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PRÁCTICAS DE LABORATORIO
CURSO DE BIOQUÍMICA
SEGUNDO AÑO
Lic. José Manuel Arriaga
UNIVERSIDAD DE SAN CARLOS DE GUATEMALA
CENTRO UNIVERSITARIO DE OCCIDENTE
DIVISIÓN DE CIENCIAS DE LA SALUD
CARRERA DE MÉDICO Y CIRUJANO
PRÁCTICA 9
Perfil Lipídico
I. INTRODUCCIÓN
En esta práctica se realizarán las determinaciones de colesterol (Col), colesterol HDL y de triacilgliceroles
(TAG) mediante métodos enzimáticos colorimétricos y la comparación con un patrón de concentración
conocida. La formación de un sustrato coloreado permite medir su absorbancia, que es directamente
proporcional a la concentración de reactivo. Finalmente se discutirá la importancia de dichas
determinaciones en la Bioquímica Clínica, puesto que muchas enfermedades metabólicas cursan con
alternaciones en los niveles plasmáticos de TAG y/o Col.
II. FUNDAMENTO TEORICO
a) Los triacilgliceroles, el colesterol y las lipoproteínas plasmáticas
Los triacilgliceroles (TAG) constituyen la primera reserva energética del organismo; se almacenan en
grandes vacuolas en los adipocitos del tejido adiposo. La degradación metabólica de 1 g de TAG
produce 9 kcal, mientras que 1 g de Glc sólo suministra 4 kcal; además, el depósito de TAG no está
hidratado (a diferencia del glucógeno) y no ejerce presión osmótica. Esta reserva energética se puede
emplear para generar energía química en forma de ATP, o bien para generar calor, como es el caso
del tejido adiposo pardo. Por otra parte, el tejido adiposo también tiene una función de aislante
térmico y de protección mecánica, como sucede en los riñones.
A su vez, el colesterol desempaña muchas funciones biológicas, como dar fluidez a las membranas
biológicas y ser el precursor de ácidos biliares, hormonas esteroideas y de la vitamina D. El metabolismo
del colesterol está relacionado con enfermedades cardiovasculares ( E C V ) y con la aparición de cálculos
biliares.
Debido al carácter hidrofóbico de estos compuestos, no se encuentran libres en plasma sanguíneo, sino
que son transportados por las proteínas. Existen diversas clases de lipoproteínas, clasificadas en base a
su densidad, el lípido que transportan y las apoproteínas que conforman su estructura. En las tablas de
abajo se muestran la clasificación, función y composición de las lipoproteínas:
Distribución y Función de las Principales Apoproteínas
Distribución
Función
HDL, Qn
Estructural, activa de la lecitina-colesterol-acil-transferasa (LCAT)
HDL, Qn
Estructural, activa de la lipasa lipoprotéica-1 (LPL1)
HDL, Qn
Activa LCAT
VLDL, IDL, LDL
Estructural, ligando para R
Qn, Qr
Estructural
HDL, Qn
Activa LCAT
HDL, Qn
Activa LPL1
HDL, Qn
Inhibe LPL1
VLDL, IDL, LDL
Transporte de lípidos
Qn, Qr
Ligando para R
Apoproteína
AI
AII
AIV
B-100
B-48
CI
CII
CIII
D
E
Composición química de las lipoproteínas (expresada en %)
Lipoproteina
Apoproteinas (APO)
%
APO
Quilomicrones
VLDL
IDL
LDL
HDL
2
20
20
25
50
AI,AII,AIV,B-48,C,E
B-100,C,E
B-100,C,E
B-100
AI,AII,AIV,C,D,E
Total
98
90
80
75
50
Lípidos
Colesterol
TAG
4
18
35
60
36
90
62
35
10
14
Fosfolípidos
6
20
30
30
50
b) El perfil lipídico
El estudio clínico del perfil lipídico es un procedimiento analítico básico en el diagnóstico, pronóstico y
seguimiento de enfermedades metabólicas. Generalmente se solicita el análisis del los niveles de TAG,
Col-total y Col-HDL. Los niveles de Col-LDL se calculan mediante la Fórmula de Friedewald. Los
valores de referencia son los siguientes:
150–200 mg/dL
(1.7–2.29 mM)
Riesgo promedio
(requiere tratamiento)
COLESTEROL
TOTAL
< 200 mg/dL (5.2 mM)
Concentración deseable
Bajo riesgo de E C V
200–240 (5.2–6.2 mM)
Niveles ligeramente
elevados
Riesgo moderado de
ECV
> 200 mg/dL (2.29 mM)
Niveles elevados
[> 875 mg/dL (10 mM)
riesgo de pancreatitis]
> 240 mg/dL (6.2 mM)
Niveles elevados
Alto riesgo de E C V
TRIACILGLICEROLES
< 150 mg/dL (1.7 mM)
Concentración deseable
1.
