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Manual de laboratorio de Banco de Sangre
Dr. Jonathan Alfaro Alvarado
Dr. Carlos Cordero Gómez
Dr. Miguel A Rodríguez Pineda.
Procedimiento 1
Prueba de Antiglobulina Indirecta
v
Principio
La técnica de inmunoglobulina indirecta fue descrita por primera vez en 1945
por Coombs y colaboradores y permite observar aglutinaciones de anticuerpos que
normalmente no serían evidenciables en condiciones estándar de laboratorio.
La técnica de antiglobulina indirecta, permite detectar los anticuerpos de tipo IgG, que
no tienen la capacidad de aglutinar de manera espontánea y requiere de una fase de
revelado para poder evidenciarlos. Se utiliza en el fenotipaje de
grupos sanguíneos, en los que los antígenos se encuentran en baja densidad
antigénica y donde el anticuerpo utilizado es IgG., Igualmente es aplicable en aquellos
casos en los que se buscan anticuerpos de tipo IgG en el suero de una persona.
En esta prueba se utiliza el suero de Coombs, o reactivo de antiglobulina
humana, el cual consiste, en su forma más simple, en una inmunoglobulina dirigida
contra la porción Fc de los anticuerpos de tipo IgG. Existen
igualmente reactivos que están conformados no solamente por inmunoglobulinas antiIgG, sino también por anticuerpos dirigidas contra la molécula C3 del
complemento, lo que permite reconocer la presencia de anticuerpos fijadores de
complemento. Se han desarrollado asimismo reactivos dirigidos contra fracciones
específicas de complemento, como C3b, C3d, C4b y C4d. En este sentido podemos
encontrar reactivos de antiglobulina humana policlonales (anti IgG + anti C) o
monoespecíficos que contienen solo uno de los anticuerpos en mención
La prueba de Antiglobulina Indirecta cuenta con varias fases, siendo la primera
una fase la centrifugación, sin previa incubación en la cual se detectan anticuerpos de
tipo IgM como los del sistema ABO, auto-anti-I, anti-M, anti-N, anti-Lewis, etc. Por
esta razón cuando se esta utilizando esta técnica, con el objetivo de detectar anticuerpos
irregulares en pacientes, las células que se utilizan deberán ser de grupo O para evitar a
interferencia del anti A y anti B.
La segunda fase consta en incubar la reacción a una temperatura de 37ºC, por un
tiempo que estará definido por el tipo de potenciador que utilicemos, como albúmina,
LISS, polietilenglicol o enzimas. En caso de que alguno de estos reactivos sea utilizado,
es necesario apegarse a las instrucciones aportadas por el fabricante. Durante la
incubación se pretende que ocurra la sensibilización del glóbulo rojo, que permitirá
detectar la reacción antígeno-anticuerpo en la fase de revelado.
Una vez terminada esta incubación, se pasa a realizar lavados con el fin de
remover inmunoglobulinas u otro tipo de proteínas, que no se unieron al eritrocito y
que pueden interferir con la reacción. La fase de los lavados es crítica, ya que la
presencia de anticuerpos u otros interferentes en el suero podrían llevar a la
neutralización del reactivo. Asimismo, es sumamente importante eliminar el exceso de
solución salina al finalizar estos lavados, ya que de lo contrario, el reactivo de
antiglobulina es diluido, lo cual puede afectar la sensibilidad de la prueba.
Posterior a los lavados, y de haber eliminado la última gota de solución salina se añade
el reactivo de antiglobulina, fase de revelado se centrifuga y se lee la prueba.
De haberse dado sensibilización, los anticuerpos adheridos a la superficie eritrocitaria
serán reconocidos por el reactivo de antiglobulina y se podrá observar una reacción de
aglutinación.
Muestras y reactivos
• Solución salina
• Muestras de sangre total anticoagulada con EDTA.
• Baño maría a 37ºC.
• Juego de células rastreadoras 3%.
• Reactivo de Antiglobulina Humana.
• Albúmina bovina 22%.
• Células de control de antiglobulina humana.
Método
1. Rotular tubos para las Células I, Células II y Células III.
2. Mezclar y homogenizar con suavidad el juego de reactivo de células
rastreadoras.
3. Añadir al tubo rotulado como células I, 50 ul del pool I. Debe tenerse
especial cuidado en no intercambiar las tapas de los goteros y en
minimizar la posibilidad de contaminación de los mismos.
4. Añadir al tubo rotulado como células II, 50 ul del pool II.
5. Añadir al tubo rotulado como células III, 50 ul del pool III.
6. Añadir 100 ul del suero en análisis a cada uno de los tubos.
7. Agregue 100 ul de albúmina al 22%.
A partir de este momento se inician las tres fases de una prueba de
antiglobulina:
Fase 1, centrifugación inmediata o prueba rápida:
1. Centrifugar los tubos 30 segundos a 3000 rpm.
2. Resuspender con suavidad, leer y anotar resultados.
Fase II, incubación a 37ºC:
1. Después de la lectura anterior, colocar los tubos a 37ºC
por 30 minutos.
2. Centrifugar los tubos 30 segundos a 3000 rpm. Leer y
anotar resultados.
3. Realizar tres lavados con solución salina fisiológica.
4. Secar la última gota de solución salina
Fase III, antiglobulina:
1. Añadir 100ul del reactivo de antiglobulina humana
poliespecífico (suero de Coombs).
2. Mezclar y centrifugar 30 segundos a 3000 rpm.
3. A las pruebas que dieron negativo, se les realiza el
control con Células Control, agregando 50ul de las
células Control de Antiglobulina Humana.
