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Herpesviriosis en México: situación actual y perspectivas Rebeca Vásquez-Yeomans y Jorge Cáceres-Martínez ISA Características morfológicas del OsHV-1 TEGUMENTO CÁPSIDE (116 nm) NÚCLEO ENVOLTURA Forma esférica poligonal, (icosaédrica) 207.4 kpb ADN lineal de doble cadena 38% CG Entre las especies donde se ha encontrado tenemos: Crassostrea virginica Crassostrea gigas Ostrea edulis Ostrea angasi Tiostrea chilensis Ruditapes philippinarum Pecten maximus Nodipecten subnodosus Distribución global de Herpes virus Causa mortalidad de hasta 100 % en cultivos de larvas y juveniles de ostión IFREMER Eventos recurrentes, principalmente en verano CAUSAS: Compleja interacción de factores tales como: incremento de la temperatura, estrés fisiológico, malas prácticas y contaminantes, entre otros 5 Signos de la enfermedad Larvas Tomado de Renault y Novoa (2004) Reducción en actividad de nado y alimentación Lesiones en manto y velo Nado errático en círculos, deposición en el fondo Impacto en la Industria ostrícola Francesa Francia produce130,000 toneladas al año siendo el cuarto productor a nivel mundial después de China, Japón y Corea del Sur Problema de graves consecuencias en Francia OsHV-1 OsHV-1 µVar 2008-2011 A herpes virus has decimated oysters along France’s 5,500- kilometer coast for a fourth season Estudios de herpes virus en México Cáceres-Martínez, J. A. y R. Vásquez -Yeomans. (2003) Presence of giant polymorphic cells in Crassostrea gigas cultured in Bahia Falsa, Baja California NW Mexico . Journal of Shellfish Research. 22(3): 711-714 Vásquez Yeomans, R., J. A. Caceres Martinez y A. Figueras Huerta. (2004) Herpes-like virus associated with eroded gills of the Pacific oyster Crassostrea gigas in Mexico.. Journal of Shellfish Research. 23(2): 417-419 Vásquez-Yeomans, R., A. M. García-Ortega y J. A. Cáceres-Martínez. (2010) Gill erosion and herpesvirus in Crassostrea gigas cultured in Baja California, México. Diseases of Aquatic Organisms. 89: 137-144 Cáceres-Martínez, J. A. y R. Vásquez -Yeomans. (2010) Presence of epibionts and herpesvirus in the lion-paw scallop Nodipecten subnodosus. En Aquaculture 2010 Del 01 al 05 de marzo. San Diego, California, Estados Unidos. World Aquaculture Society. Abstract. Chávez Romero, Y. A., J. A. Cáceres -Martínez, R. Vásquez -Yeomans y A. M. García -Ortega. (2011) Genetic characterization of ostreid herpesvirus associated with mortalities of pacific oyster Crassostrea gigas in northwestern México. En 2011 International Malacology Reunion Del 27 al 30 de junio. La Paz, Baja California Sur, México. Western Society of Malacologists. Abstract. Evidencias y validación Alteraciones histológicas 3 ? b Lesiones 2 MET 4 Mortalidades 1 HIS 6 PCR- secuenciación Presencia del OsHV en Baja California Año Mes Localidad Estadio de desarrollo Mortalidad 2002 Agosto Bahía Falsa Juvenil Sin datos 2005 Agosto Bahía Falsa Juvenil Sin estimar 2006 Abril San Quintín Semilla (20-30 mm) Sin estimar 2008 Septiembre San Quintín Adulto (115-123 mm) No 2008 Noviembre Bahía Falsa Adulto (83-110 mm) No 2009 Junio Bahía de Todos Santos Semilla (3 mm) 70% 2009 Julio Bahía Falsa Semilla (2-3 mm) 97% 2009 Julio Bahía de Todos Santos Semilla (3 mm) 40% 2009 Julio Laguna Manuela Semilla (20-37 mm) 85-95% 2009 Agosto Bahía Falsa Juvenil (48-68 mm) Sin estimar 2009 Agosto Bahía Falsa Semilla (11-20 mm) Sin estimar 2009 Agosto Laguna Manuela Juvenil (26-52 mm) Sin estimar 2009 Noviembre Laguna Manuela Semilla (5-10 mm) Sin estimar 2009 Noviembre Laguna Manuela Semilla (5- 20 mm) Sin estimar 2009 Diciembre Bahía Falsa Juvenil (30-45 mm) Sin datos 2010 Enero Laguna Manuela Semilla (15-25 mm) 70% 2010 Marzo Guerrero Negro Semilla (25-35 mm) 50% 2011 Junio Flupsy – Ensenada Semilla (2-5 mm) 100% 2011 Julio Flupsy – Ensenada Semilla (8-10 mm) 79% 2 -37 mm 73% (40-97%) Verano Presencia del OsHV en Baja California Sur. AÑO MES LOCALIDAD ESTADIO DE DESARROLLO MORTALIDAD 2008 Noviembre Bahía Tortugas Juvenil (50-60 mm) No 2008 Noviembre Bahía