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6CFE01-059 2/9 Ecología germinativa del endemismo ibérico amenazado Narcissus longispathus (Amaryllidaceae) HERRANZ SANZ, J.M.1, COPETE CARREÑO E.1, COPETE CARREÑO M.A.1 y FERRANDIS GOTOR, P.1 1 Unidad de Botánica y Ecología. Escuela Técnica Superior de Ingenieros Agrónomos. Campus universitario, s/n, 02071, Albacete. Resumen Narcissus longispathus es un geófito amenazado cuyas semillas, en el momento de la dispersión, tienen embriones subdesarrollados y latentes. El reforzamiento de las poblaciones naturales requiere la producción de planta ex situ, lo que precisa el conocimiento de su ecología germinativa. En este trabajo se evalúan los requerimientos de temperatura e iluminación para el crecimiento del embrión, rotura de la latencia y germinación, incubando semillas bajo condiciones controladas de laboratorio. Asimismo, la fenología de crecimiento del embrión y de emergencia de radículas es analizada exhumando mensualmente semillas sembradas en condiciones de umbráculo. La longitud media del embrión en semillas recién dispersadas es 1.50 mm, y los embriones tienen que crecer hasta 3.80 mm para que se produzca la germinación. Ésta se produce de forma óptima (>80%) en condiciones de oscuridad cuando las semillas se someten a 2 meses de estratificación cálida simulando temperaturas de otoño (1 mes a 20/7ºC + 1 mes a 15/4ºC), seguidos de 2 meses de estratificación fría (5ºC) simulando temperaturas invernales y posterior incubación durante 30 días a 15/4ºC. Bajo condiciones casi naturales (umbráculo) los embriones crecen durante el otoño y el invierno, emergiendo las radículas y plántulas a principios de primavera. Palabras clave Crecimiento del embrión, fenología, iluminación, latencia, temperatura. 1. Introducción Narcissus longispathus Pugsley (Amaryllidaceae), pertenece a la sección Pseudonarcissi, con centro de origen y diversificación en la Península Ibérica (RÍOS-RUÍZ et al., 1999). Constituye un buen ejemplo de endemismo ibérico local, restringido a las sierras de Cazorla y Mágina (Jaén) (Figura 1), donde habita a orillas de arroyos y en praderas juncales con humedad permanente, formando pequeñas poblaciones con distribución severamente fragmentada (HERRERA et al., 1999; HERNÁNDEZ-BERMEJO et al., 2003). Por estas razones, así como por la vulnerabilidad a las perturbaciones de su hábitat natural ha sido incluida en la Lista Roja de Flora Vascular Española (MORENO, 2008) en la categoría “en peligro de extinción”. Para conservar especies de flora amenazadas es fundamental conocer su ecología germinativa, tanto para producir planta destinada al reforzamiento de las poblaciones naturales como para comprender las diferentes etapas del ciclo de vida de la especie y las adaptaciones a su hábitat (NAVARRO y GUITIAN, 2003). 3/9 A B Figura 1. Distribución de Narcissus longispathus en la Península Ibérica (A) y más detalladamente poblaciones detectadas en la provincia de Jaén (B) (HERNÁNDEZ-BERMEJO et al., 2003). En los estudios realizados hasta la fecha, las condiciones ambientales de temperatura requeridas para la germinación de Narcissus varían mucho de unas especies a otras. Así, en Narcissus serotinus L. (sección Serotini) y N. cavanillesii A. Barra y G. López (sección Tapeinanthus) se alcanzan porcentajes de germinación > 90% a 15ºC en oscuridad antes de los 30 días (MARQUES & DRAPER, 2012), presentando embriones desarrollados y ausencia de latencia. En N. dubius Gouan (sección Tazettae), N. pallidulus (Graells) D. A. Webb (sección Ganymedes), N. jonquilla L. y N. fernandesii Pedro (sección Jonquilla) hemos observado que las semillas recién dispersadas tienen embriones perfectamente