4. Mezclar y centrifugar 30 segundos a 3000 rpm, leer y
anotar resultados.
Procedimiento 2
Prueba de Antiglobulina Directa
v
Principio
La prueba de antiglobulina directa se utiliza primordialmente para determinar si los
eritrocitos del paciente en análisis están recubiertos por inmunoglobulinas o fracciones
de complemento. Esto puede llegar a presentarse en diferentes condiciones, como por
ejemplo, la presencia de aloanticuerpos, producto de una reacción hemolítica tardía o
por enfermedad hemolítica del recién nacido o autoanticuerpos en anemias hemolíticas
autoinmunes, dirigidos contra antígenos de propios de la superficie eritrocitaria, de
anticuerpos dirigidos contra drogas que se adsorben a la membrana del glóbulo rojo o
por la activación de complemento en esta superficie.
Por estas razones, la prueba de antiglobulina directa son útiles en el estudio de
anemias hemolíticas, y el resultado debe analizarse en el contexto clínico para poder dar
un diagnóstico certero.
Normalmente, esta prueba se realiza con el reactivo de Antiglobulina Humana,
que tal como se explicó en el procedimiento anterior, usualmente es poliespecífico e
incluye anticuerpos dirigidos tanto contra las IgG humanas como contra fracciones del
complemento. En caso de obtener una reacción positiva utilizando el reactivo
poliespecífico, se procede a repetir la determinación utilizando reactivos
monoespecíficos con el fin de identificar la especificidad de
las proteínas involucradas en la reacción.
Dado que es posible que exista fijación de complemento in vitro en muestras no
anticoaguladas, se prefiere realizar esta prueba en muestras con EDTA. De lo contrario,
se puede obtener un resultado positivo debido a la activación del complemento, durante
la coagulación.
También se recomienda utilizar eritrocitos lavados para realizar la prueba, ya que
podrán existir proteínas o sustancias inespecíficas que interferirían con la reacción.
Muestras y Reactivos
• Solución salina
• Muestras de sangre total anticoagulada con EDTA.
• Baño maría a 37ºC.
• Reactivo de Antiglobulina Humana
• Células de control de antiglobulina humana.
Método
1. Rotular tres tubos con el número de muestra por analizar.
2. Tomar una alícuota de la muestra y transferir al tubo correspondiente.
3. Realizar tres lavados con solución salina fisiológica.
4. En el segundo tubo hacer una suspensión de trabajo al 3-5% a partir de
la muestra de eritrocitos lavada.
5. Añadir al tercer tubo 50 ul de la suspensión de trabajo realizada.
6. Añadir 100 ul del reactivo de antiglobulina humana.
7. Mezclar y centrifugar por 30 segundos a 3000 rpm
8. Resuspender levemente, leer por aglutinación y hacer las anotaciones
respectivas.
9. En caso de obtener un resultado negativo, corroborar el mismo
utilizando las Células Control.
Procedimiento 3
Estudio de Anticuerpos Irregulares utilizando Células
Rastreadoras
v
Principio
Como se mencionó anteriormente, la prueba de Antiglobulina Indirecta puede
ser utilizada para la detección de la presencia de anticuerpos dirigidos hacia antígenos
de la superficie eritrocitaria. En medicina transfusional es de suma importancia la
detección de la presencia de estos anticuerpos, ya que si están presentes en el suero de
un paciente, por una reacción de aloinmunización previa, permitirá definir cual es la
sangre más indicada para ser transfundida. Por esta razón, el rastreo de anticuerpos se
realiza de rutina a todos los receptores de hemocomponentes, como parte de los estudios
pretransfusionales. Lo anterior con el fin de prevenir reacciones transfusionales
hemolíticas leves y graves, reduciendo un acortamiento de la sobrevida de las células
transfundidas.
Los anticuerpos irregulares son por lo general del tipo IgG, reactivos a 37ºC y/o
en la prueba de antiglobulina. Son ejemplos de este tipo de anticuerpos los dirigidos
contra los antígenos de los grupos sanguíneos Rh, Kell, Duffy, Kidd y SsU. Se ha
estimado que la incidencia de anticuerpos irregulares, en diferentes poblaciones oscila
entre el 0,78% y el 1,64%. En poblaciones hospitalarias especiales, que por su
condición de fondo reciben transfusiones de hemocomponentes con frecuencia, esta
incidencia puede ser mucho mayor.
Los métodos empleados en la detección de anticuerpos irregulares pueden
incluir 3 o más células pantalla o rastreadoras. Estas células deben de contar con los
antígenos de significancia clínica y se trabajan, al igual que las
suspensiones de trabajo eritrocitarias, a una concentración de 3 %, para la técnica en
tubo. Cuando un anticuerpo irregular es detectado, la especificidad debe de ser
definida mediante la confrontación del plasma del paciente con las células del
panel de identificación de anticuerpos.
Una vez identificada la especificidad del anticuerpo, se debe de buscar un
hemocomponente que no posea dicho antígeno, realizarle la prueba cruzada y solo
una vez obtenido un resultado negativo se procede a transfundir al paciente.
Muestras y reactivos
• Solución salina
• Muestras de sangre con EDTA.
• Baño maría a 37ºC.
• Juego de células rastreadoras 3%.
• Reactivo de Antiglobulina Humana
• Albúmina bovina 22%.
• Células de control .
