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RESUMEN “Producción de pollitos criollos BB con dos tipos de huevos (verde-azulados y café claro) mediante el empleo de incubadora artesanal”. El presente trabajo fue elaborado por el Sr. Diego Antonio Valdez Jojoa, desde el 17 de octubre del año 2006 y finalizo el 17 de mayo del año 2007 en el sector Naste, parroquia Tomebamba, cantón Paute, provincia del Azuay, Republica del Ecuador. La investigación tuvo como propósito generar una alternativa tecnológica que permita aumentar los ingresos económicos en los hogares del sector rural, mediante la incubación artificial de huevos criollos empleando incubadora artesanal. El trabajo comprende 2 tratamientos y dos testigos con 4 repeticiones cada uno y 100 huevos incubados por repetición. Realizado el Análisis de Varianza de los resultados, se obtuvieron diferencias no significativas entre los Tratamientos (A y B) y sus testigos en la cantidad de huevos embrionados y pollitos nacidos. Se encontró diferencias altamente significativas en la mortalidad de la primera, segunda y tercera semana de incubación entre los tratamientos y testigos. Entre tratamientos A y B se encontró diferencias significativas en la mortalidad en la tercera semana de incubación. Se concluye que la generación de una alternativa tecnología requiere tiempo y dedicación para obtener un 1 Diego Antonio Valdez Jojoa producto que funcione adecuadamente. El costo de producción de cada pollito BB obtenido en el experimento es superior al del obtenido industrialmente por lo que se rechaza la Hipótesis planteada recomendando que se mejore los diferentes sistemas que permitan mantener los factores físicos de la incubación, la selección de los huevos a incubar sea minuciosa para así asegurar el nacimiento de una mayor cantidad de pollitos fuertes y sanos. Palabras claves: INCUBACIÓN, INCUBADORA ARTESANAL, HUEVO INCUBABLE. ÍNDICE Contenido. Pag. Agradecimiento....................................................... 7 Dedicatoria……………………………………………. 8 CAPÍTULO I. 1.1. Introducción. …………………………….. 9 1.2. Objetivos e hipótesis……………………. 10 CAPITULO II. 2. REVISIÓN DE LITERATURA………………… 12 2.1. El huevo. ………………………………….. 12 2 Diego Antonio Valdez Jojoa 2.2. Formación del huevo……………………….. 19 2.3. Fecundacion del huevo…………………….. 20 2.4. Desarrollo embrionario............................... 22 2.5. Nacimiento…………………………………… 30 2.6. Momentos críticos....................................... 31 2.7. Posiciones incorrectas ……………………... 35 2.8. Factores influyentes en la apertura del cascarón 37 2.9. La incubación………………………………… 44 2.10. Higiene de la incubación……………… 58 2.11. Control de vida de los embriones…… 62 2.12. Control del regimen de incubación….. 70 2.13. Síndromes que aparecen en la incubación 84 CAPÍTULO III 3. MATERIALES Y MÉTODOS ……………………… 89 3.1. Materiales……………………………………... 89 3.2. Métodos ………………………………………. 91 3.3. Factores de estudio…………………………… 98 3.4. Datos a tomarse…………………................... 98 3.5. Diseño experimental………………………….. 99 3.6. Diseño estadístico…………………………….. 101 3.7. Esquema del ADEVA…………………………. 101 3.8. Análisis de costos…………………….............. 103 3 Diego Antonio Valdez Jojoa CAPÍTULO IV 4. RESULTADOS………………………………………. 107 4.1. Huevos embrionados………………………… 107 4.2. Huevos eclosionados………………………… 111 4.3. Embriones muertos…………………………… 119 4.4. Análisis de variancia (ADEVA)………………. 127 4.5. Análisis de costos……………………………... 161 CAPÍTULO V 5. CONCLUSIONES…………………………………… 170 CAPÍTULO VI 6. RECOMENDACIONES……………………………… 172 CAPÍTULO VII 7. RESUMEN…………………………………………… 175 CAPÍTULO VIII 4 Diego Antonio Valdez Jojoa 8. SUMARY……………………………………………… 178 CAPITULO IX 9. BIBLIOGRAFIA……………………………………… 181 CAPITULO X ANEXOS………………………………………………. 5 186 Diego Antonio Valdez Jojoa UNIVERSIDAD DE CUENCA FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS ESCUELA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA “Producción de pollitos criollos BB con dos tipos de huevos (verde-azulados y café claro) mediante el empleo de incubadora artesanal”. Tesis previa a la obtención del título de Médico Veterinario Zootecnista. AUTOR: Diego A. Valdez J. DIRECTOR: Dr. Hugo Rosales S. Cuenca- Ecuador 2008 6 Diego Antonio Valdez Jojoa AGRADECIMIENTO De la manera más formal agradezco a todo el personal docente y administrativo que conforman la Agropecuarias, Facultad Escuela de Ciencias de Medicina más sinceros Veterinaria y Zootecnia. Así mismo mis agradecimientos a todas las personas que colaboraron para el desarrollo de este trabajo de investigación. 7 Diego Antonio Valdez Jojoa DEDICATORIA Este trabajo lo dedico a todos mis seres queridos especialmente a mi madre, mi esposa y mi hija. Diego Antonio 8 Diego Antonio Valdez Jojoa CAPÍTULO I. 1.1. INTRODUCCIÓN. En nuestro país el sector agropecuario es el menos atendido por parte del Gobierno Nacional por lo que es de vital importancia aumentar los ingresos económicos en los hogares del sector rural, si se aprovecharan correctamente los recursos de los que dispone el campesino, el incremento de la producción de aves criollas sería una gran alternativa para mejorar su calidad de vida. Considerando que el campesino deja que sus gallinas sean las que incuben los huevos que estas producen, en la mayoría de los casos son devorados por animales como perros, ratas y otros, incluso hasta por las mismas aves, por tal razón pocos eclosionan limitándose de esta manera la producción destinada a la alimentación humana. Los bajos recursos económicos al igual que la falta de conocimientos sobre incubación artificial, hacen que los campesinos no se interesen en la adquisición de incubadoras industriales las mismas que les ayudarían mucho para obtener 9 Diego Antonio Valdez Jojoa una gran cantidad de pollitos criollos y que su cría y comercialización aumentará sus ingresos. Con este trabajo investigativo se pretendió obtener pollitos criollos de un día de edad mediante el empleo de una incubadora artesanal desarrollada por el autor y que de acuerdo a los resultados sea aplicada como una alternativa tecnológica para el sector rural. 1.2. OBJETIVOS E HIPÓTESIS. Para la presente investigación se planteó los siguientes objetivos: 1. Generar una alternativa tecnológica para la producción de pollitos criollos BB. 2. Comparar tasas de fertilidad, mortalidad embrionaria y eclosión de los huevos: café claro y verde-azulado. 3. Determinar la eficiencia del funcionamiento de la incubadora artesanal empleada. 4. Establecer costos de producción del pollo criollo BB vs. el costo del pollo de planta incubadora comercial. 10 Diego Antonio Valdez Jojoa Hipótesis: 1. Ha: El costo de producción de pollitos criollos BB es bajo en relación al costo de producción de pollo de planta incubadora comercial. 11 Diego Antonio Valdez Jojoa CAPITULO II. 2. REVISIÓN DE LITERATURA. EL HUEVO. Es la célula germinativa (óvulo) de la gallina que al ser fecundada por el espermatozoide del gallo da origen a un pollito si el huevo es incubado y está en condiciones de continuar el desarrollo embrionario. Del mismo modo, es uno de los alimentos más completos que existen, como lo prueba su contenido equilibrado de proteínas, grasas, hidratos de carbono, minerales y vitaminas, del cual depende exclusivamente la existencia del pollito en desarrollo durante los 21 días que permanece dentro del cascarón. La forma del huevo es ovoide irregular, en el que un extremo es más ancho y grueso que el otro. (3). 2.1.1. Constitución del huevo. Se encuentran en el huevo cinco partes principales: 12 Diego Antonio Valdez Jojoa a. La cáscara.- formada por un 92 a 97% de carbonato de calcio, segregado por las glándulas del oviducto inferior, con un pequeño porcentaje de fósforo, de calcio y de magnesio. La cáscara está perforada por infinidad de canalículos o poros, que desembocan a la superficie, y que como orificios de ventilación realizan el cambio de gases. Por ellos penetran durante la incubación el oxígeno y se desprende al exterior el anhidrido carbónico formado durante el desarrollo del embrión (2). En el polo más ancho hay muchos más poros por centímetro cuadrado que en cualquier otra zona de la superficie del huevo (1). La cáscara es la primera barrera de defensa que posee el huevo. Está revestida con una película protectora natural que impide que los microorganismos penetren. La cáscara es porosa, no es impermeable y por lo tanto esta película actúa como un verdadero "revestimiento". Esta película protectora se va perdiendo con el paso del tiempo (a la vez que el huevo va perdiendo frescura) (11). b. La fárfara interior.- Se ve claramente cuando se rompe y se abre con cuidado el cascarón del huevo, aunque a simple vista parece que la cáscara está constituida por una sola superficie, existe en ella dos capas principales. 