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Caracterización de actinomicetos desde suelos eriazos
de la región Lambayeque, productores de compuestos
bioactivos, contra fitopatógenos de quinua.
Dra. Heidi Horna Inga
Lima, 15 de agosto de 2013

Valor
proteico
elevado,
aminoácidos esenciales.
formado
por

Presenta grasas mono y poliinsaturadas y
ácidos grasos omega beneficiosos para el
organismo.

Rico en fibra y libre de gluten.

Contiene minerales en un nivel superior a los
cereales, como fósforo, calcio, hierro, potasio,
magnesio, manganeso, zinc, litio y cobre.

Posee un alto contenido de vitaminas del
complejo B, C y E.

Útil en las etapas de desarrollo y crecimiento
del organismo.

Fácil de digerir, no contiene colesterol y se
presta para la preparación de dietas completas
y equilibradas.
PLAGAS DE LA QUINUA
Insectos
 Cortadores de plantas tiernas (Copitarsia incommoda)
 Insectos de follaje y granos (Eurysacca melanocampta)
 Masticadores de follaje (Epicauta latitarsis)
 Minadores de hojas (Lyriomiza braziliensis)
Nemátodes
Aves
ENFERMEDADES DE LA QUINUA
 Mildiu (Perenospora farinosa)
 Podredumbre marrón del tallo (Phoma exigua var. foveata)
 Podredumbre radicular: Rhizoctonia solani
Fusarium sp

Clase
Esporas
Rhizoctonia
Hyphomycetes
Basidiosporas (sexuales)
Conidias
No
Hifas
Marrón Oscuro, anastomáticas,
multinucleadas
Esclerocios
si
Enfermedad
Costra negra, cancro del tallo
zonas de ataque
Raíz y Tallo
Síntomas
causa : ahogamiento de las
plántulas y la pudrición de la raíz,
así como la pudrición y la
cancrosis del tallo de las plantas
adultas y en proceso de
crecimiento, así como tizones o
manchas en el follaje cuando éste
se encuentra cerca del suelo
Fusarium
Soradariomycetes
Clamidosporas (asexuales)
Microconidios, Macroconidias
fusiformes, Conidióforos
algodonoso con tonalidades
de blanco rosado, púrpura o
amarillo
no
Chupadera fungosa “damping
off”
Raíz y Tallo
causa: amarillamientos,
clorosis, marchitez, retardo en
el crecimiento y decoloración
de la corona, rizoma y raíces,
debido a un colapso y a una
completa pudrición radical
Resistencia a los antibióticos
Pérdida de campos de cultivo
Aparición de nuevos patógenos
Escasos compuestos biodegradables
Eliminación de enemigos naturales
Aparición de plagas secundarias
Poca actividad biológica
Tóxicos, inespecíficos y bioacumulable
NECESIDAD DE NUEVOS COMPUESTOS
BIOACTIVOS
76%
Actinomicetos
De los metabolitos bioactivos producidos por actinomicetos, el 74% son
producidos por el género Streptomyces.
Espora
Bacterias Gram-positivas
Herbicida
Maduración
Germinación
de la espora
Alto contenido
de G+C
Pesticida
Insecticida
Degradadores
de materia
orgánica
Antitumoral
Segmentación
Micelio sustrato
Antibacteriana
Complejo
ciclo de vida
Antifúngica
Micelio aéreo

La muestra de 100g a partir de una capa de suelo que
no excedía los 20 cm de profundidad.

Fueron extraídas de 9 tipos de suelos del Campo
Experimental de la USS (25 ha).

Ubicado en el Km3 de la carretera a Puerto Eten Chiclayo a 20m.s.n.m

Posteriormente fueron analizadas en el laboratorio de
Microbiología Molecular de la Universidad Señor de
Sipán.
Nº7
110 cepas de actinomicetos

Las muestras de suelo se dejaron secar durante
48 horas a Tº ambiente.

Se tamizó 25 g. por muestra en mallas metálicas:
de 160µm y la otra de 250 µm de diámetro.

Se pesó 10 g. de cada una y se vertió en matraces
con 90 ml de agua peptonada al 0.1% p/v,
utilizando la técnica de diluciones seriadas.

Se sembraron por triplicado en superficie, 0.1 ml
de la dilución, sobre Agar Nutritivo suplementado
con actidiona (20mg/l) y ácido nalidíxico (100
mg/l) para minimizar el crecimiento de hongos y
bacterias respectivamente.

