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Enzimas
Biología 2º Bachillerato
TEMA 6: ENZIMAS
Los enzimas son proteínas que catalizan reacciones químicas en los seres vivos.
Los enzimas son catalizadores, es decir, sustancias que, sin consumirse en una
reacción, aumentan notablemente su velocidad. No hacen factibles las reacciones
imposibles, sino que solamente aceleran las que espontáneamente podrían producirse.
Ello hace posible que en condiciones fisiológicas tengan lugar reacciones que sin
catalizador requerirían condiciones extremas de presión, temperatura o pH.


Aspectos generales sobre los enzimas
Propiedades de los enzimas
ASPECTOS GENERALES SOBRE LOS ENZIMAS
Prácticamente todas las reacciones químicas que tienen lugar en los seres vivos están catalizadas por enzimas. Los
enzimas son catalizadores específicos: cada enzima cataliza un solo tipo de reacción, y casi siempre actúa sobre un
único sustrato o sobre un grupo muy reducido de ellos. En una reacción catalizada por un enzima:
1. La sustancia sobre la que actúa el enzima se llama sustrato que debe tener alguna posibilidad de ser
modificado, bien en sus enlaces, en sus grupos funcionales o en su distribución de cargas.
2. El sustrato se une a una región concreta del enzima, llamada centro activo. El centro activo comprende (1)
un sitio de unión formado por los aminoácidos que están en contacto directo con el sustrato y (2) un sitio
catalítico, formado por los aminoácidos directamente implicados en el mecanismo de la reacción
3. Una vez formados los productos , considerado como la transformación del sustrato, el enzima puede
comenzar un nuevo ciclo de reacción . Aunque en la mayoría de los casos el producto es sustrato de una
nueva reacción.
1.- El enzima y su
sustrato
2.- Unión al centro
activo
3.- Formación de
productos
Los enzimas, a diferencia de los catalizadores inorgánicos catalizan reacciones específicas. Sin embargo hay
distintos grados de especificidad. El enzima sacarasa es muy específico: rompe el enlace -glucosídico de la
sacarosa o de compuestos muy similares. Así, para el enzima sacarasa, la sacarosa es su sustrato natural, mientras
que la maltosa y la isomaltosa son sustratos análogos. El enzima actúa con máxima eficacia sobre el sustrato
natural y con menor eficacia sobre los sustratos análogos. Entre los enzimas poco específicos están las proteasas
digestivas como la quimotripsina, que rompe los enlaces amida de proteínas y péptidos de muy diverso tipo.
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PROPIEDADES DE LOS ENZIMAS

Las propiedades de los enzimas derivan del hecho de ser proteínas y de actuar como catalizadores. Como
proteínas, poseen una conformación natural más estable que las demás conformaciones posibles. Así,
cambios en la conformación suelen ir asociados en cambios en la actividad catalítica. Las propiedades
más representativas son:
- La especificidad, bien de sustrato o de grupo.
- La desnaturalización, característica de todas las proteínas.
- La reversibilidad, las enzimas actúan en las dos direcciones, aunque una de ellas puede ser menos
efectiva , al poder ser el producto sustrato de otra reacción o ser parte de una ruta metabólica.
- La eficacia, los enzimas no se consumen en las reacciones, por lo que pequeñas cantidades de
enzimas pueden catalizar grandes cantidades de sustrato.
NOMENCLATURA DE LOS ENZIMAS
Hay varias formas mediante las cuales se asigna un nombre a un enzima:



nombres particulares
nombre sistemático
código de la comisión enzimática (enzyme comission)
NOMBRES PARTICULARES
Antiguamente, los enzimas recibían nombres particulares, asignados por su descubridor. Al ir aumentando el
número de enzimas conocidos, se hizo necesaria una nomenclatura sistemática que informara sobre la acción
específica de cada enzima y los sustratos sobre los que actuaba.
NOMBRE SISTEMÁTICO
El nombre sistemático de un enzima consta actualmente de 3 partes:



