Download (Pueraria phaseoloides). - Repositorio UTMACHALA

UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA
UNIDAD ACADÉMICA DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
ESCUELA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
TRABAJO DE TITULACIÓN
MÉTODOS DE ESCARIFICACIÓN EN LA GERMINACIÓN
DE SEMILLAS DE KUDZÚ (Pueraria phaseoloides).
AUTOR
PATRICIO FERNANDO ALFARO CARVAJAL.
DIRECTOR
ING. AGR. JORGE CUN.
2015
1
Este trabajo de titulación ha sido aceptado en la forma presente por el tribunal de grado
designado por el Honorable Consejo Directivo de la Facultad de Ciencias Agropecuarias,
como requisito para obtener el título de
INGENIERO AGRÓNOMO
Ing.Agr. Jorge Cun.
Director
Ing.Agr. Iván Villacres., Mg. Sc.
Miembro
Ing.Agr. Sara Castillo., Mg. Sc.
Miembro
UNIVERSIDAD TÉCNICA DE MACHALA
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS
ACTA DE CESIÓN DE DERECHOS DE TESIS DE GRADO Y TRABAJOS DE
TITULACIÓN
Consigno con el presente escrito la cesión de los Derechos de Tesis de grado/ Trabajo de
Titulación, de conformidad con las siguientes clausulas:
PRIMERA
Por sus propios derechos y en calidad de Director de Tesis el Ing. Agr. Jorge Cun y el
tesista Patricio Fernando Alfaro Carvajal, por sus propios derechos, en calidad de Autor de
tesis.
SEGUNDA
El tesista Sr. Patricio Fernando Alfaro Carvajal, realizó la Tesis Titulada “MÉTODOS DE
ESCARIFICACIÓN EN LA GERMINACIÓN DE SEMILLAS DE KUDZÚ (Pueraria
phaseoloides)”, para optar por el título de Ingeniero Agrónomo, en la Facultad de Ciencias
Agropecuarias de la Universidad Técnica de Machala, bajo dirección del Docente Ing. Agr.
Jorge Cun., es política de la Universidad que la Tesis de Grado se aplique y materialice en
beneficio de la colectividad. Los comparecientes Ing. Agr. Jorge Cun., como Director de
Tesis y el tesista Sr. Patricio Fernando Alfaro Carvajal, como autor de la misma, por medio
del presente instrumento, tienen a bien ceder en forma gratuita sus derechos de Tesis a la
Facultad de Ciencias Agropecuarias de la Universidad Técnica de Machala y conceden
autorización para que la Universidad pueda utilizar esta Tesis en su favor y/o de la
colectividad, sin reserva alguna.
APROBACIÓN
Las partes declaran que reconocen expresamente todo lo estipulado en la presente Cesión
de Derechos.
Para constancia suscriben la presente Cesión de Derechos en la ciudad de Machala a los 05
días del mes de Junio del año 2015.
_______________________________
Ing. Agr. Jorge Cun.
DIRECTOR DE TESIS
____________________________
Sr. Patricio Fernando Alfaro Carvajal
AUTOR
3
DEDICATORIA.
Primordialmente agradezco Al Dios todo poderoso por ser el que me ilumina y guía
siempre mis pasos por el camino del bien y permitiste culminar una de mis metas tan
importante en mi vida, que con anhelo y sacrificio logré salir adelante.
Dedico esta tesis a mi familia:
A mis padres Sra. Carmen Carvajal y Sr Carlos Alfaro (+) a mi tía Cira Carvajal de
quienes siempre tuve su apoyo y buenos consejos y que fueron pilares fundamentales para
llegar a ser un profesional de bien.
A mis tios Arturo, Fermin, Nancy, Jorge, Mariano, Pablo.
A mis primos Ing Rosario, Vladimir, Kerly que con su apoyo y buenos consejos me
supieron comprender hasta llegar a mi meta tan ansiada.
PATRICIO ALFARO
AGRADECIMIENTO
A la Universidad Técnica de Machala, Facultad de Ciencias Agropecuarias, Escuela de
Ingeniería Agronómica por la invalorable contribución cultural, social y científica que me
supo brindar durante mi preparación universitaria.
Agradezco de manera muy cordial a mi director de tesis Ing.Agr. Jorge Cun, por brindarme
su apoyo y asesoría incondicional durante la tesis.
A los miembros de mi tribunal de tesis Ing. Agr. Sara Castillo, Ing. Agr. Iván Villacres e
Ing. Agr. Danny Reyes por ayudarme a culminar mi tesis de investigación, por sus
asesorías siempre acertadas y sus consejos que fueron de mucha utilidad.
Al Ing. Omar Sánchez por su guía técnica y científica brindada en el desarrollo de esta
investigación.
Al Ing.Agr. Oswaldo Espinosa, por brindarme su ayuda y conocimientos en la parte
estadística.
A todos mis maestros por brindarme sus conocimientos y experiencias que ahora son parte
de mi formación profesional.
A mis compañeros de curso, gracias por los momentos agradables que compartimos dentro
y fuera de las aulas de la facultad.
También agradezco a mis grandes amigos Ing Manuel Guartazaca, Ing Rómulo Árichabala,
por su amistad brindada y a pesar que en los buenos y malos momentos que pasamos
siempre supieron darme su apoyo para cumplir unas de mis metas.
PATRICIO ALFARO
5
La responsabilidad de esta investigación,
resultados y conclusiones del presente
trabajo, pertenecen exclusivamente a su
autor.
_____________________________
Patricio Fernando Alfaro Carvajal
ÍNDICE DE CONTENIDO
TEMA
_Pág.
1.INTRODUCCIÓN ......................................................................................................... 1
2. REVISIÓN DE LITERATURA .................................................................................. 3
2.1. Kudzú (Pueraria phaseoloides) ................................................................................. 3
2.1.1 Taxonomía .............................................................................................................. 3
2.1.2 Descripción botánica............................................................................................... 3
2.1.3 Caracteristicas de la semilla ..................................................................................... 4
2.2 Latencia de las semillas ............................................................................................. 5
2.2.1 Viabilidad................................................................................................................ 6
2.1.2 Germinación............................................................................................................ 6
2.3 Escarificación............................................................................................................. 7
2.3.1 Escarificación Mecánica ......................................................................................... 7
2.3.2 Escarificación química ............................................................................................ 8
2.3.3 Tratamiento con agua caliente ................................................................................ 9
2.3.4 Remojo en agua fría ................................................................................................ 9
2.3.5 Tratamiento con humo sobre las semillas ............................................................... 9
2.3.6 Energía de microondas............................................................................................ 9
3. MATERIALES Y MÉTODOS .................................................................................. 11
3.1 MATERIALES ........................................................................................................ 11
3.1.1 Localizaciony ubicación ....................................................................................... 11
3.1.2 Condiciones climaticas ......................................................................................... 11
3.1.3 Materiales .............................................................................................................. 12
3.1.4 Variables a evaludiadas ........................................................................................ 12
3.1.5 Medición variables ............................................................................................... 12
3.1.6 Tratamientos ........................................................................................................ 12
3.2 Métodos .................................................................................................................... 13
3.2.1 Metodologia de Laboratoio ................................................................................... 13
3.2.1.1 Escarificación química con ácido sulfúrico ....................................................... 13
3.2.1.2 Escarificación química con ácido láctico........................................................... 13
3.2.1.3 Escarificación química con ácido acético. ......................................................... 13
3.2.1.4 Tratamiento con agua caliente ........................................................................... 13
7
3.3 Diseño experimental ............................................................................................... 14
3.3.1. Especificaciones del diseño .................................................................................. 14
3.3.2. Modelo estadístico ................................................................................................ 14
3.3.3. Análisis de varianza ............................................................................................ 15
3.3.4. Prueba de significación ....................................................................................... 16
3.3.5. Manejo del ensayo ................................................................................................ 16
3.3.5.1 Selección de la semilla ........................................................................................ 16
3.3.5.2 Preparación del suelo ......................................................................................... 16
3.3.5.3 Siembra ............................................................................................................. 17
3.3.5.4 Labores culturales .............................................................................................. 17
4.RESULTADOS DISCUSION ..................................................................................... 18
4.1 Resultados ................................................................................................................ 18
4.1.1 Días a la emergencia. ............................................................................................ 18
4.1.2 Porcentaje de emergencia de los tratamientos ....................................................... 20
4.1.3 Días a la formación de las hojas verdaderas .......................................................... 22
4.1.4 Altura de las plantas a los 30, 60 y 90 días ............................................................ 25
