta la profundidad de ese horizonte
(Figuras 3 y 4). En función del espesor de ese horizonte se puede estimar la
capacidad productiva del suelo que se discute más adelante (Cuadro 1).
Cuando este primer horizonte del suelo disminuye su espesor, también se
reduce su potencial productivo, al mermar el área de exploración del suelo
por las raíces, la capacidad de retención de humedad y suministro de
nutrientes a través del complejo de intercambio iónico y la materia orgánica
(Figura 3).
Los cultivos perennes (árboles) y semi-perennes (Ej. caña de azúcar) son
especialmente muy sensibles a esta disminución del horizonte “A”,
particularmente cuando su espesor es menor a 40 cm. En la Figura 28 se
aprecia un horizonte “A” con profundidad adecuada.
HORIZONTE “A”
FIGURA 3. POCA EXPRESIVIDAD DEL HORIZONTE “ A”
LÍMITE DEL HORIZONTE “A”
FIGURA 4. ADECUADA PROFUNDIDAD (70 cm) DEL HORIZONTE “A””
En consecuencia el espesor del horizonte “A” o profundidad del suelo está
relacionada con la capacidad productiva del suelo, esta suele ser medida a
través de la profundidad radical de las plantas, determinada hasta donde crece
el 80% de la masa de raíces, lo cual generalmente ocurre en el horizonte “A”
del perfil del suelo, ya mencionado (Figuras 3 y 4).
También puede ser evaluada por medio de la profundidad de humedecimiento
del suelo, alcanzado después de un riego fuerte. Tal como ya se mencionó, con
esta información se puede estimar el potencial productivo de un suelo (Cuadro
1), si es que los otros factores de la producción se encuentran en condiciones
adecuadas: clima, planta, manejo y las otras características del suelo.
CUADRO 1. POTENCIAL PRODUCTIVO DEL SUELO SEGÚN SU
PROFUNDIDAD
PROFUNDIDAD DEL SUELO
POTENCIAL PRODUCTIVO
0 – 20 cm
Muy bajo en cultivos perennes y de
ciclo largo como la caña de azúcar.
Bajo en cultivos de ciclo corto.
0 – 40 cm
Moderado en cultivos perennes y de
ciclo largo como la caña de azúcar.
Alto en cultivos de ciclo corto.
0 – 60 cm
Alto en cultivos perennes y de ciclo
largo como la caña de azúcar. Muy
alto en cultivos de ciclo corto.
> 60 cm
Muy alto en cultivos perennes y de
ciclo largo como la caña de azúcar.
Muy alto en cultivos de ciclo corto.
1.4) Alto contenido de limo
Cuando esta es mayor del 25% suele crear problemas de baja retención de
humedad, también sellado superficial, derivado de la muy baja estabilidad
estructural que tiene esta partícula del suelo. Además pueden registrarse
limitaciones en el drenaje superficial, asociado a posiciones bajas del terreno y
suelos de texturas finas o medias (Figura 5).
Los suelos con alto contenido de limo abundan en Venezuela, dado que
aquellos de origen aluvial, originados por corrientes de agua que depositan
gran cantidades de sedimentos, entre ellos limo y arcilla que son dispuestos en
las pocisiones intermedia y baja del paisaje respectivamente, están presente en
toda la geografía nacional, principalmente en las llanuras y planicies.
Los suelos con alto contenido de arena muy fina, generalmente se confunde
con los suelos con altas concentraciones de limo, dada su apariencia, tamaño
de partícula y comportamiento hidráulico similar (Cuadro 2).
Al formar una pasta saturada de suelo, cuando hay predominio de limo,
presenta una gran suavidad al tacto, la arena se siente grumosa y la arcilla se
palpa ni muy grumosa ni muy suave.
FIGURA 5. Suelo limoso. Cortesía del Ing Juan Emilio Hernández
CUADRO 2. Clasificación de las partículas del suelo
Nombre de la partícula.
Límites de diámetro en mm
Arena
0.05-2.0
Arena muy Gruesa
1.00-2.0
Arena Gruesa
0.5-1.0
Arena mediana
0.25-0.5
Arena Fina
0.10-0.25
Arena Muy fina
0.05-0.10
Limo
0.002-0.05
Menor que 0.0
Arcilla
FUENTE: United States Departament of Agriculture
1.5) Drenaje
Esta limitación es provocada por la acumulación excesiva y prolongada de
agua en el suelo, generando condiciones anaeróbicas o ausencia o baja
concentración
de oxigeno, que afecta el crecimiento de los cultivos,
desencadenando además una serie de reacciones físico-químicas, tales como
pérdidas de nitrógeno y azufre por volatilización, alta acumulación de hierro y
manganeso solubles que ocasionan toxicidad en la plantas, tendencia a ubicar
el pH cerca o en la neutralidad. También propicia el ataque de enfermedades
en esas condiciones, tales como pudriciones.
Los problemas de drenaje más comunes son el interno, cuando hay una tabla
de agua a una profundidad menor a dos metros, cerca o en la superficie del
suelo. Esta puede ser originada por excesiva acumulación de agua subterránea
o, formada por una capa impermeable en el sub-suelo o cerca de la superficie,
llamada tabla de agua colgante, que impide que el agua percole a estratos
más profundo, fuera del alcance de la raíces de las plantas. Esa agua freática
se puede presentar de manera libre o en forma capilar. Esta limitación es la
primera causa de origen de los suelos afectados por sodio en Venezuela.
El suelo saturado de agua por mucho tiempo presentará color gris originado por
el hierro reducido, también por decoloración por pérdidas de hierro y
manganeso soluble en esas condiciones. Al exponer ese suelo al aire,
permanecerá gris (Figura 6). En caso de saturación durante casi o todo el año,
el gris se tornará negro. El hierro, la materia orgánica, entre otros elementos,
son los que determinan el color al suelo. En suelos aireados el hierro se oxida y
le confiere al mismo, colores rojizo, pardo-rojizo o pardo. En este estado de
oxidación, el hierro se encuentra precipitado o en estado insoluble.
Este problema suele presentarse en zonas húmedas y en los suelos cercanos
a grandes cuerpos de agua tales como los lagos de Maracaibo y Valencia,
represa Cumaripa en el estado Yaracuy, el embalse Las Majaguas en
Portuguesa, entre otros.
FIGURA 6. COLORES OLIVA ARRIBA Y GRIS ABAJO QUE, INDICAN MAL
DRENAJE PROLONGADO
1.6) El otro tipo de mal drenaje es el superficial (aguachinamiento),
asociado a posiciones bajas en el terreno (esteros) y texturas finas del suelo.
Este puede afectar más a las plantas que el primero, cuando el agua freática
no esta muy cerca o en la superficie y/o el cultivar es resistente a mal drenaje.
Los indicios de mal drenaje superficial se identifican por la presencia de
malezas indicadoras, tales como Junco (Cyperus ferax) Figura 7, Paja
Americana (Echinochloa colonum) Figura 8, Paja Pará (Brachiaria mutica)
Figura 9, Clavo de Pozo (Eclipta alba) Figura 10, Platanillo o Bijao (Thalia
geniculata) Figura 11, Malva (Malachra sp) Figura 12, etc.
FIGURA 7. Junco
FIGURA 9. Paja Pará
FIGURA 11. Platanillo o Bijao
FIGURA 8. Paja Americana
FIGURA 10. Clavo de Pozo
FIGURA 12. Malva
En el perfil del suelo, los indicios de mal drenaje se identifican por la presencia
de moteados de colores anaranjado ladrillo (leve) por oxidación del hierro por
el agua en presencia de oxigeno, verde amarillento u oliva (moderado), gris
(grave) y negro (muy grave). Estos dos últimos son los signos que señalan los
mayores problemas de este tipo, es decir, indican que el agua permanece
durante varios meses en ese suelo sin cubrir totalmente la matríz del mismo,
por ser agua capilar.
Cuando toda la matriz del suelo a nivel de horizonte se torna totalmente gris,
gris muy oscuro o negra indica que el suelo permanece inundado hasta el
respectivo horizonte, la mayor parte, casi o todo el año (Figura 6).
La distribución en el perfil del suelo, de los moteados o colores oscuros
mencionados indica de donde proviene el problema de drenaje. Si es por agua
freática esos colores se observan en el fondo y disminuyen hacia la superficie.
Cuando el problema es superficial, la distribución de esos colores gris o negro
es al contrario.
1.7) Salinidad
Suelos afectado por sales son aquellos donde la acumulación de sales
o
ión por separado o en conjunto
afecte,
directa
o indirectamente
las propiedades del mismo (deterioro físico por alto sodio), la producción
económica de cultivos (por reducción del consumo de agua por las plantas,
toxicidad o incida sobre los consumidores por altas concentraciones de Na,
Cl, B, etc., disminución de la nitrificación o des-balance nutricional).
Los primeros indicios que invitan a sospechar sobre la existencia de problemas
de sales en agua y suelos, generalmente son:
a) Crecimiento irregular de las plantas hasta la aparición de manchones o
áreas desprovistas de vegetación, acompañadas de eflorescencias
blanquecinas (Figura 13), generalmente de sulfato de calcio o carbonato
de calcio, o costras negras en condiciones de suelo seco o charcos de
agua del mismo color en el suelo (Figura 14). Estas últimas provienen
de la materia orgánica dispersa en los suelos afectados por sodio.
FIGURA 13. SUELO AFECTADO POR SALES
VERDOLAGÓN
FIGURA 14. EVIDENCIAS DE SUELO AFECTADO POR ALTO SODIO
b) Las plantas con síntomas de toxicidad por sales tienden a atrofiarse y a
desarrollar hojas más pequeñas, de un color verde más oscuro de lo normal
(Christiansen y Grassi, 1975). En la Figura 15 se observa como se afecta el
sistema de raíces de dos variedades de caña de azúcar con
comportamiento diferencial a la salinidad: PR692176 (resistente) y V78-1
(susceptible), a la sal cloruro de sodio, donde se aprecia que la última
variedad reduce drásticamente el desarrollo radical ante la salinidad.
c) En los sitios donde se afecta el crecimiento o no crecen los cultivos, solo
se observa el desarrollo o predominio de malezas como el Verdolagón
o Verdolaga de hoja ancha (Trianthema portulascatrum) Figuras 16 y
17, Cloris (Chloris polidactyla) Figura 18, Verdolaga (Portulaca oleracea
L.) Figura 19, Paja Bermuda (Cynodon dactylon) Figura 20. Si además
de salinidad, adicionalmente se registran problemas de drenaje, también
se puede observar el predominio de Junco (Cyperus ferax), Paja
Americana o arrocillo (Echinochloa colnum L.), Paja Pará (Brachiaria
mutica), Malva (Malachra sp), etc. Figuras 6, 7, 8 y 11 respectivamente.