13 Diego Antonio Valdez Jojoa La externa es delgada, relativamente densa y compacta y se cree que sirve como mecanismo de defensa parcial para evitar la microorganismos entrada de perjudiciales. bacterias Las y otros condiciones que parecen favorecer la penetración de las bacterias son: 1. La humedad y suciedad de los nidales o ponederos y 2. La limpieza húmeda de los huevos sucios. La capa interna de la cáscara es de estructura mucho más abierta y granular y además de ayudar al mantenimiento de la consistencia y rigidez de la cáscara sirve como fuente de calcio para que el embrión pueda tomar la cantidad necesaria, de este elemento, para calcificar sus huesos. Existen dos membranas en la cáscara, finas y resistentes, que permanecen juntas a todo lo largo de la superficie de la cáscara, excepto en el polo más ancho, en que se separan; la membrana externa permanece en contacto con la cáscara y la interna se separa para dejar entre ellas una cámara de aire (1). La cámara de aire del huevo aumenta generalmente con el envejecimiento; según esto, un huevo fresco a de poseer siempre una cámara de aire pequeña, pero esto no 14 Diego Antonio Valdez Jojoa puede significar siempre una garantía de calidad de primera, porque la conservación en un medio húmedo inhibe el aumento de su volumen. Para la medida de la cámara de aire no se utiliza el diámetro de la misma, sino su altura en milímetros (9). c. Clara o albúmina.- Está formada principalmente por agua y proteínas (albúmina principalmente). Contiene también enzimas vitaminas y minerales (Niacina, Riboflavina, Magnesio y Potasio, entre otros). El ph de la clara es de 7,6 a 8,5 (huevos más frescos). Con el paso del tiempo, el huevo envejece y se va alcalinizando pudiendo llegar a un ph de 9,7 (11). La clara o albumen, no es totalmente uniforme, considerándose constituida por cuatro capas: 1. En íntimo contacto con la membrana interna se encuentra la capa externa de clara fluida, que forma aproximadamente el 20% de la clara total; este contacto con la membrana de la cáscara se pierde en los dos extremos o polos del huevo donde la clara espesa es la que lo hace con las membranas. 15 Diego Antonio Valdez Jojoa 2. La clara densa constituye casi la mitad de la clara total y dentro de ellas se encuentran alojadas la capa interna de clara fluida, las chalazas y la capa chalacífera. 3. Las chalazas son en realidad espirales de clara densa, retorcidas en direcciones opuestas, que se extiende desde la capa de clara espesa hasta cada uno de los polos, terminando en la capa chalacífera. Se producen en el trayecto de la yema por el oviducto, como consecuencia del movimiento giratorio de la misma. 4. La capa chalacífera es una capa muy fina de clara densa que rodea la membrana vitelina que encierra la yema (2). La clara tiene dos funciones: primero actúa como sistema amortiguador protegiendo el embrión y la yema de los golpes que pueden producirse en el manejo de los huevos, sirviendo además como fuente alimenticia para el embrión en crecimiento. El albumen contiene ciertas defensas que protegen al huevo contra la invasión bacteriana, pudiendo citarse entre ellas una enzima: la lisozima. Las chalazas 16 actúan también como Diego Antonio Valdez Jojoa amortiguadores, desempeñando un papel muy importante en el mantenimiento de la posición correcta de la yema dentro de la capa interior de la clara fluida (1). d. Yema.- forma una masa esférica suspendida en la clara del huevo y rodeada de una cutícula muy fina llamada membrana vitelina. La yema es la única parte del huevo, aparte de la célula germinal femenina, que se origina en el ovario; el albumen, la membrana de la cáscara y la cáscara van formándose, en este orden, durante el paso del huevo por el oviducto. La yema está constituida por la célula germinal femenina, o blastodisco, y un rico depósito de sustancias alimenticias en el interior de la membrana vitelina. El blastodisco se halla presente en todos los huevos aunque solo llega a ser activo y capaz de desarrollarse cuando es fertilizado por la célula germinal masculina o esperma, conociéndose entonces con el nombre de blastodermo (2). e. Disco germinativo o blastodermo.- En un punto situado en la superficie de la yema se observa una mancha circular de 2,5 a 3,5mm de diámetro, blanquecina y biconvexa, llamado disco germinal, blastodermo, galladura o cicatrícela (2). 17 Diego Antonio Valdez Jojoa La relación entre clara, yema y cáscara no es fija, varía sensiblemente para cada huevo en un 10% aproximadamente, por lo que la cantidad de clara contenida en un huevo puede variar del 52 al 62%, la de la yema del 26 al 30% y las membranas y la cáscara el 12 al 15% (5). 2.1.2. Coloración del huevo. El color y la tonalidad de los huevos es una característica genética del tipo de gallina, cuya intensidad se debe a su alimentación y a los pigmentos protoporfirina, biliverdina y quelato de cinc de biliverdina (responsables por la diversidad de colores en los huevos). Estos pigmentos son secretados por las células en las paredes del oviducto y pueden producir manchas en el cascarón si el color es añadido inmediatamente antes de poner el huevo. En algunas personas hay la creencia de que el color de la cáscara influye en la calidad del huevo. Esta creencia es errónea, porque el color de la cáscara lo determina la raza de la gallina (19). 18 Diego Antonio Valdez Jojoa 2.2. FORMACIÓN DEL HUEVO. El punto de partida de la formación del huevo es una célula reproductiva constituida por la yema, la cual se forma en el ovario, por membranas del cascarón, albúmina y cutícula que son formadas por el oviducto (4). Las hembras de la mayoría de las especies tienen dos ovarios, derecho e izquierdo. Pero en la gallina solo el izquierdo es funcional y se halla situado en la cavidad abdominal cerca de la columna vertebral. El huevo se produce de dentro hacia la periferia. El ovario facilita y madura el óvulo que se reúnen como un racimo (3). La yema comienza a crecer 9 a 10 días antes de la ovulación. Al principio crece lentamente, pero luego se acelera la deposición de elementos en la misma. Todos los días hay una yema preparada para la ovulación. Para la producción de la célula reproductiva, el ovario es estimulado por las hormonas sexuales (estrógenos) que se encuentran aumentados en el plasma sanguíneo al momento de iniciar la postura, estas hormonas son las que facilitan el desarrollo de las partes del huevo (7). 19 Diego Antonio Valdez Jojoa La transformación de la yema en huevo completo empieza cuando cae el óvulo en la embocadura o parte ensanchada del oviducto, llamada embudo; el folículo membranoso que hasta entonces rodeaba al óvulo se rasga, quedando en el ovario, en forma de cáliz membranoso, en tanto que la yema llega al oviducto. En este tubo la yema, que por los movimientos peristálticos del oviducto sigue su camino, llega dando vueltas hasta la cámara albuminuparra, donde recibe unas tres capas de la clara en un período de seis a ocho horas. El óvulo junto con la clara, continúa su camino y llega al útero, donde permanece de 12 a 24 horas para la formación de la cáscara. Directamente sobre la clara se deposita primero la membrana blanca y opaca, delgada pero relativamente dura, que es la fárfara interior. Inmediatamente después se extiende una pasta de cal que envuelve la membrana. Esta pasta calcárea se endurece rápidamente y forma lo que llamamos el cascarón, el huevo completamente terminado es expulsado por la cloaca con una contracción muy fuerte de los músculos pelvianos, y sale al exterior generalmente por el lado más grueso (2). 2.3. FECUNDACION DEL HUEVO. Se efectúa luego de la cópula; una pequeña parte de los espermatozoides que penetran por la vagina, son depositados 20 Diego Antonio Valdez Jojoa en pequeños tubos localizados en la unión útero vaginal, llamados "nidos de espermatozoides"; alrededor de 10% son liberados diariamente en dirección al infundíbulo cuyo trayecto es hecho en 10 minutos. Los espermatozoides penetran la "membrana perivitelina interna" que es una envoltura proteica que involucra todo el óvulo; para penetrarla, los espermatozoides liberan enzimas proteolíticas que forman pequeños huecos (0,02mm de diámetro), en toda la superficie del óvulo; los huecos se concentran mas cerca del disco germinativo. Muchos espermatozoides penetran en el óvulo pero solamente uno completa todo el proceso. Después el óvulo fertilizado empieza a bajar por el oviducto, y cerca de la porción proximal del magno, ocurre la formación de la "membrana perivitelina externa" que presenta la función de protección de la “membrana perivitelina interna” contra el ingreso de otros espermatozoides; la membrana perivitelina externa, esta formada por fibras proteicas, funcionan como una malla o red donde los espermatozoides se quedan reclusos y mueren: y así, termina "la relación intima espermatozoide-óvulo" (15). 