el sustrato preferente
el tipo de reacción realizado
terminación "asa"
Un ejemplo sería la glucosa fosfato isomerasa que cataliza la isomerización de la glucosa-6-fosfato en fructosa-6fosfato.
Muchos enzimas catalizan reacciones reversibles. No hay una manera única para fijar cual de los dos sentidos se
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utiliza para nombrar al enzima. Así, la glucosa fosfato isomerasa también podría llamarse fructosa fosfato
isomerasa.
Cuando la acción típica del enzima es la hidrólisis del sustrato, el segundo componente del nombre se omite y por
ejemplo, la lactosa hidrolasa se llama simplemente lactasa. Además de los nombre sistemáticos, aún persisten otros
consagrados por el uso. Así, la glucosa:ATP fosforiltransferasa se llama habitualmente glucoquinasa.
NOMENCLATURA DE LA COMISIÓN ENZIMÁTICA
El nombre de cada enzima puede ser identificado por un código numérico, encabezado por las letras EC (enzyme
commission), seguidas de cuatro números separados por puntos. El primer número indica a cual de las seis
clases pertenece el enzima, el segundo se refiere a distintas subclases dentro de cada grupo, el tercero y el cuarto se
refieren a los grupos químicos específicos que intervienen en la reacción. (Este enlace te lleva a la página de la
Enzyme Comission, donde puedes acceder a todas las clases y subclases de enzimas).
Así, la ATP:glucosa fosfotransferasa (glucoquinasa) se define como EC 2.7.1.2. El número 2 indica que es una
transferasa, el 7 que es una fosfotransferasa, el 1 indica que el aceptor es un grupo OH, y el último 2 indica que es
un OH de la D-glucosa el que acepta el grupo fosfato.
CLASIFICACIÓN DE LOS ENZIMAS
En función de su acción catalítica específica, los enzimas se clasifican en 6 grandes grupos
o clases:

Clase 1: OXIDORREDUCTASAS

Clase 2: TRANSFERASAS

Clase 3: HIDROLASAS

Clase 4: LIASAS

Clase 5: ISOMERASAS

Clase 6: LIGASAS
Clase 1: OXIDORREDUCTASAS
Catalizan reacciones de oxidorreducción, es decir, transferencia de hidrógeno (H) o electrones (e-) de un sustrato a
otro, según la reacción general:
AH2 + B
Ared + Box
A + BH2
Aox + Bred
Ejemplos son la succinato deshidrogenasa o la citocromo c oxidasa.
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Clase 2: TRANSFERASAS
Catalizan la transferencia de un grupo químico (distinto del hidrógeno) de un sustrato a otro, según la reacción:
A-B + C
A + C-B
Un ejemplo es la glucoquinasa, que cataliza la reacción representada en la
Figura de la derecha:
glucosa + ATP
ADP + glucosa-6-fosfato
Clase 3: HIDROLASAS
Catalizan las reacciones de hidrólisis:
A-B + H2O
AH + B-OH
Un ejemplo es la lactasa, que cataliza la reacción:
lactosa + agua
glucosa + galactosa
Clase 4: LIASAS
Catalizan reacciones de ruptura o soldadura de sustratos:
A-B
A+B
Un ejemplo es la acetacetato descarboxilasa, que cataliza la reacción:
ácido acetacético
CO2 + acetona
Clase 5: ISOMERASAS
Catalizan la interconversión de isómeros:
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A
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B
Son ejemplos la fosfotriosa isomerasa y la fosfoglucosa isomerasa, que catalizan las
reacciones representadas en la tabla inferior:
isomerasa
gliceraldehído-3-fosfato
fosfoglucosa isomerasa
dihidroxiacetona-fosfato
glucosa-6fosfato
fructosa-6fosfato
Clase 6: LIGASAS
Catalizan la unión de dos sustratos con hidrólisis simultánea de un nucleótido trifosfato (ATP, GTP, etc.):
A + B + XTP
A-B + XDP + Pi
Un ejemplo es la piruvato carboxilasa, que cataliza la reacción:
piruvato + CO2 + ATP
oxaloacetato + ADP + Pi
MODO DE ACCIÓN DE LOS ENZIMAS
En las reacciones espontáneas, los productos finales tienen menos energía libr
embargo, el comienzo de la reacción requiere un aporte inicial de energía. Esta energía inicial que hay que
suministrar a los reactantes para que la reacción transcurra se llama energía de activación (Ea). Cuanto menor es la
Ea más fácilmente transcurre la reacción.
Perfil energético de una reacción espontánea
Perfil energético de una reacción catalizada
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La acción de los catalizadores consiste, precisamente, en disminuir la Ea (Figura superior derecha). Los
enzimas son catalizadores especialmente eficaces, ya que disminuyen la Ea aún más que los catalizadores
inorgánicos. Por ejemplo, la descomposición del agua oxigenada (H2O2) para dar H2O y O2 puede ocurrir sin
catalizador, con un catalizador inorgánico (platino), o con un enzima específico (catalasa). Las respectivas Ea para
cada proceso son 18, 12 y 6 Kcal/mol. Así, se puede calcular que el platino acelera la reacción 20.000 veces,
mientras que la catalasa la acelera 370.000 veces.
Para que una reacción química tenga lugar, las moléculas de los reactantes deben chocar con una energía y una
orientación adecuadas. La actuación del enzima (1) permite que los reactantes (sustratos) se unan a su centro activo
con una orientación óptima para que la reacción se produzca y (2) modifica las propiedades químicas del sustrato
unido a su centro activo, debilitando los enlaces existentes y facilitando la formación de otros nuevos (Figuras
inferiores):
Hay dos modelos sobre la forma en que el sustrato se une al centro activo del enzima:


el modelo llave-cerradura
el modelo del ajuste inducido
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MODELO LLAVE-CERRADURA
El modelo llave-cerradura supone que la estructura del sustrato y la del centro
activo son complementarias, de la misma forma que una llave encaja en una
cerradura. Este modelo es válido en muchos casos, pero no es siempre correcto.
MODELO DEL AJUSTE INDUCIDO
En algunos casos, el centro activo adopta la conformación idónea sólo en
presencia del sustrato. La unión del sustrato al centro activo del enzima
desencadena un cambio conformacional, que da lugar a la formación del
producto. Este es el modelo del ajuste inducido .Sería algo así como un
guante que se adapta al contorno de la mano.
REGULACIÓN DE LA ACTIVIDAD ENZIMÁTICA
Una molécula de enzima no tiene por qué actuar siempre a la misma velocidad. Su actividad puede estar modulada
por:






cambios en el pH
cambios en la temperatura
presencia de cofactores
las concentraciones del sustrato y de los productos finales
presencia de inhibidores
modulación alostérica
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EFECTO DEL pH SOBRE LA ACTIVIDAD ENZIMÁTICA
Los enzimas poseen grupos químicos ionizables (carboxilos -COOH; amino
-NH2; tiol -SH; imidazol, etc.) en las cadenas laterales de sus aminoácidos.
Según el pH del medio, estos grupos pueden tener carga eléctrica positiva,
negativa o neutra. Como la conformación de las proteínas depende, en parte,
de sus cargas eléctricas, habrá un pH en el cual la conformación será la más
adecuada para la actividad catalítica. Este es el llamado pH óptimo.
La mayoría de los enzimas son muy sensibles a los cambios de pH.
Desviaciones de pocas décimas por encima o por debajo del pH
óptimo pueden afectar drásticamente su actividad. Así, la pepsina
gástrica tiene un pH óptimo de 2, la ureasa lo tiene a pH 7 y la
arginasa lo tiene a pH 10 (Figura de la izquierda). Como ligeros
cambios del pH pueden provocar la desnaturalización de la proteína,
los seres vivos han desarrollado sistemas más o menos complejos para
mantener estable el pH intracelular: Los amortiguadores fisiológicos.
EFECTO DE LA TEMPERATURA SOBRE LA ACTIVIDAD
ENZIMÁTICA
En general, los aumentos de temperatura aceleran las reacciones
químicas: por cada 10ºC de incremento, la velocidad de reacción se
duplica. Las reacciones catalizadas por enzimas siguen esta ley
general. Sin embargo, al ser proteínas, a partir de cierta
temperatura, se empiezan a desnaturalizar por el calor. La
temperatura a la cual la actividad catalítica es máxima se llama
temperatura óptima (Figura de la derecha). Por encima de esta
temperatura, el aumento de velocidad de la reacción debido a la
temperatura es contrarrestado por la pérdida de actividad catalítica
debida a la desnaturalización térmica, y la actividad enzimática
decrece rápidamente hasta anularse.
EFECTO DE LOS COFACTORES SOBRE LA ACTIVIDAD
ENZIMÁTICA
A veces, un enzima requiere para su función la presencia de sustancias no proteicas que colaboran en la catálisis:
los cofactores. Los cofactores pueden ser iones inorgánicos como el Fe++, Mg++, Mn++, Zn++ etc. Casi un tercio de
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los enzimas conocidos requieren cofactores. Cuando el cofactor es una molécula orgánica se llama coenzima.
Muchos de estos coenzimas se sintetizan a partir de vitaminas. En la figura inferior podemos observar una molécula
de hemoglobina (proteína que transporta oxígeno) y su coenzima (el grupo hemo). Cuando los cofactores y las
coenzimas se encuentran unidos covalentemente al enzima se llaman grupos prostéticos. La forma catalíticamente
activa del enzima, es decir, el enzima unida a su grupo prostético, se llama holoenzima. La parte proteica de un
holoenzima (inactiva) se llama apoenzima, de forma que:
apoenzima + grupo prostético= holoenzima
EFECTO DE LAS CONCENTRACIONES SOBRE LA ACTIVIDAD
ENZIMÁTICA
La velocidad de una reacción enzimática depende de la concentración de sustrato.
La Figura de la derecha muestra la velocidad de una reacción enzimática a 6
concentraciones distintas de sustrato.
Además, la presencia de los productos finales puede hacer que la reacción sea más
lenta, o incluso invertir su sentido (Figura inferior).
EFECTO DE LOS INHIBIDORES SOBRE LA ACTIVIDAD
ENZIMÁTICA
Ciertas moléculas pueden inhibir la acción catalítica de un enzima: son los inhibidores. Estos inhibidores bien
pueden ocupar temporalmente el centro activo por semejanza estructural con el sustrato original (inhibidor
competitivo) o bien alteran la conformación espacial del enzima, impidiendo su unión al sustrato (inhibidor no
competitivo) (Figuras inferiores).
Inhibidor competitivo
Inhibidor no competitivo
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MODULACIÓN ALOSTÉRICA DE LA ACTIVIDAD ENZIMÁTICA
Hay enzimas que pueden adoptar 2 conformaciones interconvertibles llamadas R (relajada) y T (tensa). R es la
forma más activa porque se une al sustrato con más afinidad. Las formas R y T se encuentran en equilibrio R <==>
T (Figura inferior):
Ciertas sustancias tienden a estabilizar la forma R. Son los llamados moduladores positivos. El propio sustrato es a
menudo un modulador positivo. Las moléculas que favorecen la forma R pero que actúan sobre una región del
enzima distinta del centro activo son los activadores alostéricos (Figura inferior izquierda).
Activador alostérico: favorece la unión Inhibidor alostérico: impide la unión del
del sustrato
sustrato
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Las sustancias que favorecen la forma T y disminuyen la actividad enzimática son los moduladores negativos. Si
estos moduladores actúan en lugares distintos del centro activo del enzima se llaman inhibidores alostéricos
(Figura superior derecha) .
CINÉTICA ENZIMÁTICA
Los principios generales de las reacciones químicas se aplican también a las reacciones enzimáticas. Por este
motivo, antes de empezar con la cinética química, se van a repasar algunos conceptos básicos de cinética química.
A continuación, se describirán los siguientes conceptos:



Cinética enzimática
Modelo cinético de Michaelis-Menten
Cálculo de la KM y la Vmax de un enzima
CINÉTICA ENZIMÁTICA
La cinética enzimática estudia la velocidad de las
reacciones catalizadas por enzimas. Estos estudios
proporcionan información directa acerca del
mecanismo de la reacción catalítica y de la especifidad
del enzima. La velocidad de una reacción catalizada
por un enzima puede medirse con relativa facilidad, ya
que en muchos casos no es necesario purificar o
aislar el enzima. La medida se realiza siempre en las
condiciones óptimas de pH, temperatura, presencia de
cofactores, etc, y se utilizan concentraciones saturantes de sustrato. En estas condiciones, la velocidad de reacción
observada es la velocidad máxima (Vmax). La velocidad puede determinarse bien midiendo la aparición de los
productos o la desaparición de los reactivos.
Al seguir la velocidad de aparición de producto (o de desaparición del
sustrato) en función del tiempo se obtiene la llamada curva de avance de la
reacción, o simplemente, la cinética de la reacción. A medida que la
reacción transcurre, la velocidad de acumulación del producto va
disminuyendo porque se va consumiendo el sustrato de la reacción (Figura
de la izquiersa). Para evitar esta complicación se procede a medir la
velocidad inicial de la reacción (v0). La velocidad inicial de la reacción es
igual a la pendiente de la curva de avance a tiempo cero (Figura de la
izquiersa). De esta forma, la medida de v0 se realiza antes de que se consuma
el 10% del total del sustrato, de forma que pueda considerarse la [S] como
esencialmente constante a lo largo del experimento. Además, en estas
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condiciones no es necesario considerar la reacción inversa, ya que la cantidad de producto formada es tan
pequeña que la reacción inversa apenas ocurre. De esta forma se simplifican enormemente las ecuaciones de
velocidad.
Para estudiar la cinética enzimática se mide el efecto de la
concentración inicial de sustrato sobre la velocidad inicial de la
reacción, manteniendo la cantidad de enzima constante. Si
representamos v0 frente a [S]0 obtenemos una gráfica como la de la
Figura de la derecha. Cuando [S]0 es pequeña, la velocidad inicial es
directamente proporcional a la concentración de sustrato, y por tanto,
la reacción es de primer orden. A altas [S]0, el enzima se encuentra
saturada por el sustrato, y la velocidad ya no depende de [S]0. En este
punto, la reacción es de orden cero y la velocidad es máxima (Vmax).
MODELO CINÉTICO DE MICHAELIS-MENTEN
Los estudios sistemáticos del efecto de la concentración inicial del sustrato sobre la actividad enzimática
comenzaron a realizarse a finales del siglo XIX. Ya en 1882 se introdujo el concepto del complejo enzima-sustrato
como intermediario del proceso de catálisis enzimática. En 1913, Leonor Michaelis y Maud Menten
desarrollaron esta teoría y propusieron una ecuación de velocidad que explica el comportamiento cinético de los
enzimas.
Para explicar la relación observada entre la velocidad inicial (v0) y la concentración inicial de sustrato ([S]0)
Michaelis y Menten propusieron que las reacciones catalizadas enzimáticamente ocurren en dos etapas: En la
primera etapa se forma el complejo enzima-sustrato y en la segunda, el complejo enzima-sustrato da lugar a la
formación del producto, liberando el enzima libre:
En este esquema, k1, k2 y k3 son las constantes cinéticas individuales de cada proceso y también reciben el nombre
de constantes microscópicas de velocidad. Según esto, podemos afirmar que:



v1 = k1 [E] [S]
v2 = k2 [ES]
v3 = k3 [ES]
Se puede distinguir entre enzima libre (E) y enzima unido al sustrato (ES), de forma que la concentración total
de enzima, [ET], (que es constante a lo largo de la reacción) es:
[ET] = [E] + [ES]
Como [E] = [ET] - [ES], resulta que: v1= k1[S] [ET] - k1 [S] [ES]
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Este modelo cinético adopta la hipótesis del estado estacionario,
según la cual la concentración del complejo enzima-sustrato es
pequeña y constante a lo largo de la reacción (Figura de la
izquierda). Por tanto, la velocidad de formación del complejo
enzima-sustrato (v1) es igual a la de su disociación (v2+ v3):
v1 = v2 + v3
Además, como [ES] es constante, la velocidad de formación de los
productos es constante:
v = v3 = k3 [ES] = constante.
Como v1=v2+v3, podemos decir que: k1[S] [ET] - k1 [S] [ES] = k2 [ES] + k3 [ES]
Despejando [ES], queda que:
, siendo
, en donde la expresión
(k2+k3)/k1 se ha sustituido por KM, o constante de Michaelis-Menten. Este enlace nos aporta una explicación
sobre las razones que hacen de la KM un parámetro cinético importante.
Por lo tanto, en el estado estacionario, la velocidad de formación del producto es:
v = v3 = k3 [ES] =
Para cualquier reacción enzimática, [ET], k3 y KM son constantes. Vamos a considerar dos casos extremos:


A concentraciones de sustrato pequeñas ([S] << KM) v = (k3 [ET]/KM) [S]. Como los términos entre
paréntesis son constantes, pueden englobarse en una nueva constante, kobs, de forma que la expresión queda
reducida a: v = kobs [S], con lo cual la reacción es un proceso cinético de primer orden.
A concentraciones de sustrato elevadas ([S] >> KM), v = k3 [ET]. La velocidad de reacción es
independiente de la concentración del sustrato, y por tanto, la reacción es un proceso cinético de orden cero.
Además, tanto k3 como [ET] son constantes, y nos permite definir un nuevo parámetro, la velocidad
máxima de la reacción (Vmax): Vmax = k3 [ET], que es la velocidad que se alcanzaría cuando todo el
enzima disponible se encuantra unido al sustrato.
Si introducimos el parámetro Vmax en la ecuación general de la velocidad, (la fórmula recuadrada anteriormente),
obtenemos la expresión más conocida de la ecuación de Michaelis-Menten:
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Hay enzimas que no obedecen la ecuación de Michaelis-Menten. Se
dice que su cinética no es Michaeliana. Esto ocurre con los enzimas
alostéricos, cuya gráfica v frente a [S] no es una hipérbola, sino una
sigmoide (Figura de la izquierda). En la cinética sigmoidea,
pequeñas variaciones en la [S] en una zona crítica (cercana a la KM)
se traduce en grandes variaciones en la velocidad de reacción. La
explicación se encuentra recogida en el apartado de moduladores
alostéricos de la cinética enzimática.
CÁLCULO DE LA KM Y DE LA Vmax DE UN ENZIMA
La representación gráfica de la ecuación de Michaelis-Menten (v
frente a [S]) es una hipérbola (Figura de la izquierda). La Vmax
corresponde al valor máximo al que tiende la curva experimental, y la
KM corresponde a la concentración de sustrato a la cual la velocidad
de la reacción es la mitad de la Vmax.
Para determinar gráficamente los valores de KM y Vmax es más
sencillo utilizar la representación doble recíproca (1/v frente a
1/[S]), ya que es una línea recta. Esta representación doble
recíproca recibe el nombre de representación de LineweaverBurk (Figura de la derecha). Es una recta en la cual:



La pendiente es KM/Vmax
La abscisa en el origen (1/v0 = 0) es -1/KM
La ordenada en el origen (1/[S]0 = 0) es 1/Vmax
De esta forma, a partir de los datos experimentales se puede
calcular gráficamente, los valores de KM y Vmax de un enzima
para diversos sustratos.
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MOTIVOS QUE HACEN DE KM UN PARÁMETRO CINÉTICO
IMPORTANTE
La constante de Michaelis-Menten (KM) es un parámetro cinético
importante pór múltiples razones:

KM es la concentración de sustrato para la cual la
velocidad de reacción es la mitad de la velocidad
máxima. En efecto, si KM = [S], la ecuación de MichaelisMenten se reduce a: v = Vmax/2.
 El valor de KM da idea de la afinidad del enzima por el
sustrato: A menor KM, mayor afinidad del enzima por el
sustrato, y a mayor KM, menor afinidad. Este hecho tiene
fácil explicación si tenemos en cuenta que KM se define
como (k2+k3/k1), donde las reacciones 2 y 3 destruyen el complejo ES, mientras que la reacción 1 lo forma.
Así, si KM es grande, el complejo ES es inestable pues predomina la tendencia a destruirlo (poca afinidad
hacia el sustrato), y si KM es pequeña, el complejo ES es estable, ya que predomina la tendencia a formarlo
(gran afinidad hacia el sustrato).
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