FIGURA 15. Comparación del sistema de raíces de dos variedades de
caña de azúcar resistente y susceptible a la salinidad
con y sin afectación por la sal cloruro de sodio.
pH = 9,8 y CE 1:5= 0,5 dS/m
FOTOS ENSAYO UBICADO EN EL TABLON 21 FECHA DE SIEMBRA 19-08-09
FIGURA 16. PREDOMINANCIA DE VERDOLAGÓN EN SUELO CON
ALTO SODIO EN LA FINCA CURA EN EL ESTADOCARABOBO
FIGURA 17. Verdolagón
FIGURA 18. Cloris
FIGURA 19. Verdolaga
FIGURA 20. Paja Bermuda
d) La permeabilidad de los suelos salinos (conductividad eléctrica mayor a
seis o a ocho dS/m) pueden ser igual o superior a la de los suelos no
afectados por sales, por el efecto floculante que ejerce el exceso de
sales solubles sobre el suelo. Mientras que los suelos salino–sódicos y
sódicos, debido al efecto dispersante del alto Na presente sobre las
arcillas, puede restringir severamente la tasa de infiltración y la
permeabilidad de los mismos.
e) En una calicata, los suelos con alta conductividad eléctrica se
presentaran suaves al introducir la punta de un cuchillo; mientras que en
los que registran alto sodio presentaran mucha dificultad para
desprender los agregados al golpe de una piqueta, formándose las
estructuras del tipo prismáticos o columnares con tamaño > a 20 cm
(Figura 2).
f)
Muchos de estos indicios no son indicaciones infalibles de salinidad,
pues estos pueden deberse a otros problemas tales como riego
deficiente en ciertos sitios del terreno por nivelación inadecuada del
mismo, encostramiento, sellado superficial o compactación del suelo,
toxicidad o deficiencias nutricionales, erosión, nivel freático alto,
esterilidad por excesiva aplicación de herbicidas, etc. En estos casos, no
se observa el predominio de las malezas indicadoras antes señaladas.
g) Identificar el origen de las sales:
Si es por el agua de riego, agua freática, el viento en
las zonas
costeras (hasta 50 km tierra adentro), inundación y/o fertilizantes. En
las zonas áridas y semiáridas, generalmente las sales son de origen
primario (las que se desarrollan durante los procesos formadores del
suelo, provenientes del material que le diò origen al suelo).
RECOMENDACIONES DE MANEJO PARA ESAS LIMITANTES DEL SUELO
A) Recomendaciones para la baja retención de humedad del suelo:
Generadas por las limitantes del suelo: Compactación, baja estabilidad
estructural, poca expresividad del horizonte “A”, texturas gruesas a muy
gruesas, para escasa profundidad del suelo y altas concentraciones de limo.
Los únicos cultivos que disponen de variedades o especies resistentes o
tolerantes a cualquier limitante del suelo son la caña de azúcar y los pastos
respectivamente, aunque existen o se pudiera disponer de algunos otros
cultivos que tienen variedades o híbridos resistentes a algunas pocas
condiciones estresantes del suelo.
a) En ese sentido, se recomiendan en el caso de la caña de azúcar, sembrar
variedades tolerantes a sequía: tales como: PR692176, C323-68, V68-78, V747, PR61-632, V71-39, Caña Blanca, B75-403, B80-408, B80-529, B80-549 y/o
B81-494. La primera variedad mencionada tiene problemas de degeneración
(el Central El Palmar en el estado Aragua, están produciendo vitro-plantas
limpias de enfermedades por medio de la técnica de cultivo de tejidos, de
variedades degeneradas) y las cuatro últimas fueron liberadas po el INIA hace
unos diez años. En el caso de los pastos, se recomiendan las siguientes
especies: Buffel (Cenchrus ciliaris), Rhodes (Chloris gayana), Gamelotillo
(Paspalum plicatulum), Kikuyu (Pennisetum clandestinum), Limpia tetero o
Setaria (Setaria tenax), Leucaena (Leucaena leucocephala), Bejuquillo
(Centrosema pubescens). Tambièn el cultivo de la Yuca.
b) Labranza con enfoque conservacionista: mínima, reducida o no labranza.
c) Aplicación de enmiendas. Ej. Cachaza, aunque su efecto mejorador solo
perdura 1 a 2 años; ácidos húmicos (en suelos con bajo contenido de limo,
principalmente en los de textura gruesa), abonos comportados tal como el que
producen algunas centrales azucareras en Venezuela a partir de la cachaza,
una polienzima y sulfato de amonio; abonos verdes como la Crotalaria sp y
haba de burro o Canavalia ensiformis, en dosis no menor de 10 ton/ha de
materia seca; fosfoyeso, yeso o sulfato de calcio (el de origen industrial es
portador de metales radiactivos como el cadmio).
d) Manejo racional del agua de riego, tratando de mantener la humedad del
suelo entre capacidad de campo y el 50% de esta (denominado este rango
como, lámina de agua rápidamente aprovechable = LARA) y aplicando la
fracción de lixiviación efectiva de sales que es un porcentaje sobre la LARA
que se debería de aplicar en cada riego para lavar las sales que trae el agua de
riego, fuera del área de las raíces; esta se estima cuando se realiza el análisis
de salinidad al agua y se conocen ciertas propiedades físicas del suelo, tales
como tasa de infiltración, drenaje, capacidad de campo, profundidad y densidad
aparente del suelo, y además se dispone de la información climática (Pla y
Dappo, 1974).
B) Recomendaciones para el mal drenaje:
a) Para caña de azúcar, las variedades tolerantes: MY5514, C323-68, CP742005, V75-6, B75-49, CR74-250, PR692176 (moderado comportamiento). En
el caso de los pastos: Humidìcola (Brachiaria humidicola), Paja Parà o Paja
Páez (Brachiaria mutica), Lambedora (Leersia hexandra), Alemán (Echinochloa
polystachya), Gamelotillo (Paspalum plicatulum), Limpia tetero o Setaria
(Setaria tenax, Bejuquillo (Centrosema pubescens) y Kudzu Tropical (Pueraria
phaseoloides) con tolerancia moderada. También el cultivo de Arroz, Guayaba,
Parchita y Auyama, entre otros.
Las fases de crecimiento y desarrollo del cultivo de la caña de azúcar que más
se afectan con el mal drenaje, son el macollamiento y la maduración, por ello
las áreas más afectadas por esta limitación deben sembrarse y cosecharse al
inicio de mediados de la zafra para que cuando se inicie el periodo lluvioso ya
haya culminado el amacollamiento de la planta de caña y estas se cosechen en
condiciones de óptima maduración respectivamente.
En condiciones de mal drenaje, los tallos de caña desarrollan raíces
adventicias en los entrenudos inferiores. Si esta condición se prolonga, los
tallos muestran síntomas de raquitismo funcional y las hojas se tornan de color
verde claro y con necrosis en sus bordes.
b) Sembrar sobre el camellón o aporcar a las cañas.
c) Construcción de obras de drenaje, comenzando con una nivelación
adecuada del terreno:
-Drenaje interno tipo espinazo de pescado.
-Zanjas profundas en la periferia de los tablones para abatir el nivel freàtico.
-Sistemas de bancales o mini bancales.
-Camellones altos de 30 a 40 cm, si es que lo permite la cosecha mecanizada.
C) Recomendaciones para problemas de salinidad:
a) Caña de azúcar, siembra de variedades tolerantes: MY5514, PR692176,
V747, V75-6, CR74-250, Co421, NCo310, Co740, B64129. las 4
últimas con problemas fitosanitarios. Pastos: Estrella de Puerto Rico o Pata
Morada (Cynodon nemfluensis), Estrella Africana (Cynodon plectostachyus),
Pasto Bermuda (Cynodon dactylon), Paja Parà o Paja Páez (Brachiaria
mutica), Lambedora (Leersia hexandra), Alemán (Echinochloa polystachya),
Buffel (Cenchrus ciliaris), Rhodes (Chloris gayana) y Canavalia o Haba de
Burro (Canavalia Ensiformis). Tambièn son tolerantes a salinidad: el
Algodonero, Alfalfa, Remolacha, Sorgo, Trigo, Cebada, Dàtil, Coco, Girasol.
b) Uso de métodos de riego de alta frecuencia de humedecimiento del suelo:
goteo, aspersión, chorrito.
c) Adición de enmiendas en caso de suelos afectados por sodio: yeso o
fosfoyeso, o
azufre elemental.
d) Eventual construcción de obras de drenaje.
1) Nivelación y lavado de sales.
2) Se generó modelo para estimar la conductividad eléctrica (CE) en el
extracto Saturado (es) del suelo a partir de la CE estimada en la
relación suelo – agua 1:5:
CEes = -1,15 + 4,93 CE (1:5).
e)
En los suelos afectados por sales, los periodos más críticos para el
crecimiento y desarrollo de los cultivos son: germinación, máximo
crecimiento, pre y durante la floración y en el llenado de frutos.
f) La tolerancia de los cultivos a la sales puede cambiar con el manejo. Una
de las técnicas que permiten alcanzar este propósito es el de mantener al
suelo humedecido durante los periodos crítico para los cultivos antes
mencionado, con el fin de diluir las sales alrededor del sistema de raíces y
disminuir sus efectos estresantes (reducción de la absorción de agua, toxicidad
de ciertos iones, entre otros) sobre los cultivos. Esa dilución de las sales se
consigue con mayor facilidad, aplicando métodos de riego de alta frecuencia de
humedecimiento del suelo, como goteo, aspersión y chorrito
2. SÍNTOMAS DE DEFICIENCIAS NUTRICIONALES EN EL CULTIVO DE LA
CAÑA DE AZÚCAR REPORTADAS EN VENEZUELA
En Venezuela, los únicos síntomas visuales de deficiencias nutricionales
observados en el cultivo de caña de azúcar son: nitrógeno (N), fósforo (P),
potasio (K), azufre (S), hierro (Fe) y boro (B).
2.1 Síntomas deficiencia de nitrógeno: asociado por la no ó incorrecta
aplicación de nitrógeno y/o, déficit o exceso hídrico, porque el mecanismo de
absorción de este nutriente por la planta es cuando esta absorbe agua. En
caso de deficiencia de este nutriente se sugiere aplicar antes de los tres meses
de la siembra y 1,5 meses del corte de la caña, 1,0 a 1,5 kg de nitrógeno por
hectárea por cada tonelada de caña esperada.
2.2 Síntomas de deficiencia de fósforo: Este síntoma (hojas con franjas o
casi toda de color púrpura) no es frecuente y cuando se presenta en cañas
recién sembradas o cortadas, también se observa en algunas malezas poaceas
(gramíneas); luego desaparece a los dos a cuatro meses de la germinación o
rebrote. En vista de la complejidad del diagnóstico de la suficiencia de este
elemento en la planta, se sugiere averiguarlo vía el análisis foliar, el cual es el
método más confiable.
