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Urastoma sp. y Perkinsus marinus en
los ostiones de importancia acuícola
Crassostrea virginica y
Crassostrea corteziensis
¿Coevolución o Transfaunación?
M. en C. Rocío Parra-Laca
I&D
Los principales productores mundiales de ostión, de acuerdo con el volumen
producido en 2004, fueron: China, Corea, Japón y EUA. México ocupó la sexta
posición con un total de 50,149 toneladas, lo cual representa el 1.1% de la
producción mundial (FAO, 2006).
Tabla 1. Participación de la acuacultura en la producción pesquera nacional en peso vivo
(toneladas), por especie, según volumen en 2008 (CONAPESCA, 2008)
HOSPEDERO
Crassotrea virginica
PATÓGENO
ENFERMEDAD
Papilomavirus
Hipertrofia gametocítica viral
(VHG)
Crasssotrea gigas, Mactra
Bacterias tipo Rickettsias
Rickettsiosis
Bacterias tipo Vibrio
Vibriosis
Perkinsus marinus
Perkinsiosis
Stegotricha enterikos y otros
Infección por ciliados tipo
ciliados
Ancistrocoma
Trichodina sp. y otros ciliados
Infección por ciliados tipo
califórnica
C. giga, Mytilus califórnica
Tivela stultorum
C. virginica, C. corteziensis
C. gigas
C. gigas
Trichodina
Mytilus galloprovincialis
M. galloprovincialis,
Steinhausiamytilovum
Enfermedad de los gametos
Nematopsis sp.
Gregarinas
Candidatus Xenohaliotis
Sindroma de deshidratación
M. californica
Haliotis fulgens, Haliotis
rufescens
H. rufescens
californiensis
Margolisiella (Pseudoklossia)
Coccidiosis
haliotis
C. gigas, C. virginica
C. croteziensis, Pecten
maximus, Ostrea edulis
Herpesvirus
(OsHV-1)
Urastoma sp. y Perkinsus marinus en los
ostiones de importancia acuícola
Crassostrea virginica y
Crassostrea corteziensis
¿Coevolución o Transfaunación?
TESIS MAESTRÍA EN CIENCIAS EN ACUICULTURA
PRESENTADA POR:
ROCÍO PARRA LACA
Director: Jorge A. Cáceres Martínez
Ensenada, Baja California, México
I&D
6
INTRODUCCIÓN
http://www.lookfordiagnosis.com/mesh_info.php?term=Polyplacophora&lang=2
• Phyllum: Mollusca
http://www.panglao-hotspot.org/Main/events.html
http://www.theseashore.org.uk/theseashore/SpeciesPages/
Additional%20Species/Donax.htm
http://www.divephotoguide.com/user/Seaimmersion/gallery/vittorio_s_underwater_gallery/photo/1907
/
http://everythingoctopus.blogspot.com/2008/12/speciesblue-ringed-octopus.html
http://www.cosmosmagazine.com/news/744/origin-species-mostly-tropics
http://www.imr.no/cano/
http://www.abcamp.com/Abalone.html
7
INTRODUCCIÓN
• Clases:
– Cephalopoda
– Gastropoda
– Monoplacophora
– Polyplacophora
– Bivalvia
http://www.lookfordiagnosis.com/mesh_info.php?term=Bivalvia&lang=2
Crassostrea virginica
Crassostrea corteziensis
http://commons.wikimedia.org/wiki/File:Crassostrea_angulata.jpg
8
INTRODUCCIÓN
Ancestro común
ACONTECIMIENTOS
• Plioceno hace 5.3 m.a.
• Ancestro común de
C. virginica y C. corteziensis
con carga parasitaria
9
INTRODUCCIÓN
ACONTECIMIENTOS
• Plioceno hace 3.1 a 2.8 m.a.
