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Herpesviriosis en México: situación actual y
perspectivas
Rebeca Vásquez-Yeomans y
Jorge Cáceres-Martínez
ISA
Características morfológicas del OsHV-1
TEGUMENTO
CÁPSIDE (116 nm)
NÚCLEO
ENVOLTURA
 Forma esférica poligonal,
(icosaédrica)
 207.4 kpb
 ADN lineal de doble
cadena
 38% CG
Entre las especies donde se ha encontrado tenemos:
Crassostrea virginica
Crassostrea gigas
Ostrea edulis
Ostrea angasi
Tiostrea chilensis
Ruditapes philippinarum
Pecten maximus
Nodipecten subnodosus
Distribución global de Herpes virus
 Causa mortalidad de hasta 100 % en cultivos de larvas y
juveniles de ostión
IFREMER
 Eventos recurrentes, principalmente en verano
 CAUSAS: Compleja interacción de factores tales como:
incremento de la temperatura, estrés fisiológico, malas
prácticas y contaminantes, entre otros
5
Signos de la enfermedad
Larvas
Tomado de Renault y Novoa (2004)
 Reducción en actividad de nado y alimentación
 Lesiones en manto y velo
 Nado errático en círculos, deposición en el fondo
Impacto en la Industria ostrícola Francesa
Francia produce130,000
toneladas al año siendo
el cuarto productor a
nivel mundial después
de China, Japón y Corea
del Sur
Problema de graves consecuencias en Francia
OsHV-1
OsHV-1 µVar
2008-2011
A herpes virus has decimated oysters
along France’s 5,500- kilometer coast for a
fourth season
Estudios de herpes virus en México
Cáceres-Martínez, J. A. y R. Vásquez -Yeomans. (2003) Presence of giant polymorphic cells in
Crassostrea gigas cultured in Bahia Falsa, Baja California NW Mexico . Journal of Shellfish Research.
22(3): 711-714
Vásquez Yeomans, R., J. A. Caceres Martinez y A. Figueras Huerta. (2004) Herpes-like virus
associated with eroded gills of the Pacific oyster Crassostrea gigas in Mexico.. Journal of Shellfish
Research. 23(2): 417-419
Vásquez-Yeomans, R., A. M. García-Ortega y J. A. Cáceres-Martínez. (2010) Gill erosion and
herpesvirus in Crassostrea gigas cultured in Baja California, México. Diseases of Aquatic Organisms.
89: 137-144
Cáceres-Martínez, J. A. y R. Vásquez -Yeomans. (2010) Presence of epibionts and herpesvirus in the
lion-paw scallop Nodipecten subnodosus. En Aquaculture 2010 Del 01 al 05 de marzo. San Diego,
California, Estados Unidos. World Aquaculture Society. Abstract.
Chávez Romero, Y. A., J. A. Cáceres -Martínez, R. Vásquez -Yeomans y A. M. García -Ortega. (2011)
Genetic characterization of ostreid herpesvirus associated with mortalities of pacific oyster Crassostrea
gigas in northwestern México. En 2011 International Malacology Reunion Del 27 al 30 de junio. La Paz,
Baja California Sur, México. Western Society of Malacologists. Abstract.
Evidencias
y
validación
Alteraciones histológicas
3
?
b
Lesiones
2
MET
4
Mortalidades
1
HIS
6
PCR- secuenciación
Presencia del OsHV en
Baja California
Año
Mes
Localidad
Estadio de desarrollo
Mortalidad
2002
Agosto
Bahía Falsa
Juvenil
Sin datos
2005
Agosto
Bahía Falsa
Juvenil
Sin estimar
2006
Abril
San Quintín
Semilla (20-30 mm)
Sin estimar
2008
Septiembre
San Quintín
Adulto (115-123 mm)
No
2008
Noviembre
Bahía Falsa
Adulto (83-110 mm)
No
2009
Junio
Bahía de Todos Santos
Semilla (3 mm)
70%
2009
Julio
Bahía Falsa
Semilla (2-3 mm)
97%
2009
Julio
Bahía de Todos Santos
Semilla (3 mm)
40%
2009
Julio
Laguna Manuela
Semilla (20-37 mm)
85-95%
2009
Agosto
Bahía Falsa
Juvenil (48-68 mm)
Sin estimar
2009
Agosto
Bahía Falsa
Semilla (11-20 mm)
Sin estimar
2009
Agosto
Laguna Manuela
Juvenil (26-52 mm)
Sin estimar
2009
Noviembre
Laguna Manuela
Semilla (5-10 mm)
Sin estimar
2009
Noviembre
Laguna Manuela
Semilla (5- 20 mm)
Sin estimar
2009
Diciembre
Bahía Falsa
Juvenil (30-45 mm)
Sin datos
2010
Enero
Laguna Manuela
Semilla (15-25 mm)
70%
2010
Marzo
Guerrero Negro
Semilla (25-35 mm)
50%
2011
Junio
Flupsy – Ensenada
Semilla (2-5 mm)
100%
2011
Julio
Flupsy – Ensenada
Semilla (8-10 mm)
79%
2 -37 mm 73% (40-97%) Verano
Presencia del OsHV en
Baja California Sur.
AÑO
MES
LOCALIDAD
ESTADIO DE DESARROLLO
MORTALIDAD
2008
Noviembre
Bahía Tortugas
Juvenil (50-60 mm)
No
2008
Noviembre
Bahía Tortugas
Juvenil (43-60 mm)
No
2008
Diciembre
Bahía Tortugas
Juvenil (36- 52 mm)
Sin estimar
2008
Diciembre
Bahía Tortugas
Juvenil (35-55 mm)
Sin estimar
2009
Marzo
Bahía Tortugas
Adulto (55-80 mm)
Sin estimar
2009
Marzo
Bahía Tortugas
Adulto (82-134)
No
2009
Abril
Bahía Tortugas
Semilla (5-10 mm)
Sin estimar
5 -55 mm.