Tortugas Juvenil (43-60 mm) No 2008 Diciembre Bahía Tortugas Juvenil (36- 52 mm) Sin estimar 2008 Diciembre Bahía Tortugas Juvenil (35-55 mm) Sin estimar 2009 Marzo Bahía Tortugas Adulto (55-80 mm) Sin estimar 2009 Marzo Bahía Tortugas Adulto (82-134) No 2009 Abril Bahía Tortugas Semilla (5-10 mm) Sin estimar 5 -55 mm. Presencia del OsHV en Sonora. AÑO MES LOCALIDAD ESTADO DE DESARROLLO MORTALIDAD 2007 Enero El Riíto Adulto (74-90 mm) No 2007 Enero Estero Morúa Adulto (82-113 mm) No 2007 Marzo Bahía del Tobari Juvenil (36-55 mm) 80% 2007 Marzo Estero Morúa Adulto (82-13 mm) No 2007 Marzo Bahía de Kino Adulto (83-90 mm) No 2007 Marzo Bahía de Kino Semilla (5-15 mm) 75% 2007 Mayo Estero Morúa Adulto (80-100 mm) No 2007 Noviembre Estero Morúa Adulto (85-115 mm) No 2008 Marzo Bahía San Jorge Adulto (65-92 mm) No 2008 Marzo Bahía de Kino Juvenil (27-40 mm) 60-70% 2008 Marzo Bahía de Kino Semilla (15-20 mm) 70% 2009 Abril Bahía de Kino Semilla (15-20 mm) 100% 2009 Abril El Riíto Adulto (90-130 mm) 50% 2009 Mayo El Riíto Adulto (85-105 mm) Sin estimar 2009 Noviembre Estero Los Mélagos Semilla (10-15 mm) Sin estimar 2009 Noviembre Estero La Cinita Juvenil (30-47 mm) No 5-55 mm 80% (60-100%) Primavera Presencia del OsHV en Sonora. AÑO MES LOCALIDAD ESTADO DE DESARROLLO MORTALIDAD 2011 Marzo Estero La Cina Juvenil (40-53 mm) Sin estimar 2011 Marzo Estero La Santa Cruz Juvenil (38-50 mm) Sin estimar Presencia del OsHV en Sinaloa. AÑO 2005 MES Marzo LOCALIDAD Bahía de Altata ESTADO DE DESARROLLO Juvenil (30-47 mm) MORTALIDAD 70-80% Sinaloa Sinaloa 30 a 47 mm 75% (70-80%) Comparte características con el OsHV-1 y el OsHV µ var Cuatro o más variedades Mexicanas de OsHV-1 M 1 2 3 4 5 6 7 8 M 600 pb 100 pb Detection of Oyster herpesvirus (OsHV) using PCR : M) 100bp Molecular marker (Invitrogen); Line 1) Positive control (Genomic viral DNA, 100 ng per reaction; Lines 2, 8) Negative control (sterile water). Lines 3 to 7 tissue samples. Tesis de Maestría de Yosef Amin Chávez Romero Posible ciclo de acción viral en el ambiente Semilla ¿Infectada? No Si Zona de cultivo OSTIÓN sano ¿Infección? OSTIÓN portador Si ESTRÉS No Resistencia ¿Se mantiene en el ecosistema? No ¿Se mantiene en el ecosistema? Si Si No Si No MORTALIDAD MERCADO HERPESVIRUS Triada de la enfermedad Estudio del hospedero Hospedero Tríada de la enfermedad NE Estudio del parásito-patógeno NE Estudio del ambiente NE E NE Parásito NE NE Ambiente INTERACCIÓN PARÁSITO-HOSPEDERO-AMBIENTE I&D Tétrada de la enfermedad Hospedero Ambiente NE NE Estudio: E NE Parásito NE Manejo INTERACCIÓN PARÁSITO-HOSPEDERO-AMBIENTE-MANEJO RECOMENDACIONES 1. Evitar la introducción de moluscos bivalvos provenientes de zonas con antecedentes de mortalidad asociadas al OsHV-1 y OsHV-1 µVar y evitar la exportación de organismos provenientes de zonas con antecedentes de mortalidad asociadas al OsHV-1 y OsHV-1 µVar hacia zonas libres de herpesvirus para evitar su propagación 2. Después de la aparición del OsHV-1 µVar, nuevas variantes siguen emergiendo. El número de mutaciones depende del número de ciclos de replicación durante la fase infectiva del virus, por lo tanto, es sumamente importante controlar los eventos de mortalidad ya que estos favorecen la aparición de mutantes 3. Exigir y presentar certificados de sanidad en la comercialización de moluscos bivalvos 4. Vigilar el cumplimiento de las buenas prácticas de producción acuícola 5. Evitar la introducción de especies exóticas sin un estudio previo de carga parasitaria 6. Crear un programa de selección genética de organismos resistentes al OsHV-1 20 y OsHV µVar Apoyo de: Dr. Miguel Ángel del Río Portilla (CICESE) Dra. Carmen Paniagua Chávez (CICESE) M.C. Mauricio García Ortega (ISA) Dr. Antonio Figueras (CSIC) Dr. Tristan Renault (IFREMER) Dra. Collen Burgen (Washington University) Dra. Carolyn Friedman (Washington University) Dr. James Moore (UC Davis) Tesistas: M.C. Yosef Amín Chávez Romero (CICESE) M.C. Jenniffer Villalva Vega (CICESE) AGRADECIMIENTOS I&D SUBNARGENA del CICESE 22 La investigación continua ¡Gracias!