• Cierre del Istmo de Panamá
10
INTRODUCCIÓN
Crassostrea virginica
Golfo de St. Lawrence Canadá
hasta
Brasil y Argentina
Crassostrea corteziensis
Golfo de California
hasta
Panamá
11
INTRODUCCIÓN
12
Tomado de Castillo y García-Cubas, 1986
INTRODUCCIÓN
Producción anual:
C. virginica 40,000 toneladas
Sustitución del cultivo de
Crassostrea gigas
http://www.dnr.state.md.us/naturalresource/spring2004/bay_restoration.html
C. corteziensis 2,000 toneladas
http://technozoic.blogspot.com/2009_02_01_archive.html
13
http://www.int-res.com/abstracts/meps/v358/feature/
http://comcaacnativeaquaculture.blogspot.com/2008/08/conclusion-del-periodo-de-investigacion.html
INTRODUCCIÓN
HASTA 1939
1875
C. virginica
1.- Punta Banda
2.- Bahía San Jorge
Crassostrea virginica
3.- Nayarit
Crassostrea corteziensis
14
INTRODUCCIÓN
C. virginica
Ancestro común
Carga parasitaria
C. corteziensis
C. corteziensis
C. virginica
 Perkinsus marinus
Caracterización
genética
Presencia
 Urastoma sp.
Transfaunación
Coevolución
15
INTRODUCCIÓN
 Perkinsus marinus ¿Qué es?
 Protista (patógeno de moluscos)
 Orden Perkinsida, Familia Perkinsidae, Género Perkinsus
 Dermo descubierto en los 40´s
Trofozoitos
Hipnosporas
20 mm
10 mm
10 mm
Tasumi y Vasta, 2007
Peyre y Faisal, 1995
16
INTRODUCCIÓN
• Agente causal de mortalidades masivas en verano y otoño.
– Infecciones del 100 % con una mortalidad del 90%.
• Aumento de la infección con mayor temperatura y salinidad.
• Todos su estadios son infectivos.
• Infección sistémica, provoca lisis y desorganización del tejido
conectivo y epitelial.
http://www.daff.gov.au/animal-plant-health/
17
http://chickahominy.davidmlawrence.com/?p=94
INTRODUCCIÓN
Ciclo reproductivo de Perkinsus spp. (Villalba, 2008)
Hipnosporas
Zoosporas
Fase de desarrollo
Fase de proliferación
Fase de
multiplicación
vegetativa
Trofozoitos
Fase de vida libre
Tomado de Villalba et al.,200418
INTRODUCCIÓN
 Urastoma sp. ¿Qué es?
 Gusano plano o platelminto
 Phyllum Platyhelminthes, Clase Turbellaria, Familia
Urastomidae
 Longitud de 0.4 a 0.8 mm
 Parásito de moluscos
• Localizado en las branquias del hospedero.
Brun et al., 1999
Bataller et al., 2003
19
INTRODUCCIÓN
Ciclo reproductivo de Urastoma cyprinae sugerido
por Crespo et al., 2005
?
1.- Turbelario maduro
2.- Cápside
3.- Formación de huevo
4.- Desarrollo de huevos
5.- Desarrollo de 12 turbelarios
inmaduros
6.- Infección del hospedero
20
Tomado y modificado de Crespo et al., 2005
HIPÓTESIS
Si la carga parasitaria actual de Crassostrea
virginica y Crassostrea corteziensis, representada
por dos especies de parásitos clasificados como
Urastoma sp. y Perkinsus marinus es resultado de
un
proceso
coevolutivo,
deben
encontrarse
variedades o diferencias específicas entre ellos,
sino, es por un proceso de transfaunación.
21
OBJETIVOS
– Identificar especies de Urastoma sp. en Crassostrea
corteziensis y Crassostrea virginica.
– Caracterizar y comparar por biología molecular a
Perkinsus marinus y Urastoma sp.
– Corroborar si P. marinus y Urastoma sp. presentes en
C. virginica y C. corteziensis son la misma especie.
– Determinar si la variación parasitaria está dada por efecto
de transfaunación o como resultado coevolutivo.
22
METODOLOGÍA
OBTENCIÓN DE MUESTRAS Perkinsus marinus y Urastoma sp.