2.3 Síntomas de deficiencia de potasio: La deficiencia de potasio se puede
presentar con quemaduras en los bordes y puntas de las hojas o, con cogollo
en forma de abanico como se aprecia en la imagen (Figura 23). Para corregir
esta deficiencia, se sugiere aplicar de 90 a 150 kg por hectárea de oxido de
potasio (K2O) para tonelajes de caña esperados entre 90 y 160.
2.4 Síntomas de deficiencia de azufre: El síntoma más común de deficiencia
de azufre se presenta en el cogollo de la planta, el cual adquiere una
apariencia clorótica o verde pálido y reducción del ancho en la parte media de
la hoja (Figura 24). Para corregir esta deficiencia, se recomienda aplicar de 30
a 50 kg/ha de azufre, calculándolo de las fuentes más expendidas en el país:
sulfato de amonio y sulfato de potasio.
FIGURA 21. SÍNTOMA VISUAL DE DÉFICIENCIA DE NITRÓGENO (La foto
superior fue tomada de Anderson y Bowen, 2000).
FIGURA 22. SÍNTOMA VISUAL DE DÉFICIENCIA DE FÓSFORO. La foto de
la izquierda fue tomada de Anderson y Bowen (2000).
DÉFICIT DE POTASIO
FIGURA 23. SÍNTOMA DE DEFICIENCIA DE POTASIO
FIGURA 24. ABAJO, SÍNTOMAS DE DEFICIENCIA DE
AZUFRE. Foto tomada de Anderson (1997).
Síntomas de deficiencia de hierro: El síntoma en caña se inicia con rayas
cloróticas en las hojas más jóvenes y luego estas se tornan totalmente blancas
(Figura 25), al poco tiempo desaparecen esos síntomas. Se registra en suelos
calcáreos, sin embargo en los suelos de este tipo del lago de Valencia, cuando
se asocia a altas concentraciones de sodio, esos síntomas se mantienen y
enanizan a la planta de caña. Aunque los síntomas de deficiencia de este
nutriente desaparecen al poco tiempo, se sugiere evaluar si estos no
permanecen de manera oculta, mediante ensayos de comprobación, con
aplicaciones de 30 a 50 kg/ha de sulfato de hierro hepta hidratado (20 % de
hierro), utilizando un tratamiento testigo o control.
.
FIGURA 25. SÍNTOMAS DE DEFICIENCIA DE HIERRO
2.6 Síntomas de deficiencia de boro: Estos síntomas de deficiencia de boro
en caña no son muy comunes. Se ha observado en cañas con 2 a 4 meses de
sembradas o cosechadas, presentándose como si las hojas hubieran sido
cortadas a mano por su parte media, luego desaparece. Se ha observado en El
Tocuyo y Bajo Yaracuy. Igual que el hierro, aunque los síntomas de deficiencia
de este nutriente desaparecen al poco tiempo, se sugiere evaluar si estos no
permanecen de manera oculta, mediante ensayos de comprobación, con
aplicaciones de 20 a 30 kg/ha de Borax (11,5% de boro), utilizando un
tratamiento testigo o control.
.
FIGURA 26. SÍNTOMAS DE DEFICIENCIA DE BORO.
3. INSECTOS PLAGAS Y ENFERMEDADES PLAGAS DEL CULTIVO DE LA
CAÑA DE AZÚCAR
3.1. Insectos plagas de la caña de azúcar
3.1.1. Gusano taladrador de la caña de azúcar.
3.1.1.1. Taxonomía, ubicación geográfica, daño
Es un insecto originario del continente americano. Se registran en el país
varias especies ubicadas taxonómicamente dentro del genero Diatraea,
Familia Pyralidae del Orden Lepidoptera. Vulgarmente también son conocidas
en otros países como borer de la caña de azúcar (Cuba), barrenador del tallo
(Colombia), sugarcane stem borer (USA).
Las especies de Diatraea más conocidas en Venezuela son: Diatraea
saccharalis (F.) (Figura 35), Diatraea busckella Dyar y Heinrich, Diatraea rosa
Heinrich, Diatraea impersonatella (Walker) y Diatraea centrella (Möschler).
Linares, describe comparativamente , las diferentes especies sobre la base de
caracteres morfológicos existentes.
El adulto del taladrador es una mariposa o polilla de color blanco-amarillento
(Figura 27), las hembras son de mayor tamaño (2 a 3 centímetros), de
hábito nocturno y las atrae la luz. En esta fase no causan daño y duran
aproximadamente entre 2 y 10 días. Luego de la cópula las hembras ponen en
promedio 500 huevos colocándolos en el haz o en el envés de las hojas,
dispuestos en masa y distribuidos en hileras, son de color blanco-amarillento.
Posteriormente estos huevos eclosionan a los 5-10 días, saliendo unas larvitas
o gusanitos casi transparentes.
Las larvitas o gusanitos al completar su desarrollo llegan a medir entre 2,5 a
3.0 centímetros, su cuerpo es de color blanco-amarillento y su cabeza marrón
oscuro. En el dorso presentan una serie de puntos de color marrón, en este
estado o fase duran entre 20-35 días. Es en esta fase de crecimiento que
causa daños al cultivo.
Luego la larva se convierte en pupa o crisálida dentro del tallo de la planta,
manteniendo el color cremoso o blanco – amarillento al principio, para luego
tornarse de un color marrón oscuro. Esta fase dura de 5 a 12 días. En total el
insecto tiene un ciclo de vida de 41-60 días, lo que indica que en el año
pudiesen tener entre 6-9 generaciones.
FIGURA 27. Taladrador de la caña de azúcar o Diatraea saccharalis
D. saccharalis está localizada en todos los agroecosistemas cañeros
venezolanos, mientras que D. impersonatella sólo se ubica en el área de
influencia de Azucarera Pio Tamayo (municipio Morán, estado Lara). La
especie D. busckella se localiza principalmente en el área de influencia de los
centrales Carora y la Pastora (estado Lara) y en menor proporción en otras
áreas cañeras de los estados Lara y Yaracuy. Las especies D. rosa y
D. centrella se localizan en los estados Aragua, Carabobo, Yaracuy, Lara,
Portuguesa, Trujillo, Zulia, Táchira, Mérida y Monagas.
El daño por efecto de los taladradores se puede caracterizar de tres maneras:
Cogollo o corazón muerto, ocurre cuando el insecto destruye el punto de
crecimiento, minimizando el número de tallos/ha. El ataque se presenta en los
primeros meses del cultivo y cuando la infestación es severa, se pierde toda la
cepa. Daño en lotes de semilla, cuando se observa presencia del insecto en
lotes menores a 9 meses de edad destinados como semilleros. El insecto
perfora directamente las yemas o el entrenudo afectando el poder germinativo
del material reduciendo considerablemente la brotación de las yemas y por
ende el número de cepas y tallos/ha. Daño en lotes comerciales, al observarse
lesiones en tallos en pleno crecimiento. Se manifiesta pérdida del contenido
de sacarosa y contribución en la inversión de la misma, así como el daño
secundario de facilitar la presencia de otros insectos y enfermedades plagas
al dejar galerías a lo largo del tallo.
3.1.1.2. Importancia económica y su manejo.
Los taladradores de la caña de azúcar son considerados factores limitantes de
la producción del cultivo y se presentan con una distribución bastante
generalizada por toda América.
En Venezuela se ha estimado que por cada 1% del índice de infestación (I.I.)
observado en el campo, la producción disminuirá en 480 toneladas de azúcar
por zafra por lo que un I.I. de 6,7% produciría una perdida de 4.130,6
Toneladas de azúcar.
En relación al manejo de los taladradores de la caña de azúcar, debe
mencionarse al Manejo Integrado de Plagas (MIP) como la técnica más
avanzada para mantener bajo control los insectos plagas que atacan a este
cultivo. Con ello se logra disminuir los daños al ambiente, incrementar la
eficiencia en el control y aumentar las ganancias en este rubro.
Esta práctica se ha consolidado en los últimos 25 años gracias a la
implementación de un programa de Manejo Integrado de Plagas en caña de
azúcar en toda la Región Centro Occidental del país, con la participación de
diferentes organismos públicos y privados relacionados con el proceso
productivo del cultivo y con un plan de acción definido. En su inicio, esta
amplia zona abarcó tres de los principales estados cañeros de Venezuela:
Yaracuy, Lara y Portuguesa (75.000 hectáreas aproximadamente (Salazar,
1994).
A partir de ese entonces, el componente control biológico ha sido determinante
en forma directa por la disminución significativa del daño producido y su
respectivo beneficio económico. En forma indirecta, por lo que ha representado
para el ambiente la no aplicación de productos químicos de manera continua y
sistemática y la recuperación del equilibrio biológico en el agroecosistema
cañero.
La liberación anual de parásitos para el control de los taladradores estuvo
basada en los primeros años en el uso exclusivo de la mosca amazónica,
Lydella minense. Posteriormente, luego de detectarse la presencia de la avispa
Cotesia flavipes y su multiplicación en el laboratorio, se empezó a liberar en
toda la Región Centro Occidental con excelentes resultados.
(Lydella minense) fue introducida por primera vez en Venezuela por H. Box en
1950. Sin embargo, L. minense resultó ser muy específico atacando casi
exclusivamente a D. saccharalis lo cual llevó que a la vuelta de pocos años la
población de esta plaga declinara y se incrementara la de otras especies.
Esta situación obligó a los investigadores a buscar nuevos insectos parásitos
que permitieran luchar contra las nuevas especies del género Diatraea,
particularmente la D. rosa, que es la especie predominante. En este sentido a
mediados de los años setenta, ya se exploraban nuevas especies que
parasitaban tanto los huevos como las larvas de las diferentes especies de
Diatraea. Entre las primeras se encontraban Telenomus remus Nixon
(Hymenoptera:
Scelionidae)
y
Trichogramma
spp.
(Hymenoptera:
Trichogrammatidae) en tanto que en el segundo grupo se reportó a
Cotesia flavipes Cam. (Hymenoptera: Braconidae). Sin embargo, fue la
especie C. flavipes la que finalmente surgió como una solución al problema
del complejo Diatraea. Este insecto fue introducido al país desde Trinidad en
1981 y para 1990 ya se reportaba parasitismo natural del mismo así como
liberaciones controladas en los campos comerciales.
Inicialmente se recomendó para el control de Diatraea spp liberaciones de
Cotesia a razón de 1gr de cocones /ha (1 gr =1000 avispitas) y 40 mosca
amazónica/ ha.
Evaluación de daños
La metodología de evaluación de daños causados por taladradores del género
Diatraea spp., actualmente en uso, está basada en la nomenclatura propuesta
por Yépez y Linares (1987):
Índice de Daño (ID) = N° de tallos perforados X 100
N° de t allos totales.
El Índice de Daño (ID), es un parámetro de poca importancia en la
cuantificación de los daños. Permite conocer la proporción de tallos que
presentan perforaciones por taladradores, por lo que es un indicativo muy
general. Permite de una manera muy rápida y general conocer la distribución
de la plaga en la zona a evaluar.