COLESTEROL
HDL
< 40 mg/dL (1 mM)
Niveles bajos
Alto riesgo de E C V
COLESTEROL LDL
40-60 mg/dL (1-1.6 mM)
Riesgo promedio de
ECV
100–160 mg/dL
(2.6–4.1 mM)
Niveles ligeramente elevados Riesgo
promedio de E C V
> 60mg/dL (1.6 mM)
Niveles altos
Riesgo bajo
Factor protector contra
ECV
> 160 mg/dL (4.1 mM)
Niveles altos
Elevado riesgo de E C V
< 100 mg/dL (2.6 mM)
Niveles óptimos
Colesterol HDL (CHO-HDL) y Colesterol LDL (CHO-LDL)
Los niveles de Col-total < 100 mg/dL (2.6 mM) se relacionan con estados patológicos, como la
malnutrición, una enfermedad hepática ó cáncer. Al determinar el Col-total y el Col-HDL se puede
hallar el valor de su cociente, que también se relaciona con el riesgo a de desarrollar una enfermedad
cardiovascular:
i.
Cociente óptimo si Col-total/Col-HDL ≈ 3.5
ii.
Cociente deseable si Col-T/Col-HDL < 5
iii.
Alto riesgo de ECV si Col-T/Col-HDL > 5
Dentro de los niveles de Col-LDL se pueden fijar unos valores deseables en base a la propensión a
desarrollar E C V :
i.
< 100 mg/dL (1.14 mM) si se padece enfermedad cardiaca ó diabetes
ii.
< 130 mg/dL (1.5 mM) si existen 2 factores de riesgo
iii.
< 160 mg/dL (1.8 mM) si existe 1 factor de riesgo
Los factores de riesgo son los edad, hipertensión, bajos niveles de CHO-HDL, ser fumador y tener
antecedentes de enfermedad cardiaca.
III. DETERMINACIÓN COLORIMÉTRICA DE TRIACILGLICEROLES Y COLESTEROL
Se utilizan métodos enzimáticos específicos y sensibles, que se basan en la formación de peróxido de
hidrógeno. Esta reacción se acopla con una reacción redox catalizada por una peroxidasa, de modo
que se produce un sustrato coloreado. El sustrato coloreado presenta un máximo de absorbancia a 500
nm.
Aplicando la ley de Beer-Lambert, y teniendo en cuenta que la intensidad del color desarrollado es
directamente proporcional a la concentración de sustrato inicial, es posible determinar la concentración
inicial de triacilgliceroles o de colesterol en la muestra. Para ello es necesario determinar la absorbancia
de una solución patrón (ó estandar), o bien realizar una recta patrón con diferentes concentraciones.
Para que las determinaciones de los componentes lipídicos del plasma, o suero, tengan valor clínico, deben
realizarse bajo las siguientes condiciones consideradas óptimas:
a) La muestra de sangre ha sido extraída luego de un ayuno de 14 a 16 horas
b) El paciente no ha variado sus hábitos alimenticios en las últimas tres semanas
c) Su peso corporal es estable
d) No haber consumido alcohol en las setenta y dos horas previas a la extracción de sangre
El ayuno apropiado, el cual consiste en no ingerir ningún alimento desde la cena hasta el momento de la
extracción de sangre, es importante en las determinaciones de triacilgliceroles. La ingesta de agua y café
negro no endulzado no afecta los resultados. Dado que los niveles de triacilgliceroles se elevan dentro de
las dos primeras horas post absorción y alcanzan un máximo entre las cuatro y seis horas, las muestras
tomadas sin haber respetado el ayuno no son apropiadas para el análisis; debido a que no se podrá
diferenciar entre hipertrigliceridemia post absorción y la secundaria a algún trastorno en el metabolismo de
los lípidos, o la debida a errores congénitos del metabolismo. Aunque el ayuno puede influir en los niveles
de colesterol en un pequeño porcentaje de individuos, no es tan importante para las mediciones de
colesterol y fosfolípidos; aunque sí recomendable.