Presencia del OsHV en Sonora.
AÑO
MES
LOCALIDAD
ESTADO DE DESARROLLO
MORTALIDAD
2007
Enero
El Riíto
Adulto (74-90 mm)
No
2007
Enero
Estero Morúa
Adulto (82-113 mm)
No
2007
Marzo
Bahía del Tobari
Juvenil (36-55 mm)
80%
2007
Marzo
Estero Morúa
Adulto (82-13 mm)
No
2007
Marzo
Bahía de Kino
Adulto (83-90 mm)
No
2007
Marzo
Bahía de Kino
Semilla (5-15 mm)
75%
2007
Mayo
Estero Morúa
Adulto (80-100 mm)
No
2007
Noviembre
Estero Morúa
Adulto (85-115 mm)
No
2008
Marzo
Bahía San Jorge
Adulto (65-92 mm)
No
2008
Marzo
Bahía de Kino
Juvenil (27-40 mm)
60-70%
2008
Marzo
Bahía de Kino
Semilla (15-20 mm)
70%
2009
Abril
Bahía de Kino
Semilla (15-20 mm)
100%
2009
Abril
El Riíto
Adulto (90-130 mm)
50%
2009
Mayo
El Riíto
Adulto (85-105 mm)
Sin estimar
2009
Noviembre
Estero Los Mélagos
Semilla (10-15 mm)
Sin estimar
2009
Noviembre
Estero La Cinita
Juvenil (30-47 mm)
No
5-55 mm 80% (60-100%) Primavera
Presencia del OsHV en Sonora.
AÑO
MES
LOCALIDAD
ESTADO DE DESARROLLO
MORTALIDAD
2011
Marzo
Estero La Cina
Juvenil (40-53 mm)
Sin estimar
2011
Marzo
Estero La Santa Cruz
Juvenil (38-50 mm)
Sin estimar
Presencia del OsHV en Sinaloa.
AÑO
2005
MES
Marzo
LOCALIDAD
Bahía de Altata
ESTADO DE DESARROLLO
Juvenil (30-47 mm)
MORTALIDAD
70-80%
Sinaloa
Sinaloa
30 a 47 mm 75% (70-80%)
Comparte características con el OsHV-1 y el OsHV µ var
Cuatro o más variedades Mexicanas de OsHV-1
M
1
2
3
4
5
6
7
8
M
600 pb
100 pb
Detection of Oyster herpesvirus (OsHV) using PCR : M) 100bp Molecular
marker (Invitrogen); Line 1) Positive control (Genomic viral DNA, 100 ng
per reaction; Lines 2, 8) Negative control (sterile water). Lines 3 to 7
tissue samples.
Tesis de Maestría de Yosef Amin Chávez Romero
Posible ciclo de acción viral en el ambiente
Semilla
¿Infectada?
No
Si
Zona de
cultivo
OSTIÓN
sano
¿Infección?
OSTIÓN
portador
Si
ESTRÉS
No
Resistencia
¿Se mantiene en
el ecosistema?
No
¿Se mantiene en
el ecosistema?
Si
Si
No
Si
No
MORTALIDAD
MERCADO
HERPESVIRUS
Triada de la enfermedad
Estudio del hospedero
Hospedero
Tríada de la enfermedad
NE
Estudio del parásito-patógeno
NE
Estudio del ambiente
NE
E
NE
Parásito
NE
NE
Ambiente
INTERACCIÓN PARÁSITO-HOSPEDERO-AMBIENTE
I&D
Tétrada de la enfermedad
Hospedero
Ambiente
NE
NE
Estudio:
E
NE
Parásito
NE
Manejo
INTERACCIÓN PARÁSITO-HOSPEDERO-AMBIENTE-MANEJO
RECOMENDACIONES
1.
Evitar la introducción de moluscos bivalvos provenientes de zonas con
antecedentes de mortalidad asociadas al OsHV-1 y OsHV-1 µVar y evitar la
exportación de organismos provenientes de zonas con antecedentes de
mortalidad asociadas al OsHV-1 y OsHV-1 µVar hacia zonas libres de
herpesvirus para evitar su propagación
2.
Después de la aparición del OsHV-1 µVar, nuevas variantes siguen
emergiendo. El número de mutaciones depende del número de ciclos de
replicación durante la fase infectiva del virus, por lo tanto, es sumamente
importante controlar los eventos de mortalidad ya que estos favorecen la
aparición de mutantes
3.
Exigir y presentar certificados de sanidad en la comercialización de moluscos
bivalvos
4.
Vigilar el cumplimiento de las buenas prácticas de producción acuícola
5.
Evitar la introducción de especies exóticas sin un estudio previo de carga
parasitaria
6.
Crear un programa de selección genética de organismos resistentes al OsHV-1
20
y OsHV µVar
Apoyo de:
Dr. Miguel Ángel del Río Portilla (CICESE)
Dra. Carmen Paniagua Chávez (CICESE)
M.C. Mauricio García Ortega (ISA)
Dr. Antonio Figueras (CSIC)
Dr. Tristan Renault (IFREMER)
Dra. Collen Burgen (Washington University)
Dra. Carolyn Friedman (Washington University)
Dr. James Moore (UC Davis)
Tesistas:
M.C. Yosef Amín Chávez Romero (CICESE)
M.C. Jenniffer Villalva Vega (CICESE)
AGRADECIMIENTOS
I&D
SUBNARGENA del CICESE
22
La investigación continua
¡Gracias!