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TOMA, TRANSPORTE Y CONSERVACIÓN DE MUESTRAS PARA EXAMEN
MICROBIOLÓGICO
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Recomendaciones generales
Sin tratamiento antibiótico previo (suspender 48-72 hs, valle)
Desinfección previa
Evitar la flora habitual y/o colonizante (flora orofaríngea, gastrointestinal, genitourinaria y de la piel)
Deconraminación de la piel:
Aplicar en forma circular
Utilizar: Alcohol 70% o tintura de yodo (30 seg.) o solución acuosa de yodopovidona (1 min)
Remover el yodo residual
Búsqueda de bacterias anaerobias: en toda muestra que provenga de sitios que evitan la flora normal (NO esputo, LB, fauces,
flujo vaginal o cervical, orina por micción espontánea, heces, hisopados de escara, úlcera, muñón, heridas, etc.)
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Tejidos (biopsias, tejidos blandos y hueso)
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Punción aspiración por piel sana (TAB) (líquidos de punción, herida, úlcera, escara, absceso, etc.)
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Sangre en frasco de hemocultivo anaeróbico
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Materia fecal para C. difficile (recién emitida)
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Orina por PSP
Infección por Bacterias Anaerobias
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Piel y partes blandas (escara, úlcera, gangrena, abscesos cutáneo y partes blandas, pie DBT, heridas)
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Pleuropulmonar (neumonia aspirativa, empiema, absceso pulmonar)
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Intraabdominal (colecistitis, abscesos)
•
Tracto genital femenino (absceso vulvo-vaginal, infección actinomicótica, EPI, endometritis postparto)
•
Dental y oral (absceso periapical, periodontal)
•
Cualquier sitio (osteomielitis, artritis, infección SNC, cabeza y cuello, bacteriemia, inf. ocular, OMA, sinusitis, mordedura,
infección urinaria.
Característica de las infecciones anaeróbicas: Necrosis tisular y supuración
Sepsis relacionada a cateter
Hemocultivo: 2 muestras de sangre periférica de venas diferentes c/respecto a la que está el catéter (antes de la remoción del
catéter)
Catéter:
 Técnica semicuantitativa bacterias extraluminalesTécnica de Maki (punto de corte > 15 UFC/ml)
 Técnica cuantitativa: bacterias intraluminales
•
Cleri y col.: parte interna y externa del catéter (jeringa). Punto de corte >10³ UFC/ml
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Brun Buisson y col.: parte interna y externa del catéter (vórtex). Punto de corte >10³ UFC/ml
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Liñares y col.: Parte interna. Punto de corte >10³ UFC/ml
Retrocultivo y hemocultivo cualitativo (catéteres que no se puedan retirar)
*
Tomar todas las muestras a la misma hora e incubar inmediatamente en estufa
*
1° 2 muestras de 7-10 cm3 de sangre en frasco de hemocultivo (rotular sangre periférica)
*
2° 7-10 cm3 de sangre a través del catéter y colocarlo en frasco de HC (rotular retrocultivo)
Considerar SRC cuando:
 Tiempo diferencial de positivización (TDP) > 2 hs en el fco obtenido a través del catéter c/respecto al de sangre perif.
Retrocultivo y hemocultivo cuantitativo
*
1° 2 muestras de 7-10 cm3 de sangre en frasco de hemocultivo (rotular sangre periférica)
*
2° 7-10 cm3 de sangre a través del catéter y colocarlo en jeringa heparinizada o frasco de HC (rotular retrocultivo)
Considerar SRC cuando:
 Recuento (UFC/ml) a través del catéter es 5-10 veces > con respecto al de sangre periférica.
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Normas de aislamiento
Mecanismos de transmisión:
1) Transmisión de contacto:
 Directa entre persona infectada y susceptible
 Indirecta a través de objetos contaminados.
2) Transmisión por gotas respiratorias:
 Gotas de >5 μm generadas por tos, estornudos, hablar o aspirar secreciones.
 Estas gotas viajan por aire distancias muy cortas. Es necesario contacto estrecho.
3) Transmisión por aire: Pequeñas partículas <5 μm. Permanecen suspendidas en el aire por largo tiempo.
4) Transmisión por vehículos comunes: Por ejemplo agua o equipos contaminados.
5) Transmisión por vectores: de mínima importancia en el hospital.
 Precauciones estandares:
 Lavado de manos
 Guantes: para el contacto con sangre, fluidos corporales, secreciones e instrumentos contaminados.
 Barbijo y protección ocular: si procedimientos que generen aerosoles y/o salpicaduras.
 Camisolin: Idem anterior
 Bioseguridad:

Descartar agujas y elementos corto-punzantes en “descartadores” especiales.

No reencapuchar agujas.

Utilizar “Ambu” en lugar de respiración “boca a boca”.
 Precauciones de contacto: Para pacientes infectados con microorganismos epidemiologicamente importantes que pueden
transmitirse por contacto directo o indirecto con el paciente (por ej: enterococo vancomicina resistente). Normas:
 Guantes. No tocar nada en la habitación luego de retirados los guantes.
 Lavado de manos.
 Camisolín no estéril al ingresar a la habitación.
 Instrumental no compartido con otros pacientes (por ej: tensiómetro, termómetro).
 Habitación individual o cohorte.
 Evitar, si es posible, su traslado.
 Precauciones respiratorias: Para pacientes infectados por microorganismos viables en particulas < 5 um (TBC pulmonar,
sarampión, varicela y herpes zoster diseminado).
Normas:
 Barbijo tipo 3M.
 Habitación individual con presión negativa. Mantener la puerta cerrada.
 Traslados limitados con barbijo quirúrgico impermeable.

Precauciones de contacto respiratorio: Para pacientes infectados por microorganismos transmitidos por gotas
respiratorias. (Neumonías por Haemofilus, neumococo o micoplasma, difteria, etc.).
 Barbijo: solo si se trabaja a < de 1 metro del paciente.
 Si no es posible habitación individual, mantener 1 m de distancia entre pacientes y con los familiares.
 Traslados limitados con barbijo quirúrgico impermeable
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Manejo de muestras biológicas
Muestra


Transporte
Conservación
Procesamiento
Hemocultivos:
 Limpiar las tapas de goma de los frascos con alcohol.
 Limpiar la zona y (el dedo) con yodo povidona al 10%
haciendo círculos concéntricos. Dejar 1 minuto. NO VOLVER
A PALPAR
 Abrir jeringa y aguja desde extremos cerrados
 Eliminar el aire de la jeringa antes de inyectar la sangre para
no modificar la atmósfera. Evitar el reflujo
•
2 muestras de 10 ml de sangre de 2 venas periféricas con
lapso de 1 hora
 1 frasco de HC FAN-Aerobio (verde)
 1 frasco de HC FAN-anaerobio (Naranja)
Frasco Bact/Alert
Estufa 35 °C
Inmediato
Retrocultivo cualitativo
Frasco Bact/Alert
8 a 10 ml
Estufa 35 °C
Arquivo da conta:
Alejandra.Aguilera
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Cirugía
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