4.2 DISCUSIÓN ............................................................................................................. 28
5.CONCLUSIONES ....................................................................................................... 30
6.RESUMEN .................................................................................................................. 31
7.SUMMARY ................................................................................................................. 33
8.BIBLIOGRAFÍA CITADA. ........................................................................................ 35
APÉNDICE
ÍNDICE DE CUADROS.
Cuadro.
Pagina.
1.
Días trascurridos desde la escarificación a
la emergencia del embrión.
19
2.
Análisis de varianza para los días a la
emergencia del embrión.
19
Porcentaje de semillas germinadas por
unidad experimental (5 semillas).
En base a cuatro replicas.
21
Análisis de varianza para el numero de
semillas germinadas y porcentaje
de emergencia.
22
Días transcurridos a la formación de las
hojas verdaderas.
24
Análisis de Varianza para los días
trascurridos hasta la formación de las
hojas verdaderas.
24
Altura de planta a los 30,60 y 90 días.
27
3.
4.
5.
6.
7.
9
ÍNDICE DE FIGURAS.
Figura.
Pagina
1.
Promedios de tratamientos expresados en
días al inicio de la actividad del embrión.
20
2.
Promedio de los tratamientos para el
porcentaje de emergencia de la semilla
kudzú.
22
3.
Promedio de los tratamientos para los días a
la formación de las hojas verdaderas.
25
ÍNDICE DE FOTOGRAFIAS.
Foto
Pagina
1.
Semilla de Kudzú (Pueraria phaseoloides)
4
2.
Semilla certificada Kudzú.
16
3.
Desinfección del suelo.
16
4.
Siembra tratamientos.
17
5.
Hoja verdadera Kudzú (Pueraria phaseoloides).
23
6.
Altura de la planta Kudzú (Pueraria phaseoloides)
27
7.
Reactivos que se utilizaron en la investigación.
44
8.
Proceso escarificación de semillas kudzú.
44
9.
Semillas escarificadas con los reactivos.
44
10.
Toma de datos de las semillas en laboratorio.
45
11.
Tratamiento con ácido láctico 2% cinco minutos.
45
12.
Tratamiento con ácido láctico 2% diez minutos.
45
13.
Tratamiento con ácido láctico 4% cinco minutos.
46
14.
Tratamiento con ácido láctico 4% diez minutos.
46
15.
Tratamiento con ácido acético 2% cinco minutos.
46
16.
Tratamiento con ácido acético 2% diez minutos.
47
17.
Tratamiento con ácido acético 4% cinco minutos.
47
18.
Tratamiento con ácido acético 4% diez minutos.
47
19.
Sin escarificación (Testigo)
48
20.
Planta kudzú en su máximo desarrollo.
48
11
1. INTRODUCCIÓN.
El kudzu es una leguminosa que se usa para la cobertura del suelo en plantaciones
comerciales de banano, palmas y frutales, por su gran agresividad el kudzu compite
favorablemente con algunas malezas, limitando su crecimiento. A su vez, esta planta puede
fijar nitrógeno desde la atmósfera que puede ser aprovechado por los cultivos asociados.
Las coberturas con leguminosas como el kudzu, flemingia y maní forrajero, son
importantes porque aportan verdaderos beneficios a la salud del suelo, contribuyendo a la
fertilidad del mismo, además de mejorar las condiciones físicas por medio del sistema
radical superficial que estas poseen, aumenta la materia orgánica, disminuye la incidencia
de germinación de malezas, conserva la humedad en el suelo, reduce escorrentía y erosión.
Uno de los principales problemas que enfrentan los agricultores y ganaderos al propagar
kudzu es que esta semilla muestra elevado porcentaje de dureza debido este fenómeno a
su propia naturaleza de la cubierta seminal rígida, que evita la entrada de agua y el
intercambio gaseoso, necesarios para que inicie el proceso de germinación.
Siendo esta especie una planta con muchas propiedades útiles al suelo y al hombre, es
importante enfatizar la aplicación de nuevas tecnologías como las ancestrales y químicas
que faciliten, que puedan ayudar a la germinación y vigor en menor tiempo, consiguiendo
una pregerminacion homogénea, en las diferentes zonas productoras con certificaciones
orgánicas, y convencionales. Donde sus semillas se someten a tratamientos de
escarificación con diferentes métodos para romper el letargo, el número de días en que se
produce la germinación y los días que han de contarse hasta la formación completa de la
planta.
En la presente investigación se manejó la semilla del kudzu mediante procesos de
pregerminación o escarificación químico: con ácidos sulfúrico, láctico y acético, así como
procesos físicos: con agua caliente, para mejorar el poder germinativo de la misma y
obtener un mayor número de plantas en menor tiempo posible.
Los objetivos planteados para este trabajo fueron:
1. Reducir el periodo de latencia mediante métodos de escarificación de las semillas de
kudzu (Pueraria phaseoloides).
2. Determinar el tratamiento y la dosis de mayor efecto en la germinación y crecimiento
de las plántulas.
3. Evaluar el vigor de las plántulas según la escarificación.
13
2. REVISIÓN DE LITERATURA.
2.1. KUDZÚ (Pueraria phaseoloides)
Manual Agropecuario (2002) señala que el kudzú es una de las leguminosas que presenta
mayor capacidad de adaptación a las diversas condiciones de clima y suelo, lo cual hace
que sea, posiblemente la planta más valiosa. Se adapta bien a alturas que van desde el nivel
del mar hasta 1600 msnm, con precipitaciones entre 900 y 2000 mm y temperaturas
superior a los 18ºC. Es tolerante a la sequia moderada y a la falta de humedad en el suelo.
El kudzú es poco exigente y crece bien en suelos ácidos de baja fertilidad, se le encuentra
en suelos pesados, francos y arenosos.
2.1.1. TAXONOMÍA.
El kudzú, según Manual Agropecuario (2002), se encuentra enmarcado en la siguiente
clasificación taxonómica.
Reino: Vegetal
Clase:
Angiospermae
Orden: Leguminosae
Familia: Papilionaceae
Género: Pueraria
Especie: phaseoloides
2.1.2. DESCRIPCIÓN BOTÁNICA.
Es una leguminosa que crece en forma de enredadera, perenne, cuyos tallos pueden
alcanzar varios metros de longitud. Las raíces son profundas, robustas, abundantes y ricas
en nódulos que fijan el nitrógeno del aire.
Las hojas compuestas de tres grandes foliolos romboidales pubescentes a igual que los
peciolos. Las flores varían de un color púrpura y blanco a un púrpura intenso. La vaina
cilíndrica estrecha y larga: 9 cm de largo y 6,3 mm. de ancho, teniendo las extremidades
ligeramente curvas y puntiagudas con 20 semillas de color marrón a marrón obscuro, casi
cilíndricas o subcuboides de 3 mm (Benítez, 1990).
Foto 1. Semilla de Kudzú
2.1.3. CARACTERISTICAS DE LA SEMILLA.
La semilla de kudzú presenta la desventaja de tener altos porcentajes de dureza (7), además
presenta un crecimiento inicial lento. Las semillas denominadas “duras” poseen cubiertas
que impiden la absorción del agua y la germinación, por lo que es recomendable su
escarificación con ácido sulfúrico, agua caliente o exponer la semilla al sol (Benítez,
1990).
Villalobos, E. et. al. (1987) manifiestan en una investigación que se titula “un
procedimiento para escarificar semilla de kudzú” en costa Rica, dicen que la semilla de
kudzú posee una cubierta seminal dura, para que la semilla pueda germinar debe realizarse
una escarificación previa antes de su siembra para lo cual ellos probaron tratamientos con
acido sulfúrico concentrado en tiempos de inmersión 5, 10,15,20,25 obteniendo resultados
favorables y elevando a su vez la germinación con este tratamiento, si se usa agua caliente
para escarificar la semilla de kudzú, deberá tenerse un control adecuado, no solamente de
la temperatura sino del tiempo de inmersión de las semillas, estos autores probaron
temperaturas 40ºC con tiempos de inmersión 2 y 4 minutos tuvieron un efecto a la
inducción de la germinación, también probaron a temperaturas
70ºC con tiempo de
inmersión 4 minutos también elevo la germinación, pero cuando emergieron las semillas
con la misma temperatura a tiempo de 6 y 10 minutos esta redujo considerablemente el
porcentaje de germinación .
15
2.2. LATENCIA SEMILLAS.
Febles (1985) indica que se entiende por latencia o dormancia de las semillas al estado en
el cual una semilla no germina aunque se la coloque en condiciones adecuadas o se le
suministre aquellos factores que se consideran normales para su germinación: temperatura,
humedad y concentraciones de oxigeno idóneas para hacerlo.
Este mismo autor indica que se pueden considerar tres tipos de latencia:
a) Latencia innata (primaria, natural, inherente, endógena). Esta latencia se presenta
en el momento en el que el embrión cesa de crecer (cuando la semilla aún está en la
planta madre) y continúa hasta que el impedimento endógeno cesa, en ese momento
las semillas están en condiciones de germinar en cuanto se presentan las
condiciones ambientales adecuadas.
b) Latencia inducida (secundaria). Este tipo de latencia se produce cuando las semillas
están en condiciones fisiológicas para germinar y se encuentran en un medio que
presenta
alguna
característica
muy
desfavorable,
como
poco
oxígeno,
concentraciones de CO2 mayores a las de la atmósfera, temperatura alta, etc., lo que
puede producir alteraciones fisiológicas reversibles en las semillas. En estos casos,
las semillas pueden caer en un estado de latencia secundaria en el que ya no pueden
germinar a pesar de continuar vivas. En algunos casos este tipo de latencia se
rompe por medio de un estímulo hormonal. Algunas veces la latencia inducida
también puede sumarse a otros tipos de latencia o sustituirlos.
c) Latencia obligada (ambiental, forzada, impuesta o exógena). En la naturaleza esta
latencia se presenta en semillas aptas para germinar en condiciones adecuadas de
humedad y temperatura media, es decir, adecuadas al hábitat que ocupan, pero que
continúan latentes por falta de luz, requerimientos especiales de temperatura,
oxígeno o de otro factor. Esta latencia está controlada por las condiciones físicas
del ambiente que rodea a la semilla, y se presentan en aquellas que se encuentran en
el suelo y que germinan sólo después de una perturbación que modifique el
régimen lumínico o el contenido de oxígeno.
d) Latencia química de la semilla se la realiza mediante la presencia de sustancias
químicas, estas sustancias químicas son ubicadas en la cubierta y inhiben la
germinación del embrión puede romperse por lo general mediante algún tipo de
tratamiento líquido que extraiga esas sustancias químicas por lixiviación. Por