Intensidad de Infestación (II) = N° de entrenudos perforados X 100
N° de entrenudos totales
La Intensidad de Infestación (II), es el parámetro más utilizado y difundido en la
evaluación de daños de taladradores en Venezuela y otros países. Además, la
mayor parte de las correlaciones referidas a las pérdidas de azúcar,
rendimiento, pol y otros, con respecto al daño, vienen expresadas con la
Intensidad de la Infestación como factor de pérdida.
Índice de Intensidad de Infestación (III) = N° de entrenudos dañados X 100
N° de entrenudos totales
El Índice de Intensidad de Infestación (III), se refiere al porcentaje de
entrenudos con daño internamente. Por lo tanto, es necesario realizar cortes
longitudinales en cada tallo. Esto es poco práctico para ser utilizado a nivel
comercial; no obstante, es el valor más real con respecto al daño producido por
los taladradores. Es de suma importancia en los estudios de resistencia
varietal.
A continuación se presenta la planilla para realizar contajes de Diatraea spp:
LOCALIDAD:________________________________
VARIEDAD:________________
FINCA:___________________________________________
EDAD:________________
PARCELA:______________________________________
FECHA:_________________
TALLO
ENTTOT
ENTPER
ENTTAL
MATERIAL BIOLÒGICO
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
OBSERVACIONES:
________________________________________________________
________________________________________________________
3.1.2. Candelilla de la caña de azúcar.
3.1.2.1. Taxonomía,
producido.
morfología,
biología,
comportamiento,
daño
Se ubican dentro de la familia Cercopidae del orden Homóptera. Vulgarmente
se les conocen como: Candelilla de la caña (Venezuela, salivazo (Costa Rica),
coco meón (Colombia), mosca pinta (México), cigarrinha (Brasil), froghopper
(Trinidad).
En Venezuela se registra la especie Aeneolamia varia (Figura 28) como la más
abundante en las principales áreas cañeras de la región centroccidental
(estados Lara, Yaracuy, Cojedes, Portuguesa y Barinas). El adulto de A. varia
sontica, la subespecie más común y más conocida como insecto de la caña en
Venezuela, es de 6 a 9 mm de largo, por 4 de ancho con las alas cerradas; el
cuerpo es de color negro o marrón oscuro, con patas saltatorias; las alas, del
mismo color del cuerpo, presentan dos rayas o bandas transversales de color
amarillo anaranjado. Guagliumi (1962) describió 20 razas o subespecies con
base a diferencias en la coloración general del cuerpo, el color y la forma de las
bandas alares, la conformación de las láminas subgenitales del macho, y la
constancia o variabilidad de estos mismos caracteres analizados en gran
número de ejemplares de la misma población.
Con el inicio de la estación lluviosa (mayo en adelante), se inicia el
apareamiento de los adultos a partir del segundo y el tercer día de su salida de
la última muda. La primera oviposición puede tener lugar el mismo día de la
cópula, o más comúnmente en el segundo-tercer día. La hembra pone los
huevos durante la noche, por 3 a 5 días consecutivos (hasta 15), en lotes
diarios que varían desde 2 a 3, hasta 8 a 10, para un total de 30 a 40 hasta un
máximo que se acerca a los 150.
Los huevos son colocados en el suelo, superficialmente o a pocos centímetros
de profundidad, cerca de la base o en la cepa de la caña de azúcar y de las
otras gramíneas, o en el tamo o bajero que cubre el terreno alrededor de las
mismas, ya que en estos sitios abundan las raíces superficiales de las plantas
hospederas, y por lo tanto son los más propicios para el desarrollo de los
huevos y luego de las ninfas, que necesitan un alto grado de humedad y una
temperatura no muy elevada. En suelos pesados, la hembra penetra en las
grietas del suelo y deja los huevos cerca de las raíces más profundas.
Las ninfas se adhieren a las raíces superficiales de las gramíneas hospederas,
se alimentan de su savia y se cubren con una espuma protectora, blanca y
densa, producida por sus glándulas anales. En esta espuma las ninfas
completan su desarrollo, a través de cinco instares, en más o menos 35 días; al
momento de la última muda, suben a veces al tallo y en una espuma de mayor
tamaño efectúan la transformación de ninfa a adulto (Figura 28).
En ambiente favorable por calor y humedad (bosques, orillas de ríos, lagunas,
canales, etc.), se puede calcular que el ciclo vital de A. varia sea de casi dos
meses, lo que significa de 5 a 6 generaciones anuales. Sin embargo, algunos
de los huevos que han sido puestos en el suelo en las últimas semanas de la
estación lluviosa y que no encuentran allí la humedad suficiente para iniciar su
desarrollo embrionario, quedan en un estado de descanso o “diapausa” durante
todo el verano, para eclosionar luego con la llegada de las primeras lluvias del
año siguiente.
FIGURA 28. Ninfas y adulto de la Candelilla A. varia
Los adultos conservan el hábito alimenticio por succión de savia, pero la
realizan sobre el tejido foliar, dejando subsecuentemente toxinas en la herida
que causan. Finalmente, aparece un necrosamiento a manera de secado con
un efecto similar al producido por un herbicida. Este daño realmente es
dependiente del tamaño de la población de adultos presentes, es irreversible
y acumulativo, en la medida en que se van produciendo nuevos brotes o
generaciones sobre el cultivo. Esta fase de adulto tiene una duración entre
12 y 17 días. En una fluctuación teórica de las poblaciones de candelilla, en
la realidad, lo que se observa son generaciones mezcladas o superposición
de generaciones producto de la eclosión continua de huevos con diferente
grado de diapausa, que a su vez son provenientes de adultos sometidos a
diferentes condiciones ambientales y alimentados con tejido vegetal con
diferente grado de desarrollo fisiológico. . El daño, referido como secado
extremo o quemado del tejido foliar, es consecuencia de la alimentación de
los adultos en época lluviosa.
3.1.2.2. Importancia económica y su manejo
Las especies del género Aeneolamia ocasionan fuertes daños económicos con
amplia distribución en el ámbito nacional e internacional. En nuestro caso, este
insecto plaga se le conoce como factor limitante de la producción azucarera en
los estados Portuguesa, Yaracuy y Lara, en donde se siembra alrededor del
85% del total nacional
Manejo Integrado de la candelilla
: Es necesario incorporar todas las prácticas, procedimientos y técnicas
disponibles, utilizando los productos químicos como la ultima posibilidad.
Control cultural de A. varia
-
-
-
-
-
-
-
-
En primer lugar es necesario renovar aquellos tablones (previo análisis
histórico de su productividad), los cuales registraron durante la zafra
anterior niveles de daño foliar entre fuerte y severo.
Es fundamental la recolección y quema de los restos de cosecha, puesto
que estos favorecen condiciones de alta humedad en el suelo,
garantizando la sobrevivencia de ninfas y protegiendo los huevos de la
candelilla colocados en el suelo y en el material vegetal.
Una buena práctica utilizada es el pase de rastras inmediatamente
después de la cosecha de caña, con unos dos puntos de abertura de los
discos para provocar el afloramiento de los huevos de candelilla y así
propiciar su desecamiento por acción de lo rayos del sol.
Se requiere realizar las labores de rajado, cultivo, aporque y
desaporque, al igual que las prácticas de riego y fertilización, pues
ellas dan al cultivo las condiciones de vigor necesarias para soportar
el ataque del insecto. Adicionalmente con el aporque se disminuye
considerablemente la posibilidad de sobrevivencia de los huevos
veraniegos o diapáusicos procedentes de las poblaciones de candelilla
del año anterior.
Mantener las condiciones de buen drenaje de los tablones.
El control de malezas dentro y entre los tablones es fundamental, debido
a que las gramíneas son hospederos alternantes de la candelilla y
porque en conjunto generan condiciones de alta humedad en el suelo
muy conveniente para el desarrollo del insecto.
Deben limpiarse los implementos agrícolas una vez se hayan utilizado
en labores agronómicas en tablones tradicionalmente candelillosos, para
evitar el traslado de huevos del insecto a tablones sanos.
Programar evaluaciones tempranas de adultos al inicio de la época
lluviosa (abril-mayo) para precisar la presencia y/o avance de la plaga.
Se debe iniciar el registro poblacional del insecto mediante el uso de
Trampas Adhesivas Amarillas (TAA)
Estas evaluaciones deben realizarse cada semana en los extremos y
centro del lote de caña (cinco puntos). Sin han existido ataques
anteriores se debe incorporar el uso de trampas (platos plásticos o
bolsas plásticas de un metro de lado de color amarillo fuerte, cubiertos
con un adherente o pegamento). Los platos se deben colocar a 1,20
metros de altura del suelo y las bolsas extendidas en el tercio medio de
las cepas de caña.
Control biológico de A. varia
El programa de manejo recomienda como alternativa de control la utilización
del insecticida biológico a base del hongo entomopatógeno Metarhizium
anisopliae, el cual tiene la capacidad de parasitar ninfas y adultos de la
candelilla. Este debe ser utilizando atendiendo los siguientes criterios:
-
El insecto debe estar presente para garantizar el sustrato sobre el cual
germinarán las conidias del hongo.
-
-
-
En virtud de ser una alternativa biológica, cuyo efecto de regulación
poblacional es lento, se debe iniciar las aplicaciones con la aparición de
la primera generación de adultos.
En caso de que las condiciones de humedad relativa ambiental no sean
óptimas, se debe utilizar conjuntamente con un producto protector para
las conidias contra la desecación y el efecto negativo de la luz
ultravioleta.
La dosis del producto a utilizar en cada aplicación y la ubicación del
resto de las aplicaciones serán programadas en base al nivel
poblacional del insecto, condiciones climáticas predominantes, estado
de desarrollo del cultivo, nivel de parasitismo en las fases de adulto y
ninfa, nivel de daño foliar, registro de aplicaciones previas y su
eficiencia.
En Venezuela, el control masivo de la candelilla se inicia en 1986 en las zonas
cañeras de la Región Centro Occidental, mediante el uso de M. anisopliae
Metct. Sorok., conocido comercialmente como Cobican-1® producido
masivamente en una dieta a base de arroz por Probioagro S.A., empresa
perteneciente a la Sociedad de Cañicultores del estado Portuguesa
(Socaportuguesa).
En relación a otros biorreguladores, se comprueba en un diagnóstico de los
enemigos naturales presentes en la Región Centro Occidental de Venezuela, la
presencia con amplia distribución de la avispa Salpingogaster nigra (Diptera:
Syrphidae), la cual se alimenta en su fase de larva de ninfas de candelilla y
aunque es muy agresiva, sus poblaciones son reguladas por un complejo de
enemigos naturales que la hacen ineficiente como controlador. El nematodo
Hexamermis dactylocercus sp.n. (Mermithidae: Nematoda), tiene una
distribución más localizada como parásito de ninfas de candelilla.