Nayarit : (C. corteziensis)
Estero Boca de Camichín y Pozo Chino
Tabasco: (C. virginica)
Laguna de Mecoacán
Sonora: (C. corteziensis)
Bahía San Jorge
Veracruz: (C. virginica)
Laguna Mandinga
23
METODOLOGÍA
ANÁLISIS DE MUESTRAS EN FRESCO
Perkinsus marinus
Recto
Urastoma sp.
Branquia
Branquia
Tabasco
Congelación -20 °C
Congelación -20 °C
Urastoma cyprinae
Nayarit
Etanol 96%
24
METODOLOGÍA
CARACTERIZACIÓN Perkinsus marinus y
Urastoma sp.
P. marinus
Urastoma sp.
Extracción
ADN
DNAzol
Kit QIAamp
QIAGEN
Análisis por :
• Espectrofotometría
• Electroforesis 0.8%
PCR
(amplificado)
Purificación del
producto de PCR
Secuenciación
Electroforesis en
agarosa
1.5 % NTS P. marinus
1.2 % ITS P. marinus
2.0% 18S Urastoma sp.
25
METODOLOGÍA
AMPLIFICACIÓN DE NTS E ITS DE Perkinsus marinus
Región
NTS
(Robledo, 1998)
ITS
(Audemard et al.,
2004)
Primer
Producto
NTS-1 : 5’ CAC TTG TAT TGT GAA GCA CCC 3’
NTS-2 : 5’ TTG GTC ACA TCT CCA AAT GAC 3’
Aproximado de 307 pb
PerkITS85: 5’ CCG CTT TGT TTG GAT CCC 3’
PerkITS-750 : 5’ ACA TCA GGC CTT CTA ATG ATG 3’
Aproximado de 509 pb
26
METODOLOGÍA
www.genome.gov/EdKit/bio2i.html
http://www.ncbi.nlm.nih.gov/bookshelf/br.fcgi?book=cooper&part=A1362&rendertype=figure&id=A1364
27
METODOLOGÍA
AMPLIFICACIÓN FRAGMENTO DE 18S de Urastoma sp.
Región
Primer
Urastoma sp.
(Carranza et al., 1997)
18S ADNr
Urastoma cyprinae
(Norén y Jondelius 1999)
18S ADNr
Urastoma cyprinae
(Norén y Jondelius 1999)
18S ADNr
1F- 5’ TAC CTG GTT GAT CCT
GCC AGT AG 3’
1R- 5´CTT GGC AAA TGC TTT
CGC 3’
2F- 5’ GCG AAA GCA TTT GCC
AAG AA 3’
2R- 5’ GAT CCT TCC GCA GGT
TCA CCT AC 3’
1F- 5’ AMC TGG TTG ATC CTG
CCA G 3’
1R- 5’ TGA TCC ATC TGC AGG
TTC ACC T 3’
1100 R- 5’ GAT CGT CTT CGA
ACC TCT G 3’
600 F- 5’ GGT GCC AGC NGC
CGC GGT 3’
Producto
Aproximado de 800 pb
Aproximado de 1743 pb
Aproximado de 500 pb
28
METODOLOGÍA
ANÁLISIS DE SECUENCIAS
• % de similitud
• # de cambios
Transversiones
Transiciones
MEGA versión 4
Secuenciación
(Tamura et al., 2007)
Alineamiento
CLUSTAL W
Árboles
filogenéticos
Transiciones
Purinas
Pirimidinas
A - G
C - T
Transversiones
A - G
C - T
29
METODOLOGÍA
30
RESULTADOS
AMPLIFICACIÓN DE NTS DE Perkinsus marinus
Amplificación del NTS de Perkinsus marinus
por medio de PCR en Crassostrea virginica y
C. corteziensis de los estados de Sonora,
Nayarit y Veracruz. Carriles 1 y 7) Marcador
de peso molecular de 0.1 a 1 Kpb
(GeneChoice); 2) Control positivo (ADN
genómico del hospedero con infección por
Perkinsus marinus, 100 ng por reacción); 3)
Control negativo (agua estéril); 4) Muestra
positiva de C. corteziensis de Nayarit; 5)
Muestra positiva de C. virginica de Veracruz;
6) Muestra positiva de C. corteziensis de
Sonora.