consiguiente, los métodos de tratamiento en húmedo son capaces de romper la
latencia química de la cubierta, su lactancia física y las combinaciones de ambas.
En cambio, es probable que los métodos en seco eficaces para romper la latencia
física, no tengan efecto alguno sobre la latencia química.
Sierra (2002) manifiesta que la latencia o dormancia es un fenómeno que se presenta
normalmente en muchas leguminosas, una semilla latente es una semilla que está viva,
pero que no germina bajo ciertas condiciones favorables: temperatura, humedad y
concentraciones de oxigeno idóneas para hacerlo.
2.2.1 VIABILIDAD.
Hill, E. et. al. (1999) mencionan que por vitalidad o viabilidad se entiende la capacidad de
la semilla para reanudar el crecimiento o germinar. Dentro de la viabilidad también se debe
hacer mención a la longevidad, que es el tiempo durante el cual la semilla puede
permanecer en letargo sin perder por ello su capacidad de germinar. Ambos son factores
variables en cualquier semilla puesto que dependen no solo de la especie a que pertenecen,
sino también de las condiciones a las cuales ha quedado sometida después de haberse
desprendido de la planta madre.
Duffus y Slaugther (1980) indican que la semilla que puede germinar usualmente se la
denomina viable, pero la viabilidad para el agricultor significa, no solo la germinación,
sino también la capacidad de formar plántulas saludables.
2.2.2 GERMINACIÓN.
Duffus y Slaugther (1980) mencionan que la germinación es un proceso de cambio: el
cambio de una pequeña estructura inactiva viviendo con abastecimiento mínimo a una
17
planta que crece activamente, destinada a llegar a la autosuficiencia antes que los
materiales de reserva de la semilla terminen.
Besnier (1989) indica que la germinación comienza cuando, en la semilla aletargada o en
reposo, se activa la maquinaria bioquímica conservada y se desencadenan los procesos
metabólicos. La terminación de la germinación coincide con la iniciación de la actividad
fotosintética, lo que altera totalmente el metabolismo de la plántula nacida de la semilla.
2.3 ESCARIFICACIÓN.
Westwood (1982) indica que la escarificación es un tratamiento aplicado a las cubiertas
duras de las semillas para romperlas o debilitarlas, a fin de favorecer la germinación.
Calderón (1985) determina que la escarificación consiste en procesos que tienen por
finalidad hacer que el endocarpio u otras capas protectoras de la semilla sean permeables al
agua y al aire, de tal modo que no interfieran en el desarrollo de la germinación como
función normal.
2.3.1 ESCARIFICACIÓN MECÁNICA.
Hartmann y Kester (1987) manifiestan que la escarificación mecánica, el objetivo es
modificar las cubiertas de las semillas duras o permeables. La escarificación es cualquier
proceso de rompimiento, raspado o de alteración mecánica de la cubierta de las semillas
para hacerla permeable al agua o a los gases.
Según Calderón (1985) este método consiste en el rozamiento con cualquier material
abrasivo sobre la semilla, de tal manera que las capas protectoras vayan disminuyendo en
su espesor. La semilla puede ser mezclada con arena gruesa, que al estar compuesta de
sílice puede por fricción determinar un adelgazamiento de las cubiertas en un movimiento
giratorio rápido y continuo.
Burbano (1990) señala que la escarificación mecánica se realiza cortando la cubierta dura
de las semillas con una navaja bien afilada. Se debe tener la precaución de no dañar el ojo
de la semilla ni realizar un corte muy profundo. Otra técnica de escarificar es colocar las
semillas pequeñas entre dos hojas de papel lija y presionar con fuerza la superficie.
Hernández (2010) dice que la escarificación mecánica consiste en raspar, partir o perforar
las cubiertas de las semillas, ya sea en forma manual o con artefactos, es un método
efectivo y sencillo, pero después quedan las semillas expuestas al ataque de patógenos.
2.3.2 ESCARIFICACIÓN QUÍMICA.
Para Hartmann y Kester (1987) el objetivo de la escarificación química con ácido es
modificar las cubiertas duras o impermeables de las semillas. El remojo con acido sulfúrico
concentrado es un método efectivo para modificar las cubiertas de las semillas duras.
Calderón (1985) plantea que la escarificación química suele ser llevado a cabo mediante la
inmersión de las semillas en líquidos corrosivos, de los cuales el más usado es el ácido
sulfúrico concentrado. Este tratamiento debe ser llevado a cabo con grandes precauciones
debido al alto poder destructivo del ácido, no solo en la que respecta a las semillas, sino
por lo que toca a las personas que lo realicen. Se lleva a cabo manteniendo las semillas en
contacto directo con el ácido concentrado durante un tiempo variable de unos minutos a
unas horas, dependiendo del tipo de semilla de que se trate y del espesor de las cubiertas
por atacar.
También indica que el embebido en ácido sulfúrico concentrado es el método más común
para el tratamiento de las semillas. El efecto sobre el tegumento es similar al del hervido
prolongado, éste queda flojo y perforado superficialmente. Requiere una cantidad de ácido
sulfúrico de grado comercial (95 %, 36 N), recipientes resistentes al ácido, recipientes de
alambre, tamices y una abundante disponibilidad de agua para enjuagar la semilla después
del tratamiento.
Para Hernández (2010) el acido sulfúrico es uno de los métodos químicos más usados en
especies forrajeras tropicales, ya que, disuelve, resquebraja y debilita las cubiertas de las
19
semillas, lo que permite la imbibición y el intercambio gaseoso, facilita la división y
expansión de la plúmula y la radícula del embrión.
2.3.3 TRATAMIENTO CON AGUA CALIENTE.
Para Calderón (1985) algunas semillas responden bien a su calentamiento en agua a
temperaturas abajo de 100o C, que se deja enfriar normalmente permitiéndose el remojo
durante un tiempo de alrededor de 12 horas. Después de ese tiempo se observa que se
encuentran hinchadas y ocupan mayor volumen, debiendo procederse a su siembra con
rapidez. Es un método un tanto peligroso
si no se tiene un control correcto de la
temperatura inicial. Se sumergen las semillas en 4–10 veces su volumen de agua hirviente
(100° C), luego dejar que las semillas se embeban en el agua que va enfriándose
progresivamente, durante 12 a 24 horas. Este método es de uso generalizado, pero puede
dar resultados erráticos. El volumen o la relación entre los pesos de la semilla y del agua es
crítico y la duración óptima de imbibición puede variar entre las especies.
2.3.4 REMOJO EN AGUA FRÍA.
Calderón (1985) manifiesta que la germinación se estimula y facilita si las semillas se
someten durante un cierto tiempo a la inmersión en agua fría y corriente, inmediatamente
de realizado este remojo deben ser sembradas las semillas en un medio que tenga buena
aireación pero a la vez retenga cierto grado constante de humedad.
Sierra (2002) indica que el objetivo de remojar las semillas en agua fría es modificar las
cubiertas duras de las mismas, remover los inhibidores de germinación, suavizar y reducir
el tiempo de germinación.
2.3.5 TRATAMIENTO CON HUMO SOBRE LAS SEMILLAS.
Para Calderón (1985) algunas semillas germinan solo después de un incendio, de modo que
las llamas escarifican la cubierta de la semilla y las sustancias químicas del humo
estimulan la germinación. Para que esto se dé, siembre las semillas, cúbralas con 6-10 cm
de helecho grande seco, quémelo y riegue las cenizas. El papel de fumar cuenta con
sustancias químicas que se hallan también en el humo, se encuentran asimismo
disponibles.
2.3.6 ENERGÍA DE MICROONDAS.
Westwood (1982) expresa que esta técnica es de reciente desarrollo por la cual las
semillas se calientan con energía de microondas. Grandes cantidades de semilla pueden ser
tratadas con tiempos de exposición desde 20 segundos hasta 4 minutos. La técnica tiene un
efecto similar al del agua hirviente, pero las semillas se mantienen secas. Tiene el
inconveniente de que se necesitan equipos especiales. Esta técnica está en pleno proceso de
evolución.i.
Manifiesta además, que otros tratamientos húmedos se dan a nivel de laboratorio
empleando etanol, metanol y acetona para tratar semillas, pero con resultados variables y
puesto que tienen limitada ventaja sobre el tratamiento con agua no es probable que
lleguen a ser empleados en forma extensiva.
La germinación rápida puede lograrse mediante la escarificación mecánica ó química. La
mecánica puede obtenerse con el lijamiento de las semillas. La escarificación química
mediante el remojo de estas en ácido sulfúrico o clorhídrico. Es importante mencionar que
el empleo de cualquier método de escarificación nos compromete a establecer la búsqueda
de un delicado punto de equilibrio en el que al mejorar la permeabilidad no se reduzca la
protección natural de la semilla, ya que si se aplica más efecto del necesario, el embrión
puede resultar dañado (Westwood, 1982).1
21
3. MATERIALES Y MÉTODOS.
3.1 MATERIALES.
3.1.1 LOCALIZACIÓN Y UBICACIÓN.
El presente ensayo se lo realizó en el laboratorio de Fruticultura de la Unidad académica de
la Facultad de Ciencias Agropecuarias, de propiedad de la Universidad Técnica de
Machala, ubicada en el km 4,5 de la vía Machala – Pasaje perteneciente a la Parroquia El
Cambio, cantón Machala, Provincia de El Oro.
La Granja Experimental Santa Inés Geográficamente se encuentra ubicada en las siguientes
coordenadas geográficas:
Latitud:
03º 17’28¨ Sur
Longitud:
79º 54’50¨ Oeste
Altitud:
6 m snm
3.1.2 CONDICIONES CLIMÁTICAS.
De acuerdo a las zonas de vida natural de Holdridge y el mapa ecológico del Ecuador, el
sitio de estudio presenta una formación ecológica (bms – T) bosque muy seco Tropical.
(Cañadas, 1983).
Conforme a los datos meteorológicos de la Estación Experimental Santa Inés, la zona
presenta una temperatura media anual que se ubica en los 25º C, y una precipitación media
anual de 699 mm, los suelos son de textura franco arenosa, donde hay depósitos aluviales y
franco arcilloso (Moya et al, 2004).
3.1.3 MATERIALES.
Semillas kudzú, agua destilada, ácido sulfúrico, ácido láctico, ácido acético, vaso de
precipitación, caja petri, pipetas, termómetro, regla, fundas para vivero, suelo agrícola,
arena, tamo de arroz, cal agrícola, formol, termómetro, cámara fotográfica, paletas de
identificación .
3.1.4 VARIABLES ESTUDIADAS.
 Días a la emergencia.

