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17) LA ESCARIFICACIÓN EN LA LATENCIA DE SEMILLAS DE COLORÍN
La latencia es una característica adaptativa que optimiza la distribución de la germinación en el
tiempo en una población de semillas, es así que la función de una semilla es establecer una nueva
planta, y podría parecer extraño que la latencia exista como un bloqueo intrínseco para el inicio de
la germinación sobre todo cuando ello sucede sin restricciones bajo condiciones favorables.
Existen dos tipos de latencia, en la primera las semillas de algunas especies no germinan debido la
restricción que imponen al embrión (no latente) las estructuras que lo rodean. En el segundo tipo
de latencia lo presentan otro tipo de especies en las cuales los embriones mismos son los que
presentan latencia (latencia debida al embrión).
Algunas semillas latentes son metabólicamente muy activas en estado de hidratación y al recibir
una señal externa como por ejemplo: luz, frío, temperatura alternante y/o tratamiento químico y
hormonal pueden estimular su germinación. Los eventos primarios en la liberación de la latencia
incluyen la recepción del estímulo por el embrión, lo cual promueve cambios metabólicos y
hormonales dando como resultado final el eje embriogénico de la semilla emerge y se obtiene la
germinación.
Cada semilla posee una cubierta alrededor de la parte viviente interna, que en algunas semillas son
más duras que otras por lo cual se da un proceso de escarificación de manera natural donde se
ablanda la cubierta o testa de las semillas y permite que el agua alcance la parte interior de la
semilla.
Sin embargo en la actualidad la escarificación de las semillas de manera química, física y térmica
tiene por finalidad abrir o debilitar la estructura externa de las semillas y pueda entrar el agua y
los factores necesarios para que el proceso de germinación comience adecuadamente.
Erythrina coralloides recibe el nombre de colorín o zompantle, debido al color de sus semillas;
estos árboles fueron introducidos desde la época prehispánica en las zonas urbanas de todo el país.
Este árbol ha sido utilizado para formar cercas de casas, sombra por ejemplo: para el cultivo de
café. Las flores se cocinan y consumen como verdura y las semillas se utilizan para formar
collares; en algunas regiones del país se les ha atribuido propiedades medicinales debido a su
contenido de alcaloides complejos.
Del total de especies, aproximadamente 70% son nativas y el 30% restante introducidas, dentro de
esta amplia diversidad, se encuentran cinco especies muy abundantes: Fraxinus udhei, Ligustrum
lucidum, Erythrina coralloides, Salix bomplandiana y Cupressus lindleyi. Según Reyes (1996)
debido a que el colorín es muy susceptible al ataque de fitopatogenos no se recomienda utilizarlo
con fines de reforestación urbana.
El arbolado urbano, a pesar de no tener ningún valor comercial, cumple numerosas funciones:
contribuye a modificar el clima urbano al amortiguar el grado o impacto de la radiación solar al
interceptar la luz y evitando que aumente la temperatura; influye sobre el movimiento del aire,
sirviendo como barrera a los vientos rápidos; también modifica la humedad y precipitación
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pluvial; puede interactuar con algunos contaminantes del aire, como el óxido de nitrógeno,
monóxido de carbono y partículas suspendidas, produciendo una reducción de compuestos
contaminantes; además proporciona un hábitat para gran cantidad de organismos.
OBJETIVO
Determinar el efecto de tres diferentes técnicas de escarificación en semillas de Erythrina
coralloides con la finalidad de romper su latencia.
Material y métodos:
40 semillas de colorín, 8 cajas de petri, ácido sulfúrico, espátula o pinzas, 2 vasos de precipitado
de 100 mL. y uno de 500 mL., parrilla, termómetro, agitador de vidrio, cúter o navaja, papel
servitoalla, papel aluminio, plumón indeleble, masking-tape, pizeta con agua destilada.
Procedimiento:
1. Tratamiento testigo, colocar 10 semillas de colorín en una caja de Petri (con una servitoalla en
la base + 5 ml de agua destilada). Coloque un círculo de papel servitoalla sobre las semillas
humedeciéndolo con regularidad dependiendo sus condiciones de hidratación.