1
2
3
4
5 6
7
1000 pb
500 pb
400 pb
300 pb
200 pb
100 pb
Electroforesis en agarosa al 1.5 %
31
RESULTADOS
BLAST DE NTS DE Perkinsus marinus
BLAST gen NTS
No. de Acceso
Cobertura
Valor E
Identidad
Eu617394.1
Perkinsus marinus NTS,
secuencia parcial
100%
4e-128
100%
AF497479.1
Perkinsus marinus cepa Txsc
gen ARNr, secuencia parcial
97%
1e-120
99%
S78416.1
Perkinsus marinus región
intergénica de ADN genómico
97%
7e-119
98%
 Seis nucleótidos diferentes de las secuencias reportadas y las secuencias obtenidas de
NTS de Perkinsus marinus de Nayarit, Sonora y Veracruz.
 Dos transiciones y cuatro transversiones.
32
RESULTADOS
ÁRBOL FILOGENÉTICO DE NEIGHBOR-JOINING
DE LAS SECUENCIA NTS DE Perkinsus marinus
Perkinsus sp. AF466539.1 cepa P.sp.7 gen ARNr NTS (Australia)
Perkinsus sp. AF466536.1 cepa P.sp.4 gen ARNr NTS (Australia)
Perkinsus atlanticus AF509333.1 gen 5S ARNr incluye NTS (Espana)
Perkinsus olseni AF466532.1 cepa P.o6 gen ARNr incluye NTS (Australia)
Perkinsus olseni AF466529.1 cepa P.o3 gen ARNr NTS (Australia)
Perkinsus sp. AF466540.1 cepa P.sp.8 gen ARNr NTS (Australia)
Perkinsus olseni AF466530.1 cepa P.o4 gen ARNr incluye NTS (Australia)
Perkinsus olseni AF466528.1 cepa P.o2 gen ARNr NTS (Australia)
Perkinsus marinus AF497479.1 cepa TXsc gen ARNr incluye NTS (Texas)
Perkinsus marinus S78416.1 Region intergenica ADN genomico 307 nt (Maryland)
Perkinsus marinus Nayarit (Crassostrea corteziensis)
Perkinsus marinus Veracruz (Crassostrea virginica)
Perkinsus marinus Sonora (Crassostrea corteziensis)
Perkinsus marinus EU617394.1 NTS (Nayarit)
0.05
33
RESULTADOS
AMPLIFICACIÓN DE ITS DE Perkinsus marinus
1
Amplificación del ITS de Perkinsus marinus
por medio de PCR en Crassostrea corteziensis
de los estados de Sonora y Nayarit. Carriles 1
y 6) Marcador de peso molecular de 0.1 a 1
Kpb (GeneChoice); 2) Control positivo (ADN
genómico del hospedero con infección por
Perkinsus marinus, 100 ng por reacción); 3)
Control negativo (agua estéril); 4) Muestra
positiva del estado de Nayarit; 5) Muestra
positiva del estado de Sonora.