Porcentaje de emergencia de los tratamientos.

Días a la formación de las hojas verdaderas.

Altura de plantas a los 30, 60 y 90 días.
3.1.5

MEDICIÓN DE LAS VARIABLES.
Días a la emergencia. Partiendo desde la fecha de siembra, se contabilizó los días
en que se dio la emergencia de la plántula.

Porcentaje de emergencia de los tratamientos. Una vez que las semillas
emergieron se procedió a calcular su porcentaje en todos los tratamientos.

Días a la formación de hojas verdaderas. Se registró desde la fecha que
emergieron las semillas hasta la formación de las hojas verdaderas, descartando las
dos primeras hojas falsas por ser una dicotiledónea.

Altura de las plantas a los 30, 60 y 90 días. Una vez que las plántulas cumplieron
30 días se procedió a medir la altura de la planta y se registró la altura para uno de
los tratamientos y a los 60 y 90 días se hizo el mismo procedimiento.
3.1.6 TRATAMIENTOS.
Los tratamientos aplicados en la escarificación de semillas de kudzu fueron:

Escarificación química con ácido sulfúrico.

Escarificación química con ácido láctico.

Escarificación química con ácido acético.

Tratamiento con agua caliente.

Sin escarificación (testigo)
3.2. MÉTODOS.
3.2.1. METODOLOGÍA DE LABORATORIO.
3.2.1.1. Escarificación química con ácido sulfúrico.
Se la realizó mediante inmersión de las semillas contenidas en los vasos de precipitación,
en soluciones de ácido sulfúrico a concentraciones del 2 % en el que se consideró un
tiempo de 5 y 10 minutos para este tratamiento, en la solución de ácido sulfúrico al 4 %, se
23
consideró un tiempo de 5 y 10 minutos para este tratamiento, manteniendo la debida
precaución al manipular las semillas, y el producto a aplicar, después se procedió a la
siembra. De acuerdo al diseño experimental en esta investigación se tomaron en cuenta 20
réplicas por dosis.
3.2.1.2. Escarificación química con ácido láctico.
Se sumergió las semillas en vasos de precipitación, en soluciones de ácido láctico a
concentraciones del 2 % en el que se consideró un tiempo de 5 y 10 minutos para este
tratamiento, en la solución de ácido láctico al 4 %, se consideró un tiempo de 5 y 10
minutos para este tratamiento, teniendo la debida cautela al tratar las semillas y el producto
a aplicar, posteriormente se procedió a sembrar. Se consideraron 20 repeticiones por dosis.
3.2.1.3. Escarificación química con ácido acético.
El procedimiento estuvo basado en la inmersión de las semillas contenidas en los vasos de
precipitación, en soluciones de ácido acético a concentraciones del 2 % en el que se
consideró un tiempo de 5 y 10 minutos para este tratamiento, en la solución de ácido
acético
al 4 %, se consideró un tiempo de 5 y 10 minutos para este tratamiento,
manteniendo la debida mesura al usar las semillas, y el producto a aplicar, luego de
realizado esto se procedió a la siembra. De acuerdo al diseño experimental aplicado se
realizaron 20 repeticiones por dosis.
3.2.1.4. Tratamiento con agua caliente.
Se sometió a calor el agua destilada, y con la ayuda de un termómetro se verificó la
temperatura indicada para la sumersión de las semillas a 70oC, para este tratamiento se
consideró un tiempo de 5 y 10 minutos y a 80ºC se consideró un tiempo de 5 y 10 minutos
después de transcurridos ese tiempo, se procedió a la siembra. De acuerdo al diseño
empleado en esta investigación se tomó en cuenta 20 repeticiones por dosis.
3.3. DISEÑO EXPERIMENTAL.
Se empleo un diseño experimental completamente al azar; con 16 tratamientos, 1 testigo y
20 replicas por tratamiento dando un total de 340 unidades experimentales.
3.3.1. ESPECIFICACIONES DEL DISEÑO.
Las especificaciones del diseño para la escarificación son.
Código
T1
T2
T3
T4
T5
T6
T7
T8
T9
T10
T11
T12
T13
T14
T15
T16
T17
Tratamientos
Concentración
Ácido Sulfúrico
2%
Ácido Sulfúrico
2%
Ácido Sulfúrico
4%
Ácido Sulfúrico
4%
Ácido Láctico
2%
Ácido Láctico
2%
Ácido Láctico
4%
Ácido Láctico
4%
Ácido Acético
2%
Ácido Acético
2%
Ácido Acético
4%
Ácido Acético
4%
Agua Caliente 70ºC
Agua Caliente 70ºC
Agua Caliente 80ºC
Agua Caliente 80ºC
Sin Escarificación ( Testigo)
Tiempo de
Inmersión
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
-
Elaborado: El Autor.
3.3.2. MODELO ESTADISTICO.
El modelo matemático del diseño está representado por la siguiente ecuación lineal:
Yij = u + ti + Eij
Dónde:
Yij = Porcentaje de emergencia, altura de planta.
u=
Promedio general del ensayo.
ti = Efecto de los tratamientos.
Eij = Error experimental
Hipótesis estadísticas:
Hipótesis nula (Ho):
Ho: Σti = 0
Los efectos de los tratamientos no difieren significativamente.
25
Hipótesis alternativa (Ha):
Ha: Σti ≠ 0
Al menos uno de los tratamientos difieren significativamente.
Para lo errores, se supone que se ajustan a la curva normal con u = 0 y ơ2 desconocida.
3.3.3. ANÁLISIS DE VARIANZA.
El esquema del análisis de varianza para este ensayo se detalla a continuación:
ANOVA Modelo 1 (efectos fijos)
Fuentes de variación
Gl
Tratamientos
Error Experimental
Total
t–1
16
t (n – 1)
323
nt - 1
339
3.3.4. PRUEBA DE SIGNIFICACIÓN.
Para la separación de promedios de tratamientos se empleo el test de Duncan con un nivel
de significación del 5%.
3.3.5 MANEJO DEL ENSAYO.
3.3.5.1 Selección de la semilla.
Para este trabajo de investigación las semillas certificada de kudzú se obtuvo por pedido a
la importadora Alaska
Quito- Ecuador,
para el ensayo tomamos las semillas y las
colocamos en un vaso precipitación con agua limpia, las semillas muertas subirán a la
superficie, mientras que las semillas viables se quedaran en el fondo para ser seleccionadas
para la escarificación.
Foto 2. Semilla certificada Kudzú.
3.3.5.2 Preparación del suelo.
El sustrato utilizado para la emergencia de las semillas se preparó con suelo agrícola,
arena, tamo de arroz y cal agrícola, lo que permitió el buen desarrollo de las plántulas de
kudzú. El sustrato fue desinfectado con formol al 5 %.
Foto 3. Desinfección del suelo.
3.3.5.3 Siembra.
Se depositó las semillas en las fundas previamente llenadas con el sustrato, se colocaron el
número de tratamientos y semillas indicadas en el diseño experimental, tapándolas
ligeramente con suelo, y luego se proporcionó un riego hasta la capacidad de campo.
Foto 4. Siembra según tratamientos.
3.3.5.4. Labores culturales.
Se realizaron monitoreos frecuentes con el objetivo de detectar a tiempo la presencia de
insectos plaga; entre los que se pudieron observar fueron la incidencia de hormigas que se
controlaron con infusiones de tabaco en una proporción de 5 g por litro de agua cada 8
días, como medida preventiva.
27
4. RESULTADOS Y DISCUSIÓN.
4.1. RESULTADOS.
4.1.1. DÍAS A LA EMERGENCIA.
En el cuadro 1 se visualiza los valores que corresponden a los días transcurridos a la