21 Diego Antonio Valdez Jojoa 2.4. DESARROLLO EMBRIONARIO. Hay que hacer constatar antes que nada, que el huevo de gallina, como el de todas las aves, es meroblástico (se segmenta por un solo lugar) o sea rico en vitelo nutritivo y por tanto su segmentación no interesa a toda la yema, sino solamente a una pequeña parte de esta, el disco germinativo. A esta segmentación se le llama “Discoidal” (5). Después de la fecundación y mientras el huevo permanece alrededor de 24 horas en el interior del cuerpo de la gallina (41,6ºC aproximadamente), en el disco germinativo se producen las primeras etapas del desarrollo embrionario. Tres horas después de la fecundación, la célula recién constituida (cigoto) se divide y da lugar a dos células (blastómeros) y luego a cuatro, ocho, dieciséis, etc., hasta que en uno de los polos del huevo (polo animal) la agrupación celular es visible como un disco pequeño y blanquecino (blastodermo). Cuando el huevo es puesto y su temperatura desciende por debajo de los 26,6ºC, cesa el desarrollo. El enfriamiento a temperaturas ordinarias no daña al embrión, que comenzará a desarrollarse nuevamente cuando el huevo sea incubado. Mantener los huevos a temperaturas superiores a 26.6ºC antes de 22 Diego Antonio Valdez Jojoa incubarlos, provoca el retardo del crecimiento del embrión, que se debilitará y finalmente morirá (3). El embrión durante su formación, no tiene una posición definitiva dentro del huevo, sino que está en movimiento, o dicho de otra forma, más sencilla, como si nadara, y al llegar cerca del 17- 18 día de incubación, el pollo va adaptándose a la forma definitiva para nacer buscando con la cabeza la cámara de aire, y al entrar en contacto con ella empiezan a funcionar los pulmones. Esta es la posición normal que le facilitará el nacimiento (2). El primer signo visible de vida tiene lugar durante las primeras 24 horas de incubación, cuando aparece claramente una franja, la línea primitiva. Dieciocho horas después, esta queda diferenciada en diversas estructuras: pliegue cefálico, fosa primitiva, pliegue y surco primitivos. Todos los tejidos y órganos del ave se forman a partir del ectodermo, endodermo y mesodermo. Del ectodermo surgen las células que forman la piel, plumas, pico, uñas, sistema nervioso, cristalino y retina del ojo. El endodermo origina los órganos del aparato respiratorio y la mucosa de diversas partes del tracto digestivo. Del mesodermo proceden los huesos, músculos, sangre, sistema excretor y órganos de la reproducción (1). 23 Diego Antonio Valdez Jojoa Día 1: Primeros signos de semejanza con un embrión de pollo. Aparece el tubo digestivo. Aparece la columna vertebral. Comienza a formarse el sistema nervioso, la cabeza y el ojo. Día 2. Aparecen los vasos sanguíneos en la superficie del saco vitelino y el embrión inicia su giro hacia el lado izquierdo. Comienza la formación del corazón, el oído y el amnios. Empieza a latir el corazón, con 40 pulsaciones/min. Día 3: El amnios rodea completamente al embrión, la cabeza es la que tiene el mayor desarrollo. Comienza la formación de las patas, las alas. Surgen los primeros movimientos de la cabeza. Día 4: El embrión está sobre su lado izquierdo y completamente separado del saco vitelino. La lengua inicia su formación. Día 5: El embrión se ve perfectamente a simple vista, se notan los ojos formados pero aún no puede verse las patas, las alas y el pico. La yema está totalmente fluida y se detectan esbozos del aparato reproductor. Primeros movimientos del tronco y se tabica el corazón. 24 Diego Antonio Valdez Jojoa Día 6: Se inician los movimientos voluntarios, comienza la formación del pico y el diamante (estructura con la que rompe las membranas para su nacimiento). Se puede observar los 4 dedos visibles en las patas. Día 7: El pico, las patas y las alas están perfectamente visibles, el abdomen es más prominente debido al desarrollo de las vísceras. El embrión sigue separado del saco vitelino. Principio de sacos aéreos y 7 esbozos de hileras de plumas Día 8: Comienza la formación del plumón. Cuello bien diferenciado y miembros articulados. Día 9: Aparece la apertura bucal y el embrión comienza a tomar forma de ave. Día 10: El embrión se encuentra más separado del saco vitelino, flotando libremente en el líquido amniótico. Los poros de la piel se observan perfectamente y comienza la cronificación del pico. Esbozos de la cresta, principio de cierre de párpados. Día 13: El embrión se encuentra cubierto de plumón, apareciendo escamas y uñas. Plumón visible en alas, párpados semi-unidos por los bordes 25 Diego Antonio Valdez Jojoa Día 14: El embrión ya está colocado en posición para romper la cáscara y gira su cabeza hacia el lado romo del huevo disponiéndose paralelo al eje longitudinal. Finaliza el desarrollo y comienza el crecimiento. Cuerpo enteramente cubierto de plumón, ojo cerrado Día 15: La clara ha desaparecido casi por completo. El intestino penetra en el interior del cuerpo. DIA 16: La clara desapareció y la yema es utilizada como alimento. Escamas, uñas y pico están totalmente cornificados. Comienzo de orientación del cuerpo según el eje del huevo. Día 17: El pico gira hacia la cámara de aire, se inicia la preparación para picar la cámara de aire. Día 18 Se completó el crecimiento del embrión la cabeza está inclinada hacia la derecha e introducida bajo el ala y algunos más adelantados ya comienzan a picar el amnios. Día 19: La membrana de la yema o vítelo comienza a ingresar en la cavidad abdominal. 26 Diego Antonio Valdez Jojoa Día 20: La membrana de la yema está completamente insertada dentro del cuerpo. El embrión ocupa todo el interior del huevo a excepción de la cámara de aire. Se inicia la cicatrización del ombligo. El pollito con la cabeza bajo el ala izquierda y el pico apuntando a la cámara de aire comienza a picar la misma, luego comienza el picado de la cáscara, inicia respiración pulmonar y vocalización. El saco vitelino esta ya incluido en la cavidad abdominal. La cámara de aire se encuentra como una trampa, en la que no hay sólo oxígeno sino también dióxido de carbono. Ese aire enrarecido ingresa por las fosas nasales hasta el pulmón y luego a la sangre hasta finalmente actuar sobre un músculo llamado músculo enderezador de la cabeza. Así comienza una serie de movimientos bruscos e incoordinados lo que lo ayuda a picar la cámara de aire y luego la cáscara cuando éstos se hacen rítmicos. En este punto las pulsaciones rondan las 300 pulsaciones/minuto. Día 21: A las 6 horas de haber picado la cámara de aire inicia el picado de la cáscara y finalmente se produce la eclosión y el nacimiento (15). 27 Diego Antonio Valdez Jojoa 2.4.1. Estructuras que se forman en el huevo durante la incubación. a. SACO VITELINO: Membrana que contiene el vitelo o alimento en la yema. Está conectada al cordón umbilical y contiene vasos sanguíneos. La utilización de la yema es gradual al inicio de la incubación, y es muy acelerada en los últimos 5 días. Al comienzo, del 25 al 30 por ciento de la yema permanece sin usar; esto es transferido al cuerpo del polluelo, a través del ombligo, justo antes del nacimiento. Ahí es absorbido durante la primera semana de vida fuera de la cáscara. Su función es nutricional. Sus paredes absorben materiales alimenticios de la albúmina dentro de los vasos sanguíneos, para proveer nutrición al embrión. b. AMNIOS: Es una membrana cerrada en forma de saco que contiene líquido amniótico. Esta estructura se desarrolla más rápido que el alantoides; el embrión está sumergido en él. Sirve para amortiguar al embrión contra los golpes mecánicos, y lo protege contra la deshidratación o los contactos con la cáscara. Parte de este fluido es absorbido por el embrión en los últimos estadios de su desarrollo. 28 Diego Antonio Valdez Jojoa c. ALANTOIDES: Es una membrana también en forma de saco que está conectada con el tubo digestivo; cumple dos funciones: como órgano respiratorio, llevándole oxígeno al embrión y removiendo el dióxido de carbono (intercambio de gases a través de la cubierta del huevo ya que cubre toda la superficie interna de la cáscara por lo que la superficie del huevo toma parte en la respiración del embrión.), y como órgano excretor: el riñón excreta sus productos dentro del alantoides (depósito de los productos de desecho que no pueden salir del huevo). La cantidad total de sólidos en este saco aumenta 4,5 veces en la primera y segunda semana, y las sustancias orgánicos aumentan nueve veces. El fluido se vuelve más ácido al avanzar el desarrollo. Al momento de la incubación el pH pasó de más de 8 a menos de 6. El aumento de la acidez es el resultado de la función de esta membrana; respiración y excreción. La acumulación de dióxido de carbono genera el cambio del pH. Durante la última semana de incubación, el aumento de la excreción de ácido úrico genera el incremento de sustancia orgánica que se observa después de la incubación. A medida que el fluido se hace más ácido, como el ácido úrico es poco soluble, se va depositando en la pared de esta membrana. 