2
3
4
5
6
1000 pb
700 pb
600 pb
400 pb
300 pb
200 pb
100 pb
Electroforesis en agarosa al 1.2 %
34
RESULTADOS
BLAST DE ITS DE Perkinsus marinus
BLAST gen ITS
No. de Acceso
Cobertura
Valor E
Identidad
DQ370479.1
Perkinsus marinus aislado 7, ITS1, secuencia parcial
100%
0.0
100%
DQ370478.1
Perkinsus marinus aislado 6, ITS1, secuencia parcial
100%
0.0
100%
AY295185.1
Perkinsus marinus clon NJ3 1, subunidad 1K gen ARNr
100%
0.0
100%
AY295183.1
Perkinsus marinus clon MA2 11, subunidad 1K gen ARNr
100%
0.0
100%
AY295181.1
Perkinsus marinus clon LA23 7, subunidad 5 gen ARNr
100%
0.0
100%
AF497479.1
Perkinsus marinus cepa Txsc gen ARNr, secuencia parcial
100%
0.0
100%
AF150990.1
Perkinsus marinus aislado TCMD-1, gen 18S ARNr, secuencia
parcial
Perkinsus marinus aislado WIMD-2, gen 18S ARNr, secuencia
parcial
Perkinsus marinus aislado FPMD-6, gen 18S ARNr, secuencia
parcial
Perkinsus marinus gen 18S y 28s ARNr, secuencia parcial
100%
0.0
100%
100%
0.0
100%
100%
0.0
100%
100%
0.0
100%
Perkinsus marinus clon SC2 4 7, subunidad menor gen ARNr
Perkinsus marinus aislado 9, ITS1, secuencia parcial
Perkinsus marinus clon SC2 4 8, subunidad menor ARNr
Perkinsus marinus aislado EBPICv15-h6-g5 clon 2, subunidad
menor ARNr
Perkinsus marinus aislado 10, ITS1, secuencia parcial
100%
100%
100%
100%
0.0
0.0
0.0
0.0
99%
99%
99%
99%
100%
0.0
99%
AF150989.1
AF150985.1
U07700.1
AY295195.1
DQ370480.1
AY295197.1
EU919504.1
DQ370481.1
 Se encontraron seis nucleótidos diferentes respecto a las secuencias de Perkinsus marinus
de Nayarit y Sonora y las secuencias de P. marinus reportadas.
35
 3 transiciones y 3 transversiones.
RESULTADOS
ÁRBOL FILOGENÉTICO DE NEIGHBOR-JOINING DE LAS SECUENCIAS ITS DE Perkinsus marinus
Perkinsus marinus AF150990.1 aislado TCMD 1 (Virginia)
Perkinsus marinus AF150985.1 aislado FPMD-6 ITS (Virginia)
Perkinsus marinus AF497479.1 cepa TXsc 5S ITS (Texas)
Perkinsus marinus AY295181.1 clon LA23 7 5 (Virginia)
Perkinsus marinus AY295183.1 clon MA2 11 1K (Virginia)
Perkinsus marinus AY295185.1 clon NJ3 1 1K (Virginia)
Perkinsus marinus DQ370478.1 gen ARNr incluye ITS (España)
Perkinsus marinus DQ370479.1 ITS gen ARNr incluye ITS (España)
Perkinsus marinus Sonora (Crassostrea corteziensis)
Perkinsus marinus Nayarit (Crassostrea corteziensis)
Perkinsus marinus AF150989.1 aislado WIMD-2 ITS (Virginia)
Perkinsus marinus AY295195.1 clon SC2 4 6 (Virginia)
Perkinsus marinus DQ370480.1 aislado 9 ITS (Virginia)
Perkinsus marinus AY295194.1 clon SC2 4 5 (Virginia)
Perkinsus marinus AY295193.1 clon SC2 4 4 (Virginia)
Perkinsus marinus EU919504.1 aislado EBPICv15 H6-G5 ITS (Virginia)
Perkinsus marinus DQ370477.1 aislado 5 ITS (España)
Perkinsus marinus AY295197.1 clon SC2 4 8 (Virginia)
Perkinsus marinus AY295188.1 clon NJ3 1 6 (Virginia)
Perkinsus marinus AY295184.1 clon MA2 11 3 (Virginia)
Perkinsus marinus PMU07700 ITS (Australia)
Perkinsus marinus DQ370481.1 aislado 10 ITS (España)
Perkinsus marinus DQ370475.1 aislado 2 ITS (España)
Perkinsus marinus AY295199.1 clon SC3 (Virginia)
Perkinsus marinus AY295198.1 clon SC3 2 1B (Virginia)
Perkinsus atlanticus AF369975.1 aislado E8 (España)
Perkinsus olseni GU233532.1 aislado SS 3 (China)
36
0.005
RESULTADOS
AMPLIFICACIÓN DEL GEN 18S DE Urastoma sp. DE Crassostrea corteziensis
Amplificación del Gen 18S de Urastoma sp.