desarrollados, pero presentan algún nivel de latencia fisiológica que retrasa la emergencia de las radículas hasta 1-2 meses de incubación a la temperatura adecuada. En cambio, en las especies de la sección Pseudonarcissi estudiadas la germinación es muy lenta, ya que presentan embriones subdesarrollados en el momento de la dispersión y además son latentes, requiriendo unas determinadas condiciones de temperatura para que puedan crecer dentro de la semilla hasta alcanzar el tamaño crítico que posibilita la emergencia de la radícula (latencia morfofisiológica, en adelante LMF). En las angiospermas se han descrito 6 niveles de LMF simple que requieren estratificación cálida (≥15ºC) para el crecimiento del embrión, y 3 niveles de LMF compleja, que requieren estratificación fría (0-10ºC) para el desarrollo del embrión (BASKIN et al., 2008). En Narcissus pseudonarcissus L. (VANDELOOK & VAN ASSCHE, 2008) y N. hispanicus Gouan (COPETE et al., 2011) el embrión crece a temperaturas cálidas propias del verano y principios de otoño (28/14, 25/10 y 20/7ºC) y termina de desarrollarse a temperaturas más frías (15/4ºC) propias de finales de otoño, emergiendo la radícula a continuación. Sin embargo, el cotiledón no emerge hasta finales de invierno, una vez que la semilla con radícula emergida es expuesta a un largo periodo de estratificación fría. Este nivel se conoce como LMF simple y profunda del epicotilo. En Narcissus alcaracensis Ríos et al. (HERRANZ et al., 2013) el crecimiento del embrión se produce durante la estratificación fría a 5ºC y a continuación, hacia finales de invierno-principios de primavera, se produce la emergencia de la radícula seguida de la emergencia del cotiledón, presentado LMF compleja de tipo intermedio. En las semillas de Narcissus longispathus recién dispersadas la longitud del embrión es 1.50±0.05 mm versus un tamaño de la semilla de 4.09±0.05 mm (m±s.e., n=25), lo que indica que el embrión es subdesarrollado. El embrión pequeño y la ausencia de germinación durante 4/9 1 mes de incubación a temperaturas propias de su hábitat natural a lo largo del año (5, 15/4, 20/7, 25/10, 28/14 y 32/18ºC), sugiere que las semillas de N. longispathus presentan algún nivel de LMF, cuya determinación es la finalidad de este trabajo. 2. Objetivos En concreto, los objetivos de este trabajo son analizar: a) La fenología del crecimiento del embrión y de la germinación en condiciones casi naturales; b) La influencia de diferentes tipos de estratificación (fría, cálida+fría) y del tiempo de almacenaje en seco de las semillas sobre la germinación. 3. Metodología Material Vegetal Para este estudio, las semillas fueron recolectadas en la población del arroyo de Valdeazores (Sierra de Cazorla, Jaén, 30SWG1499, 1330 m), formada por alrededor de 2000 ramets, y localizada en una pradera juncal con humedad permanente dominada por Pteridium aquilinum, Scirpus holoschoenus, Schoenus nigricans y Carex flacca. El 15 de Junio de 2003 se recogieron unas 550 cápsulas (aproximadamente 22000 semillas). Las semillas se desecaron a temperatura ambiente de laboratorio (21-22ºC, h.r.≈60%) hasta el 1 de Julio, momento de inicio de los test, considerando que en ese instante la edad de las semillas es 0 meses. Las semillas utilizadas en tests posteriores se conservaron en sobres de papel a temperatura ambiente. Fenología del crecimiento del embrión y de la germinación El 1 de Julio de 2003, 50 semillas mezcladas con arena fueron puestas en cada una de 12 bolsas de tela de nylon. Las bolsas se enterraron a 5 cm de profundidad en una maceta ubicada en un umbráculo del campo de prácticas de la Escuela Técnica Superior de Ingenieros Agrónomos de Albacete. Esta maceta