Control químico de A. varia
El uso de productos químicos no ha sido del todo satisfactorio, principalmente
por la destrucción masiva de enemigos naturales, el resurgir de nuevas plagas,
el desarrollo de resistencia a los insecticidas comúnmente usados y la
contaminación del agroecosistema.
Los productos que pueden utilizarse en casos extremos son Monocrotofos
(Nuvacrón, Azodrín), Carbofuran (Furadan, Carbosan), Dimetoato (Sistemín,
Perfectión), Triclorofón, Fenitrothión, Diazinón, etc.
3.1.3. Coco rinoceronte de la caña de azúcar.
3.1.3.1. Taxonomía, distribución, biología, comportamiento, daño
producido.
Este insecto plaga es conocido científicamente como Podischnus agenor,
(Olivier) ubicado dentro de la familia Scarabaeidae del orden Coleoptera. Su
distribución es amplia en América central, Panamá, Colombia y Venezuela.
Vulgarmente se conoce en otros países como: coco ron-ron (México), cucarrón
(Colombia). Ha sido reportado en Venezuela en áreas azucareras y paneleras
y se conocer varias plantas hospederas tales como: la guadua, el maíz y la
caña brava.
El adulto es un escarabajo grande de color caoba a marrón oscuro (Figura 29).
El macho es de mayor tamaño que la hembra, con un prominente cuerno en la
parte superior de la cabeza y una prominencia curvada al centro del pronotum,
generalmente bifurcado y con una superficie peluda de color marrón, las
hembras son de menor tamaño y sin cuernos. Muy buenos voladores y activos
durante la noche; luego del proceso de cópula, la hembra oviposita en el suelo
preferiblemente donde haya bastante materia orgánica. En este estado pueden
durar hasta 120 días.
Los huevos son de color amarillo pálido y ovalado, se encuentran dentro del
suelo a una profundidad hasta de 90 centímetros. Su incubación dura de 9 a 25
días. La larva es un gusano blanco de color azulado con cabeza marrón claro
y fuertes mandíbulas. La larva completamente desarrollada mide 7 cm de
largo, de color blanco amarillenta, patas dobladas hacia el abdomen y en
forma de C. Se encuentra en suelos con abundante materia orgánica y
húmeda. Dependiendo de las condiciones climáticas y alimenticias puede vivir
hasta 250 días (4 a 8 meses).
FIGURA 29. COCO RINOCERONTE (P. agenor)
La pupa es de tipo exarate (sus apéndices se encuentran expuestos
exteriormente), de color amarillento tornándose marrón con el desarrollo, se
encuentra en celdas ovaladas hechas de tierra a profundidades de 30 a 40 cm
bajo tierra. Este estado dura de 40 a 90 días.
Las larvas no causan daño, se encuentran enterradas alimentándose de
materia orgánica en descomposición. El adulto, quien es el que hace el daño
(Figura 29), reviste importancia económica, porque se alimentan de tallos y
cogollos de la caña formando túneles entre los entrenudos. El daño es fácil de
reconocer por el desflecado de la fibra hechos por los adultos.
El daño causa la muerte de la planta o la hace muy frágil para el quiebre y
volcamiento. Generalmente en una planta atacada puede encontrarse el adulto
macho y la hembra. El ataque se localiza por los bordes del cultivo.
Se presentan en los campos cañeros al inicio de la época de lluvias
(mayo a julio) perforando los tallos y haciendo galerías que en ocasiones
provocan un daño total
3.1.3.2. Importancia económica y su manejo.
El daño ocasionado por este insecto se restringe a zonas muy específicas en
donde existe adecuada suplencia de materia orgánica para la alimentación de
las larvas y zonas nuevas en desarrollo.
En relación al manejo se considera la recolección manual de los adultos la
medida más exitosa para el control del coco rinoceronte. La práctica es
relativamente sencilla por la facilidad como los adultos salen de los tuneles por
efecto de golpes al tallo. Al bajar en retroceso, salen, son colectados,
ensacados y eliminados. El costo del control es el pago convenido por
escarabajo recolectado. El uso de trampas de guadua, cebadas con bagazo de
caña o caña machacada atrae los adultos a la trampa, para luego ser retirados
y eliminados.
Adicionalmente, una buena preparación del suelo antes de la siembra, es una
medida que destruye los huevos, larvas, pupas y adultos. La realización de
buenos drenajes evita el exceso de humedad, que favorece el desarrollo del
coco rinoceronte.
3.1.4. Taladrador gigante de la caña de azúcar.
3.1.4.1. Taxonomía, distribución, biología, comportamiento, daño
producido.
El nombre científico de este insecto corresponde a Castniomera licus licus
(Drury).familia Castniidae, orden Lepidoptera. Se le ubica también en Brasil
(broca gigante da cana-de açucar), Perú (barrenador gigante) Ecuador,
Colombia, América Central, Trinidad, Guyana (giant sugarcane moth borer),
Surinam. Como hospederos principales se conoce a la caña de azúcar, algunos
pastos tropicales, el coco y la palma africana; también ha sido observado en
algunas musáceas cultivadas y silvestres y en especies de orquídeas.
El adulto es una mariposa de hábitos diurnos, robusta, que puede medir de 3,0
a 4,0 cm. Presenta una apariencia dorsal oscura, con marcas y dibujos claros
muy notorios en sus alas, ventralmente su coloración es grisáceo. Su mayor
actividad la realiza en las primeras horas de la mañana y en las últimas de la
tarde. Durante esta etapa el adulto no se alimenta; su período de vida es de 10
a 15 días. El ciclo de vida del insecto dura entre 60 y 300 días.
Los huevos en número promedio de 50 a 100 por hembra, son colocados en
forma individual en las bases de los tallos bajo condiciones de buena sombra y
humedad. Recién puestos presentan una coloración rosada y cuando están
próximos a eclosionar son de color amarillo pálido, su forma es alargada y
puntiaguda con aristas longitudinales. Su tamaño promedio es de 4 a 5 mm de
largo.
La larva del taladrador gigante es de una coloración verdosa a rosada naranja.
Recién emergida, cambia a blanco marfil en sus primeros estados hasta
amarillo pálido, cuando están próximas a pupar . Pasa por 8 a 10 instares
llegando alcanzar hasta 11,0 cm cuando está bien desarrollada. La duración
de este periodo puede variar entre 60 y 300 días, dependiendo de la
alimentación y de las condiciones climáticas que se presenten durante su
desarrollo. Las larvas penetran a los tallos por la parte basal y empiezan a
alimentarse de la cepa abriendo una galería de abajo hacia arriba. Antes de
transformarse en crisálida o pupa, la larva hace una perforación lateral por
donde posteriormente saldrá el adulto (Figura 30).
FIGURA 30. Daños causados por el taladrador gigante C. licus licus
La pupa es del tipo obtecta (sus apéndices están adheridos al cuerpo y
protegidos por una envoltura), con una longitud de 3,5 a 4,5 cm y una
coloración marrón-rojiza, se puede encontrar a nivel del suelo o en los rizomas
de la caña. En este estado dura entre 35 y 45 días).
El daño del insecto se presenta en cepas de caña de todas las edades. El
daño en las cepas se caracteriza porque después de realizado el corte, la larva
se alimenta de los rizomas hasta destruirlos totalmente. En cañas jóvenes, la
larva se introduce en los retoños recién brotados, causando su marchitamiento
progresivo. En cañas adultas, se presentan galerías profundas de un
centímetro de diámetro que pueden llegar en algunos casos hasta el cogollo
(Figura 30). Cuando el ataque es intenso se puede observar hojas amarillentas
en las plantas y reducción de la población de tallos debido al volcamiento de la
caña. Según la literatura, una infestación en caña de azúcar cercana al 15%
puede reducir el tonelaje de caña en un 20%.
3.1.4.2. Importancia económica y su manejo
Este insecto se reportó en 1994 ocasionando fuertes daños en el área cañera
de los municipios Guanare y Papelón del estado Portuguesa. Todavía no se
cuenta con una estrategia definida de control. Se recomienda la eliminación de
focos severos, prohibición de traslado de semillas de áreas infestadas y
medidas culturales. Actualmente no se considera plaga de importancia
económica en Venezuela.
3.1.5. Saltahojas verde de la caña de azúcar.
3.1.5.1. Taxonomía, distribución, biología, comportamiento, daño
producido.
Saccharosydne saccharivora se encuentra ampliamente distribuido en el país
y se ubica taxonómicamente dentro de la familia Delphacidae del orden
Homoptera. Su distribución es amplia en las Antillas menores, Haití, Jamaica,
USA, México, Puerto Rico, República Dominicana, Cuba, Venezuela, Costa
Rica y se conoce con otros nombres vulgares: Salta hojas antillano, cigarrita,
saltón de la hoja, west indies sugarcane leaf hopper, green leaf hopper.
El insecto adulto es de coloración verde pálido y alcanza los 3 mm de tamaño.
Las colonias de ninfas se ubican en el envés de las hojas y se caracterizan por
poseer filamentos blancos cerosos pegados al cuerpo (Figura 31). Secretan
una sustancia pegajosa o miel la cual sirve de sustrato a los hongos que
producen la fumagina que le da un aspecto negruzco a la hoja. Como producto
de esto, se reduce la fotosíntesis afectando esto los rendimientos del cultivo. La
hembra deposita en promedio 200 huevos dentro del tejido foliar, cubriéndolo
posteriormente con cera. La eclosión se produce de 7 a 10 días y las ninfas
se desarrollan de 25 a 64 días. En promedio el ciclo se completa alrededor de
los 36 días.
3.1.5.2. Importancia económica y su manejo
La considerable reducción de aplicación de productos químicos ha sido factor
de primera línea para el mantenimiento de un equilibrio biológico alrededor de
esta plaga en Venezuela, a tal punto que y a no se considera un problema
entomológico. Ocasionalmente y cuando las condiciones extremas lo ameriten,
se recomienda aplicación de insecticidas
FIGURA 31. ADULTOS Y NINFAS DEL SALTAHOJAS VERDE DE LA
CAÑA DE AZÚCAR. Foto cortesía de Luis Figueredo
3.1.6. Salta hojas de la caña de azúcar
,:
3.1.6.1 Taxonomía, distribución, biología, daño.
Perkinsiella saccharicida es un insecto plaga originario de Java, Formosa,
China y Australia (sugarcane leaf hopper); introducido accidentalmente a
Hawaii, Mauritius, Reunión, Madagascar, Africa del Sur y luego en Ecuador
(Cigarrita de la caña), Perú y Colombia. En 1988 fue reportada por primera
vez en Venezuela. Pertenece a la familia Delphacidae del orden Homoptera.