Las placas se incubaron a 28°C durante 7 - 10
días.

Posteriormente se seleccionaron las colonias con
características morfológicas correspondientes a
los actinomicetos (textura, coloración del micelio
aéreo y de sustrato, forma y tamaño de la colonia y
la producción de pigmentos.

El efecto antagónico y la producción antibiótica
de los actinomicetos se evaluaron utilizando el
método del cultivo dual (Landa et al., 1997).

En una placa se sembró un inóculo de 1,3x107
UFC/g de cada hongo fitopatógeno en un extremo y en el otro extremo se colocó un
inóculo de 1,3x107 UFC/g de cada actinomiceto.
Se sembró al mismo tiempo una placa control sólo con los hongos fitopatógenos.
Las placas inoculadas serán incubadas durante 3, 5 y 7 días a 30º C.
Los halos de inhibición se midieron en mm. Teniendo en cuenta el radio de mayor
distancia y usando una fórmula para calcular el efecto
inhibitorio:
Actinomiceto
IR (%) = (Dc – Dt / Dc) x 100
Donde:
IR= rango de inhibición (%)
Hongo patógeno
Dc= diámetro de control negativo (mm)
Dt= diámetro de tratamiento o control positivo



Cepa control de Fusarium sp
Q002
Q033
Q019
Q026
Q043
Q027
Q067
Q030
Q074
Cepa control de
Rhizoctonia solani
Q007
Q008
Q090
Q099
Cepa control de
Fusarium sp.
Q019
Cepa control de
Rhizoctonia solani
Q026
Q043
Q033
Q067
NÚMERO DE ACTINOMICETOS ANTAGONISTAS
.vs Fusarium sp.
Cepa 19
Cepa 27
Cepa 33
3 días
59
64
67
5 días
48
56
67
7 días
55
61
55
10 días
61
72
70
5 días
45
45
52
7 días
52
55
52
10 días
53
59
63
.vs Rhizoctonia solani
Cepa 19
Cepa 27
Cepa 33
3 días
55
58
60
Se observaron las características de
crecimiento a nivel macroscópico de
las cepas cultivadas en agar nutritivo
durante 8 días.

Se tomó en cuenta la textura de la
colonia, color del anverso y producción
de pigmentos difusibles al medio.

Q045

Se sembraron en
agar
avena,
suplementado con nistatina al 0.1%.

Se introdujeron en el medio, laminillas
cubreobjetos estériles, con una inclinación
de 45° aprox.

Las placas se incubaron a 22°C durante
15 días.

Se utilizó un microscopio óptico marca
Leica ICC50HD y el software 3.0.

Se realizaron microfotografías y videos
microscópicos.
Q019
100X
100X
Q056
Q030
100X
100X

Se utilizó Citrato de Simons y los
siguientes carbohidratos: fructosa,
glucosa, arabinosa, manitol, rafinosa,
sacarosa, inositol, lactosa, sorbitol y
xilosa.

No asegura un estudio profundo del
metabolismo bacteriano.

Ayuda a dilucidar la actividad de una
vía metabólica que permitan reconocer
a microorganismos que fermente o no
algún sustrato.

No se observa uniformidad en los
resultados y por el contrario se
evidencia que los microorganismos
utilizan diversas fuentes azucaradas.
Cepa Q105

Se seleccionaron 36 actinomicetos de suelos eriazos del campo experimental de
la Universidad Señor de Sipán, con actividad antagónica de amplio y limitado
espectro contra fitopatógenos de quinua como Rhizoctonia solani y Fusarium sp.

Algunos de los actinomicetos en estudio, son capaces de utilizar a los hongos
como sustrato, sugiriendo producción de quitinasas.

Los actinomicetos en estudio presentan una variabilidad morfológica y fisiológica,
según el medio de cultivo utilizado, influenciando en el efecto antagónico,
observado y reportado.
Dr. Ángel Manteca Fernández
Dr. Carlos Sialer Guerrero
Lic. Adita Hernández Centurión
Lic. Marianella Incio Granthon

Caracterización de actinomicetos desde suelos eriazos
de la región Lambayeque, productores de compuestos
bioactivos, contra fitopatógenos de quinua.
Dra. Heidi Horna Inga
Lima, 15 de agosto de 2013

Valor
proteico
elevado,
aminoácidos esenciales.
formado
por

Presenta grasas mono y poliinsaturadas y
ácidos grasos omega beneficiosos para el
organismo.