Método
1. Rotular tubos para las Células I, Células II y Células III.
2. Mezclar y homogenizar con suavidad el juego de reactivo de células
rastreadoras.
3. Añadir al tubo rotulado como células I, 50 ul del pool I. Debe tenerse
especial cuidado en no intercambiar las tapas de los goteros y en
minimizar la posibilidad de contaminación de los mismos.
4. Añadir al tubo rotulado como células II, 50 ul del pool II.
5. Añadir al tubo rotulado como células III, 50 ul del pool III.
6. Añadir 100 ul del suero en análisis a cada uno de los tubos.
7. A partir de este momento se inician las tres fases de una prueba de
antiglobulina:
Fase I, centrifugación inmediata o prueba rápida:
1. Centrifugar los tubos 30 segundos a 3000 rpm.
2. Resuspender con suavidad, leer y anotar resultados.
Fase II, incubación a 37ºC:
1. Después de la lectura anterior, colocar los tubos a 37ºC
por 30 minutos.
2. Centrifugar los tubos 30 segundos a 3000 rpm. Leer y
anotar resultados.
3. Realizar tres lavados con solución salina fisiológica.
4. Secar la última gota de solución salina
Fase III, antiglobulina:
1. Añadir 100ul del reactivo de antiglobulina humana
poliespecífico.
2. Mezclar y centrifugar 30 segundos a 3000 rpm.
3. A las pruebas que dieron negativo, se les realiza el
control con Células Control.
4. Mezclar y centrifugar 30 segundos a 3000 rpm, leer y
anotar resultados.
Procedimiento 4
Pruebas de Compatibilidad Sanguínea
v
Principio
La transfusión sanguínea representa en la actualidad una parte importante de
la práctica médica y en algunas patologías, la única terapia existente. Sin embargo, el
éxito de este tipo de terapia depende de multiples factores, entre ellos, que se asegure
compatibilidad entre el donador y el receptor de un hemocomponente.
Para que un hemocomponente pueda ser utilizado en un paciente particular,
las normas internacionales indican que debe cumplirse de previo con los
siguientes procedimientos:
- Solicitud del hemocomponente por parte del médico tratante.
- Muestra de sangre del receptor. Tubo con anticoagulante tipo EDTA
- La identidad del paciente y de la muestra deben
ser corroboradas, con el fin de evitar cualquier tipo de confusión.
- Pruebas al donante: grupo ABO/Rh,
- Pruebas al receptor: grupo ABO/Rh, detección de anticuerpos
irregulares.
- Prueba cruzada mayor.
Además, es necesario incluir diferentes etapas de verificación que permitan
confirmar que efectivamente se están trabajando las muestras correspondientes al
hemocomponente y al receptor.
PROCESO DE LAS PRUEBAS PRETRANSFUSIONALES
La Solicitud, identificación y colección de la muestra de sangre:
Las reacciones por transfusión se pueden deber a reacciones hemolíticas secundarias,
dado al bajo título de anticuerpos, a errores de tipo clerical por identificación
equívoca del paciente a transfundir, confusión al momento de extraer la muestra, o en
el laboratorio.
Antes de realizar la extracción de sangre, el tubo y la solicitud deben de
coincidir con la identificación del paciente, preguntando directamente cuando sea
factible al paciente o corroborando con brazaletes de identificación; nunca se debe de
guiar por los números de cama, ya que los pacientes pueden ser cambiados
dependiendo de la necesidad del servicio.
La solicitud debe tener como datos mínimos:
‐ Identificación del paciente, número de cédula de identidad o pasaporte.
‐ Nombre completo y edad del receptor.
‐ Sexo.
‐ En caso de conocerse se debe de indicar valores como por ejemplo
grupo ABO y Rh, hemoglobina y hematocrito, antecedentes transfusionales,
gestaciones, inmunización materno fetal, reacciones adversas que se hubieran
presentando.
‐ Diagnóstico de certeza o de probabilidad, así como el motivo de la
indicación transfusional.
‐ Señalar el producto a solicitar incluyendo cantidad de unidades,
volumen o características requeridas.
‐ Fecha y hora en que se realizará la transfusión y, de ser necesario el
señalamiento de la urgencia de la transfusión.
‐ Nombre completo y firma del médico que indica la transfusión.
‐ Las solicitudes transfusionales deben ser escritas en forma legible para
evitar al máximo la equivocación.
Después de haber realizado una adecuada identificación del receptor, la
muestra de sangre debe ser obtenida, usando técnicas muy cuidadosas para evitar
hemólisis, ya que la misma produce activación del complemento y algunos anticuerpos
pueden ser enmascarados, al requerirse del complemento para visualizar la reacción
antígeno-anticuerpo.
Si no existen problemas serológicos (presencia de múltiples anticuerpos) anticuerpos de
fondo son suficientes 5 ml de sangreel receptor para realizar todos los procedimientos
inmunohematológicos.
Grupo ABO
En la medida de lo posible los receptores deberán recibir hemocomponentes
sanguíneos ABO idénticos, sin embargo, en ciertas situaciones puede ser necesario
hacer selecciones alternativas.
La determinación del grupo ABO es el paso más importante de las pruebas
serológicas pretransfusionales. Se emplean antisueros anti A y anti B, para determinar
grupo eritrocítico y glóbulos rojos con antígenos A1 y B para la
prueba sérica.
En receptores menores de 4 meses de edad la prueba inversa no se realiza, ya
que en este tipo de pacientes el desarrollo de los anticuerpos naturales todavía es
inmaduro.