fue regada hasta la capacidad de campo una vez por semana desde el 1 de Octubre hasta el 31 de mayo y dos veces al mes el resto del año, tratando de imitar las condiciones de humedad existente en el hábitat natural de la planta. El registro de temperaturas en el umbráculo fue continuo a través de una estación meteorológica. Las bolsas fueron exhumadas a principio de cada mes, y su contenido fue pasado por un tamiz (1 mm) para separar las semillas de la arena. En 25 semillas recuperadas intactas los embriones fueron medidos utilizando una lupa binocular equipada con micrómetro, calculando la media y el error estándar para la muestra. También el 1 de Julio, 3 réplicas de 200 semillas cada una fueron sembradas en bandejas de plástico (40 x 30 x 5 cm) rellenas de turba y arena en proporción 3:1 y provistas de agujeros de drenaje. Las bandejas se colocaron en el umbráculo descrito arriba y fueron sometidas a la frecuencia de riego indicada. Las bandejas se examinaron semanalmente y las plántulas emergidas fueron contadas y eliminadas. 5/9 Efecto de diferentes tratamientos de estratificación y tiempo de almacenaje de las semillas sobre la germinación Las semillas fueron sometidas a 2 tratamientos de estratificación: (1) 4 meses de estratificación fría y húmeda a 5ºC, (2) 2 meses de estratificación cálida y húmeda (1 mes a 20/7ºC + 1 mes a 15/4ºC) seguida por 2 meses de estratificación fría (5ºC). Las estratificaciones se llevaron a cabo en condiciones de oscuridad, dado que en la especie próxima N. alcaracensis fueron más efectivas que las realizadas con luz para promover la germinación (HERRANZ et al., 2013). Las condiciones de oscuridad se lograron envolviendo las placas Petri en 2 capas de papel de aluminio. Para la estratificación las semillas se colocaron en placas Petri sobre 2 capas de papel de filtro humedecido con agua destilada. Tras los tratamientos de estratificación, se llevaron a cabo test de germinación durante 30 días, tanto en luz como en oscuridad, a la temperatura constante de 5ºC, así como a las temperaturas fluctuantes (12/12hr) de: 15/4, 20/7, 25/10, 28/14 y 32/18ºC, la fase de luz de cada cámara de germinación fue programada para coincidir con el tramo de temperatura más alta y la fase de oscuridad con el tramo de temperatura más bajo. Un lote de 100 semillas fue asignado a cada test, distribuido en 4 réplicas de 25 semillas. Cada réplica fue colocada en una placa Petri de 9 cm de diámetro sobre una capa doble de papel de filtro humedecido con agua destilada y sellada con parafilm para evitar la pérdida de humedad. Para evaluar la influencia del tiempo de almacenaje en seco de las semillas sobre la capacidad germinativa, los test con semillas expuestas al tratamiento (2) se llevaron a cabo con semillas almacenadas 0, 8 y 20 meses. También se realizó un test control con semillas incubadas tanto en luz como en oscuridad durante 5 meses a 15/4, 20/7, 25/10, 28/14 y 32/18ºC, a fin de comparar los resultados con los obtenidos con semillas estratificadas durante 4 meses e incubadas 1 mes a distintas temperaturas. La manipulación de las semillas y placas Petri en condiciones de oscuridad se efectuó mediante una lámpara de luz verde (LUNA et al., 2004). 4. Resultados Fenología del crecimiento del embrión y de la germinación En las semillas enterradas el crecimiento del embrión fue continuo desde el 1 de Septiembre de 2003 hasta el 1 de Mayo de 2004, aunque las tasas de crecimiento más altas se registraron en Octubre, Diciembre y Marzo. Para el 1 de Marzo de 2004, la longitud del embrión era 3.02±0.11 mm y un 16% de las semillas ya habían germinado dentro de las bolsas. En semillas con la testa rota, a punto de germinar, el tamaño del embrión, denominado tamaño crítico, fue 3.80±0.06 mm. El 1 de Abril de 2004 la longitud del embrión fue 3.37±0.11 y un 62% de las semillas germinaron dentro de las bolsas. En Marzo de 2004, la temperatura media de las máximas y de las mínimas registrada en el umbráculo fue 13 y 2ºC, respectivamente (Figura 2). 