Rico en fibra y libre de gluten.

Contiene minerales en un nivel superior a los
cereales, como fósforo, calcio, hierro, potasio,
magnesio, manganeso, zinc, litio y cobre.

Posee un alto contenido de vitaminas del
complejo B, C y E.

Útil en las etapas de desarrollo y crecimiento
del organismo.

Fácil de digerir, no contiene colesterol y se
presta para la preparación de dietas completas
y equilibradas.
PLAGAS DE LA QUINUA
Insectos
 Cortadores de plantas tiernas (Copitarsia incommoda)
 Insectos de follaje y granos (Eurysacca melanocampta)
 Masticadores de follaje (Epicauta latitarsis)
 Minadores de hojas (Lyriomiza braziliensis)
Nemátodes
Aves
ENFERMEDADES DE LA QUINUA
 Mildiu (Perenospora farinosa)
 Podredumbre marrón del tallo (Phoma exigua var. foveata)
 Podredumbre radicular: Rhizoctonia solani
Fusarium sp

Clase
Esporas
Rhizoctonia
Hyphomycetes
Basidiosporas (sexuales)
Conidias
No
Hifas
Marrón Oscuro, anastomáticas,
multinucleadas
Esclerocios
si
Enfermedad
Costra negra, cancro del tallo
zonas de ataque
Raíz y Tallo
Síntomas
causa : ahogamiento de las
plántulas y la pudrición de la raíz,
así como la pudrición y la
cancrosis del tallo de las plantas
adultas y en proceso de
crecimiento, así como tizones o
manchas en el follaje cuando éste
se encuentra cerca del suelo
Fusarium
Soradariomycetes
Clamidosporas (asexuales)
Microconidios, Macroconidias
fusiformes, Conidióforos
algodonoso con tonalidades
de blanco rosado, púrpura o
amarillo
no
Chupadera fungosa “damping
off”
Raíz y Tallo
causa: amarillamientos,
clorosis, marchitez, retardo en
el crecimiento y decoloración
de la corona, rizoma y raíces,
debido a un colapso y a una
completa pudrición radical
Resistencia a los antibióticos
Pérdida de campos de cultivo
Aparición de nuevos patógenos
Escasos compuestos biodegradables
Eliminación de enemigos naturales
Aparición de plagas secundarias
Poca actividad biológica
Tóxicos, inespecíficos y bioacumulable
NECESIDAD DE NUEVOS COMPUESTOS
BIOACTIVOS
76%
Actinomicetos
De los metabolitos bioactivos producidos por actinomicetos, el 74% son
producidos por el género Streptomyces.
Espora
Bacterias Gram-positivas
Herbicida
Maduración
Germinación
de la espora
Alto contenido
de G+C
Pesticida
Insecticida
Degradadores
de materia
orgánica
Antitumoral
Segmentación
Micelio sustrato
Antibacteriana
Complejo
ciclo de vida
Antifúngica
Micelio aéreo

La muestra de 100g a partir de una capa de suelo que
no excedía los 20 cm de profundidad.

Fueron extraídas de 9 tipos de suelos del Campo
Experimental de la USS (25 ha).

Ubicado en el Km3 de la carretera a Puerto Eten Chiclayo a 20m.s.n.m

Posteriormente fueron analizadas en el laboratorio de
Microbiología Molecular de la Universidad Señor de
Sipán.
Nº7
110 cepas de actinomicetos

Las muestras de suelo se dejaron secar durante
48 horas a Tº ambiente.

Se tamizó 25 g. por muestra en mallas metálicas:
de 160µm y la otra de 250 µm de diámetro.

Se pesó 10 g. de cada una y se vertió en matraces
con 90 ml de agua peptonada al 0.1% p/v,
utilizando la técnica de diluciones seriadas.

Se sembraron por triplicado en superficie, 0.1 ml
de la dilución, sobre Agar Nutritivo suplementado
con actidiona (20mg/l) y ácido nalidíxico (100
mg/l) para minimizar el crecimiento de hongos y
bacterias respectivamente.

Las placas se incubaron a 28°C durante 7 - 10
días.

Posteriormente se seleccionaron las colonias con
características morfológicas correspondientes a
los actinomicetos (textura, coloración del micelio
aéreo y de sustrato, forma y tamaño de la colonia y
la producción de pigmentos.