La hembra de este insecto vive de 1 a 2 meses y deposita alrededor de 300
huevos generalmente de noche principalmente en la nervadura central de la
parte anterior de la hoja en grupos de 1 a 12 huevos por incisión. Son huevos
pequeños de forma cilíndrica, elongados y ligeramente curvos. Las ninfas
pasan por cinco instares. Ciclo medio alrededor de 48 días: huevos (14), ninfas
(20-45 ).
FIGURA 32. SALTA HOJAS DE LA CAÑA DE AZÚCAR
Presentan características similares al salta hojas verde de la caña de azúcar;
sin embargo en Venezuela no se conocen casos en donde ocasionen algún
tipo de daño. La preocupación existe por ser el insecto vector del mal de Fiji,
enfermedad muy dañina en los países asiáticos y que no está presente en
Venezuela..
3.2 Enfermedades plagas de la caña de azúcar
Las enfermedades plagas de mayor importancia económica reportadas en
Venezuela son: El virus del mosaico (VMCA); Síndrome de la hoja amarilla;
Escaldadura de la hoja (Xanthomonas albilineans); Raquitismo de las socas
(Leifsonia xyli subesp. xyli Davis, Gillaspie, Vidaver y Harris); Raya Roja
(Pseudomonas rubrilineans); Carbón (Sporisorium scitaminea); Roya (Puccinia
melanocephala); Mal de piña (Ceratocystis paradoxa), Mancha de ojo
Deschlera sacchari (=Bipolaris sacchari Butl, Apud y Khan) Shoemaker);
“Pokkah boeng” o cogollo retorcido, esta enfermedad es causada por el hongo
Fusarium moniliformis Sheldon (fase imperfecta) y Gibberella moniliformis
Sheldon Wineland (fase perfecta), Pudrición roja del tallo (Colletotrichum
falcatum). Peca amarilla Passalora koepkei (=Mycovellosiella koepkei).
Enfermedades secundarias: Leptofaeria o mancha de anillo (Leptosphaeria
sacchari); Mancha parda (Cercospora longipes E. Butler), Fumagina (Fumago
sacchari Speg. = Capnodium spp.), mancha roja de la vaina Passalora vaginae
(= Micovellosiella vaginae Kruger), Pudrición de la base del tallo (Marasmius
spp.)
Todos estos patógenos comunes causantes de enfermedades en caña de
azúcar se encuentran ubicados como hongos, virus y bacterias (Chinea et al.,
2000).
3.2.1 Enfermedades causadas por virus
3.2.1.1 El mosaico
3.2.1.1.1. Historia y distribución
La enfermedad mosaico (Figura 33) de la caña de azúcar fue detectada en
1892 en Indonesia; se convirtió rápidamente en una amenaza para la
producción azucarera en diferentes países del mundo, puede producir pérdidas
superiores al 30% de la cosecha. A pesar de haberse realizado un serio trabajo
de mejoramiento genético para obtener variedades resistentes, en la actualidad
se encuentra presente en 72 países productores de caña y se han registrado
14 razas y varias sub-razas del agente causal; predominando en nuestros
países las razas A, B y D.
3.2.1.1.2 Síntomas
El virus del mosaico de la caña de azúcar (VMCA) destruye la clorofila de las
hojas más jóvenes y da origen a un moteado de zonas color verde normal
sobre un fondo de áreas cloróticas (Figura 33); la forma y tamaño de éstas
varían en función de la raza presente y del comportamiento varietal.
3.2.1.1.3 Transmisión
El mosaico se transmite por insectos vectores, tales como el pulgón o áfido del
maíz (Rhopalosiphum maidis (Fitch); sin embargo, en otros países se han
reportado el pulgón o áfido del ciruelo (Hysteroneura setariae (Thomas); la
chinche verde (Toxoptera graminium (Rond); el pulgón o áfido de los juncos
(Carolinaia cyperi (Ainslie) y otros. También se puede transmitir por los
propágulos o esquejes de semillas y mecánicamente.
FIGURA 33. MOSAICO
3.2.1.1.4 Plantas Hospedantes
Además de la caña de azúcar el mosaico se ha detectado en el maíz (Zea
mays L.), pata de gallina (Eleusine indica (L.) Gaertn.) y una amplia gama de
especies de hierbas silvestres.
3.2.1.1.5 Control
A causa del establecimiento de un esquema de obtención de variedades con
resistencia a esta enfermedad, ha sido controlada en las áreas de producción,
además de haberse seleccionado una serie de progenitores que transmiten
resistencia a su descendencia; por lo tanto, se considera que éste es el método
de control más eficaz, práctico y económico, sin embargo la reproducción por
micromeristemos también es una alternativa existente.
3.2.1.2 Síndrome de la hoja amarilla (YLS)
El agente causal es un polerovirus de la familia Luteoviridae. Sin embargo, en
algunos países existe el criterio de que se trata de un fitoplasma y que los virus
están presentes, pero no son la causa principal de la enfermedad.
3.2.1.2.1 Historia y distribución.
Se informó por primera vez en Hawai (1988). Actualmente se encuentra
propagada en África del Sur, Australia, Isla Mauricio, así como en numerosos
países latinoamericanos y del Caribe.
3.2.1.2.2 Síntomas.
Coloración amarilla brillante en la nervadura central, por el envés de las hojas,
que en las variedades susceptibles se extiende hacia las láminas foliares. En
algunas variedades se observa una tonalidad rosada a roja en la nervadura central,
por el haz de la hoja (Figura 34). Las cepas presentan reducción del crecimiento, tallos
más finos y entrenudos más cortos; necrosis en los tejidos internos. Disminuye el
sistema radical hasta la muerte de los tallos y cepas.
3.2.1.2 .3 Situación actual de la enfermedad.
Se desarrollan investigaciones sobre transmisión, hospedantes, importancia
económica y control y se trabaja en la búsqueda de fuentes de resistencia.
FIGURA 34. SÍNDROME DE LA HOJA AMARILLA
3.2.2. Enfermedades Causadas por hongos
3.2.2.1 Roya
3.2.2.1.1 Agente causal, síntomas y transmisión
La enfermedad es producida por el hongo Puccinia melanocephala. La
sintomatología se caracteriza por manchas de color amarillo en los inicios y que
al madurar se tornan de color marrón por el necrosamiento de tejidos (Figura
35). Las manchas o lesiones se unen dando una apariencia de quemado
general en las hojas. Estas pueden presentar pústulas (soros) donde
permanecen las esporas (uredosporas) que causan la infección.
FIGURA 35. ROYA
La transmisión se produce a través del viento, agua, insectos y el hombre.
3.2.2.1.2 Control
Para el control se recomienda el uso de variedades resistentes, manejo del
cultivo y naturalmente el hongo Sphaerellopsis filum el cual actúa como
controlador biológico.
3.2.2.2 Carbón
3.2.2.2.1 Agente causal, síntomas y transmisión
La enfermedad es producida por el hongo Sporisorium scitaminea (= Ustilago
scitaminea)
En cuanto a la sintomatología se presenta una estructura a manera de látigo
principal, látigos en brotes secundarios, apariencia herbácea y proliferación de
brotes (Figura 36).
La transmisión se produce por esquejes, por el viento, insectos, lluvia, agua de
riego y el hombre.
3.2.2.2.2 Control
Se realiza mediante el uso de variedades resistentes, entresaque e
incineración de látigos, tratamiento hidrotérmico y químico de la semilla.
Cuando se trata de áreas de alta infestación se recomienda realizar un riego de
inundación para lograr que las esporas germinen y si evitar una posterior
infección.
FIGURA 36. CARBÓN
3.2.2.3 Pokkah Boeng
3.2.2.3.1 Agente causal, síntomas y transmisión
La enfermedad es producida por el hongo Fusarium moniliforme
En cuanto a la sintomatología se presenta clorosis generalizada, decoloración
y arrugamiento de las hojas, decoloración de la vaina, quemado de las hojas,
pudrición de cogollo y cogollo retorcido (Figura 37).
La transmisión de las esporas es a través del aire y ocasionalmente la
propagación puede darse por la semilla. La nutrición de la planta y exceso de
humedad (lluvias) seguidos de una etapa de sequía predisponen a la planta al
ataque del hongo.
3.2.2.3.2 Control
Se recomienda el uso de variedades resistentes.
FIGURA 37. POKKAH BOENG. Fotos cortesia de Jenny Cova
3.2.2.4 Peca amarilla
3.2.2.4.1 Agente causal, síntomas y transmisión
La enfermedad es producida por el hongo Passalora koepkei (=Mycovellosiella
koepkei)
Los síntomas de la enfermedad se manifiestan como manchas irregulares de
color verde amarillento en la superficie de la hoja. Al unirse forman grandes
áreas de color amarillo que se tornan de color rojizo y que son visibles por el
haz y el envés de las hojas. Se produce muerte prematura del tejido foliar
(Figura 38).
FIGURA 38. PECA AMARILLA
La transmisión de las esporas es a través del aire y ocasionalmente la
propagación puede darse por la semilla.
3.2.2.4.2 Control
Se recomienda el uso de variedades resistentes y zonificación de las
variedades menos resistentes a la enfermedad en áreas donde las condiciones
ambientes (humedad) no sean favorables para el desarrollo del agente causal y
de la enfermedad.
3.2.2.5 Pudrición roja de la nervadura y el tallo
3.2.2.5.1 Agente causal, síntomas, transmisión y control
La enfermedad es producida por el hongo Colletotrichum falcatum, aunque
otros especialistas han reportado hasta dieciocho agentes causantes de esta
patogenia.
Los síntomas se presentan como puntos rojos que se extienden por todo el
raquis en ambas direcciones del mismo llegando a ocupar toda la nervadura.
En el tallo al rajar longitudinalmente se observa una pudrición seca de
coloración rojiza (Figura 39). El síntoma puede extenderse hacia las hojas y
está asociado con el daño causado por Diatraea sp.
Las esporas pueden ser transmitidas por la lluvia, viento, el agua de riego y los
insectos. El esqueje puede ser medio de propagación si son utilizados tallos
enfermos para la siembra de nuevas plantaciones.
FIGURA 39. PUDRICIÓN ROJA
3.2.2.5.2 Control
Se recomienda el uso de variedades resistentes a la enfermedad y a la
Diatraea sp. También se ha tenido éxito mediante la desinfección de semilla
con Benomil (Benlate) en dosis de 100 a 200 ppm y de carbendazim (Bavistus)
al 0,5 %, sumergiéndolas durante una hora.
3.2.2.6 Mancha roja de la vaina
3.2.2.6.1 Agente causal, síntomas, transmisión y control
La enfermedad es producida por el hongo Passalora vaginae (=Mycovellosiella
vaginae)
En cuanto a la sintomatología se presentan manchas de color rojizo en la vaina
de la hoja en parches irregulares que puede afectar a hojas fisiológicamente
activas (Figura 40).
Transmisión por el agua de riego, lluvia y hojas enfermas.