2. Tratamiento mecánico, a 10 semillas se les realízara un pequeño corte (uno o dos es suficiente)
con el fin de eliminar pequeñas partes de la testa (cubierta roja); el objetivo es que se observe la
parte interna de la semilla (cotiledones de color blanco o amarillo) cuidando de no quitar mucho
material de tejido nutritivo. Es necesario realizar los cortes con mucho cuidado y paciencia, con el
fin de evitar accidentes porque la superficie de la semilla es muy lisa y al querer realizar el corte se
resbala la semilla o la navaja. Coloque las semillas escarificadas por este procedimiento a
germinar en una caja de Petri en las mismas condiciones del punto uno, 5 semillas por caja.
3. Tratamiento de ácido sulfúrico, las semillas de colorín se colocan en un vaso de precipitado de
100 mL con 15-20 mL de H2SO4, durante el tratamiento de las semillas con el ácido sulfúrico se
debe agitar eventualmente con un agitador de vidrio las semillas dentro del acido para favorecer
un tratamiento uniforme. Al término de uno hora con cuarenta minutos se retiran las semillas del
tratamiento con ácido. Esto se puede realizar con las pinzas, espátula o varilla de vidrio secas o
decantando en el otro vaso de precipitado y ayudándose con las pinzas o la varilla de vidrio. Una
vez retiradas las semillas del ácido se enjuagaran dos veces con agua destilada a fin de retirar
todos los restos del ácido y no afectar la germinación. Por último se colocan las semillas a
germinar en las mismas condiciones que el punto dos.
Entregue el residuo de ácido al profesor responsable o encargado del laboratorio a efecto de
disponer de él de forma segura.
4. Tratamiento con agua caliente, en el vaso de precipitado de 500 mL vierta aproximadamente 300
mL de agua y se calienta en la parrilla. Al alcanzar el agua la temperatura de 85 oC (medida con el
termómetro) se introducen las semillas de colorín en el agua caliente. Al término del tiempo de
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exposición retire las semillas y deposítelas en un frasco de Gerber con agua a temperatura
ambiente para interrumpir el tratamiento. Al final las semillas se colocan en las cajas de Petri para
germinar con las mismas condiciones que en el punto dos.
5. Incubar las cajas de petri con las semillas en oscuridad envueltas con papel aluminio y a
temperatura ambiente. Se revisaran las cajas cada dos días, en algunos tratamientos, el inicio de la
germinación se puede observar después de dos días y transcurrida una semana se vuelve más
evidente. Es necesario cambiar el agua y papel servitoalla al menos una vez por semana para
evitar la contaminación de las semillas. Si las semillas al presionarlas ligeramente están flácidas
elimínelas.
RESULTADOS
Al final de la práctica obtendrá el porcentaje de semillas germinadas y no germinadas para cada
tratamiento. Realice la transformación de estos datos con la técnica del arco seno (ver apéndice) y
posteriormente haga un análisis de varianza y obtenga sus conclusiones. La unidad experimental
de cada equipo son las diez semillas y sus repeticiones los resultados de los demás equipos.
Tratamiento
% Germinación
% Semillas no
germinadas
Transformación de
porcentaje
Testigo
Mecánico
H2SO4
Agua caliente
CUESTIONARIO
1. ¿En qué consiste el proceso de escarificación de las semillas?
2. Mencione como se lleva a cabo la escarificación química, la escarificación mecánica y la
escarificación térmica en las semillas.
3. Describa la importancia de que las semillas de los diferentes tipos de plantas se encuentren
en latencia en el suelo por periodos largos
4. Explique si la escarificación puede impedir totalmente la latencia en las semillas.
REFERENCIAS
Asco-Bieto, J. y Talón, M. 2000. Fundamentos de Fisiología Vegetal. Mc Graw Hill.
Interamericana. Barcelona.
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Camacho, M. F. 1999. Dormición de las semillas, causas y tratamientos. Trillas. 128p.
Derek, B. J. 1997. Seed germination and dormancy. The Plant Cell. 9: 1055-1066.
Kigel, J. 1995. Seed germination in arid and semiarid regions, In Kigel, J. & G. Galili (eds.). Seed
Development and Germination. Marcel Dekker. Nueva York. 645-699 pp.
Reyes, L.R.A. 1996. Contribución al conocimiento bioecológico de la escama Ytoumeyella sp en el
arbolado de colorín (Erythrina coralloides D.C.), una nueva plaga en el D.F. (Homoptera:
Coccidae). UNAM Campus Izatacala. Tesis. 1-29 y 73-74 pp.
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