29 Diego Antonio Valdez Jojoa Urea, orina y amoníaco (otros productos de desecho) también se depositan en esta membrana. Tiene un color blancuzco verdoso que está pegado a la parte final del cordón umbilical. Cuando éste se seca y se cae, esta sustancia se queda adherida a la cáscara (13). 2.5. NACIMIENTO. El primer estímulo que se pone en marcha para que se produzca la eclosión lo constituyen las contracciones espasmódicas resultantes de la inclusión del saco vitelino en el cuerpo del embrión. Con cada espasmo se produce una sacudida refleja en los músculos del dorso y cuello, con el resultado de que la cabeza es impulsada un poco hacia fuera cada vez. Estos movimientos hacen que el pico se mueva ligeramente hacia arriba y hacia la derecha hasta hacer contacto con el alantoides y romperlo y posteriormente ponerse en contacto con la membrana que lo separa de la cámara de aire. En un pollo correctamente situado, al introducir el pico en la cámara de aire el animal es forzado a respirar una mezcla de aire que contiene un 9% de dióxido de carbono y un 9% de oxígeno. A las 5 o 6 horas el pollo rompe la cáscara en un punto. Esto se debe a que el animal, al tener que respirar una mezcla tan nociva, se ve obligado a abandonar el huevo. Al 30 Diego Antonio Valdez Jojoa iniciarse la respiración los vasos sanguíneos de la membrana corioalantoidea disminuye de tamaño, por consiguiente, al romperse esta membrana solo se produce una ligera pérdida de sangre. Durante muchas horas la respiración se efectúa tanto a través de la membrana corioalantoidea como de los pulmones. Sin embrago, el papel desarrollado por la primera va reduciéndose de forma que unas dos horas antes de la eclosión el polluelo depende por completo de sus pulmones. El pollito sale de la cáscara unas 24 horas después de haberse iniciado el proceso respiratorio. Como consecuencia de la rotación de las patas, los esfuerzos del embrión por salir originan un movimiento rotatorio que da lugar al resquebrajamiento de la cáscara en un sentido inverso a las agujas del reloj. Esta fase abarca un período de 30 minutos a dos horas. El embrión se encuentra entonces en situación de salir de la cáscara, de la que emerge como un animal muy sucio y agotado. Sin embargo a las pocas horas se seca (1). 2.6. MOMENTOS CRÍTICOS DEL DESARROLLO EMBRIONARIO. Hay tres momentos críticos y delicados en el desarrollo embrionario, según los cuales la mortalidad puede ser importante. 31 Diego Antonio Valdez Jojoa 2.6.1. Primer periodo crítico. Se produce entre el tercer y quinto día de incubación. La mortalidad en este tiempo puede alcanzar el 25 al 30% de las muertes totales. Se trata, realmente, de un período muy delicado, durante el cual se producen importantes cambios fisiológicos. Comienza a circular la sangre y se cambia completamente la alimentación. Hasta el cuarto día la alimentación del embrión es esencialmente a base de hidratos de carbono, a partir de este momento se vuelve más compleja enriqueciéndose en proteínas y en grasas. La sangre se enriquece en anhídrido carbónico, amoniaco y ácido láctico. El exceso de uno de estos subproductos conduce fácilmente a la muerte inmediata del embrión o a un agudo debilitamiento, dejándole a merced de cualquier alteración o modificación de su normal desarrollo (5). Otras causas que producen la muerte durante este período están relacionadas con el mal manejo del huevo embrionado, transporte deficiente, almacenamiento inapropiado, temperatura de pre-incubación inadecuada y fumigación incorrecta (15). 32 Diego Antonio Valdez Jojoa El origen de la elevada mortalidad embrionaria durante este período se debe a: - Empleo de una técnica incorrecta de almacenamiento de los huevos. - Utilización de huevos viejos, conservados de manera inadecuada. - Régimen de incubación incorrecto. - Deficiencia o carencia de vitaminas en la dieta de las gallinas reproductoras. - Errores y deficiencias de índole tecnológica como colocar incorrectamente las bandejas en la incubadora, dejar de realizar alguna carga de huevos (8). 2.6.2. Segundo período crítico. Se produce entre los 18 y 20 días. Durante esta etapa se producen varios cambios importantes, se pone en funcionamiento el riñón definitivo, La mortalidad en este caso puede ser mucho más elevada que en el primer período crítico, llegando en algunos casos a alcanzar el 50%. También en este caso las causas pueden ser diversas. En primer lugar, todos 33 Diego Antonio Valdez Jojoa los que han conducido en estados precedentes a un debilitamiento del embrión; después los errores cometidos en la regulación de la temperatura (excesos o deficiencias) y humedad de incubación, inadecuadamente huevos volteados o mal problemas colocados e bacterianos., finalmente el transporte en malas condiciones a la cámara de rotura (15). 2.6.3. Tercer período crítico. Otro período crítico es cuando se produce el cambio en la respiración del embrión, que pasa de ser corioalantoidea a pulmonar, es el momento en que se produce el 50% de las muertes independientemente si los resultados hubieran sido malos o exitosos. El período en el cual el embrión cesa de respirar a través de la membrana para comenzar a hacerlo por medio de sus pulmones dura cerca de 6 horas, de no ocurrir se produce la muerte embrionaria. Las causas son variadas desde problemas ocurridos en la transferencia a nacedoras, falta de oxígeno o humedad, temperatura incorrecta, posición inadecuada o se retrasa o adelanta la extracción de los pollitos en la incubadora (15). Estos son los períodos más delicados para el desarrollo embrionario del pollo, pero no debemos olvidar que en 34 Diego Antonio Valdez Jojoa cualquier momento puede presentarse factores letales o semiletales que sean causa de una elevada mortalidad embrionaria (5). 2.7. POSICIONES INCORRECTAS DEL EMBRIÓN. La posición del pollito en el momento de la rotura tiene una importancia capital y juega un papel decisivo en la facilidad que pueda tener para salir del cascarón. Hay diferentes posiciones defectuosas que puede adoptarse entre el 18 y 21 días por una serie de causas complejas (1). Dichas posiciones pueden clasificarse de la siguiente manera: 1°. La cabeza entre las patas. 2° La cabeza hacia el polo agudo. 3° La cabeza hacia la izquierda. 4° El cuerpo girado. 5° Las patas sobre la cabeza. 6° La cabeza sobre las alas. 7° Posición oblicua sobre el embrión. Algunas de estas posiciones defectuosas, por ejemplo la primera no son causa directas de la muerte del embrión, pero la predisponen fácilmente, pero otras, como la 6° están 35 Diego Antonio Valdez Jojoa consideradas como variantes normales, otras, en cambio son anormalidades letales. Como se ha indicado pueden ser diversas las causas que determinan una posición defectuosa o que contribuye a hacer tomar al pollito posiciones anormales, entre estas por ejemplo las irregularidades de la temperatura, de la humedad, de la ventilación, o por la culpa del volteo de los huevos; o el traslado de huevos de la cámara de incubación a la de rotura hecho con brusquedades sin las reglamentarias precauciones (5). Existen numerosas razones para la incidencia de malas posiciones. En una población normal la incidencia no debe exceder 2.0%. Si la incidencia es elevada, se deben investigar las prácticas de manejo de huevo y se deben hacer cambios apropiados para resolver el problema. Las razones más comunes para el aumento en las incidencias de malas posiciones son: - Huevos colocados con la parte más pequeña hacia arriba. - Edad avanzada de las gallinas reproductoras y problemas en la calidad del cascarón. - La frecuencia y el ángulo de volteo inadecuados. La frecuencia adecuada en el volteo a un ángulo de 45 36 Diego Antonio Valdez Jojoa grados ayuda al embrión a colocarse en su posición para nacer. El promedio normal de volteo es 1 por hora. - Pérdida inadecuada del porcentaje de humedad de los huevos. La pérdida aceptable del peso de los huevos hasta ser transferidos es de 11-14%. - Desarrollo inadecuado de la celda de aire, temperatura inapropiada y regulación de humedad e insuficiente ventilación en la incubadora o nacedora. - Alimentos desequilibrados, niveles elevados de microtoxinas y deficiencia vitaminas y minerales. - Exposición a temperaturas más bajas de las recomendadas en las últimas etapas de incubación. 