3.2.2.6.2 Control
Para el control solo el uso de variedades resistentes.
FIGURA 40. MANCHA ROJA DE LA VAINA
3.2.2.7 Mancha de anillo
3.2.2.7.1 Agente causal, síntomas, transmisión y control
La enfermedad es producida por el hongo Lepthosphaeria sacchari.
Es una de las enfermedades mas antiguas de la caña de azúcar, se detectó en
Indonesia, en el año 1890 y, en la actualidad, se encuentra presente de forma
endémica en 77 países productores de caña, entre los que se encuentra Cuba
y Venezuela.
3.2.2.7.2 Síntomas
Las plantas enfermas presentan manchas foliares de color verde oscuro a
pardo rojizo, con bordes amarillentos, de forma oval alargada y a medida que
crecen, se pueden fusionar para formar extensas áreas pardo rojizas que al
envejecer adquieren una tonalidad rojiza y se forma un margen oscuro que las
rodea (Figura 41). Se transmite por el viento y lluvia. El agente causal se
desarrolla, principalmente, en las hojas con baja actividad fisiológica, pero en
presencia de condiciones ambientales favorables y variedades altamente
susceptibles, puede afectar las hojas jóvenes.
3.2.2.7.3 Control
Control mediante uso de variedades resistentes
FIGURA 41. MANCHA DE ANILLO O LEPTOFAERIA. Foto tomada
de Nass et al. (1993).
3.2.2.8 Mancha de ojo
3.2.2.8.1 Agente causal, síntomas, transmisión y control
La enfermedad es producida por el hongo Dreschlera sacchari (= Bipolaris
sacchari).
Los síntomas se presentan como manchas con centros rojizos rodeadas por un
halo amarillo de forma alargada (Figura 42)
Transmisión por el agua de riego, lluvia y hojas enfermas. Humedad en las
hojas proporciona las condiciones ideales para que se desarrolle el agente
causal y cause la infección.
3.2.2.8.2 Control
Mediante el uso de de variedades resistentes.
FIGURA 42. MANCHA DE OJO. Foto de Nass et al. (1993).
3.2.2.9 Enfermedad de la piña o mal de piña
3.2.2.9.1 Historia y distribución
Fue detectada en 1893 y actualmente está presente en 52 países, entre ellos
Venezuela y Cuba.
3.2.2.9.2 Síntomas
Los primeros síntomas de la enfermedad aparece en los esquejes afectados, y
consisten en un enrojecimiento de los tejidos paranquimatosos que despiden
un olor similar al de la fruta de piña (Ananas comosus L. Merrill). Al pasar
varios días toman un color negro y se desintegran, originando el ahuecamiento
de la estaca, la que en casos severos, se pudre completamente antes de la
brotación de las yemas (Figura 43).
3.2.2.9.3 Transmisión
Los conidios del hongo (Ceratocystis paradoxa (Dade) C. Moreau =
Thielaviopsis paradoxa (de Seynes) V. Hohn) son arrastrados por la lluvia, los
animales y el agua de riego, propagando la enfermedad a distancias
considerables.
3.2.2.9.4 Plantas hospedantes
Se ha encontrado en maíz (Zea mays L.), fruta bomba o lechosa (Carica
papaya L), cocotero (Cocus nucífera L.), palma real (Roystonea regia (H.B.K)
Cook) y otros.
FIGURA 43. MAL DE PIÑA.
Foto de Nass et al. (1993).
3.2.2.9.5 Control
Como medidas de control se recomienda emplear variedades resistentes,
utilizar en la siembra esquejes con no menos de 3 yemas y aplicarles,
previamente, un tratamiento con funguicidas para evitar la entrada del
organismo causal, así como realizar una óptima preparación del suelo,
establecer los sistemas de drenaje en los casos requeridos y hacer buen
control de insectos taladradores o barrenadores que puedan facilitar la entrada
del hongo.
3.2.2.9.5 Importancia económica
Esta enfermedad es la causa principal de la pudrición de los esquejes de
semilla y origina bajos porcentajes de brotación, lo que ocasiona retrasos en el
cierre del campo, encarece las labores culturales y trae como resultado baja
producción agrícola de las plantaciones. Así mismo, es necesario hacer
inversiones significativas en la resiembra, a pesar de los aspectos negativos
que implica dicha práctica. En presencia de condiciones suelo-climáticas
favorables y variedades susceptibles, el organismo causal se puede desarrollar
sobre tallos en pie, principalmente si están atacados por ratas, insectos o han
sufrido daños mecánicos.
3.2.2.10 Fumagina
3.2.2.10.1 Historia y distribución
La fumagina de la caña de azúcar fue registrada, por primera vez, en Taiwán,
como una anomalía de origen fungoso en el año 1906 y hasta la fecha se ha
detectado en 29 países cañeros.
3.2.2.10.2 Síntomas
Esta enfermedad es producida por un hongo saprofito-epifito (Fumago sacchari
Speg. = Capnodium spp.), cuyos síntomas típicos consisten en la formación de
una costra negra (Figura 44) en forma de película superficial sobre las láminas
foliares y las vainas de la caña de azúcar. El organismo causal utiliza como
sustrato las secreciones azucaradas producidas por los áfidos, chinches,
saltahojas y otros insectos, que se concentran en el envés de las hojas y en el
interior de las vainas. En presencia de altas poblaciones de insectos, las hojas
se inclinan hacia abajo, modificando el hábito de erección típico de la variedad.
3.2.2.10.3 Control
No se recomienda aplicar medidas especiales para controlar esta enfermedad,
pero en presencia de ataques severos es aconsejable evitar el desarrollo de
altas poblaciones de los insectos que producen el sustrato para la nutrición del
organismo causal.
3.2.2.10.4 Importancia económica
Los daños que ocasiona la fumagina a las plantas de caña de azúcar,
consisten en la interrupción parcial del intercambio gaseoso a través de las
hojas, que afecta notablemente, el funcionamiento fisiológico, disminuye la
fotosíntesis y, por consiguiente, limita el crecimiento y la producción de azúcar.
FIGURA 44. ÁREAS NEGRAS DE FUMAGINA Y NINFAS DE SALTAHOJAS
VERDE
3.2.2.11 Mancha parda
3.2.2.11.1 Agente causal, síntomas y transmisión
La enfermedad es producida por el hongo Cercospora longipes.
Los síntomas se manifiestan como manchas de color pardo que van desde
apariencia de puntos hasta manchas necróticas en las hoja rodeadas de un
halo amarillo (Figura 45).
FIGURA 45. MANCHA PARDA
La transmisión se produce mediante el agua de riego, lluvia y hojas enfermas.
3.2.2.11.2 Control
Mediante el uso de variedades resistentes.
3.2.3 Enfermedades causadas por bacterias
3.2.3. 12. Escaldadura foliar
3.2.3.12. 1 Historia y distribución
Fue observada, por primera vez en Indonesia en el año 1920, y durante varios
años se propagó esta bacteriosis (Xanthomonas albilineans (Ashby) Dowson)
con gran intensidad, lo que determinó la proscripción de numerosas variedades
en diferentes áreas cañeras del mundo. En la actualidad, la escaldadura
(Figura 46) está presente en 41 países, en muchos de los cuales se ha
mantenido bajo control por medio del mejoramiento genético y el manejo.
3.2.3.12. 2 Síntomas
Los síntomas de la enfermedad se caracterizan porque en las hojas aparecen
rayas largas y estrechas de color blanco, con bordes bien definidos y paralelas
a la nervadura central, incrementándose hasta que llegan a ser totalmente
blancas. En algunos casos, dichas rayas pueden pasar a la vaina y al tallo.
Cuando las condiciones ambientales son favorables y en presencia de
variedades susceptibles, se presenta el enanismo de los tallos como resultado
del acortamiento de los entrenudos, las yemas laterales brotan y pueden morir
las plantas o el plantón o cepa completa. Los nuevos brotes exhiben los
mismos síntomas que las plantas adultas (Figura 46); existe una tendencia a
aumentar la enfermedad en relación con el número de cosechas de la
plantación.
FIGURA 46. ESCALDADURA Foto de Nass et al. (1993).
3.2.3. 12. 3 Transmisión y control
La propagación de la escaldadura foliar se produce por el material de siembra y
los implementos de corte, también en menor grado por diferentes especies de
insectos y roedores. Para su control se recomienda el empleo de variedades
resistentes, la selección de la semilla y la desinfección del machete y otros
medios utilizados para la cosecha, así como también el tratamiento térmico
acompañado, previamente, con inmersión de las yemas en agua corriente, a
temperatura ambiente, por más de 12 horas.
3.2.3. 12. 4 Plantas hospedantes
Además de la caña de azúcar, se han detectado diversas plantas infectadas
por la escaldadura foliar, aunque por inoculación artificial se ha logrado
reproducir los síntomas sobre maíz (Zea mays L.), bambú (Bambusa vulgaris
Schrad), pasto guinea (Panicum maximun Jacq.), pasto elefante (Pennisetum
purpureum Schum.) y otros.
3.2.3.12. 5 Importancia económica
Los daños de la fase aguda de esta patología se traducen en una sensible
disminución del rendimiento agrícola o tonelaje, lo que afecta, a su vez, el
contenido de sacarosa en el jugo.
3.2.3.12.6 Fase crónica
En las variedades resistentes y tolerantes sólo se presentan los síntomas de la
fase crónica y, en muchas de ellas son tan leves que pueden pasar
inadvertidos; sin embargo, cuando llega el momento crítico para la propagación
y desarrollo de la enfermedad se puede producir una epifitia repentina (ataque
severo), dependiendo de las condiciones ambientales y el manejo. Los haces
fibrovasculares de los tallos afectados con la fase crónica, presentan una
coloración rojo brillante, principalmente, en la región del nudo.
3.2.3.13 Raquitismo de las socas (RSD)
3.2.3.13. 1 Historia y distribución
El raquitismo de las socas fue observado por primera vez en Australia, en el
verano de 1944-1945 y, en la actualidad, se ha informado su presencia en más
de 47 países cañeros. Hasta mediados de la década del setenta el organismo
causal del raquitismo fue considerado como un virus y a partir de esa fecha han
existido diversos criterios en cuanto a su naturaleza: una bacteria, bacteria
coryneforme o un actinomiceto, sin embargo, posteriormente se confirmó que
dicha enfermedad es producida por una bacteria coryneforme (Leifsonia xyli
subesp.xyli Davis, Gillaspie, Vidaver y Harris). Se afrontan serias dificultades
en el diagnóstico de la enfermedad basado en la sintomatología interna y
externa del tallo y en la apariencia raquítica de las cepas, ya que el enanismo o
achaparramiento puede ser provocado por factores edáfico-climáticos
desfavorables y atenciones culturales deficientes.