emergencia del embrión luego de realizado el tratamiento de escarificación química con
los ácidos sulfúrico, Láctico y Acético. Los valores o estimación puntual varían con la
acción de los productos en la destrucción del tegumento de la semilla del Kudzú, para
permitir la penetración de la humedad requerida para la activación del embrión con la
cual se produce el crecimiento y generación de hormonas del crecimiento.
En el análisis de varianza (cuadro 2), se observa que el cuadrado medio para tratamientos
resulto ser altamente significativo, lo cual evidencia que el tiempo transcurrido desde la
siembra de las semillas escarificadas, hasta la emergencia de embrión. Este evento duro
entre 8 a 14.6 días correspondiendo el menor tiempo, 8 días al tratamiento T13. Agua
caliente a 70 °C por 5 minutos, el mismo que fue similar estadísticamente que el T14
Agua caliente 70°C -10 minutos.
La escarificación química con el ácido sulfúrico en concentraciones de de 2 y 4% por 5 a
10 minutos prolongo la brotación del embrión alrededor de 12 a 14 días (cuadro 1),
promedios que fueron similares a los promedios de los tratamientos los ácidos Láctico y
acético.
El mayor tiempo requerido para la emergencia del embrión fue 14.6 días, en el testigo
absoluto.
Para el ensayo le correspondió un promedio general de 12.1 días con un coeficiente de
variación de 1,26%. Los promedios de los tratamientos se presentan en la fig 1.
Cuadro 1. Días trascurridos desde la escarificación a la emergencia del embrión.
Esacarificante
T1 Acido Sulfúrico- 2%
T2 Acido Sulfúrico - 2%
T3 ácido Sulfúrico- 4%
T4 Acido Sulfúrico- 4%
T5 Ácido Láctico- 2%
T6 Ácido Láctico
2%
T7 Ácido Láctico
4%
T8 Ácido Láctico
4%
T9 Ácido Acético- 2%
T10 Ácido Acético- 2%
T11Ácido Acético- 4%
T12 Ácido Acético- 4%
T13 Agua Caliente -70°C
T14 Agua Caliente -70°C
T15Agua Caliente - 80°C
T16 Agua Caliente -80°C
T17 Testigo
Promedio general
Elaborado: El Autor.
Tiempo
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
-
Días a Sig/Duncan
12.2
b
12
b
13.4
ab
13.2
ab
12
b
12.4
b
13
b
13.6
ab
11.4
b
11.6
b
12.8
a
12.2
b
8
c
9.2
c
12
b
12.2
b
14.6
a
12.1059
CUADRO 2. Análisis de varianza para los días a la emergencia del embrión.
FUENTES DE VARIACION G.L
S.C
CM
FC
F0.05 F0.01
TRATAMIENTOS
16
194.047 12.128 7.54 ** 1.8
2.8
Error experimental
51
82
1.6078
total
67
276.047
CV
1.26801
29
14,6
13 13,6
12,8 12,2
12 12,4
11,4 11,6
12 12,2
T17 sin escarificacion
9,2
T16 Agua Caliente -…
T13 Agua Caliente -…
T12 Ác. Acético- 4&
T11Ác Acético- 4%
T10 Ác. Acético- "%
T9 Ácido. Acético- 2%
T8 Ácido. Láctico $%
T7 Ác.Láctico 4%
T6 Ácido, Láctico 2%
T5 Ácido Láctico- 2%
T4 Acido.Sulfúrico- 4%
T3 ácido Sulfúrico- 4%
T2 Acido sulfurici - 2%
T1 Acido Sulfúrico-…
8
T15Agua Caliente -…
13,4 13,2
T14 Agua Caliente -…
12,2 12
Figura 1. Promedios de tratamientos expresados en días al inicio de la actividad del
embrión.
4.1.2. PORCENTAJE DE EMERGENCIA
La germinación de las semillas de Kudzú después del proceso de escarificación fue
relativamente baja variando dentro de un rango de 20 a 56%, correspondiendo los valores
extremos a los tratamientos T17. Testigo y al tratamiento T1. Ácido sulfúrico 2% e
inmersión por 5 minutos. En este contexto en el análisis de varianza la relación de
varianzas F (2.19) fue significativa al nivel del 5%. Los tratamientos aplicados solo ejercen
un efecto físico al destruir el tegumento de las semillas que está formada por células de
colénquima, pero en ayuda a la postmaduración del embrión.
Según la prueba de Duncan, al ácido sulfúrico en concentraciones de 2 y 4% con periodos
de inmersión de 5 y 10 minutos, les correspondió el primer lugar- En orden jerárquico
aparece los ácidos Láctico y acético con promedios de 32 a 24%.
La inmersión en agua caliente a 70 °C por solo 5 minutos le correspondió un promedio de
56% de germinación, siendo similar estadísticamente que los tratamientos con acido
sulfúrico y superior a los ácidos láctico y acético.
Para el ensayo le correspondió un promedio general de 1.8 semillas germinadas en
muestras de 5, con un coeficiente de variación de 45.69%
Cuadro 3. Porcentaje de semillas emergidas por unidad experimental (5 semillas). En base
a cuatro replicas.
%
Significación
TRATAMIENTOS
TIEMPO SEMILLAS GERM.
Duncan
T1 Ác. Sulfúrico
2%
5 min
2.8
56
a
T2 Ác. Sulfúrico
2%
10 min
2.4
48
a
T3 Ác. Sulfúrico
4%
5 min
2.2
44
a
T4 Ác. Sulfúrico
4%
10 min
2.2
44
a
T5 Ác Láctico2%
5 min
1.6
32
ab
T6 Ác. Láctico
2%
10 min
1.6
32
ab
T7 Ác. Láctico
4%
5 min
1.6
32
ab
T8 Ác. Láctico
4%
10 min
1.60
32.00
ab
T9 Ác. Acético
2%
5 min
1.4
28
b
T10 Ác. Acético
2%
10 min
1.4
28
b
T11 Ác Acético
4%
5 min
1.2
24
b
T12 Ác. Acético
4%
10 min
1.2
24
b
T13 Agua caliente 70°C
5 min
2.80
56.00
a
T14 Agua caliente 70°C
10 min
2
40
ab
T15 Agua caliente 80°C
5 min
1.6
32
ab
T16 Agua caliente 80°C
10 min
1.6
32
ab
T17 TESTIGO
1.00
20.00
b
Promedio general
1.8
Elaborado: El Autor.
Cuadro 4. Análisis de varianza para el número de semillas emergidas y porcentaje de
emergencia.
FUENTES DE
VARIACION
G.L
S.C
CM
FC
F0.05 F0.01
TRATAMIENTOS
16
23.153 1.447
2.19*
1.8
2.8
Error experimental
51
33.6
0.658
total
67
56.753
CV
45.69%
31
60
50
56
56,00
48
44 44
40
40
30
32 32 32 32,00
32 32
28 28
24 24
20,00
20
10
0
% GERM.
Figura 2. Promedio de los tratamientos para el porcentaje de emergencia de la
semilla kudzú.
4.1.3. DÍAS A LA FORMACIÓN DE HOJAS VERDADERAS.
En el cuadro 5 se presenta los promedios del tiempo en días que se registro en el proceso
de formación de hojas en las plántulas de Kudzú-, estos resultados nos indica que el
desarrollo de las hojas embrionales fue lento variando dentro de un rango de 15.8 a 24.6
días; promedios registrados en los tratamientos T14 Agua caliente -70° C con 10 minutos
de inmersión y T17. Testigo absoluto. Dentro de este intervalo se ubican los tratamientos
restantes.
En el Análisis de varianza y prueba de comparación de los promedios de tratamientos se
encontró alta significancia estadística al 1% para tratamientos, destacándose los
tratamientos T13, al T16, consistentes en inmersión en agua caliente a 70 y 80 °C, por 5 a
10 minutos.
El Promedio general del ensayo fue de 21,5 días con un coeficiente de variación del 5 %.
Foto 5. Hoja verdadera Kudzú (Pueraria phaseoloides)
33
Cuadro 5. Días transcurridos a la formación de las hojas verdaderas.
TRATAMIENTOS
Tiempo
promedio Significación
T1 Ácido Sulfúrico- 2%
5 min
20.6
a
T2 Ácido Sulfúrico- 2%
10 min
21.8
a
T3 Ácido Sulfúrico- 4%
5 min
22.2
a
T4 Ácido Sulfúrico- 4%
10 min
23.2
a
T5 Ácido Láctico2%
5 min
21
ab
T6 Ácido Láctico
2%
10 min
22
ab
T7 Ácido Láctico
4%
5 min
23
ab
T8 Ácido Láctico
4%
10 min
22.20
ab
T9 Ácido Acético- 2%
5 min
21
b
T10 Ácido Acético- 2%
10 min
22
b
T11 Ácido Acético- 4%
5 min
23.2
b