2.8. FACTORES QUE INFLUYEN EN LA APERTURA DEL CASCARÓN. El número de polluelos que nacen de los huevos puestos a incubar constituye un problema fundamental y de vital importancia para el éxito económico de las explotaciones avícolas, cualquiera que sea el índice de producción. Este problema debe estudiarse desde dos puntos de vista, precisamente en relación con la fecundidad de los huevos y con su facilidad de apertura. De acuerdo a Giavarini (5), los 37 Diego Antonio Valdez Jojoa factores que influyen en la apertura del cascarón son los siguientes: 2.8.1. Fecundidad de los huevos. Un huevo es fecundo cuando, después de la penetración del espermatozoide, se ha producido la fusión de los dos pronúcleos, masculino y femenino, con formación del núcleo de segmentación. Los factores influyentes en la fecundidad del huevo son: a. Alimentación de los reproductores.- Las raciones suministradas a los reproductores influyen en la producción de esperma, en su vitalidad y en la propia fecundidad del gallo. Una carencia en vitamina E conduce inevitablemente a una parcial e incluso total esterilidad del macho. b. Edad de los reproductores.- la mayor fecundidad se consigue con animales jóvenes de un año de edad. En años sucesivos su fecundidad disminuye progresivamente. Los mejores resultados se obtienen con gallos de 10 meses de edad en adelante. 38 Diego Antonio Valdez Jojoa c. Productividad de las gallinas.- gallinas con elevada productividad proporcionan los mayores porcentajes de huevos fecundos. 2.8.2. Apertura de los huevos. Esta es regulada, en parte, por factores genéticos, por lo que puede mejorarse mediante un programa de selección, y por factores extragenéticos, controlables por el explotador. Nos limitaremos a señalar aquellos factores que consideramos más importantes y posibles: a. Alimentación de los reproductores.- las raciones suministradas a los reproductores pueden influir notablemente en el nacimiento de los polluelos. Los principales factores limitantes son las carencias vitamínicas y minerales. La carencia de vitamina E es capaz de provocar la infecundidad en los machos y también puede ser causa de la muerte de embriones en los 3 a 4 primeros días de incubación. También se produce una elevada mortalidad precoz por carencia de biotina. Con carencias vitamínicas (cianocobalamina y 39 del riboflavina), grupo se B aprecian Diego Antonio Valdez Jojoa pérdidas sensibles en el momento de romper la cáscara y también polluelos en su nacimiento se muestran excepcionalmente débiles. La deficiencia de ácido pantoténico o en manganeso conducen a la muerte del embrión en los 2 -3 últimos días de incubación, o, particularmente en el caso del manganeso, al nacimiento de polluelos con alas y patas cortas, pico de loro o enfermos de perosis. Este último también inconveniente con carencia de puede producirse biotina o colina. Finalmente, la deficiencia en calcio o en vitamina D tiene gran importancia en el desarrollo del embrión y en la osificación de su esqueleto. b. Condiciones sanitarias.- es esencial poner en incubación, única y exclusivamente, huevos procedentes de animales sanos. Enfermedades como la pullorosis, salmonelosis en general, onfalitis, linfomatosis y otras infecciosas, tienen agentes patógenos susceptibles de trasmitirse al huevo. La temperatura y la humedad de la incubadora son condiciones óptimas para el desarrollo de bacterias y virus eventualmente presentes en el huevo. Estos agentes patógenos 40 Diego Antonio Valdez Jojoa no solo conducen al nacimiento de pollitos infectados, sino que incluso reducen la cantidad de estos nacimientos. 2.8.3. Elección de los huevos. Algunas características físicas, intrínsecas y extrínsecas al huevo, están ligadas estrechamente, a la facilidad de apertura del cascarón, estas características son: a. Peso del huevo.- El peso del huevo puede oscilar entre 50 y 65 gm, estando influido por factores tales como: el tamaño de la hembra, el momento del ciclo de puesta, la subespecie y la alimentación. El peso del huevo determina de forma clara y positiva del peso del pollo al nacimiento, aspecto importante para la vitalidad del recién nacido. Por otra parte, el tamaño del huevo influye en la viabilidad de los pollitos, en el sentido de que los huevos de gran tamaño producen pollos edematosos y de nacimiento tardío, debido a una falta de intercambio gaseoso y de vapor de agua. Por el pequeños contrario, producen 41 los huevos pollos excesivamente deshidratados, Diego Antonio Valdez Jojoa de pequeño tamaño y muy débil al nacimiento, debido a la gran pérdida de agua durante el proceso de incubación (15). b. Estructura de la cáscara.- la porosidad y espesor de la cáscara son características que, desde el punto de vista de la incubación, no pueden descuidarse. La porosidad regula la evaporación del huevo durante la incubación. El grosor de la cáscara varía entre 1,4 y 2,4 mm, con un valor medio entre 1,8 y 2 mm, influyendo en la mayor o menor pérdida de agua durante el proceso de incubación; una cáscara excesivamente gruesa puede impedir la salida al exterior del polluelo. Además pues es de la cáscara de donde el embrión extrae buena parte de calcio, tan necesario para formar su esqueleto Eliminaremos todos aquellos huevos con anormalidades en la cáscara y con fisuras en la misma, ya que el riesgo de contaminación por microorganismos patógenos es muy elevado. c. Conservación de los huevos.- la temperatura ideal para una buena conservación se sitúa entre 42 Diego Antonio Valdez Jojoa 10 a 15°C, temperaturas superiores o inferiores a estas reducen notablemente el porcentaje de nacimientos. Con la temperatura de conservación de los huevos hay que relacionar la humedad, que previene y regula la evaporación del huevo y debe variar entre el 75 y 80%. A la temperatura de conservación indicada, las posibilidades de apertura de los huevos se mantienen intactas durante una semana aproximadamente. Alargando el tiempo de almacenamiento, el porcentaje de aperturas se reduce progresivamente hasta llegar a cero después de 4 semanas. d. Limpieza de la cáscara.- huevos con la cáscara sucia sobre todo por el polo obtuso, es decir sobre la cámara de aire, tiene una aireación anormal. Este inconveniente se debe, fundamentalmente, a que, en el área ensuciada, los poros encargados de la aireación quedan cerrados. La limpieza de los huevos puede hacerse en seco y con humedad. El primer sistema es más laborioso, el segundo es más rápido y consiste en sumergir los huevos en agua, que incluso puede contener bactericidas. La temperatura del agua debe situarse entre 25 y 43 Diego Antonio Valdez Jojoa 28°C para evitar que la solución y eventualmente las bacterias, que se encuentran en la superficie del huevo, puedan penetrar los poros. 2.9. LA INCUBACIÓN. La incubación del huevo, que puede hacerse por medios naturales o artificiales, comprende una serie de operaciones conducentes a poner al huevo fecundado en condiciones de proseguir su desarrollo embrional, iniciado antes de la puesta, dando de este modo vida a un pollito (5). Durante miles de años se han incubado huevos por medios artificiales. Tanto a los chinos como a los egipcios se les atribuye el haber ideado métodos de incubación. Los chinos utilizaban dos sistemas diferentes. En el primero se tomaba carbón de leña encendido y se colocaba en un horno cilíndrico, dentro del cual se introducía un cono con la base hacia arriba. El cono era llenado parcialmente de ceniza y sobre ella se depositaba un cesto con los huevos. En el segundo sistema los huevos se colocaban sobre una pila de estiércol en fermentación .Los egipcios, por su parte, construyeron grandes incubadoras de ladrillo, con una serie de hornos para la incubación de los huevos. Estos antiguos métodos eran 44 Diego Antonio Valdez Jojoa burdos si se los compara con las actuales incubadoras, cuya capacidad varía desde unos pocos miles hasta 100.000 o más huevos, y en las que se controlan en forma automática la temperatura, la humedad, la ventilación y el cambio de posición (volteo) (3). 2.9.1. Periodo de incubación. El periodo de incubación de los huevos de gallina es de 21 días, este tiempo no es exacto, o mejor dicho preciso, ya que puede existir entre doce horas de anticipación o veinte y cuatro horas de retraso; ello depende de los huevos que se han puesto en la incubadora, si son frescos o de seis a ocho días de viejos, así mismo influye el vigor y estado de salud de los reproductores, e incluso la misma marcha de la incubación (2). 