Por otro lado, es importante tomar en cuenta que hay ciertos factores relacionados con hipertrigliceridemia
que interfieren con las determinaciones colorimétricas de muchos metabolitos, incluso con las fracciones
lipoprotéicas:
a) Hipertrigliceridemia mayor a 2000 mg/dl
b) Aunque transitorias, el consumo de alcohol provoca elevaciones agudas de triacilgliceroles
1.
Determinación de triacilgliceroles
Muchos de los métodos actuales para la medición de triglicéridos emplean comúnmente el
acoplamiento de enzimas en cuatro reacciones básicas.
a) Rompimiento de los triacilgliceroles por la enzima lipasa:
Lipasa
𝑇𝑇𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟𝑟
→ 𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔 + á𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐 𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔
b) Fosforilación del glicerol, en reacción catalizada por la enzima glicerol cinasa:
𝐺𝐺𝑙𝑙𝑙𝑙𝑙𝑙𝑙𝑙𝑙𝑙𝑙𝑙𝑙𝑙 + ATP
Glicerol cinasa
→
𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔 − 3 − 𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓 + 𝐴𝐴𝐴𝐴𝐴𝐴
c) Oxidación del glicerol-3-fosfato por la enzima glicerol fosfato oxidasa para formar dihidrociacetona
fosfato y peróxido de hidrógeno:
𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺𝐺 − 3 − 𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓 + O₂
Glicerol fosfato oxidasa
→
𝑑𝑑𝑑𝑑ℎ𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖𝑖 + 𝐻𝐻₂𝑂𝑂₂
d) Oxidación del peróxido de hidrógeno, por catálisis de la enzima peroxidasa, a un radical libre de
oxígeno, el cual oxida a un cromógeno reducido para producir un compuesto coloreado:
Peroxidasa
𝐻𝐻₂𝑂𝑂₂ + cromógeno reducido
→
𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐ó𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔 𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜 + 𝐻𝐻₂𝑂𝑂
La absorbancia, en el rango visible, del compuesto coloreado depende del cromógeno utilizado en la
reacción.
2.
Determinación de colesterol total
La determinación del colesterol total incluye las formas libres y esterificadas del lípido. Los métodos
enzimáticos para el colesterol se desarrollan en tres etapas.
a) Hidrólisis de los ésteres de colesterol por la enzima colesterol esterasa, produciendo colesterol
libre y ácidos grasos libres:
É𝑠𝑠𝑠𝑠𝑠𝑠𝑠𝑠𝑠𝑠𝑠𝑠 𝑑𝑑𝑑𝑑 𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐
Colesterol esterasa
→
𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐 + á𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐 𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔𝑔
b) Oxidación del colesterol libre por la enzima colesterol oxidasa, en presencia del oxígeno, a
colestat-4-en-3-ona (colestenona) y peróxido de hidrógeno (H 2 O 2 ):
Colesterol
Colesterol oxidasa
→
𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐𝑐 − 4 − 𝑒𝑒𝑒𝑒 − 3 − 𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜𝑜 + 𝐻𝐻₂𝑂𝑂₂
c) Oxidación del peróxido de hidrógeno por la enzima peroxidasa, para producir un radical de
oxígeno que oxida un cromógeno reducido (4-aminofenazona), en presencia de un compuesto
fenólico, a su forma oxidada (quinoneimina):
𝐻𝐻₂𝑂𝑂₂ + 4 − 𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎𝑎 + 𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓𝑓
Peroxidasa
→
𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞𝑞 + 𝐻𝐻₂𝑂𝑂
La quinoneimina cual es un compuesto coloreado que tiene un pico de absorción a 500 nm y es
medido espectrofotométricamente. La intensidad del color formado es directamente proporcional a la
concentración de colesterol en la muestra; es decir que a mayor intensidad de color mayor
concentración de colesterol.
3.
Determinación de colesterol HDL
Se utiliza el ácido fosfotúngstico y MgCl 2 para precipitar las LDL y las VLDL, de manera que las HDL
son las únicas lipoproteínas que permanecen en solución. Posteriomente, se determinan los niveles
de CHO en el sobrenadante tal y como se ha indicado anteriormente.