En caso de discrepancias entre grupo directo e inverso se emplearán técnicas
adicionales antes de establecer el tipo sanguíneo.
Cuando se está en presencia de una urgencia extrema, en la que el grupo ABO
no se puede determinar se podrá utilizar glóbulos rojos empacados del grupo O para
transfundir.
ESQUEMA DE SELECCION DE HEMOCOMPONENTES POR ABO:
Si se va a transfundir sangre total o sangre total reconstituida no hay
alternativa transfusional, todas deberán de transfundirse grupo ABO idéntico.
Tabla 1 Esquema transfusional para Sangre total
Grupo del paciente
A
B
AB
O
Grupo de la unidad a transfundir
A
B
AB
O
Si la solicitud se refiere a Glóbulos Rojos Empacados se pueden utilizar
alternativas como se indican en la tabla 2 dependiendo de las existencias y reservas
del Banco de Sangre.
Tabla 2 Esquema transfusional para glóbulos rojos empacados
Grupo
paciente
A
B
AB
O
del Opción 1
A
B
AB
O
Opción 2
Opción 3
Opción 4
O
O
A
-
B
-
O
-
El grupo sanguíneo O, puede utilizarse con cualquier paciente ya que carece de
antígenos, lo anterior solo si no hay existencia de el grupo del paciente y en las
transfusiones subsecuentes inmediatas se debe realizar de la misma manera para evitar
reacciones de tipo hemolítico.
Para los pacientes de grupo AB, se prefiere la utilización de unidades del grupo A sobre
B, ya que el anti B del grupo A tiene menor capacidad hemolítica que el anti A del
grupo B.
La identificación de antígeno Rh D se realiza usando el antisuero anti D, cuando este
reactivo es de alta concentración proteica, la prueba debe incluir un control, que permita
detectar aquellos pacientes que tiene eritrocitos sensibilizados que puedan dar
reacciones falsas positivas.
Si el grupo Rh no puede ser establecido, dado a que el control también
presenta aglutinación y la transfusión es urgente podrá ser utilizado glóbulos rojos
empacados Rh negativo.
Los hemocomponentes Rh positivos deberán rutinariamente ser enviados a
receptores Rh positivos.
El uso de productos Rh negativos para pacientes Rh positivos es permitido,
aunque en forma ideal, deberán de reservarse exclusivamente para pacientes o
receptores Rh negativos. Solo se recomiendan cuando las unidades están por vencerse.
De forma inversa, los productos Rh negativos pueden no estar disponibles, en
esta situación se podrá optar por otras medidas alternativas, como posponer la
transfusión, hasta que el banco de sangre de manera eficiente solucione dicha situación
o en caso de que el retardo de la transfusión ponga en peligro la vida del
paciente y siempre que el rastreo de anticuerpos del paciente esté negativo se podría
utilizar sangre Rh positiva, con un riesgo de inmunización de un 70%.
PRUEBA CRUZADA PARA TRANSFUSIÓN DE ERITROCITOS
La prueba cruzada nos permite garantizar la compatibilidad ABO y en caso de que el
paciente tenga anticuerpos irregulares permite garantizar que dicho anticuerpo no va a
generar una reacción hemolítica tardía.
La prueba cruzada en la actualidad ha sido expuesto a una serie de
Interrogantes, en cuanto a si debe ser sustituida solo por el rastreo de anticuerpos, en
aquellos pacientes que no presentan anticuerpos irregulares.
Lo anterior, dado que el rastreo de anticuerpos en los sueros del
receptor y del donador tiene una alta sensibilidad. Lo anterior no aplica para cuando la
transfusión sea destinada a un paciente que presente anticuerpos clínicamente
significativos.
La prueba cruzada mayor se refiere a la técnica, mediante el cual se demuestra
la ausencia de anticuerpos en el plasma del receptor contra los antígenos del glóbulo
rojo del donador.
Por otro lado, la prueba cruzada menor se refería al cruce entre los eritrocitos
del receptor con el suero del donador y ha sido sustituida en la mayoría de los bancos
de sangre, por el rastreo rutinario de anticuerpos clínicamente significativos en los
donantes de sangre.
En caso de existir en el donante un anticuerpo en su plasma, el plasma es eliminado y
los remanentes, probablemente no causen una reacción transfusional, por efecto
dilucional.
PRUEBA CRUZADA EN SITUACIONES ESPECIALES
Urgencias.
La necesidad urgente de transfusión en ciertas situaciones clínicas establece
que la sangre sea liberada antes de que la prueba cruzada sea terminada.
El médico tratante debe estar enterado, que se le esta entregando una unidad sin prueba
cruzada completa.
En caso de que durante el proceso se determine alguna incompatibilidad en
alguno de los pasos, se dará aviso de inmediato al médico encargado para que se
administre el tratamiento oportuno.
De acuerdo a la necesidad de liberación urgente del producto sanguíneo el
Banco de Sangre puede optar por:
‐ Enviar glóbulos rojos empacados del grupo O Rh negativo y en caso de
no tener en existencia emplear grupo O Rh positivo cuando se desconozca el grupo
sanguíneo del receptor.
‐ Enviar sangre del mismo grupo ABO y Rh del receptor y donador.
‐ Siempre que sea posible, realizar la primera fase de centrifugación
inmediata, antes de enviar el producto sanguíneo.
Estas medidas pretender evitar una hemolisis de tipo intravascular.
Prueba de compatibilidad para productos plasmáticos
Los plasmas se transfunden solo con corroboración del grupo sanguíneo ABO.