2.9.2. Factores físicos que influyen en la especialmente: la incubación. Entre estos factores, interesan temperatura, la ventilación, el grado higrométrico del aire en las cámaras de incubación y de nacimiento, y finalmente el volteo de los huevos. 45 Diego Antonio Valdez Jojoa a. Temperatura.- En la incubación natural, la temperatura de los huevo bajo las alas maternas en los contornos es de 38.8 a 39.5°C (5), pero en el centro del mismo esta no será superior de 37.8°C (1). En la incubación artificial, a priori no es posible fijar la temperatura requerida, ya que varía según el modelo de la incubadora y durante la misma incubación (5). En las incubadoras horizontales la temperatura que debe haber depende del modelo de las mismas y de la altura a la que se encuentra el bulbo del termómetro con relación a los huevos. En este tipo de incubadoras (horizontales) una temperatura normal es de 39.4ºC, con el centro del bulbo colocado unos cinco centímetros por encima de la bandeja de los huevos. Para incubadoras tipo vertical, la temperatura es por lo general de 37.5º a 37.8ºC, ya que este es el valor óptimo para el centro del huevo, habiendo escasa diferencia entre la superficie y el interior del huevo. La producción de calor del embrión va en aumento durante todo el periodo de incubación, siendo este aumento mucho mayor y más rápido durante los últimos dos días. Esto hará que la 46 Diego Antonio Valdez Jojoa temperatura interior del huevo sea 2ºC superior a la del ambiente de la incubadora (1). Las temperaturas demasiado elevadas aceleran el desarrollo embrionario, mientras que las bajas lo retrasan. En ambos casos los polluelos que nacen son débiles y a menudo presentan anormalidades. La mortalidad embrionaria en estos casos siempre es grave y se produce cuando la temperatura ha sido alta en los últimos días de incubación (el polluelo se coloca en posiciones anormales), sucede lo contrario cuando es baja en los dos o tres primeros días (15). b. Humedad relativa.- es un factor que influye sobre el embrión, y está encargada sobre el proceso de liberación de agua del huevo; si la humedad aumenta disminuye la evaporación; si disminuye la humedad, aumenta la evaporación. La humedad relativa de la incubadora puede variar entre límites bastante amplios sin que se produzcan excesivos daños, ni al desarrollo embrionario, ni a la facilidad de eclosión del pollito. En general, la humedad relativa óptima de la incubadora es del 60%, otros autores indican que la humedad relativa de la 47 Diego Antonio Valdez Jojoa incubadora debe de ser de 55 a 65% durante los primeros 19 días y de 75% los días 20 y 21; este porcentaje reduce el grado de evaporación y ayuda al huevo y al desarrollo del embrión. Se acepta una variación de 5 a 10% de la humedad relativa dentro de la incubadora (3). Es preciso tener en cuanta que, el huevo, durante la incubación pierde peso por evaporación del agua del mismo (11 -13%), por lo tanto si la humedad relativa de la incubadora es baja, la evaporación del huevo aumenta, se retrasa la rotura y muchos embriones perecen antes de la eclosión (5). c. Ventilación.- La función general de la ventilación es realizar un cambio entre el oxígeno y el anhídrido carbónico dentro de la máquina, para que así, de la misma manera, se pueda realizar en el huevo. Por consiguiente, la ventilación tiene dos finalidades: proporcionar el oxígeno necesario y eliminar el exceso de dióxido de carbono y otros gases producidos por el metabolismo del embrión (4). Un huevo de unos 58g de peso elimina, en 21 días de incubación, cerca de 3 litros de Anhídrido carbónico mientras que, por el contrario, necesita como mínimo 48 Diego Antonio Valdez Jojoa 5 litros de oxígeno. La cantidad de oxigeno en el aire es aproximadamente 21%, esta cantidad puede descender hasta el 17,5% sin perjudicar el desarrollo embrionario, pero si llega al 15% las posibilidades de supervivencia del embrión se reducen notablemente. Para asegurar una aportación normal de oxígeno en el aire contenido en la cámara de incubación, el lugar en el que se ha instalado las incubadoras debe estar abundantemente aireado, ya que es a expensas del aire del ambiente que se renueva el de las incubadoras (5). En cuanto a la velocidad de la corriente de aire, ésta debe ser la apropiada para proveer una temperatura uniforme a toda la incubadora, a fin de que el % de nacimientos sea uniforme en todas las secciones de la máquina. Dado las diferentes necesidades de calor que tiene el huevo, la ventilación variará dependiendo del momento de incubación pues hasta el día 13 el embrión tiene un alto requerimiento de calor, pero a partir de entonces tiene necesidad de disipar calor (15). 49 Diego Antonio Valdez Jojoa d. Posición y volteo de los huevos.- La posición del embrión y su desarrollo dependen en gran parte de la posición de los huevos en la máquina incubadora. Si el huevo se pone con la parte aguda hacia abajo, el embrión se desarrolla pero no alcanza a tocar con su pico la cámara de aire y al nacimiento el embrión muere, lo ideal es poner los huevos con una inclinación de 45° y moverlos en el mismo eje a 90° de su posición inicial varias veces al día; la función de este movimiento es que todas las membranas del embrión tengan el mismo contacto con todas las partes del huevo y que no se peguen al cascarón. Si el huevo no se mueve durante los primeros días de la incubación el embrión va a ser aprisionado por la yema contra el cascarón, su desarrollo se detiene y muere (4). La frecuencia en la que se van girando los huevos es muy variable, pudiendo cambiar de ¼ de hora a 4 horas. En las incubadoras automáticas el volteo es mecánico en las que se hace con intervalos de tiempo muy reducidos (1 hora aproximadamente) durante todo el día. (5). El volteo necesita ser mas frecuente en los primeros estadios de la incubación, antes que se desarrollen por completo los sacos extraembrionarios y sus fluidos, 50 Diego Antonio Valdez Jojoa si bien es necesario durante los primeros 18 días tanto estén en incubadora o debajo de las gallinas. No es necesario durante los tres últimos días de incubación (1). 2.9.3. Métodos de incubación. Hay dos métodos para incubar huevos y ellos son: - Incubación natural e - Incubación artificial. a. Incubación Natural.- En esta el calor necesario para el desarrollo del embrión es suministrado por la gallina, este tipo de incubación tiene pocas ventajas: 1. Es el método más económico cuando se trata de obtener un pequeño número de pollitos. 2. Nacen Fuertes. 3. Menos expuestos a enfermedades. b. Incubación Artificial.- Económicamente hablando, la incubación artificial tiene muchas ventajas, ya que permite la incubación de un gran número de huevos. 51 Diego Antonio Valdez Jojoa Otra ventaja de la incubación artificial es que podemos incubar en cualquier época del año y sin interrupción, según sean nuestras necesidades. Con la incubación artificial facilitamos muchísimo el trabajo de la granja, ya que si queremos incubar varios lotes de polluelos, lo podemos hacer en la época que mejor convenga. Podemos resumir las ventajas de la incubación artificial en los siguientes puntos (2): 1. Permite incubar un mayor número de huevos. 2. Se puede incubar en cualquier época del año. 3. Simplificación del trabajo (se dedica poco tiempo a la revisión de la incubadora). 4. Incubación asegurada hasta el momento de los nacimientos. 5. Control de huevos rotos y sucios. 6. Las cluecas al no incubar empiezan de nuevo la puesta. 2.9.4. Tipos de incubadoras. Las primeras incubadoras se construyeron en Inglaterra y América a finales del siglo XVIII y principios del siglo XIX. Estas incubadoras tenían notables inconvenientes, especialmente por 52 Diego Antonio Valdez Jojoa lo que se refiere a regulación de temperatura y humedad, inconvenientes superados actualmente en las modernas incubadoras. Hay diferentes tipos de incubadoras diferenciándose más que por nada por la forma y por las dimensiones. Fundamentalmente se trata, en todos los casos, de ambientes cerrados, calentados y aislados. En estos ambientes la temperatura, humedad y ventilación se regulan rigurosamente (5). a. Incubadoras Horizontales.- Son las más sencillas y de una capacidad de 50 a 500, los huevos se distribuyen generalmente en un solo plano. El sistema de calefacción es externo. En las incubadoras de aire caliente se calienta por medio de tubos a propósito que penetran por arriba en la cámara de incubación. Mientras tanto el aire frío desciende y sale por agujeros hechos en la parte baja. En las incubadoras de agua caliente, el aire entra por debajo y sale por arriba después de calentarse. b. Incubadoras verticales.