El efecto antagónico y la producción antibiótica
de los actinomicetos se evaluaron utilizando el
método del cultivo dual (Landa et al., 1997).

En una placa se sembró un inóculo de 1,3x107
UFC/g de cada hongo fitopatógeno en un extremo y en el otro extremo se colocó un
inóculo de 1,3x107 UFC/g de cada actinomiceto.
Se sembró al mismo tiempo una placa control sólo con los hongos fitopatógenos.
Las placas inoculadas serán incubadas durante 3, 5 y 7 días a 30º C.
Los halos de inhibición se midieron en mm. Teniendo en cuenta el radio de mayor
distancia y usando una fórmula para calcular el efecto
inhibitorio:
Actinomiceto
IR (%) = (Dc – Dt / Dc) x 100
Donde:
IR= rango de inhibición (%)
Hongo patógeno
Dc= diámetro de control negativo (mm)
Dt= diámetro de tratamiento o control positivo



Cepa control de Fusarium sp
Q002
Q033
Q019
Q026
Q043
Q027
Q067
Q030
Q074
Cepa control de
Rhizoctonia solani
Q007
Q008
Q090
Q099
Cepa control de
Fusarium sp.
Q019
Cepa control de
Rhizoctonia solani
Q026
Q043
Q033
Q067
NÚMERO DE ACTINOMICETOS ANTAGONISTAS
.vs Fusarium sp.
Cepa 19
Cepa 27
Cepa 33
3 días
59
64
67
5 días
48
56
67
7 días
55
61
55
10 días
61
72
70
5 días
45
45
52
7 días
52
55
52
10 días
53
59
63
.vs Rhizoctonia solani
Cepa 19
Cepa 27
Cepa 33
3 días
55
58
60
Se observaron las características de
crecimiento a nivel macroscópico de
las cepas cultivadas en agar nutritivo
durante 8 días.

Se tomó en cuenta la textura de la
colonia, color del anverso y producción
de pigmentos difusibles al medio.

Q045

Se sembraron en
agar
avena,
suplementado con nistatina al 0.1%.

Se introdujeron en el medio, laminillas
cubreobjetos estériles, con una inclinación
de 45° aprox.

Las placas se incubaron a 22°C durante
15 días.

Se utilizó un microscopio óptico marca
Leica ICC50HD y el software 3.0.

Se realizaron microfotografías y videos
microscópicos.
Q019
100X
100X
Q056
Q030
100X
100X

Se utilizó Citrato de Simons y los
siguientes carbohidratos: fructosa,
glucosa, arabinosa, manitol, rafinosa,
sacarosa, inositol, lactosa, sorbitol y
xilosa.

No asegura un estudio profundo del
metabolismo bacteriano.

Ayuda a dilucidar la actividad de una
vía metabólica que permitan reconocer
a microorganismos que fermente o no
algún sustrato.

No se observa uniformidad en los
resultados y por el contrario se
evidencia que los microorganismos
utilizan diversas fuentes azucaradas.
Cepa Q105

Se seleccionaron 36 actinomicetos de suelos eriazos del campo experimental de
la Universidad Señor de Sipán, con actividad antagónica de amplio y limitado
espectro contra fitopatógenos de quinua como Rhizoctonia solani y Fusarium sp.

Algunos de los actinomicetos en estudio, son capaces de utilizar a los hongos
como sustrato, sugiriendo producción de quitinasas.

Los actinomicetos en estudio presentan una variabilidad morfológica y fisiológica,
según el medio de cultivo utilizado, influenciando en el efecto antagónico,
observado y reportado.
Dr. Ángel Manteca Fernández
Dr. Carlos Sialer Guerrero
Lic. Adita Hernández Centurión
Lic. Marianella Incio Granthon