En el caso de la transfusión de plasma no se requiere tomar en consideración el
tipo Rh del paciente o donante debido a que estas unidades no contienen el antígeno
D. Exceptuando si las unidades están muy contaminadas con eritrocitos.
Para el caso de la transfusión de plaquetas, estas deben de ser transfundidas
Utilizando el mismo grupo sanguíneo ABO en primera instancia, en caso de no disponer
se debe utilizar plaquetas O lavadas .
Tabla 3: Esquema transfusional del plasma
Grupo
paciente
A
B
AB
O
del Opción 1
A
B
AB
O
Opción 2
Opción 3
Opción 4
B
AB
AB
AB
A
Materiales y reactivos:
Frascos de anti A, anti B, anti AB, anti D, anti A1, Reactivo de antiglobulina
humana, albúmina al 22%, células A y B al 3%.
Tubos con muestras de eritrocitos a analizar.
Tubos con muestras de suero a analizar.
Células rastreadoras.
Tubos de 12 x 75 mm para realizar las reacciones
Solución salina al 0.85% (Pizetas).
Centrífugas Serológicas.
Microscopios.
Frascos con células control de antiglobulina humana.
Pipetas Pasteur.
Bulbos para pipeta Pasteur.
Baños de María a 37ºC.
Portaobjetos.
Caja de aplicadores.
Gradillas metálicas.
Gradillas madera.
Papel toalla.
Método:
‐ Rotular los tubos con el nombre Paciente 1, Paciente 2, Paciente 3
y Paciente 4
‐ Realizar suspensiones de trabajo 3-5% de los donantes 1, 2, 3 y 4.
‐ Añadir 50ul de la suspensión del donante 1 al tubo rotulado como
Paciente 1.
‐ Añadir 50ul de la suspensión del donante 2 al tubo rotulado como
Paciente 2.
‐ Añadir 50ul de la suspensión del donante 3 al tubo rotulado como
Paciente 3.
‐ Añadir 50ul de la suspensión del donante 4 al tubo rotulado como
Paciente 4.
‐ Añadir 100ul del suero del paciente 1 al tubo rotulado como
paciente 1.
‐ Añadir 100ul del suero del paciente 2 al tubo rotulado como
paciente 2.
‐ Añadir 100ul del suero del paciente 3 al tubo rotulado como
paciente 3.
‐ Añadir 100ul del suero del paciente 4 al tubo rotulado como
paciente 4.
‐ Añadir 100 ul de albúmina bovina al 22% a todos los tubos.
‐ Mezcle los tubos, a partir de este momento iniciamos con las tres fases
de la prueba de antiglobulina humana indirecta.
‐ Fase I: Centrifugación inmediata o prueba rápida:
Centrifugar los tubos 30 segundos a 3500 rpm. En esta fase se establece la
compatibilidad al sistema ABO, sin embargo, otros anticuerpos (ejemplo: auto-anti-I),
pueden también ser detectados en esta fase. Leer y realizar las anotaciones.
‐ Fase II
Después de la lectura anterior colocar todos los tubos a 37ºC por 30 minutos.
Al concluir la incubación sacar los tubos del baño y centrifugar por 30
segundos a 3000 rpm.
Leer y hacer las anotaciones correspondientes.
Realizar tres lavados con solución salina fisiológica.
Secar la ultima gota de salina.
‐ Fase III o antiglobulina:
Añadir 100ul del reactivo de antiglobulina humana poliespecífico.
Mezclar y centrifugue 30 segundos a 3000 rpm.
Leer y realizar anotaciones.
Las reacciones con resultado negativo confirmar con las células control.
Simultáneamente debe montar el estudio de anticuerpo para cada uno de los pacientes
de acuerdo a lo detallado en el procedimiento 3.
Durante el período de incubación realizar las determinaciones de grupo
sanguíneo eritrocitario a cada una de las suspensiones de los pacientes y donantes.
Recomendaciones:
Los resultados de las pruebas deberán ser leídos contra luz blanca.
Se puede utilizar espejos magnificadores, lentes y microscopios que ayuden con la
lectura de las pruebas.
El botón de las células se resuspenderá, se hará la lectura y se asignará los
puntajes en cruces en la hoja de trabajo.
En caso de resultados incompatibles deberán ser investigados en busca de su
causa.
Procedimiento 5
Identificación de Anticuerpos
Principio
Una vez que se ha detectado la existencia de un anticuerpo irregular, através de un
estudio de anticuerpos positivo, se debe identificar su especificidad y definir su
importancia clínica.
Los paneles de identificación están compuestos por juegos de 11 o más tipos diferentes
de células del grupo O, con fenotipo conocido de los principales antígenos de grupo
sanguíneo, a saber:
D, C,E, c, e y usualmente f, Cw
M, N, S, s
Fya, Fyb
Jka, Jkb
K, k y usualmente Kpa, Kpb, Jsa, Jsb
Lua, Lub
Lea, Leb
P1
Xga
Otros antígenos de fenotipo poco frecuente, pueden ser incluidos dentro del panel e
incluso pueden estar incluidos dependiendo de la zona geográfica, donde se encuentre
la investigación. Lo anterior de acuerdo a la disponibilidad de células por parte del
fabricante.
El panel de identificación dispone de una tabla antigénica de reacción, donde se indica
la positividad de los diferentes antígenos en relación a la célula que se está
analizando, así como el lote del reactivo, fecha de vencimiento y un lugar destinado
para hacer las anotaciones de los resultados obtenidos y sus interpretaciones.