- Son en forma de armario, llamadas también de tipo gabinete. Son máquinas que pueden incubar un número mucho 53 Diego Antonio Valdez Jojoa mayor de huevos que las anteriores, en estas, los huevos se distribuyen verticalmente en cajones superpuestos, el volteo se efectúa por rotación mecánica de 90° y en que la ventilación se efectúa por medio de ventiladores. Los sistemas de calefacción, la ventilación y el volteo son eléctricos. La regulación de la temperatura en las incubadoras eléctricas se efectúa por medio de interruptores automáticos (termostatos). La humedad existente puede crearse de diversas maneras: colocando en el suelo de la incubadora, debajo de las bandejas, recipientes con agua, o bien por humidificadores conectados al sistema de ventilación. 2.9.5. Condiciones para la incubación artificial. Concurre cuatro factores principales para el éxito de la incubación artificial, y cada uno de ellos tiene su importancia, ya que de fallar uno de ellos, puede fallar toda la incubación. a. La calidad de los huevos.- para obtener huevos aptos para incubar, es necesario que como máximo exista un gallo vigoroso y relativamente joven por cada 8 a 10 gallinas, se debe recoger los huevos diariamente y almacenarlos a una temperatura de 10 a 15°C, por no 54 Diego Antonio Valdez Jojoa más de 8 a 10 días. El peso debe ser entre 55 y 65 gramos. b. Sala de incubación.- la sala de incubación debe ser bien construida y con buena ventilación. En si misma comprende tres secciones: la primera, que sirve de almacén y clasificación de huevos; una segunda sección, destinada a la o las máquinas incubadoras; y por último, la tercera sección en donde se agrupan los pollitos nacidos. c. Buena construcción de las incubadoras.- Las máquinas incubadoras deben responder a unas buenas condiciones térmicas, ventilación, humedad y volteo de los huevos y a una buena expulsión del aire viciado. d. Conocimiento del avicultor.- Sobre el manejo de las incubadoras. 2.9.6. Manejo de los huevos para la incubación. El huevo puede tener dificultades entre el momento en que es puesto y el momento en que es llevado a la máquina. Una manejo inadecuado, sobre – exposición al calor o al frió en el 55 Diego Antonio Valdez Jojoa almacenaje, almacenaje demasiado prolongado, quebraduras del cascarón permitiendo la penetración de bacterias, temperatura, humedad y ventilación inadecuada durante el período de pre-incubación (conservación de huevos destinados a incubación) producen, a mas una elevada mortalidad embrionaria, pollitos de baja calidad y débiles. Por tales razones no se debe incubar huevos deformes, quebrados, pequeños, redondos (la forma de los huevos debe ser ovoidea y sin arrugas), muy grandes, sucios, la calidad de la cáscara no debe ser ni muy porosa, delgada ni yesosa. etc., ya que esto reduce la calidad de incubación y de vida del pollito (15). El embrión de un huevo recientemente puesto se comporta ligeramente como de sangre fría, similar a los reptiles, pudiéndose alterar varias veces su temperatura ambiental, sin embargo cada vez que la temperatura se eleve o disminuya con respecto al umbral de crecimiento, el embrión será debilitado y disminuirá la posibilidad de nacimiento. La temperatura en el lugar de almacenamiento de los huevos incubables debe ser de 12 a 14°C y no mayor a 17°C. Para evitar completamente el desarrollo embrionario, la reducción de la temperatura desde el momento de la postura deberá ser gradual, aunque se demore varias horas, con el objeto de 56 Diego Antonio Valdez Jojoa conservar el potencial ideal del embrión vivo ya que la entrada de bacterias al interior del huevo es por succión a través de los poros, durante el enfriamiento del huevo. El volteo de los huevos debe ser de 90° todos los días, de un lado a otro, durante el almacenamiento. La humedad relativa de almacenamiento de los huevos incubables será de 75 a 80%, ya que durante el almacenamiento la evaporación en la porción interna del huevo debe ser mínima. La incubabilidad de los huevos se reducirá día tras día y si los huevos se producen y se almacenan durante un periodo mayor de 7 días, la diferencia entre unos y otros retardará los nacimientos y reducirán la incubabilidad (4). En resumen, para realizar un buen manejo de huevos aptos para la incubación, debemos considerar lo siguiente: • Umbral embrionario (de crecimiento): >20ºC, el desarrollo embrionario continuará <20ºC, el desarrollo embrionario se detendrá. • Temperatura del cuarto de almacenamiento: Disminuir progresivamente hasta los 15-17ºC. • Humedad del cuarto de conservación: Entre un 70-80% de humedad relativa para que el huevo evapore la menor cantidad de agua posible. 57 Diego Antonio Valdez Jojoa • Tiempo de conservación de los huevos: El tiempo idóneo de espera para incubar los huevos es de 2 a 7 días; pasado éste tiempo se producirá una disminución progresiva del porcentaje de incubabilidad de los huevos fértiles, así como un retraso en el tiempo de nacimiento. • Edad del lote reproductor: A mayor edad, peores resultados. • Posición de los huevos en las bandejas de incubación: El polo agudo ha de estar siempre hacia abajo. • Volteo de los huevos incubables: Realizarlo diariamente 90° de un lado a otro durante el período de conservación hasta la incubación. • Desinfección de los huevos incubables: Realizarse inmediatamente después de cada recolección, pasada una hora la desinfección pierde su efectividad (15). 2.10. La HIGIENE DE LA INCUBACIÓN. incubadora ofrece condiciones ideales para el desarrollo de muchos agentes patógenos y su difusión entre los polluelos (pullorosis, enfermedad 58 respiratoria crónica, Diego Antonio Valdez Jojoa bronquitis infecciosa, pseudopeste, etc.). Por esta razón, mantener una buena la higiene de la incubación es muy importante (5). Los principales medios por los que puede introducirse la infección en una incubadora y que pueden ser controlados son: - La superficie de los huevos, cajas de éstos y herramientas, pueden transportar la infección desde las granjas. - Los animales pueden actuar como transmisores, por sus excrementos y sus propios ectoparásitos, como las pulgas, piojos, etc. - Las moscas, cucarachas, etc., pueden llevar la infección a partir de despojos. - La ropa y manos del personal. - Las aves muertas, o enfermas. 2.10.1. Higiene y desinfección de los edificios. El polvo es un albergue ideal para toda clase de microorganismos y todas las dependencias del complejo de incubación deben mantenerse lo más libres posibles de él. Los suelos deben lavarse con regularidad o, si es esencial que 59 Diego Antonio Valdez Jojoa permanezcan secos, deben cubrirse con aserrín mojado con desinfectante antes de ser barridos. Deben quitarse las telarañas antes de iniciar el período de incubación y enseguida que se observe su aparición, debe cuidarse de echarle una solución desinfectante antes de retirarlas (1). 2.10.2. Higiene y desinfección del personal. El personal de las salas de incubación puede, sin duda alguna, transportar fácilmente agentes patógenos para los pollos. La adopción por parte del personal de escrupulosas normas de higiene es particularmente importante, en especial para los que tienen contacto directo con los huevos y los polluelos, ropa adecuada y limpia (mandil, gorra, botas), lavarse las manos y secarse bien antes de manipular los huevos incubables, etc. (5). 2.10.3. Higiene y desinfección de los huevos. La desinfección de los huevos destinados a la incubación puede hacerse antes de entrar a la cámara. La desinfección se realiza mediante fumigaciones de formalina y permanganato de potasio, a las siguientes concentraciones, calculadas para cada m3: 60 Diego Antonio Valdez Jojoa - 30cc de formalina y 15g de permanganato de potasio. - 60cc de formalina y 30g de permanganato de potasio. - 90cc de formalina y 45g de permanganato de potasio. Las concentraciones más elevadas se usan, especialmente en las desinfecciones contra la pullorosis, la enfermedad de New Castle y las enfermedades del aparato respiratorio. Estas desinfecciones pueden hacerse incluso cuando los huevos están ya colocados en las incubadoras. En este caso la desinfección puede hacerse inmediatamente después de entrar en la cámara de incubación (5). 