Quinua: alimento altamente nutritivo
 Valor proteico elevado, formado por aminoácidos
esenciales.
 Presenta grasas mono y poliinsaturadas y ácidos
grasos omega beneficiosos para el organismo.
 Rico en fibra y libre de gluten.
 Contiene minerales en un nivel superior a los
cereales, como fósforo, calcio, hierro, potasio,
magnesio, manganeso, zinc, litio y cobre.
 Posee un alto contenido de vitaminas del complejo B,
C y E.
 Útil en las etapas de desarrollo y crecimiento del
organismo.
 Fácil de digerir, no contiene colesterol y se presta para
la preparación de dietas completas y equilibradas.
Quinua: atacada por plagas y enfermedades
PLAGAS DE LA QUINUA
Insectos
 Cortadores de plantas tiernas (Copitarsia incommoda)
 Insectos de follaje y granos (Eurysacca melanocampta)
 Masticadores de follaje (Epicauta latitarsis)
 Minadores de hojas (Lyriomiza braziliensis)
Nemátodes
Aves
ENFERMEDADES DE LA QUINUA
 Mildiu (Perenospora farinosa)
 Podredumbre marrón del tallo (Phoma exigua var. foveata)
 Podredumbre radicular: Rhizoctonia solani
Fusarium sp