T12 Ácido Acético- 4%
10 min
23.2
b
T13 Agua caliente - 70°C
5 min
15.20
a
T14 Agua caliente -70°C
10 min
15.8
ab
T15. Agua caliente -80°C
5 min
18.8
ab
T16 Agua caliente - 80°C
10 min
19.8
ab
T17 TESTIGO
24.60
b
21.5
Promedio general
días
Elaborado: El Autor.
Cuadro 6. Análisis de Varianza para los días trascurridos hasta la formación de hojas
verdaderas.
FUENTES DE VARIACION
G.L
S.C
CM
FC
F0.05 F0.01
TRATAMIENTOS
16
518.61 32.41324 28.30** 1.8
2.8
Error experimental
51
58.4 1.145098
total
67
577.01
CV
5.059%
25,0
dias
20,0
15,0
10,0
T17 TESTIGO
T16 Agua caliente -80°C
T15. Agua caliente -…
T14 Agua caliente -…
T12 ÁcIdo. Acético- 4%
T11. ÁcIdo Acético- 4%
T9 Acido Lactico 4%
T10 ÁcIdo. Acético-2%
T8 ÁcIdo. Láctico 4%
T7 ÁcIdo.Láctico 2%
T6 Acido, Láctico 2%
4%
T5 Acido sufurico
T4 ÁcIdo .Sulfúrico- 4%
T3 AcIdo , Sulfúrico- 4%
T2 Acido . Sulfúrico- 2%
T1 Acido .Sulfúrico- 2%
0,0
T13 Agua caliente -…
5,0
Figura 3. Promedio de los tratamientos para los días a la formación de las hojas
verdaderas.
4.1.4. ALTURA DE PLANTA A LOS 30, 60 Y 90 DIAS
La altura de planta en tres evaluaciones se visualiza en el cuadro 7; en el cual se evidencia
que las plantas de kudzú se caracterizaron por su lento crecimiento.
A los 30 días en el análisis de varianza el cuadrado medio de tratamientos fue altamente
significativo, y en el tés de Duncan con un nivel de significación del 5%, el mayor
promedio con 1.82 cm, correspondió al tratamiento T1. Ácido sulfúrico 2%-5 minutos el
cual fue similar que el promedio de los tratamiento Acido sulfúrico 2% -10 min. de
inmersión y T14. Agua caliente 70°C -10 minutos de inmersión.
El promedio más bajo con plantas de 0.88 cm, le correspondió al testigo absoluto.
A los 60 días los resultados arrojaron alta significancia estadística para tratamientos en el
análisis de varianza confirmando la superioridad de cuatro tratamientos T1. Acido
.Sulfúrico- 2% y 5 minutos de inmersión,, T2. Acido .Sulfúrico- 2%- 10 minutos de
inmersión, T13 Agua caliente 70°C- 5 y 10 minutos de inmersión con alturas de planta de
3.72, 3.62, 3.66, y 3.68 cm respectivamente.
35
El promedio general para esta evaluación fue de 2.85 cm con un coeficiente de variación
de 4.08% valor indicador del alto control del error experimental.
A los 90 días, se reafirma la superioridad de los tratamientos antes citados con respecto a
los tratamientos que incluyeron los ácidos láctico, acético y al testigo absoluto. En el
análisis
de
varianza el cuadrado medio de tratamientos fue muy superior que el
correspondiente al error experimental, por lo tanto con un nivel de confiabilidad del 99%
se rechaza la hipótesis nula Ho formulada en el ensayo y al contario se demuestra que las
semillas escarificadas con ácidos sulfúrico al 2% y agua caliente a 70°C, permite eliminar
la resistencia de los tejidos lignificados de la testa de las semillas, posibilitando el acceso
del agua hasta el embrión produciendo la germinación de la semilla.
Los mejores promedios con 5.72 y 5.78 correspondieron a los tratamientos T13 y T14 con
agua caliente a 70°C con 5 y 10 minutos de inmersión, estos fueron similares
estadísticamente según el tés de Duncan que los promedios de los tratamientos T1 y T2
con ácido sulfúrico 2% y tiempos de inmersión de 5 y 10 minutos respectivamente.
El promedio general del ensayo en la tercera evaluación fue de 4.42 cm, con un coeficiente
de variación del 3.29%.
Foto 6. Altura de la planta Kudzú (Pueraria phaseoloides)
Cuadro 7 Altura de planta a los 30,60 y 90 días.
tratamientos
Tiempo
30 días
T1 Ácido Sulfúrico- 2%
5 min
1.82 a
T2 Ácido Sulfúrico- 2%
10 min
1.76 ab
T3 Ácido Sulfúrico- 4%
5 min
1.18 d
T4 Ácido Sulfúrico- 4%
10 min
1.18 d
T5 Ácido Láctico2%
5 min
1.2 d
T6 Ácido Láctico
2%
10 min
1.18 d
T7 Ácido Láctico
4%
5 min
1.18 d
T8 Ácido Láctico
4%
10 min
1.2 d
T9 Ácido Acético- 2%
5 min
1.22 d
T10 Ácido Acético- 2%
10 min
1.24 d
T11. Ácido Acético- 4%
5 min
1.2 d
T12 Ácido Acético- 4%
10 min
1.22 d
T13 Agua caliente - 70°C
5 min
1.72 bc
T14 Agua caliente -70°C
10 min
1.76 ab
T15. Agua caliente -80°C
5 min
1.14 d
T16 Agua caliente - 80°C
10 min
1.14 d
T17 TESTIGO
0.88 d
promedio general
1.31
varianza de tratamientos
0.375**
varianza de Error
0.011
CV (%)
8.23%
R:A:D P<0,05
0.13-0.15
60 días
3.72 a
3.62 a
2.72 b
2.68 b
2.78 b
2.74 b
2.74 b
2.72 b
2.72 b
2.72 b
2.68 b
2.68 b
3.66 a
3.68 a
2.62 b
2.66 b
2.08 c
2.85
1.102**
0.014
4.08%
0.15 -0.18
90 días
5.66 a
5.62 ab
4.48 b
4.52 b
4c
3.94 c
3.96 c
3.94 c
3.9 c
3.72 d
3.82 c
3.84 c
5.72 a
5.78 a
4.42 b
4.34 b
3.58 d
4.42
2.98**
0.02
3.29%
0.18 -0,22
37
4.2 DISCUSIÓN.
El kudzú tropical, Pueraria phaseoloides L especie de hábitos rastero que se emplea como
protectora del suelo en cultivos tropicales perennes especialmente palma africana, aporta
niveles importantes de nitrógeno fijado por las bacterias simbióticas. Asociadas al sistema
radicular, además de evitar la erosión del suelo, y otros efectos beneficios en los
agroecosistemas agrícola tropicales (benitez 1990, Manual agropecuario 2002). Esta
especie presenta semillas con la testa lignificada la germinación es errática dificultando
obtener la brotación uniforme y probablemente el embrión requiere de una fase posterior
de reposo o dormancia para luego germinar en condiciones apropiadas (Febles 1985).
Los tratamientos implementados en esta investigación demostraron que la escarificación de
las semillas demuestran que, técnicas simples como el empleo de agua caliente a 70°C por
tiempos de 5 a 10 minutos lograron romper la barrera física de la testa de la semilla para la
penetración del agua y la activación del embrión generando los procesos fisiológicos y
bioquímicos de la germinación, brotación y desarrollo de las plántulas esta técnica se ha
venido empleando como la más eficiente, según
Calderón (1985) algunas semillas
responden bien a su calentamiento en agua a temperaturas abajo de 100 o C, que se deja
enfriar normalmente permitiéndose el remojo durante un tiempo de alrededor de 12 horas.
Entre los métodos de escarificación química, solo el acido sulfúrico al 2% y tiempos de
inmersión de 5 a 10 minutos logro destruir parcialmente la testa lignificada de la semilla, y
luego derivar en la activación del embrión y germinación de la semilla, estos resultados
confirman los fundamentos de la escarificación química sustentada por Hernández (2010)
como uno de los métodos químicos más usados en especies forrajeras tropicales, ya que,
disuelve, resquebraja y debilita las cubiertas semillas.
El porcentaje de germinación de la semilla de kudzu fue relativamente baja con un techo
de 56%, situación que es normal en esta especie, desconociéndose si existen problemas de
dormancia forzada atribuida condiciones naturales.
39
5. CONCLUSIONES.