Para el estudio de anticuerpos es importante tener presente las características de los
anticuerpos como son:
- rango térmico,
- respuesta a la reacción de la enzima,
- fuerza de reacción, (tanto aglutinación como hemólisis).
- Resultado del autocontrol para la detección de autoanticuerpos.
Cuando el patrón de aglutinación del panel muestra diferencias, se sospecha de mezcla
de anticuerpos.
La aplicación de técnicas enzimáticas o de reactivos especiales, permite separar los
anticuerpos, en base a sus características de los antígenos respectivos,
de tal manera que permitan separarlos y diferenciarlos con mayor claridad.
Dentro de estas técnicas se deben considerar para separar las mezclas de anticuerpos se
pueden mencionar:
absorción/elución
variación de temperaturas de reacción
uso de medios como el polietileno glicol y enzimas
los medios reductores.
Características de los anticuerpos en las fases de reacción:
• Fase de Centrifugación Inmediata:
A 22ºC reaccionan mejor los anticuerpos del tipo IgM como el M, N, Lewis, y el
P.
El anti I tiene un rango térmico desde 4ºC hasta fase de antiglobulina, sin
embargo, su temperatura óptima es de 4ºC.
• INCUBACION A 37ºC:
En este grupo se incluyen los anticuerpos del tipo IgG que tiene la capacidad
de aglutinar sin llegar a la fase de antiglobulina humana. Se pueden mencionar
los anti D, C, c, E, e, que reaccionan óptimamente al ser incubados por 30
minutos.
• FASE DE ANTIGLOBULINA HUMANA:
En esta fase se incluyen todos los anticuerpos tipo IgG no aglutinantes como el
anti Duffy, Kidd, Lutheran, S, s, Kell y Cellano.
EQUIPOS Y REACTIVOS:
Solución salina fisiológica
Panel de identificación
Panel de identificación tratado con enzima
Tubos 12 x 75mm para reacción.
Centrífugas serológicas.
Papel toalla.
Pipetas Pasteur.
Bulbos para pipetas Pasteur.
Tubos rotulados como muestra 1 con de suero/plasma a identificar.
Tubos rotulados como muestra 2 con de suero/plasma a identificar.
Método:
Panel de identificación
‐ Mezclar con suavidad y homogenizar el juego de reactivos del panel de
identificación según corresponda.
‐ Rotular un juego de 11 tubos con el número y la muestra a analizar.
‐ Añadir 50ul de las células reactivo correspondiente 1 al tubo rotulado como
células 1. y así sucesivamente hasta completar los 11 tubos.
‐ Añadir 100ul del suero o plasma a estudiar a los 11 tubos.
‐ A todos los tubos añadir 100ul del reactivo de albúmina bovina al 22%.
‐ Mezclar y a partir de este momento se inicia con las tres fases de la prueba de
antiglobulina humana indirecta.
‐ Anotar los resultados obtenidos en la tabla antigénica que corresponde al lote
del panel.
‐ Identificar según perfil antigénico obtenido el antígeno contra el cual va dirigido
el anticuerpo en estudio.
Procedimiento 6
Técnica de adsorción de anticuerpos
Principio
En inmunohematología se habla de adsorción cuando se utilizan células con
fenotipo conocido para provocar que el anticuerpo correspondiente, se pegue a la
superficie del glóbulo rojo.
A partir de un proceso de adsorción se pueden separar a nivel de laboratorio
dos o más anticuerpos mezclados en un suero.
Como primer punto para seleccionar las células a utilizar en la absorción, se
deben interpretar las reacciones obtenidas en el panel de identificación y
establecer cuáles anticuerpos pueden estar involucrados.
Seguidamente se debe buscar células cuyo fenotipo posea sólo uno de los antígenos que
se sospecha.
Una vez seleccionada la célula, se toma partes iguales de células y plasma y se realiza el
proceso de adsorción, bajo las condiciones óptimas del anticuerpo en estudio.
La parte final del proceso establece una centrifugación, que sirve para separar
los glóbulos rojos sensibilizados del plasma y así obtener los dos anticuerpos
separados.
EQUIPOS Y REACTIVOS:
Solución salina fisiológica
Panel de identificación
Panel de identificación tratado con enzima
Tubos 12 x 75mm para reacción.
Centrífugas serológicas.
Papel toalla.
Pipetas Pasteur.
Bulbos para pipetas Pasteur.
Tubos rotulados como muestra 1 con de suero/plasma a identificar.
Tubos rotulados como muestra 2 con de suero/plasma a identificar.
Tubos con eritrocitos a analizar
Baños a 37ºC
Tubos 13 X 100 mm.
Tapones rojos.
Pipetas 10 ml.
Pipeteadores.
Método:
- Seleccionar los glóbulos rojos adecuada para adsorción y tomar
estérilmente una alícuota de unos 10 ml.
- Lavar tres veces el paquete con solución salina fisiológica.
- Dejar el paquete el máximo posible sin salina después del último lavado.
- Agregar igual cantidad del suero en estudio.
- Incubar a 37ºC por 30 minutos.
- Mezclar cada 10 minutos para ayudar al proceso de adsorción.
- Tomar una muestra de eritrocitos y realizar una prueba de antiglobulina
humana directa.
- Mantener en incubación a 37ºC, hasta que se alcance el máximo de
positividad de antiglobulina humana directa, idealmente debe tener una
aglutinación de 3 a 4 cruces.