4.
Determinación de colesterol LDL
Para calcular el colesterol LDL se utiliza la Fórmula de Friedewald, expresada como sigue:
Col − LDL = 𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝑇𝑇 − 𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝐻𝐻𝐻𝐻𝐻𝐻 −
𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇
5
En la fórmula, TAG/5 (triacilgliceroles ÷ 5) corresponde a la concentración de VLDL, y solamente es útil
cuando la concentración de TAG es menor a 400 mg/dl (< mM).
IV. MATERIALES Y REACTIVOS
1.
Solución patrón de colesterol (Col-STD) de concentración 200 mg/dL (5.2 mM)
2.
Solución patrón de triacilgliceroles (TAG-STD) de concentración 200 mg/dL (2.29 mM)
3.
Reactivo para la determinación de colesterol total
4.
Reactivo para la determinación de triacilgliceroles
5.
Solución de sulfato de dextrán y Mg++ (reactivo precipitante de Col-VLDL y Col-LDL)
6.
Tubos de ensayo
7.
Gradillas
8.
Pipetas semiautomáticas para la medición de volúmenes de 10 µl y 100 µl
9.
Espectrofotómetro
10.
Sueros problema
III. PROCEDIMIENTO PRÁCTICO
Para realizar esta práctica, las determinaciones se realizarán con reactivos comerciales y se emplearán
sueros con valores normales y sueros alterados, donde los valores de triacilgliceroles y colesterol son
patológicos.
1.
Triacilgliceroles
a) Rotular sendos tubos como B (blanco), St (patrón) y M
b) Agregar a cada tubo 1 ml de reactivo de triacilgliceroles
c) Al tubo St agregarle 10 µl de solución patrón de triacilgliceroles
d) Al M agregarle 10 µl de muestra
e) Mezclar suavemente los tubos y dejar en reposo 20 minutos a temperatura ambiente
f) Leer la absorbancia del contenido de los tubos St, M a 546 nm, poniendo el fotómetro en cero de
absorbancia con el blanco de reactivos (B)
g) Anotar las absorbancias respectivas como Ast para el patrón, Am
h) Realizar los cálculos de concetración de triacilgliceroles con la fórmula siguiente:
𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇 (𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇) =
i)
𝐴𝐴mx
𝑋𝑋 200 𝑚𝑚𝑚𝑚/𝑑𝑑𝑑𝑑
𝐴𝐴𝐴𝐴𝐴𝐴
Donde Amx es la absorbancia de la muestra y ASt es la absorbancia del patrón.
Registrar los resultados
2.
Colesterol total
a) Rotular sendos tubos como B (blanco), St (patrón) y M
b) Agregar a cada tubo 1 ml de reactivo de colesterol
c) Al tubo P agregarle 10 µl de solución patrón de colesterol
d) Al M agregarle 10 µl de muestra
e) Mezclar suavemente los tubos y dejar en reposo 20 minutos a temperatura ambiente
f) Leer la absorbancia del contenido de los tubos St y M 546 nm, poniendo el fotómetro en cero de
absorbancia con el blanco de reactivos (B)
g) Anotar las absorbancias respectivas como ASt para el patrón y Am
h) Realizar los cálculos de concentración de colesterol con la fórmula siguiente:
𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝑡𝑡𝑡𝑡𝑡𝑡𝑡𝑡𝑡𝑡 (𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝑇𝑇) =
i)
𝐴𝐴mx
𝑋𝑋 200 𝑚𝑚𝑚𝑚/𝑑𝑑𝑑𝑑
𝐴𝐴𝐴𝐴𝐴𝐴
Donde Amx es la absorbancia de la muestra y ASt es la absorbancia del patrón.
Registrar los resultados
3.