Hongos fitopatógenos:
rhizoctoniaFusarium
y fusarium
Rhizoctonia
Clase
Esporas
Hyphomycetes
Basidiosporas (sexuales)
Conidias
No
Hifas
Marrón Oscuro, anastomáticas,
multinucleadas
Esclerocios
si
Enfermedad
Costra negra, cancro del tallo
zonas de ataque
Raíz y Tallo
Síntomas
causa : ahogamiento de las
plántulas y la pudrición de la raíz,
así como la pudrición y la
cancrosis del tallo de las plantas
adultas y en proceso de
crecimiento, así como tizones o
manchas en el follaje cuando éste
se encuentra cerca del suelo
Soradariomycetes
Clamidosporas (asexuales)
Microconidios, Macroconidias
fusiformes, Conidióforos
algodonoso con tonalidades
de blanco rosado, púrpura o
amarillo
no
Chupadera fungosa “damping
off”
Raíz y Tallo
causa: amarillamientos,
clorosis, marchitez, retardo en
el crecimiento y decoloración
de la corona, rizoma y raíces,
debido a un colapso y a una
completa pudrición radical
Resistencia a los antibióticos
Pérdida de campos de cultivo
Aparición de nuevos patógenos
Escasos compuestos biodegradables
Eliminación de enemigos naturales
Aparición de plagas secundarias
Poca actividad biológica
Tóxicos, inespecíficos y bioacumulable
NECESIDAD DE NUEVOS COMPUESTOS
BIOACTIVOS
Compuestos bioactivos de origen natural
Microorganismos productores de compuestos bioactivos
76%
Actinomicetos
Actinomicetos
Actinomicetos
De los metabolitos bioactivos producidos por actinomicetos, el 74% son
producidos por el género Streptomyces.
Espora
Bacterias Gram-positivas
Herbicida
Maduración
Germinación
de la espora
Alto contenido
de G+C
Pesticida
Insecticida
Degradadores
de materia
orgánica
Antitumoral
Segmentación
Micelio sustrato
Antibacteriana
Complejo
ciclo de vida
Antifúngica
Micelio aéreo
Recolección de las muestras de suelos
 La muestra de 100g a partir de una capa de suelo
que no excedía los 20 cm de profundidad.
Nº7
 Fueron extraídas de 9 tipos de suelos del Campo
Experimental de la USS (25 ha).
 Ubicado en el Km3 de la carretera a Puerto Eten Chiclayo a 20m.s.n.m
 Posteriormente fueron analizadas en el laboratorio
de Microbiología Molecular de la Universidad
Señor de Sipán.
AISLAMIENTO DE ACTINOMICETOS
 Las muestras de suelo se dejaron secar durante 48
horas a Tº ambiente.
 Se tamizó 25 g. por muestra en mallas metálicas: de
160µm y la otra de 250 µm de diámetro.
 Se pesó 10 g. de cada una y se vertió en matraces con
90 ml de agua peptonada al 0.1% p/v, utilizando la
técnica de diluciones seriadas.
110 cepas de actinomicetos
 Se sembraron por triplicado en superficie, 0.1 ml de
la dilución, sobre Agar Nutritivo suplementado con
actidiona (20mg/l) y ácido nalidíxico (100 mg/l) para
minimizar el crecimiento de hongos y bacterias
respectivamente.
 Las placas se incubaron a 28°C durante 7 - 10 días.
 Posteriormente se seleccionaron las colonias con
características morfológicas correspondientes a los
actinomicetos (textura, coloración del micelio aéreo y
de sustrato, forma y tamaño de la colonia y la
producción de pigmentos.
Selección de actinomicetos productores de compuestos antifúngicos contra hongos
fitopatógenos.
 El efecto antagónico y la producción antibiótica
de los actinomicetos se evaluaron utilizando el
método del cultivo dual (Landa et al., 1997).
 En una placa se sembró un inóculo de 1,3x107
UFC/g de cada hongo fitopatógeno en un extremo y en el otro extremo se colocó un inóculo
de 1,3x107 UFC/g de cada actinomiceto.
 Se sembró al mismo tiempo una placa control sólo con los hongos fitopatógenos.
 Las placas inoculadas serán incubadas durante 3, 5 y 7 días a 30º C.
 Los halos de inhibición se midieron en mm. Teniendo en cuenta el radio de mayor distancia y
usando una fórmula para calcular el efecto inhibitorio:
IR (%) = (Dc – Dt / Dc) x 100
Donde:
Actinomiceto
IR= rango de inhibición (%)
Dc= diámetro de control negativo (mm)
Dt= diámetro de tratamiento o control positivo
Hongo patógeno
Técnica de enfrentamiento dual frente a Fusarium sp
Cepa control de Fusarium sp
Q002
Q033
Q019
Q026
Q043
Q027
Q067
Q030
Q074
Técnica de enfrentamiento dual frente a
Rhizoctonia solani
Cepa control de
Rhizoctonia solani
Q007
Q008
Q090
Q099
Cepas de actinomicetos AntagónicOs frente a
rhizoctonia solani y fusarium sp.
Cepa control de
Fusarium sp.
Q019
Cepa control de
Rhizoctonia solani
Q026
Q043
Q033
Q067
NÚMERO DE ACTINOMICETOS ANTAGONISTAS
Evaluación de la actividad antagónica según el tiempo de
producción de los compuestos bioactivos
.vs Fusarium sp.
Cepa 19
Cepa 27
Cepa 33
3 días
59
64
67
5 días
48
56
67
7 días
55
61
55
10 días
61
72
70
5 días
45
45
52
7 días
52
55
52
10 días
53
59
63
.vs Rhizoctonia solani
Cepa 19
Cepa 27
Cepa 33
3 días
55
58
60
Caracterización macroscópica de los actinomicetos
seleccionados
 Se observaron las características de
crecimiento a nivel macroscópico de
las cepas cultivadas en agar nutritivo
durante 8 días.
 Se tomó en cuenta la textura de la
colonia, color del anverso y producción
de pigmentos difusibles al medio.
Caracterización microscópica de los actinomicetos
seleccionados
 Se sembraron en
agar
suplementado con nistatina al 0.1%.
Q045
avena,
 Se introdujeron en el medio, laminillas
cubreobjetos estériles, con una inclinación
de 45° aprox.
Q019
 Las placas se incubaron a 22°C durante 15
días.
100X
100X
 Se utilizó un microscopio óptico marca Leica
ICC50HD y el software 3.0.
Q056
Q030
 Se realizaron microfotografías y videos
microscópicos.
100X
100X
Caracterización bioquímica de los actinomicetos
seleccionados
 Se utilizó Citrato de Simons y los
siguientes
carbohidratos:
fructosa,
glucosa, arabinosa, manitol, rafinosa,
sacarosa, inositol, lactosa, sorbitol y
xilosa.
 No asegura un estudio profundo del
metabolismo bacteriano.
 Ayuda a dilucidar la actividad de una vía
metabólica que permitan reconocer a
microorganismos que fermente o no
algún sustrato.
 No se observa uniformidad en los
resultados y por el contrario se evidencia
que los microorganismos utilizan diversas
fuentes azucaradas.
Utilización de fuentes de carbono
Acción de los actinomicetos sobre el
sustrato
Cepa Q105
conclusiones
 Se seleccionaron 36 actinomicetos de suelos eriazos del campo experimental de la
Universidad Señor de Sipán, con actividad antagónica de amplio y limitado espectro
contra fitopatógenos de quinua como Rhizoctonia solani y Fusarium sp.
 Algunos de los actinomicetos en estudio, son capaces de utilizar a los hongos como
sustrato, sugiriendo producción de quitinasas.
 Los actinomicetos en estudio presentan una variabilidad morfológica y fisiológica,
según el medio de cultivo utilizado, influenciando en el efecto antagónico, observado
y reportado.
agradecimiento
Dr. Ángel Manteca Fernández
 Dr. Carlos Sialer Guerrero
Lic. Adita Hernández Centurión
Lic. Marianella Incio Granthon