- Centrifugar 10 minutos a 2000 r.p.m, para separar el suero adsorbido y los
eritrocitos sensibilizados.
- Rotular un tubo con los datos necesarios y transferir el suero del tubo
centrifugado.
- Al suero realizar el panel de identificación de anticuerpos.
- Al paquete globular realizar procedimiento de elución.
Procedimiento 7
Técnica de Elución de Anticuerpos
Principio
El término elución significa en Inmunohematología liberar los anticuerpos unidos a la
membrana del glóbulo rojo proveniente de un proceso de adsorción.
Dependiendo de las necesidades y protocolos de trabajo del Banco de Sangre se
puede:
‐ Separar el anticuerpo conservando la integridad de la membrana del glóbulo
rojo.
‐ Separar el anticuerpo rompiendo las membranas del eritrocito mediante
agentes químicos como el éter, cloroformo, digitonina o mediante condiciones
físicas extremas como la congelación o el calor.
Una vez liberado el anticuerpo el eluato, se procede a determinar su especificidad a
través del panel de identificación de anticuerpos.
EQUIPOS Y REACTIVOS:
Solución salina fisiológica
Panel de identificación
Panel de identificación tratado con enzima
Tubos 12 x 75mm para reacción.
Centrífugas serológicas.
Papel toalla.
Pipetas Pasteur.
Bulbos para pipetas Pasteur.
Tubos rotulados como muestra 1 con de plasma a identificar.
Tubos rotulados como muestra 2 con de eluato a identificar.
Tubos con eritrocitos a analizar
Frascos con cloroformo.
Baños a 37ºC.
Tubos 13 X 100 mm.
Tapones rojos.
Pipetas 10 ml.
Pipeteadores.
Método:
Técnica de elución con cloroformo
- Tomar el paquete de glóbulos rojos sensibilidados después del proceso de
adsorción.
- Lavar tres veces con solución salina.
- A un volumen igual de células lavadas agregar un volumen de cloroformo.
- Tapar el tubo y agitar fuertemente por 1 minuto. Con cuidado de que el contenido del
tubo sea expulsado sobre algún compañero.
- Centrifugar 10 minutos a 2000 r.p.m,
- El tubo queda dividido en tres capas, una del cloroformo (trasparente), otra de restos
de membrana (turbia) y un eluato o hemolizado (rojo traslúcido) donde se encuentra el
anticuerpo separado.
- Transferir el eluato a otro tubo y realizar un panel de identificación de
anticuerpos.
Recomendaciones:
Para encontrar la especificidad del anticuerpo los resultados positivos por aglutinación
así como los negativos deben ser comparados con la tabla antigénica del panel en su
lote respectivo.
Para trabajar procedimientos de adsorción/elución siempre tomar en consideración la
temperatura óptima de reacción. Esta va a ser la temperatura donde ocurrió la
aglutinación más fuerte.
Procedimiento 8
Incompatibilidad materno- fetal
Principio
La enfermedad hemolítica del recién nacido (EHRN) es una enfermedad, en la cual la
madre en gestación transfiere aloanticuerpos del tipo IgG, via placentaria, contra
antígenos de glóbulo rojo del feto.
Debido a esta sensibilización, los glóbulos rojos fetales sufren una destrucción
acelerada tanto antes como después del nacimiento.
Para los recién nacidos que padecen la enfermedad hemolítica, la elevación de los
niveles de bilirrubina se convierte en un problema clínico grave, la pérdida de
la capacidad de transporte de oxígeno, así como resultado de la hemólisis, los niveles
altos de bilirrubina indirecta que pueden depositarse a nivel del sistema nervioso
central.
Los antígenos localizados en la membrana de los eritrocitos, se desarrollan en
diferentes etapas de la vida intrauterina o postnatal.
Los antígenos contra el sistema de grupo sanguíneo Rh, Kell, MNSs, Duffy por
mencionar algunos, presentan desde el primer de gestación una potencia antigénica
similar a la observada en los eritrocitos de una persona adulta.
Otros, por el contrario, se encuentran poco desarrollados, de ahí que su expresión
antigénica sea menor que los antígenos de un eritrocito de una persona adulta,
ejemplos de estos antígenos pueden ser los sistemas ABO, P1 y Lutheran.
Estos antígenos están muy pobremente expresados al nacimiento y es
hasta después del primer año de vida cuando logran expresarse completamente.
En estos casos la debilidad o ausencia antigénica en el eritrocito del feto, impide que se
inicie o exprese la enfermedad, por lo anterior se puede tener la incompatibilidad
eritrocitaria, sin embargo, no una enfermedad hemolítica.
Las acciones básicas en el estudio de la EHRN, se ajustan a las circunstancias en que
se ubica el médico y el paciente.
Una manera de estudiar los casos es dividiendo a los sujetos de estudio en tres
grupos: el feto o neonato, la madre y el padre.
Al feto o neonato se le debe realizar al menos las siguientes pruebas para su estudio:
Grupo ABO/Rh, prueba de antiglobulina directa, fenotipo eritrocitario, (previo elución
de anticuerpos) rastreo de anticuerpos con las células pantallas y con células A1 y B.
Que se busca con estos análisis?
‐ Demostrar la presencia del antígeno en los glóbulos rojos del feto/neonato.
‐ Demostrar la presencia del anticuerpo en el suero o glóbulo del feto neonato.
Análisis en la madre:
‐ Determinar grupo ABO/Rh.
‐ Realizar estudio de anticuerpos.
‐ Fenotipo
Análisis al padre:
‐ Determinar grupo ABO/Rh.