La escarificación química mediante el empleo de ácido sulfúrico arrojo resultados
satisfactorios en la ruptura de la testa de la semilla del Kudzu tropical facilitando la
penetración del agua hasta el embrión de la semilla.

Los ácidos láctico y acético causaron un efecto pobre sobre la testa lignificada de la
semilla con lo cual la germinación fue baja comparada con la generada por el ácido
sulfúrico al 2% con tiempos de inmersión de 5 a 10 minutos.

El porcentaje de germinación de las semilla no supero el 56%, al parecer la baja
germinación es típica de esta especie forrajera.

El empleo de agua caliente a 70°C por tiempos de 5 a 10 minutos fue tan eficiente
como el empleo de ácido sulfúrico, presentando resultados que similares
estadísticamente que los obtenidos con ácido antes citado.

El crecimiento en altura hasta los 90 días fue bajo pero superior en plantas
procedentes de semillas escarificadas con agua caliente a 70°C.
6. RESUMEN.
La presente investigación relativa a estudios de la escarificación química y física mediante
el empleo de agua caliente para acelerar la germinación de semillas de Kudzú tropical,
especie importante como cubierta vegetal en banano orgánico, palma africana, se lo
realizó en el laboratorio de Fruticultura de la Facultad de ciencias Agropecuarias con los
siguientes objetivos:
1. Reducir el periodo de latencia mediante métodos de escarificación de las semillas
de Pueraria phaseoloides.
2. Determinar el tratamiento y la dosis de mayor efecto en la germinación y
crecimiento de las plántulas.
Los materiales empleados fueron Semillas kudzú, agua destilada, ácido sulfúrico, ácido
láctico, ácido acético, vaso de precipitación, caja petri, pipetas, termómetro, regla, fundas
para vivero, suelo agrícola, arena, tamo de arroz, cal agrícola, formol, termómetro, cámara
fotográfica, paletas de identificación . Los tratamientos estudiados en la escarificación de
semillas de Pueraria phaseoloides son, ácidos sulfúrico, láctico, acético en
concentraciones de 2 y 4% y tiempos de inmersión de las semillas de 5 y 10 minutos y
agua caliente a 70°C, 80°C y tiempos de inmersión de 5 a 10 minutos, contando con 16
tratamientos y un testigo. Los tratamientos se dispusieron en un Diseño experimental
completamente al azar; con 16 tratamientos, 1 testigo y cinco repeticiones,
con 68
unidades experimentales o fundas plásticas con sustratos de suelo enriquecido con
materia orgánica para la siembra de cinco semillas escarificadas con los productos antes
citados. Los análisis estadísticos arrojaron alta significancia estadística para los
tratamientos en las seis variables analizadas.La escarificación química mediante el empleo
de ácido sulfúrico arrojo resultados satisfactorios en la ruptura de la testa de la semilla del
Kudzu tropical facilitando la penetración del agua hasta el embrión de la semilla. Los
ácidos láctico y acético causaron un efecto pobre sobre la testa lignificada de la semilla con
lo cual la germinación fue baja comparada con la generada por el ácido sulfúrico al 2% con
tiempos de inmersión de 5 a 10 minutos., El porcentaje de germinación de las semilla no
supero el 56%, al parecer la baja germinación es típica de esta especie forrajera. El empleo
41
de agua caliente a 70°C por tiempos de 5 a 10 minutos fue tan eficiente como el empleo de
ácido sulfúrico, presentando resultados que similares estadísticamente que los obtenidos
con ácido antes citado. Y El crecimiento en altura hasta los 90 días fue bajo pero superior
en plantas procedentes de semillas escarificadas con agua caliente a 70°C.
7. SUMMARY.
This research studies on the chemical and physical scarification by using hot water to
accelerate the germination of tropical kudzu, important species plant cover in organic
bananas, palm, performed at the Laboratory of fruit farming Faculty of Agricultural
sciences with the following objectives:
1. Reduce the latency period by scarification methods Pueraria seed phaseoloides.
2. Determine the treatment and dose greater effect on germination and seedling growth.
The materials used were Seeds kudzu, distilled water, sulfuric acid, lactic acid, acetic acid,
beaker, petri dish, pipettes, thermometer, rule, covers nursery, agricultural soil, sand, rice
chaff, agricultural lime, formalin, thermometer, camera, pallet identification. The
treatments on seed scarification phaseoloides are Pueraria, sulfuric acid, lactic acid, acetic
acid solutions the 2 and 5% and exposures seed 5 and 10 minutes and hot water at 70 °C,
80 °C and immersion times of 5 to 10 minutes, with 16 treatments and a control, soaking in
water at room temperature. The treatments were arranged in a completely randomized
experimental design; with 16 treatments, one witness and five replicates, with 68
experimental units or plastic bags with substrates of soil enriched with organic matter for
planting five scarified with the above products seeds. Statistical analysis showed high
statistical significance for the treatments in the six variables analyzed. The chemical
scarification by using sulfuric acid courage successful in breaking the seed coat of tropical
Kudzu facilitating the penetration of water to the embryo seed. Lactic and acetic acids
caused a poor effect on woody seed coat so that the germination was low compared with
that generated by sulfuric acid at 2% with immersion times of 5-10 minutes., The
percentage of germination the seed did not exceed 56%, apparently low germination is
typical of this forage species. The use of hot water at 70°C for times of 5 to 10 minutes was
as efficient as the use of sulfuric acid, having statistically similar results to those obtained
with acid mentioned above. And Height growth until 90 days was low but higher in plants
from seeds scarified with hot water at 70 °C.
43
8. BIBLIOGRAFÍA.
BENITEZ, A. 1990. Pastos y forrajes. Editorial Universitaria. Quito, Ecuador p. 238, 239,
240, 241.
BESNIER, R. 1989. Semillas, Biología y Tecnología. Ediciones Mundi- Prensa. 1era
edición. España. Gráfica Palermo. p. 175.
BURBANO, E. 1990. Efecto de la escarificación química y el almacenamiento en la
calidad
de semillas de especies de Centrosoma. Pasturas tropicales. Venezuela. p. 20.
CAÑADAS, L. 1983. El mapa bioclimático y ecológico del Ecuador. Quito. p. 106 – 107.
CALDERON, A. 1985. Fruticultura general. Ediciones Limusa. 3era edición. México D.F.
p.502 – 504.
DUFFUS, C y SLAUGTHER, C. 1980. Las semillas y sus usos. AGT Editorial S.A. 1era
edición. México- Chapingo. p. 79, 81, 89.
FEBLES, G. 1985. Factores que afectan la germinación, I. Factores ocurrentes antes de la
siembra. Cuba. Instituto de Ciencias Agrícolas. p. 77.
HARTMANN, H y KESTER, D. 1987. Propagación de las plantas principios y prácticas.
Editorial Continental S.A. 3era edición. México. p. 164 – 167.
HERNÁNDEZ, F. 2010. Métodos de escarificación y prueba de envejecimiento acelerado
en semillas de Brachiaria brizantha Tesis de Ing. Agr. Universidad de Guayaquil,
Facultad de Agronomía. Ecuador. p. 39.
HILL, B y OVERHOLTS, O y POPP, W. 1999. Tratado de botánica. Ediciones Omega. 3 era
edición. España. p. 348 – 349.
MANUAL AGROPECUARIO. 2002. Editorial Juveniles Campesinos.1 era edición. Bogotá,
Colombia. p. 867 – 868.
MOYA, R y VELEZ, D y CARVAJAL, G y CARVAJAL, M. 2004. Balance hídrico de
varias localidades ecuatorianas. Ministerio de Energía y Minas. p. 25.
SIERRA, P. 2002. Fundamentos para el establecimiento de pasturas y cultivos forrajeros.
Editorial Universidad de Antioquia. Colombia. p. 300 – 301.
VILLALOBOS, E y FLORES, J y FRANCESA, A. 1987. Un procedimiento para escarificar
kudzú (Pueraria phaseoloides). Nota técnica. Costa Rica. p. 251 – 253.
WESTWOOD, N. 1982. Fruticultura en zonas templadas. Ediciones Mundi –Prensa. 3era
edición. España. p. 85, 410.
45
APÉNDICE
Anexo 1. Días a la emergencia semillas Kudzú (Pueraria phaseoloides)
Esacarificante
T1 Ácido Sulfúrico- 2%
T2 Ácido Sulfúrico- 2%
T3 Ácido Sulfúrico- 4%
T4 Ácido Sulfúrico- 4%
T5 Ácido Láctico2%
T6 Ácido Láctico
2%
T7 Ácido Láctico
4%
T8 Ácido Láctico
4%
T9 Ácido Acético- 2%
T10 Ácido Acético- 2%
T11. Ácido Acético- 4%
T12 Ácido Acético- 4%
T13 Agua caliente - 70°C
T14 Agua caliente -70°C
T15. Agua caliente -80°C
T16 Agua caliente - 80°C
T17 TESTIGO
Tiempo
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
-
CALCULOS ESTADISTICOS
FACTOR DE CORRECION
ANOVA
R1
12
11
14
12
11
14
13
12
13
11
14
13
8
9
12
13
15
R2
14
13
13
14
13
12
12
15
11
12
11
10
8
8
13
11
14
R3
12
13
15
13
11
11
15
14
10