35 A 15 5 -5 J 100 A S O N D J F M A M J M A M M A M A 4.0 4 B 80 (0) (68) (52) (62) (16) (16) (0) 3.5 3,5 3.0 3 2.5 2,5 60 2.0 2 40 1.5 1,5 Shoot emergence Emergencia del tallo Longitud del embrión Embryo length 20 0 1.0 1 Embryo length (mm) (%)(%) Emergence del tallo Emergencia minimum mínimo maximum máximo 25 Longitud del embrión (mm) Temperatura Mean daily media (ºC) (ºC) temperatures 6/9 0.5 0,5 0.0 0 01J 01A 01S 01O 01N 01D02 E01 F01M01A01M01 J 07 08 09 2003 10 11 12 01 02 032004 04 05 06 03 03 03 03 03 03 04 04 04 04 04 04 01M01 A01M 03 04 05 2005 05 05 05 01M01A 032006 04 06 06 01M01 A 032007 04 07 07 Figura 2. Temperaturas medias diarias mínimas y máximas (A) y fenología de crecimiento del embrión y emergencia del tallo a partir de semillas sembradas en Julio de 2003(B). Números entre paréntesis próximos a la longitud del embrión indican la emergencia de raíz (%) si es > 0. Entre el 1 de Julio de 2003 y el de Febrero de 2004 no emergió ninguna plántula. Estas empezaron a emerger el 1 de Marzo de 2004, en un porcentaje similar al de las semillas con radículas emergidas dentro de las bolsas con semillas enterradas, lo que descarta cualquier tipo de latencia del epicotilo. Los valores más altos de emergencia de plántulas se registraron durante Marzo de 2004, alcanzando la emergencia acumulada al final de dicho mes el 73.7±4%. En la primavera de 2004, la última emergencia de plántulas se registró el 8 de Mayo, alcanzando la emergencia acumulada de 75.3±4.1%. Entre el 8 de Mayo de 2004 y el 1 de Marzo de 2005 no emergió ninguna plántula, pero al final de la primavera de 2005 la emergencia acumulada alcanzó 96±2%. La última emergencia se registró el 10 de Abril de 2007, pero la emergencia acumulada (96.5±2%) apenas se incrementó durante los 2 últimos años (Figura 2). Efecto de diferentes tratamientos de estratificación y tiempo de almacenaje de las semillas sobre la germinación En el test control la germinación fue nula en todos los casos. Asimismo, el tratamiento de estratificación fría a 5ºC durante 4 meses no promovió la germinación, y ninguna semilla germinó cuando fueron transferidas a las diferentes temperaturas de incubación. El tratamiento de estratificación consistente en 2 meses de estratificación cálida (1 mes a 20/7ºC + 1 mes a 15/4ºC), simulando temperaturas de otoño, seguidas por 2 meses de estratificación fría a 5ºC, simulando temperaturas de invierno, promovió la germinación. Así, semillas con 0 meses de almacenaje germinaron 39±3.8% a 15/4ºC en oscuridad, porcentaje que se incrementó hasta 76±4.2% en semillas almacenadas en seco durante 20 meses. Los 7/9 porcentajes de germinación más altos se lograron en semillas incubadas a 5 y 15/4ºC en condiciones de oscuridad, siendo el máximo absoluto 86.8±2.9%, logrado a 5ºC. Los porcentajes de germinación aumentaron significativamente (p < 0.001) con el tiempo de almacenaje durante el periodo de 20 meses evaluado en este estudio. Las semillas incubadas en oscuridad tuvieron porcentajes de germinación significativamente más altos (p < 0.001) que los alcanzados con semillas incubadas en luz (Figura 3). Germinación (%) 100 100 5ºC 100 15/4ºC 80 80 80 60 60 60 40 40 40 20 20 20 Incubación: Luz 20/7ºC Oscurida 0 0 0 Germinación (%) 100 8 20 0 0 100 25/10ºC 8 20 100 28/14ºC 8 20 8 20 32/18ºC 80 80 80 0 Figura 3. Efecto de las condiciones de incubación (luz/oscuriad y temperatura) (0, 8 60 y tiempo de almacenaje de las semillas 60 60 y 20 meses) sobre la germinación (media±SE, si SE>2%) de semillas de Narcissus longispathus estratificadas en condiciones de oscuridad durante 1 mes 40 40a cada temperatura de la secuencia: 40 20/7+15/4+5+5ºC, y a continuación transferidas a las temperaturas que aparecen en la figura durante 30 días. 5. Discusión 20 20 0 20 0 0 8 20 0 0 8 20 0 Las semillas de N. longispathus tienen embriones subdesarrollados en el momento de la dispersión (longitud = 1.50±0.05 mm). En las semillas enterradas en el umbráculo los embriones crecieron durante el otoño-invierno, precisando varios meses para alcanzar el tamaño crítico de 3.80±0.06 mm y emerger las primeras radículas, lo que indica que tienen LMF. El lento crecimiento del embrión durante los meses de Julio, Agosto y Septiembre, permite descartar la existencia de los niveles de LMF simple. La ausencia de germinación tras 4 meses de estratificación fría a 5ºC y posterior incubación durante 1 mes a esta temperatura, con apenas crecimiento del embrión, nos permite descartar la existencia de LMF compleja intermedia o profunda. Por otra parte, los resultados obtenidos en este estudio tanto en condiciones de umbráculo (con crecimiento del embrión y emergencia de radículas tras exposición a temperaturas cálidas de otoño seguidas de frías durante el invierno) como de laboratorio, con abundante germinación (>80%) tras estratificación cálida seguida de fría, indican que las semillas de N. longispathus poseen LMF compleja no profunda. La presencia del nivel no profundo es también confirmada por el aumento de los porcentajes de germinación con el tiempo de almacenaje en seco de las semillas. Es la primera vez que en Narcissus se cita este nivel de LMF, siendo lo más característico del mismo que la 8/9 estratificación fría precisa para el crecimiento del embrión sólo es efectiva si va precedida de una estratificación cálida (BASKIN & BASKIN, 1998). 6. Conclusiones Las semillas de Narcissus longispathus poseen LMF compleja no profunda. El protocolo para producir plantas destinadas al reforzamiento de poblaciones naturales a partir de semillas, puede ser el siguiente: El 1 de Septiembre, se someten las semillas a la siguiente secuencia de estratificación en oscuridad: 1mes a 20/7ºC + 1 mes a 15/4ºC + 2 meses a 5ºC, a continuación se incuban a 15/4ºC en oscuridad. El 1 de Febrero las semillas con radículas emergidas se siembran en macetas y se riegan hasta finales de Mayo, cuando los bulbos han alcanzado 2-3 mm de diámetro, interrumpiendo el riego hasta principios del próximo Noviembre (ciclo vegetativo 2). Alrededor de Febrero en el cuarto ciclo los bulbos alcanzan 1.5-2 cm de diámetro y se pueden introducir en la naturaleza. 7. Agradecimientos Estudio realizado en el marco del desarrollo del proyecto “Ecología germinativa de 12 especies de flora singular y/o amenazada con latencia morfofisiológica”, financiado por la Consejería de Educación y Ciencia de la Junta de Comunidades de Castilla-La Mancha. 8. Bibliografía BASKIN BASKIN, C.C.; BASKIN, J.M. 1998. Seeds: ecology, biogeography, and evolution of dormancy and germination. Academic Press, San Diego, California. BASKIN, C.C.; CHIEN, C.T.; CHEN, S.Y.; BASKIN, J.M. 2008. Germination of Viburnum odoratissimum seeds: a new level of morphophysiological dormancy. Seed Sci Res, 18: 179184. COPETE, E.; HERRANZ, J.M., FERRANDIS, P.; BASKIN, C.C.; BASKIN, J.M. 2011. Physiology, morphology and phenology of seed dormancy-break and germination in the endemic Iberian species Narcissus hispanicus (Amaryllidaceae). Ann Bot, 107: 1003-1016. 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