‐ Determinar el fenotipo eritrocitario.
La enfermedad hemolítica del recién nacido, desde el punto de vista
inmunohematológico, se puede clasificar en tres categorías principales dependiendo
de la especificidad del anticuerpo sensibilizante:
‐ Enfermedad Hemolítica por ABO, principalmente por un anti-A,B en mujeres
del grupo O.
‐ Enfermedad Hemolítica por Rh, debida al anti-D.
‐ Enfermedad Hemolítica por otros anticuerpos irregulares.
Transfusión intrauterina y del neonato
La sangre para transfusión intrauterina debe ser seleccionada compatible con los
anticuerpos maternos capaces de cruzar la placenta. Se utilizará el suero de la madre
para la pruebas pretransfusionales.
Los glóbulos rojos empacados seleccionados para la transfusión intrauterina
deberán ser de preferencia O, el Rh que se escoja va a depender si conocemos el
fenotipo del feto, en caso de no saberlo se utilizará Rh negativo.
Para las unidades de exanguíneotransfusión deberán ser compatibles con
el plasma materno.
Todas las unidades seleccionadas para estos procedimientos, deberán ser del
grupo sanguíneo O, filtradas, irradiadas, de menos de 5 días de recolectada y en el
caso para las exanguíneotransfusión el plasma para su reconstitución deberá ser
del mismo grupo ABO del recién nacido.
Materiales y Reactivos:
Tubos 12 x 75 mm de reacción.
Pipetas Pasteur.
Bulbos pipetas.
Muestras de suero y eritrocitos a analizar
Solución salina fisiológica.
Juego de reactivos anti A, anti B, anti AB, anti D, albúmina bovina al 22%,
reactivo de antiglobulina hunana.
Panel de identificación de anticuerpos.
Frascos con células control de AGH.
Juego de células rastreadoras 3%.
Baños maría a 37°C.
Centrífugas serológicas.
Gradillas de madera.
Gradillas de metálicas.
Microscopios.
Papel toalla.
Método:
‐ Realizar a la muestra de sangre rotulada como niño una prueba de
inmunoglobulina directa.
‐ Determinar el grupo sanguíneo ABO/Rh del niño.
‐ Realizar a la muestra de plasma de la madre un rastreo e identificación de
anticuerpos.
‐ Realizar una prueba cruzada entre los eritrocitos del niño y el plasma del donador.
Procedimiento 9
Anemia Hemolítica Autoinmune
Principio
La anemia hemolítica inmune se define como un acortamiento en la sobrevida del
glóbulo rojo debido a una desregulación del sistema inmune, específicamente generado
por autoanticuerpos.
Las anemias hemolíticas autoinmune se clasifican en:
‐ Anemia Hemolítica Autoinmune por anticuerpos calientes
‐ Síndrome de aglutininas frías
‐ Hemoglobunuria paroxística al frío
‐ Anemia Hemolítica Autoinmune Combinada (Anticuerpos fríos y calientes)
‐ Anemia Hemolítica Inmune inducida por drogas
Cada una de estas se subclasifica en: primaria o secundaria.
La Anemia Hemolítica Autoinmune es designada como primaria si se considera como
una entidad idiopática, es decir, si no está asociada con alguna enfermedad
demostrable que la desencadene.
En contraste, la secundaria está asociada con un desorden primario y con razones
suficientes para sospechar que su asociación es más que meramente fortuita.
Estos desordenes son diagnosticados en base a las características serológicas de
reacción.
La mayoría de los casos de AHAI son causados por autoanticuerpos cuya reacción es
en caliente, es decir, anticuerpos cuya reactividad optima con los glóbulos rojos
humanos es a 37ºC y que por lo general es una inmunoglobulina de la clase IgG.
El Síndrome de Aglutininas frías es generalmente causado por un autoanticuerpo de la
clase IgM y que exhibe una reactividad máxima a 4ºC.
El anticuerpo causante de la Hemoglobinuria Paroxística Nocturna es una
inmunoglobulina IgG bifásica que difiere en su modo de acción. Este anticuerpo se
detecta in vitro por su habilidad de causar hemólisis de los glóbulos rojos normales en
un procedimiento que lleva dos pasos, una incubación en frío seguido por una
incubación a 37ºC en presencia del complemento.
Finalmente, la ingesta de ciertos medicamentos pueden causar anemia hemolítica
pero aquí el anticuerpo siempre posee una especificidad por la droga o sus
metabolitos.
Reactivos y materiales:
Tubos 12 x 75 mm de reacción
Pipetas Pasteur.
Bulbos pipetas.
Muestras de suero y eritrocitos a analizar
Solución salina.
Reactivo de antiglobulina humana poliespecífico.
Reactivo de antiglobulina humana monoespecífico IgG.
Reactivo de antiglobulina humana monoespecífico C3
Panel de identificación eritrocitos.
Frascos con células control de AGH.
Juego de células rastreadoras 3%.
Baños maría a 37°C.
Centrífugas serológicas.
Gradillas de madera.
Gradillas de metálicas.
Microscopios.
Papel toalla.
Método:
De la muestra en estudio:
Hacer una suspensión de trabajo entre el 3-5% y:
‐ Realizar una prueba de antiglobulina humana directa utilizando el reactivo
poliespecífico, monoespecífica IgG, monoespecífico C3.
-Realizar un rastreo e identificación de anticuerpos. Al igual que un eluido de los
eritrocitos con prueba directa de antiglobulina para realizar las conclusiones.