10
13
11
9
10
11
13
15
R4
11
12
12
14
14
13
12
13
12
12
14
13
8
9
11
12
14
R5
12
11
13
13
11
12
13
14
11
13
12
14
7
10
13
12
15
Ti
61
60
67
66
60
62
65
68
57
58
64
61
40
46
60
61
73
1029
12456,953
PRUEBA DE DUNCAN
PROMEDIOS
Rangos de Duncan P<0.05
APLITUDES
ESTUDIANTIZADAS
Error estándar
Rangos de Duncan P<0.05
2
3
4
5
6
7
8
9
10
2,81 2,95 3,03 3,12 3,18 3,22 3,26 3,29 3,31
0,57
1,59 1,67 1,72 1,77 1,80 1,83 1,85 1,87 1,88
12
14
16
3,36
3,4
3,42
1,91
1,93
1,94
47
Anexo 2. Porcentaje de emergencia semillas Kudzú (Pueraria phaseoloides).
Esacarificante
T1 Ácido Sulfúrico- 2%
T2 Ácido Sulfúrico- 2%
T3 Ácido Sulfúrico- 4%
T4 Ácido Sulfúrico- 4%
T5 Ácido Láctico2%
T6 Ácido Láctico
2%
T7 Ácido Láctico
4%
T8 Ácido Láctico
4%
T9 Ácido Acético- 2%
T10 Ácido Acético- 2%
T11. Ácido Acético- 4%
T12 Ácido Acético- 4%
T13 Agua caliente - 70°C
T14 Agua caliente -70°C
T15. Agua caliente -80°C
T16 Agua caliente - 80°C
T17 TESTIGO
CALCULOS
ESTADISTICOS
FACTOR DE
CORRECION
Tiempo
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
5 min
10 min
-
R1
3
3
1
2
1
2
1
3
1
2
1
2
3
1
1
2
1
R2
3
3
3
3
2
1
2
1
1
1
1
1
2
3
2
1
1
R3
3
2
3
2
3
2
1
2
2
1
2
1
2
3
1
3
1
R4
3
2
2
1
1
2
1
1
2
2
1
1
3
2
2
1
1
R5
2
2
2
3
1
1
3
1
1
1
1
1
4
1
2
1
1
Ti
Ym
3
2,8
2,5
2,4
2,25
2,2
2
2,2
1,75
1,6
1,75
1,6
1,25
1,6
1,75
1,6
1,5
1,4
1,5
1,4
1,25
1,2
1,25
1,2
2,5
2,8
2,25
2
1,5
1,6
1,75
1,6
1
1
30,75 1,77647
11,12426471
ANOVA
PRUEBA DE DUNCAN
PROMEDIOS
Rangos de duncan
P<0.05
APLITUDES
ESTUDIANTIZADAS
Error estándar
Rangos de duncan
P<0.05
2
3
4
5
6
7
8
9
10
12
14
16
17
2,81
1,11
2,95
3,03
3,12
3,18
3,22
3,26
3,29
3,31
3,36
3,4
3,42
3,43
3,11
3,27
3,36
3,46
3,52
3,57
3,61
3,64
3,67
3,72
3,77
3,79
3,80
62,258 65,36 67,132 69,126 70,456 71,342 72,228 72,893 73,336 74,444 75,33 75,773 75,995
Anexo 3. Días a la formación hojas verdaderas.
Esacarificante
R1
R2
R3
R4
R5
Ti
Ym
2%
Tiempo
5 min
19
21
21
22
20
103
20,6
T2 Ácido Sulfúrico-
2%
10 min
22
21
23
22
21
109
21,8
T3 Ácido Sulfúrico-
4%
5 min
23
22
21
23
22
111
22,2
T4 Ácido Sulfúrico-
4%
10 min
24
23
22
23
24
116
23,2
T5 Ácido Láctico-
2%
5 min
20
22
20
22
21
105
21
2%
10 min
21
23
22
23
21
110
22
4%
5 min
24
22
24
23
22
115
23
T8 Ácido Láctico
4%
10 min
22
23
22
23
21
111
22,2
T9 Ácido Acético-
2%
5 min
20
22
21
22
20
105
21
T10 Ácido Acético-
2%
10 min
23
21
23
21
22
110
22
T11. Ácido Acético-
4%
5 min
24
23
24
21
24
116
23,2
4%
10 min
23
22
24
23
24
116
23,2
T13 Agua caliente - 70°C
5 min
16
15
14
15
16
76
15,2
T14 Agua caliente -70°C
10 min
16
15
17
15
16
79
15,8
T15. Agua caliente -80°C
5 min
19
20
18
19
18
94
18,8
T16 Agua caliente - 80°C
10 min
21
19
20
19
20
99
19,8
T17 TESTIGO
-
24
25
25
24
25
123
24,6
1798
21,15
T1 Ácido Sulfúrico-
T6 Ácido Láctico
T7 Ácido Láctico
T12 Ácido Acético-
CALCULOS ESTADISTICOS
FACTOR DE CARRECION
38033
ANOVA
PRUEBA DE DUNCAN
PROMEDIOS
Rangos de Duncan P<0.05
APLITUDES
ESTUDIANTIZADAS
Error estándar
Rangos de Duncan P<0.05
2
3
4
5
6
7
8
9
10
12
14
16
17
2,81
2,95
3,03
3,12
3,18
3,22
3,26
3,29
3,31
3,36
3,4
3,42
3,43
1,41
1,45
1,49
1,52
1,54
1,56
1,57
1,58
1,61
1,63
1,64
1,64
0,48
1,34
26,895 28,235 29,001 29,862 30,436 30,819 31,202 31,489 31,681 32,159 32,542 32,733 32,829
49
Anexo 4. Altura de las plantas Kudzú (Pueraria phaseoloides) a los 30 días.
Esacarificante
Tiempo
5 min
T1 Ácido Sulfúrico- 2%
T2 Ácido Sulfúrico- 2% 10 min
5 min
T3 Ácido Sulfúrico- 4%
10
min
T4 Ácido Sulfúrico- 4%
5 min
T5 Ácido Láctico2%
10 min
T6 Ácido Láctico
2%
5 min
T7 Ácido Láctico
4%
10 min
T8 Ácido Láctico
4%
5 min
T9 Ácido Acético- 2%
10 min
T10 Ácido Acético- 2%
5 min
T11. Ácido Acético- 4%
10 min
T12 Ácido Acético- 4%
5 min
T13 Agua caliente - 70°C
10 min
T14 Agua caliente -70°C
5 min
T15. Agua caliente -80°C
10 min
T16 Agua caliente - 80°C
T17 TESTIGO
R1
1,8
1,9
1,1
1,1
1,2
1,2
1,1
1,2
1,2
1,3
1,1
1,2
1,6
1,9
1,2
1,1
0,8
R2
1,9
1,8
1,3
1,2
1,3
1,1
1,2
1,1
1,3
1,2
1,3
1,3
1,8
1,7
1,1
1,2
0,9
R3
1,8
1,7
1,2
1,1
1,2
1,1
1,1
1,3
1,3
1,1
1,1
1,2
1,7
1,9
1,1
1,1
0,9
R4
1,7
1,8
1,2
1,3
1,1
1,2
1,3
1,1
1,2
1,3
1,2
1,3
1,8
1,7
1,2
1,3
0,8
R5
1,9
1,6
1,1
1,2
1,2
1,3
1,2
1,3
1,1
1,3
1,3
1,1
1,7
1,6
1,1
1
1
8
9
Ti
Ym
9,1
1,82
8,8
1,76
5,9
1,18
5,9
1,18
6
1,2
5,9
1,18
5,9
1,18
6
1,2
6,1
1,22
6,2
1,24
6
1,2
6,1
1,22
8,6
1,72
8,8
1,76
5,7
1,14
5,7
1,14
4,4
0,88
111,1 1,3071
CALCULOS ESTADISTICOS
FACTOR DE
CARRECION
145,2142
ANOVA
PRUEBA DE DUNCAN
PROMEDIOS
Rangos de Duncan P<0.05
APLITUDES
ESTUDIANTIZADAS
Error estándar
Rangos de Duncan P<0.05
2
3
4
5
6
7
10
12
14
16
17
2,81
2,95
3,03
3,12
3,18
3,22
3,26
3,29
3,31
3,36
3,4
3,42
3,43
0,05
0,13
0,14
0,14
0,15
0,15
0,15
0,15
0,16
0,16
0,16
0,16
0,16
0,16
2,6617 2,7943 2,8701 2,9554 3,0122 3,0501 3,088 3,1164 3,1353 3,1827 3,2206 3,2395 3,249
Anexo 5. Altura de las plantas Kudzú (Pueraria phaseoloides) a los 60 días.
Esacarificante
Tiempo
5 min
T1 Ácido Sulfúrico- 2%
10 min
T2 Ácido Sulfúrico- 2%
5 min
T3 Ácido Sulfúrico- 4%
10 min
T4 Ácido Sulfúrico- 4%
5 min
T5 Ácido Láctico2%
10
min
T6 Ácido Láctico
2%
5 min
T7 Ácido Láctico
4%
10 min
T8 Ácido Láctico
4%
5 min
T9 Ácido Acético- 2%
10 min
T10 Ácido Acético- 2%
5 min
T11. Ácido Acético- 4%
10
min
T12 Ácido Acético- 4%
5 min
T13 Agua caliente - 70°C
10 min
T14 Agua caliente -70°C
5 min
T15. Agua caliente -80°C
10 min
T16 Agua caliente - 80°C
T17 TESTIGO
R1
3,8
3,7
2,7
2,6
2,7
2,8
2,6
2,8
2,7
2,8
2,6
2,8
3,7
3,8
2,7
2,8
2,1
R2
3,6
3,5
2,8
2,7
2,8
2,6
2,7
2,6
2,8
2,7
2,8
2,6
3,5
3,6
2,5
2,6
2,2
R3
3,7
3,6
2,7
2,6
2,7
2,8
2,7
2,8
2,7
2,6
2,7
2,5
3,7
3,8
2,6
2,5
1,9
R4
3,8
3,8
2,8
2,8
2,8
2,7
2,9
2,7
2,8
2,8
2,6
2,8
3,6
3,5
2,7
2,7
2
R5
3,7
3,5
2,6
2,7
2,9
2,8
2,8
2,7
2,6
2,7
2,7
2,7
3,8
3,7
2,6
2,7
2,2
Ti
Ym
18,6
3,72
18,1
3,62
13,6
2,72
13,4
2,68
13,9
2,78
13,7
2,74
13,7
2,74
13,6
2,72
13,6
2,72
13,6
2,72
13,4
2,68
13,4
2,68
18,3
3,66
18,4
3,68
13,1
2,62
13,3
2,66
10,4
2,08
246,1 2,89529
CALCULOS ESTADISTICOS
FACTOR DE
CARRECION
712,5318824
ANOVA
PRUEBA DE DUNCAN
PROMEDIOS
2
3
4
5
6
7
8
9
10
12
14
16
17
APLITUDES ESTUDIANTIZADAS
2,81
2,95
3,03
3,12
3,18
3,22
3,26
3,29
3,31
3,36
3,4
3,42
3,43
Error estándar
0,05
Rangos de Duncan P<0.05
0,15
0,16
0,16
0,16
0,17
0,17
0,17
0,17
0,17
0,18
0,18
0,18
0,18
2,97
3,118
3,202
3,297
3,361
3,403
3,445
3,477
3,498
3,551
3,593
3,614
3,625
Rangos de Duncan P<0.05
51
Anexo 6. Altura de las plantas Kudzú (Pueraria phaseoloides) a los 90 días.
Esacarificante
Tiempo
T1 Ácido Sulfúrico- 2% 5 min
T2 Ácido Sulfúrico- 2% 10 min
T3 Ácido Sulfúrico- 4% 5 min
T4 Ácido Sulfúrico- 4% 10 min
T5 Ácido Láctico- 2% 5 min
T6 Ácido Láctico
2% 10 min
T7 Ácido Láctico
4% 5 min
T8 Ácido Láctico
4% 10 min
5 min
T9 Ácido Acético- 2%
T10 Ácido Acético- 2% 10 min
5 min
T11. Ácido Acético- 4%
T12 Ácido Acético- 4% 10 min
5 min
T13 Agua caliente - 70°C
T14 Agua caliente -70°C 10 min
5 min
T15. Agua caliente -80°C
T16 Agua caliente - 80°C 10 min
T17 TESTIGO
R1
5,8
5,7
4,6
4,6
3,9
4,1
3,8
4,1
3,8
3,6
3,7
3,8
5,6
5,9
4,5
4,4
3,6
R2
5,5
5,5
4,5
4,4
4,1
3,9
4
3,9
4
3,9
3,9
3,7
5,8
5,5
4,5
4,3
3,5
R3
5,7
5,8
4,4
4,5
4
3,8
4,1
3,9
3,9
3,6
3,7
4
5,9
6
4,4
4,5
3,6
R4
5,5
5,6
4,5
4,6
3,9
4
4
3,8
3,8
3,8
4
3,9
5,5
5,7
4,3
4,3
3,5
R5
5,8
5,5
4,4
4,5
4,1
3,9
3,9
4
4
3,7
3,8
3,8
5,8
5,8
4,4
4,2
3,7
Ti
28,3
28,1
22,4
22,6
20
19,7
19,8
19,7
19,5
18,6
19,1
19,2
28,6
28,9
22,1
21,7
17,9
376,2
Ym
5,66
5,62
4,48
4,52
4
3,94
3,96
3,94
3,9
3,72
3,82
3,84
5,72
5,78
4,42
4,34
3,58
4,4258
CALCULOS ESTADISTICOS
FACTOR DE
CARRECION
1665,01
ANOVA
PRUEBA DE DUNCAN
PROMEDIOS
Rangos de Duncan P<0.05
APLITUDES ESTUDIANTIZADAS
Error estándar
Rangos de Duncan P<0.05
2
3
4
5
6
7
8
9
10
12
14
16
17
2,81 2,95 3,03 3,12 3,18 3,22 3,26 3,29 3,31 3,36 3,4 3,42 3,43
0,06
0,18 0,19 0,19 0,20 0,20 0,20 0,20 0,21 0,21 0,21 0,21 0,21 0,22
3,526 3,702 3,803 3,915 3,991 4,041 4,091 4,129 4,154 4,217 4,267 4,292 4,304
Foto 7. Reactivos que se utilizaron en la investigación.
Foto 8. Proceso escarificación de semillas kudzú.
Foto 9. Semillas escarificadas con los reactivos.
53
Foto 10. Toma de datos de las semillas en laboratorio.
Foto 11. Tratamiento con ácido láctico 2% cinco minutos.
Foto 12. Tratamiento con ácido láctico 2% diez minutos.
Foto 13. Tratamiento con ácido láctico 4% cinco minutos.
Foto 14. Tratamiento con ácido láctico 4% diez minutos.
Foto 15. Tratamiento con ácido acético 2% cinco minutos.
55
Foto 16. Tratamiento con ácido acético 2% diez minutos.
Foto 17. Tratamiento con ácido acético 4% cinco minutos.
Foto 18. Tratamiento con ácido acético 4% diez minutos.
Foto 19. Sin escarificación (Testigo)
Foto 20. Planta kudzú en su máximo desarrollo.
57