Colesterol HDL (Wiener Lab)
a. Separación por precipitación del Colesterol-HDL de Colesterol-VLDL Y Colesterol-LDL
a) Rotular un tubo P-HDL
b) Agregar al tubo 500 µl de suero
c) Agregar 50 µl de reactivo precipitante
d) Dejar en reposo por 15 minutos en agua de hielo a 2°C-10°C (30-40 minutos si es en refrigeradora)
e) Centrifugar por 10 minutos a 3500 rpm
b. Determinación de Colesterol-HDL
a) Rotular tres tubos como B (blanco), St (patrón) y M-HDL
b) Agregar a cada tubo 1 ml de reactivo de colesterol
c) Al tubo St agregarle 10 µl de solución patrón de colesterol
d) Al tubos M-HDL agregarle 50 µl de sobrenadante del tubo P-HDL
e) Mezclar suavemente los tubos y dejar en reposo 20 minutos a temperatura ambiente
f) Leer la absorbancia del contenido de los tubos St y M-HDL a 546 nm, poniendo el fotómetro en cero
de absorbancia con el blanco de reactivos (B)
g) Anotar las absorbancias respectivas como ASt para el patrón y Am
h) Realizar los cálculos de concentración de colesterol con la fórmula siguiente:
𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝐻𝐻𝐻𝐻𝐻𝐻 (𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝐻𝐻𝐻𝐻𝐻𝐻) =
i)
4.
Donde Amx es la absorbancia de la muestra y ASt es la absorbancia del patrón.
Registrar el resultado
Colesterol VLDL
a) Calcular la concentración de colesterol VLDL dividiendo la concentración triacilgliceroles entre 5:
b) Registrar el resultado
5.
𝐴𝐴mx
𝑋𝑋 45.74 𝑚𝑚𝑚𝑚/𝑑𝑑𝑑𝑑
𝐴𝐴𝐴𝐴𝐴𝐴
𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉 (𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉) =
Colesterol LDL
a) Calcular la concentración de colesterol LDL utilizando la fórmula de Friedewal:
b) Registrar el resultado
𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝐿𝐿𝐷𝐷𝐷𝐷 (𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝐿𝐿𝐿𝐿𝐿𝐿) = 𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝑇𝑇 − 𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝐻𝐻𝐻𝐻𝐻𝐻 − 𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶𝐶 𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉𝑉
IV. RESULTADOS
1.
𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇𝑇
5
Registrar las absorbancias obtenidas en el siguiente cuadro:
Absorbancias
TAG
Col T
Col HDL
Patrón (St)
Muestra 1 (M1)
2.
3.
Realizar cada uno de los cálculos correspondientes para determinar las concentraciones de las
fracciones lipídicas (dejar constancia de ello)
Registrar las concentraciones de cada una de las fracciones en el cuadro siguiente:
TAG
Concentración (mg/dl)
Col T
Col HDL Col VLDL Col LDL
Muestra
V. DISCUSIÓN DE RESULTADOS
1.
Compare los resultados obtenidos en su sección con los valores de referencia establecidos, ¿están
dentro o fuera de los valores de referencia?
2.
¿Qué riesgos presenta cada uno de los pacientes?
3.
En estos casos, ¿es válida la aplicación de la fórmula de Friedewald para el cálculo del colesterol LDL?
VI. CUESTIONARIO
1.
¿Cuál es la función de la lipasa pancreática y de la colipasa?
2.
¿Cuáles son las principales lipoproteínas? ¿Cómo se clasifican, en qué características difieren entre sí y
cuáles son sus principales funciones?
3.
Indique la localización tisular, función y regulación la actividad de la lipoproteínlipasa
4.
Indique la localización tisular, función y regulación de la actividad de la enzima Lecitinacolesterol
aciltransferasa (LCAT)
5.
Indique cuáles son los mecanismos involucrados en la captación de lípidos mediada por receptor a partir
de las lipoproteínas
6.
Señale las características del receptor de LDL (localización, ligandos, función)
7.
¿Cuáles son las diferencias entre el quilomicrón naciente, el maduro y el remanente?
8.
¿Qué se entiende por transporte reverso de colesterol?
9.
Haga revisión de la correlación clínicopatológica de cada una de las clases de lipoproteínas
VII. REFERECIAS
Anderson, S. C. (2003). Clinical Chemistry. Concepts and Applications (First ed.). New York, New York, United
States of America: The McGraw-Hill Companies, Inc.
Bishop, M., Fody, E., & Schoeff, L. (2007). Química Clínica. Principios, Procedimientos y correlaciones (Quinta
ed.). (C. A. Francisco Sánchez Fragoso, Trad.) Ciudad de México, México, México: McGraw Hill
Interamericana. Recuperado el 20 de Julio de 2015