por medio de PCR en Crassostrea
corteziensis de los estados de Sonora y
Nayarit. Carril 1) Marcador de peso
molecular de 0.1 a 1 Kb (GeneChoice); 2)
Control positivo de Urastoma cyprinae
extraído de branquia de Mytilus
galloprovincialis del estado de Baja
California; 3) Control negativo (agua
estéril); 4) Músculo del hospedero; 5)
Muestra positiva de Urastoma sp. con los
iniciadores 1F-UR1 y 1R-UR1; 6) Control
positivo de U. cyprinae extraído de
branquia de Mytilus galloprovincialis del
estado de Baja California; 7) Control
negativo (agua estéril); 8) Músculo del
hospedero; 9) Muestra positiva de
Urastoma sp. con los iniciadores 2F-UR1 y
2R-UR1
1
2
3
4
5
6
7
8
9
3,000 pb
1,000 pb
700 pb
500 pb
Electroforesis en agarosa al 2.0 %
37
RESULTADOS
AMPLIFICACIÓN DEL GEN 18S DE Urastoma sp. DE Crassostrea virginica
1
2
3
4
5
3,000 pb
1,000 pb
700 pb
500 pb
Electroforesis en agarosa al 2.0 %
6
Amplificación del Gen 18S de Urastoma sp. por
medio de PCR en Crassostrea virginica del estado
de Tabasco. Carril 1) Marcador de peso
molecular de 0.1 a 1 Kb (GeneChoice); 2) Control
positivo de Urastoma cyprinae extraído de
branquia de Mytilus galloprovincialis del estado
de Baja California Muestra; 3) Control positivo de
Urastoma sp. extraído de branquia de
Crassostrea corteziensis del estado de Nayarit; 4)
Control negativo (agua estéril); 5) Músculo del
hospedero; 6) Muestra positiva de Urastoma sp.
con los iniciadores 2F-UR1 y 2R-UR1
38
RESULTADOS
BLAST DEL GEN 18S DE Urastoma sp. DE
Crassostrea corteziensis y Crassostrea virginica
BLAST gen 18S
No. de Acceso
U70085.1
Urastoma sp. gen 18S ARNr,
Cobertura
Valor E
Identidad
99%
0.0
92%
99%
0.0
92%
99%
0.0
92%
secuencia completa.
AF167422.1
Urastoma cyprinae gen 18S
ARNr, secuencia parcial.
AF065428.2
Urastoma cyprinae gen 18S
ARNr, secuencia parcial.
 Se encontraron sesenta y siete nucleótidos diferentes respecto a las secuencias de
Urastoma sp. reportadas.
 23 transiciones y 23 transversiones para Urastoma sp. de Tabasco y Nayarit.
 20 transiciones y 25 transversiones para Urastoma sp. de Baja California.
39
RESULTADOS
ÁRBOL FILOGENÉTICO DE NEIGHBOR-JOINING
DE LAS SECUENCIAS DEL GEN 18S DE Urastoma sp.
Urastoma sp. (Crassostrea virginica) Tabasco
Urastomidae-Platelminto
Urastoma sp. (Crassostrea corteziensis) Nayarit
Urastomidae-Platelminto
Urastoma sp. (Mytilus galloprovincialis) Baja California
Urastomidae-Platelminto
Urastoma sp. USU70085 18S gen ARNr secuencia completa
Urastomidae-Platelminto
Urastoma cyprinae AF167422 18S gen ARNr secuencia parcial
Urastomidae-Platelminto
Urastoma cyprinae AF065428 18S gen ARNr secuencia parcial
Urastomidae-Platelminto
Fecampiidae-Platelminto
Notentera ivanovi AJ287546.1 18S gen ARNr
Ichthyophaga sp. AJ012512.1 18S gen parcial ARNr
Ciliopharyngiella constricta isolate NHM-London AY775755.1 18S gen ARNr secuencia parcial
Urastomidae-Platelminto
No hay familia descrita -Platelminto
Trochonerilla mobilis AY834759.2 18S gen ARNr secuencia parcial
Nerillidae-Annelida
Cossura candida AY532350.1 18S gen ARNr secuencia parcial
Cossuridae-Annelida
Capilloventer australis AY365455.1 18S gen ARNr secuencia parcial
Capilloventridae-Annelida
Saccocirrus sp. BC-2003 AY340441.1 18S gen ARNr secuencia parcial Saccocirridae-Annelida
Saccocirrus papillocercus AF412808.1 18S gen ARNr secuencia parcial Saccocirridae-Annelida
0.02
40
DISCUSIÓN
• Clasificación
de
organismos
por
taxonomía
convencional ha tenido fronteras.