3.2.3.13.2 Síntomas
El raquitismo de las socas o RSD se caracteriza por la presencia de varios
tallos raquíticos (Figura 47) dentro de una cepa, cuyo número aumenta en
relación con la cantidad de cortes del campo. Los haces fibro-vasculares de la
base de los nudos presentan coloraciones rojo naranja que aparecen como
pequeños puntos y rayas, cuando se corta transversalmente el tallo maduro.
Las investigaciones han demostrado que no existe relación entre la
sintomatología interna y externa y que pueden presentarse juntas o
independientes.
FIGURA 47. TALLO CON RAQUITISMO
(DERECHA) VS NORMAL (IZQUIERDA)
Foto de Nass et al. (1993).
3.2.3.13.3 Transmisión
La enfermedad se transmite por la semilla agámica procedente de plantas
enfermas, por el machete cañero, otros instrumentos de corte y, posiblemente,
por los roedores. Recientemente, se ha planteado que el organismo causal del
raquitismo puede pasar a los propágulos desde el suelo, las raíces y resto de
rizomas de un campo que estuvo infectado antes de ser demolido, si no fueron
realizadas adecuadamente las labores de preparación del suelo. Se ha
comprobado, de modo experimental, que cuando se corta un tallo enfermo, el
machete puede transmitir el organismo causal a 60 tallos sanos.
3.2.3.13.4 Plantas hospedantes
A pesar de no haberse encontrado hospedantes naturales del organismo
causal de esta enfermedad, se ha logrado infectar mediante inoculaciones
artificiales, diferentes variedades de pasto elefante (Pennisetum purpureum
Schum), maíz (Zea mays L.) y otras especies de plantas.
3.2.3.13. 5 Control
A causa de la importancia de esta enfermedad y a las dificultades que se
presentan en la obtención de variedades resistentes a ella, se recomienda,
como método de control más adecuado, el tratamiento hidro-térmico de la
semilla a 50,5°C durante 2 horas y, recientemente, se sugiere sumergir los
propágulos en agua a temperatura ambiente durante 24 a 48 h, seguido por
agua a 50°C durante 2,5 a 3 h. Otros autores consid eran que 51°C durante una
hora controla la enfermedad sin afectar significativamente la brotación de las
yemas y los primordios radicales.
Algunos antibióticos han controlado el organismo causal del raquitismo de los
retoños in Vitro, pero a causa de las características de la caña de azúcar, se
considera impracticable el empleo de estos productos en condiciones de
producción. También desempeña un papel importante la desinfección del
machete y los órganos de corte de la combinada antes de pasar de un campo a
otro durante la cosecha de la caña.
3.2.3.13.6 Importancia económica
Las pérdidas producidas por el raquitismo de las socas han llegado, en
ocasiones, hasta 67% en variedades susceptibles, pero como promedio se ha
estimado 15% en caña clase plantilla y de 20 a 25% en las socas sucesivas.
3.2.3.14. Raya roja bacteriana y pudrición del cogollo [Pseudomonas
rubrilineans (Lee et al.) Stapp.]
3.2.3.14.1 Historia y distribución. Informada por vez primera en
Hawai (1922), y actualmente, se encuentra presente en más de 50 países
cañeros.
3.2.3.14.2 Síntomas y signos. Rayado de las hojas y pudrición del
cogollo, así como del tercio superior del tallo en presencia de variedades
susceptibles y condiciones suelo-climáticas favorables. Las rayas de las
hojas son largas y estrechas, con bordes bien definidos y presentan una
coloración desde el verde claro, amarillo rojizo hasta el rojo oscuro, las que
se unen para formar bandas que llegan hasta el cuello de la hoja. En
presencia de humedad relativa y temperaturas favorables, brotan por los
estomas gotas de exudado bacteriano que constituyen el medio de
propagación de la enfermedad. La pudrición del cogollo es la fase más
destructiva, porque muere el punto de crecimiento, brotan las yemas laterales
y la pudrición comienza a descender hacia la base del tallo (Figura 48).
3.2.3.14.3 Transmisión. La lluvia combinada con el viento, los
insectos y el hombre. La transmisión por la semilla agámica no ha sido
confirmada, pero se deben eliminar del material de siembra los tallos que
presentan los síntomas agudos de la enfermedad.
3.2.3.14.4 Plantas
hospedantes naturales.
hospedantes.
No
se
han
informado
3.2.3.14.5 Control. Variedades resistentes.
3.2.3.14.6 Importancia económica. En la fase aguda de la
enfermedad, se pueden producir pérdidas de 20 a 30 % de la cosecha.
FIGURA 48. RAYA ROJA
3.2.3.15. Síntomas de déficit hídrico
3.2.3.15.1 Síntomas
Cuando se presenta un déficit hídrico en el cultivo de la caña de azúcar, las
hojas de las plantas se tornan clorótica, es decir adquieren un color verde
pálido (Figura 49-2), semejante a una deficiencia de nitrógeno, y si esta
deficiencia de agua se prolonga las hojas bajeras comienzan a secarse y
luego mueren (Figuras 49-2 y 49-4). También los entrenudos del tallo se
acortan (Figura 49-3), marcando la fecha en que ocurrió esa deficiencia, si es
que se suple posteriormente con agua al cultivo, considerando que la caña
tarda entre 11 y 16 días para formar un entrenudo, dependiendo de la
variedad de caña, condiciones agro-ecológicas y de manejo.
3.3. ORIENTACIONES PARA LA TOMA DE MUESTRAS DE PLANTAS
PARA FINES DE DIAGNÓSTICO DE ENFERMEDADES Y OTROS DAÑOS
Considerando que los laboratorios del Instituto Nacional de Investigaciones
Agrícola (INIA) son uno de los más experimentados y dotados con
tecnologías más avanzadas, particularmente los laboratorios de Fitopatología
del INIA Portuguesa e INIA Yaracuy, se indican las siguientes instrucciones,
revisada y ampliada por la Fitopatóloga del INIA Yaracuy, Jenny Cova, para
tomar muestras de plantas para fines de diagnósticos de enfermedades u
otros daños:
1) Los LABORATORIOS DE FITOPATOLOGIA del INIA se dedican al
diagnóstico de enfermedades de diferentes cultivos, entre ellos la caña de
azúcar. También contribuyen en la prevención del ingreso de enfermedades
exóticas provenientes de otros países, tales como las cuarentenas cerradas a
que son sometidas las variedades de caña traídas del exterior, en Ocumare
de la Costa y cuarentenas abiertas en Chivacoa (Fundacaña y Yaritagua
(Estación Local Yaritagua). Estas dos últimas localidades se ubican en el
estado Yaracuy.
2) El diagnóstico e identificación se realiza a través del uso de técnicas
tradicionales, pruebas bioquímicas, así como el uso de técnicas más
avanzadas y actualizadas como las inmunoenzimáticas (ELISA y Dot blot) y
moleculares.
Muestreo
con
fines
de
Diagnósticos
inmunoenzimáticas (cultivo: caña de azúcar)
mediante
técnicas
•
Se toma un total de 20 hojas TVD (Top-Visible-Dewlap, hoja con el
primer labio visible) por cada 3 ha de semillero o 5 ha de lote
comercial. Para determinar mosaico, hoja amarilla y escaldadura.
•
Para determinación de raquitismo, se cortan 20 tercios inferiores por
cada 3 ha de semillero o 5 ha de lote comercial
3) Normalmente los productores se dan cuenta de que sus plantas están
enfermas al observar algún tipo de alteración en las hojas y ramas, que
evidencie que algo esta sucediendo. Sin embargo, los síntomas fácilmente
observables en la parte aérea de la planta (manchas, necrosamiento,
marchitez, etc) pudieran estar relacionados con un mal funcionamiento del
sistema radical. Por ello, se recomienda llevar al laboratorio, la planta completa,
con el sistema radical incluido. Esta provee la información necesaria para hacer
un diagnóstico apropiado.
4) Cuando este recolectando las plantas remuévalas con sumo cuidado, debido
a que los tejidos de las raíces afectadas al igual que las estructuras de los
patógenos que se encuentran asociados a estos son muy delicados.
Por lo tanto, al halarlos se corre el riesgo de dejar gran parte del tejido de las
raíces en el suelo, lo cual puede dificultar el diagnóstico.
5) Cuando se realiza el diagnóstico de enfermedades en las plantas, es
necesario desarrollar varias pruebas. Por esa razón, es recomendable
consignar muestras representativas en cantidad y calidad; porque esto asegura
que se disponga de suficiente tejido vegetal para realizar las pruebas
necesarias.
6) Se recomienda colectar plantas con síntomas iniciales y plantas con
síntomas avanzados o muy severos. Esto, en algunos casos puede facilitar la
observación de estados reproductivos en el caso de algunos hongos
fitopatológicos.
7) Se debe tener en cuenta que no es recomendable colectar tejidos totalmente
muertos, ya que normalmente estos son invadidos por diversos organismos
que dificultan la determinación del agente causal.
1
3
FIGURA 49. CULTIVO DE CAÑA DE AZÚCAR CON APARIENCIA
SALUDABLE (1) VERSUS PLANTAS CON DÉFICT HÍDRICO SEVERO (2,
3, 4).
2
4
8) Lo ideal es colectar las plantas inmediatamente antes de llevarlas al
laboratorio de diagnóstico. La muestra debe ser consignada al laboratorio en un
período no mayor de 24 horas. Si esto no es posible, se recomienda
mantenerlas envueltas en papel periódico, luego en una bolsa y colocarlas en
la parte baja de una nevera.
Si se encuentra en un sitio lejano y necesita trasladarse al laboratorio, no
coloque las muestras directamente en el carro. Después que las muestras
estén en la bolsa, colóquelas en una cava que contenga hielo en su interior.
9) Para realizar el diagnóstico de una muestra de planta es necesario reunir
diversa información acerca de la misma, lo cual es muy importante y va a
ayudar a realizar un diagnóstico certero y preciso.
Cuando lleve muestras de plantas para su análisis al laboratorio de diagnóstico
incluya información sobre:
• -Planta o cultivo: Nombre y edad del cultivo. Variedad. Nombre del
colector. Lugar de procedencia. Área sembrada, área afectada. N° de
lote.
•
-Prácticas culturales: Cultivos previos, productos agroquímicos
utilizados (fertilizantes, herbicida, insecticida, etc.), tipo de riego y
calidad del agua, distancias entre plantas.
•
-Ambiente: Características del suelo (topografía, drenaje, textura,
grados de salinidad y acidez), características climáticas y
meteorológicas,
•
-Síntomas: Apariencia de la planta: Altura, color, daños, tamaño y tipo
de lesiones, y cualquier otra información que pueda ser de importancia
en el momento del diagnóstico.
•
-Lugar y superficie del lote muestreado
•
-Fecha de recolección
•
-Forma de toma de la muestra: azar, sistemática y, número de
submuestras/ha.
•
-Forma en como se presentan los síntomas en el campo (localizados,
en focos, generalizados, etc)
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
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