• Estas fronteras han sido traspasadas con el desarrollo
de la biología molecular.
• ¿Cuál es el número de cambios suficientes para definir
una especie?.
• Cambios moleculares son resultado de procesos de
adaptación al medio externo que pueden reflejarse
físicamente en los individuos.
41
DISCUSIÓN
• Cambio drástico fue el cierre del istmo de Panamá
generándose, como resultado de un aislamiento
reproductivo, dos especies de ostión con una carga
parasitaria similar apoyando la hipótesis planteada.
• Para Perkinsus marinus, gracias a la información
publicada y al conocimiento de su genoma, nos ha sido
posible con las secuencias obtenidas en el estudio
determinar su similitud en poblaciones de hospederos
separadas.
42
DISCUSIÓN
• Para Urastoma sp. con las fracciones del genoma
conocidas y su comparación con las secuencias
obtenidas en el estudio nos permite determinar que
pertenecen al mismo género y muy probablemente a la
misma especie.
• Mas
estudios
morfológicos
y
moleculares
de
secuencias más específicas son necesarias para
determinar si se trata de una especie diferente o de
variaciones interespecíficas.
43
CONCLUSIONES
•
Con el análisis de las secuencias de NTS de Perkinsus marinus con las secuencias del
GenBank de la región NTS de P. marinus, se puede decir que Perkinsus marinus de Sonora,
Nayarit y Veracruz son de la misma especie.
•
Con el análisis de las secuencias de ITS de Perkinsus marinus con varios tipos de P. marinus,
se puede decir que las muestras de Sonora y Nayarit son de la misma variedad.
•
La presencia de Perkinsus marinus en las costas del Pacífico mexicano en los estados de
Nayarit y Sonora son por efecto de transfaunación.
•
Con el análisis del gen 18S de Urastoma sp. de Nayarit y Tabasco, se puede decir que la
especie de Urastoma sp. del Golfo de México y del Pacífico pudieran ser del mismo género
y probablemente de la misma especie.
•
La presencia de Urastoma sp. en las costas del Pacífico mexicano, en el estado de Nayarit y
en el Golfo de México, en el estado de Tabasco, se deben a un efecto de transfaunación.
44
CONCLUSIONES
•
Los registros de movimientos de Crassostrea virginica del Golfo de México hacia
Nayarit, así como de Louisiana hacia la costas de Sonora y entre las regiones de Nayarit,
Sinaloa, Sonora y Baja California Norte contribuyen a explicar la distribución actual de
Perkinsus marinus en las costas del Pacífico mexicano y la presencia de éste por
transfaunación.
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La similitud de las secuencias de Urastoma sp. de los estados de Tabasco y Nayarit junto
con las evidencias de los movimientos registrados por el CESANAY de lotes de ostión de
la laguna de Tamiahua en el estado de Veracruz hacia Nayarit, sustentan la evidencia de
que se trata probablemente del mismo género y especie de Urastoma sp. encontrado,
tanto en la costa del golfo de México como en el Pacífico mexicano, resultado de un
proceso de transfaunación.
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Son necesarios más estudios taxonómicos de los organismos del género Urastoma para
determinar si existen más especies dentro de éste o si las diferencias pudieran estar
dadas por variaciones dentro de la especie, debido a su distribución geográfica.
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CONCLUSIONES
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La implementación de medidas de control para transfaunación, que consisten en:
tiempos de cuarentena, certificación sanitaria de lotes y capacitación de productores y
comerciantes, sumado a las buenas prácticas de manejo tales como evitar desechar
ostiones muertos, vísceras o conchas a las orillas o dentro de los cuerpos de agua
evitando así la dispersión de parásitos que pudiesen tener un efecto negativo en las
producciones y los ecosistemas.
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¡GRACIAS!
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¡GRACIAS!
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