2.10.4. Higiene y desinfección de las incubadoras. Todas las bandejas e instrumentos desmontables de la incubadora deben lavarse y desinfectarse después de su uso. El interior de las máquinas, especialmente el compartimiento de incubación, debe estar libre de polvo. El área de nacimientos, una vez retiradas las bandejas, etc., deben fumigarse y limpiarse con aspirador para extraer todo el plumón 61 Diego Antonio Valdez Jojoa o, incluso, se puede pulverizar con una solución de un buen desinfectante. Las partes superiores de las máquinas son particularmente propensas a coger polvo, por lo que deben limpiarse después de cada nacimiento (1). Las soluciones desinfectantes empleadas en la desinfección de las incubadoras son soluciones a base de sosa al 4% y soluciones amoniacales, también se emplea soluciones de formalina y permanganato de potasio a una concentración de 30cc de formalina y 15g de permanganato de potasio por cada 3m3. se coloca el permanganato en una capsula y luego se vierte la formalina y se cierra inmediatamente la incubadora por un lapso de 3 horas, luego se abre y se airea bien antes de volver a poner huevos en su interior (5). 2.11. CONTROL DE VIDA DE LOS EMBRIONES. El control de vida de los embriones permite establecer, si es correcto, el régimen de incubación aplicado en los equipos, si este responde a las exigencias del embrión en los distintos períodos de su vida. Gracias a un buen chequeo ovoscópico de los huevos, el embrión comienza a ser visible unas horas después de comenzado el calentamiento de los huevos y luego 62 Diego Antonio Valdez Jojoa durante toda la incubación se puede observar el desarrollo del embrión (7). 2.11.1. Técnica del control de vida de los embriones. Al realizar el control durante el proceso de incubación deben cumplirse dos condiciones que los hacen más efectivo: - La revisión ovoscópica de los huevos de cada partida con embriones de la misma edad obligatoriamente desde el comienzo de la incubación. - La revisión de los huevos con ovoscopios que tengan una fuente de luz potente y siempre igual. Se puede juzgar sobre el estado del embrión al iluminar (revisar ovoscópicamente) el huevo en cualquier día de la incubación, especialmente al principio de la misma. Para facilitar el cumplimiento de esta regla, los huevos deben ser colocados en la incubadora siempre a una misma hora y la revisión de los mismos debe ser realizada a una misma hora en el día de revisión correspondiente. Los días más idóneos para apreciar el desarrollo del embrión serán: 63 Diego Antonio Valdez Jojoa a. Primer estado.- Cuando se observa bien el crecimiento del embrión, el desarrollo del sistema circulatorio en la yema, el comienzo del desarrollo del alantoides y la intensidad de aprovechamiento de la clara. b. Segundo estado.- Cuando se ve bien el desarrollo del alantoides, el estado del cual permite apreciar el desarrollo del embrión mismo en la primera mitad de la incubación y su preparación para el posterior desarrollo. c. Tercer estado.- Cuando se puede juzgar sin equivocación ninguna sobre la preparación definitiva del embrión para el momento de la eclosión según el aprovechamiento de la clara, la atrofia del alantoides, el tamaño y posición del embrión. La observación ovoscópica de los huevos se efectúa después de los 6- 8 días completos, puede hacerse a los 6, 11 y 19 días. Para poder hacer una apreciación correcta del desarrollo de los embriones, es importante que las condiciones del examen, como: oscuridad, potencia del ovoscopio, etc., sean siempre las mismas. Para tener una idea clara del desarrollo de los embriones, no es indispensable examinar 64 Diego Antonio Valdez Jojoa todos los huevos incubados, basta con examinar un 10 o 15% de ellos (7). 2.11.2. Estimación del desarrollo del embrión a los 6-8 días de la incubación. La primera observación de los huevos se realiza más o menos una semana después de comenzada la incubación. En este periodo ya en el huevo han tenido lugar casi todos los fundamentos de los futuros órganos, el embrión ya está formado. El desarrollo intensivo de los embriones durante las primeras horas de incubación da prueba de su vitalidad y sirve de buenas bases para el futuro desarrollo. Un embrión sano normal comienza a desarrollarse muy temprano y se puede observar muy bien durante la primera iluminación. En el transcurso del primer tercio del período de incubación tienen lugar los más importantes procesos del desarrollo de embrión. La cantidad relativamente pequeña de células primarias aumenta vertiginosamente desde el comienzo del calentamiento de los huevos. Tienen lugar la aparición de las formaciones primordiales, que se desarrollan posteriormente formando tejidos determinados y sistemas de órganos completos. En realidad en este periodo se fundamenta 65 Diego Antonio Valdez Jojoa y forma todo el organismo del embrión. Posteriormente este crece intensivamente y continúa perfeccionándose y completándose. Si el desarrollo del embrión es normal, el amnios tiene un tamaño suficientemente grande. Se puede ver fácilmente durante la iluminación de los huevos como una mancha blancuzca-rosácea. Si los huevos se incuban en posición vertical, el amnios y el embrión se encuentran justo debajo de la cámara de aire. Fuera del amnios se ven bien desarrollados el sistema circulatorio del saco vitelino, los grandes vasos sanguíneos bien llenos. Cuando el desarrollo del embrión presenta algunas anormalidades se ve el cuadro siguiente: - Como consecuencia que solo se ha diluido una parte pequeña de la yema, el embrión es de bajo peso, por lo que casi no se ha hundido. Se encuentra cerca de la cáscara y se observa muy bien, sobre todo su ojo. - El amnios es pequeño y se puede observar que los vasos sanguíneos del saco vitelino se alejan del cuerpo del embrión. - El sistema circulatorio en la yema está débilmente desarrollado. 66 Diego Antonio Valdez Jojoa - La insuficiente cantidad de sangre hace que el huevo sea pálido, transparente. En algunos casos la cámara de aire puede estar aumentada de tamaño (7). 2.11.3. Estimación del desarrollo de los embriones a los 11- 15 días de incubación. Después del periodo de formación del embrión y su intenso crecimiento viene un periodo en donde aumenta rápidamente el empleo tanto de oxígeno como de alimentos por parte del embrión. Crecen rápidamente y funcionan con intensidad las membranas del embrión, el saco vitelino y el alantoides. Se establece un contacto especial con el medio a través del alantoides y su sistema circulatorio. El crecimiento del alantoides es una señal notable que caracteriza el desarrollo del embrión durante este tiempo. De la misma manera, provee de calcio para el embrión tomándolo directamente de la cáscara, gracias a su sistema circulatorio. El crecimiento y la situación del alantoides, que cumple muchas funciones importantes, ayuda a determinar el estado general y la marcha del desarrollo del embrión. Es señal de buen desarrollo, que el alantoides cubra todo el contenido del huevo y sus bordes se unan en la punta aguda del mismo 67 Diego Antonio Valdez Jojoa durante la incubación en posición vertical (y en el lado contrario del embrión durante la incubación en posición horizontal). Normalmente los bordes del alantoides se unen en los huevos de gallina a los 11 días de incubación (7). 2.11.4. Estimación del desarrollo del embrión antes del comienzo de la eclosión (tercera revisión). Al observar los huevos en este momento, se ve como transcurrió y terminó el desarrollo del embrión en el periodo medio de la incubación, cómo éste está preparado para el momento de la eclosión, la cual ocurre a tiempo y con facilidad y el pollo obtenido es sano y fuerte, si en este momento se han aprovechado toda la clara y gran parte de la yema. Como resultado, el embrión tiene buen peso y ocupará una posición correcta. Generalmente esto se acompaña de la atrofia a tiempo del alantoides, la interrupción de la comunicación entre su sistema circulatorio y el sistema circulatorio del embrión y de una gran disminución del saco vitelino antes de ser reabsorbido por éste. La señal esencial de que el huevo está bien preparado para la eclosión es la no transparencia en el extremo agudo. Esto señala que el embrión ha aprovechado completamente la 68 Diego Antonio Valdez Jojoa clara y no hay residuos de ella en el extremo agudo del huevo, donde se veía muy bien hasta el momento, aun cubierta por el alantoides, al observar los huevos en el ovoscopio. Además, esto indica también que la yema ha sido bien aprovechada ya que sus elementos (después de la desaparición de la clara) son la única fuente de alimentación del embrión. Esto también indica que el embrión, cuyo cuerpo ocupa el extremo agudo del huevo, tiene buen tamaño. Si el embrión tiene buen desarrollo durante el periodo medio de la incubación, la cámara de aire llega a ocupar una tercera parte del huevo. En un desarrollo embrional deficiente la cámara de aire se mantiene pequeña hasta el final de la incubación. Antes de la eclosión el embrión se encuentra en posición correcta. La cola se dirige hacia la punta aguda del huevo y la cabeza hacia el extremo redondo. Las patas las tienen dobladas, pegadas al cuerpo. Entre ellas se encuentra el saco vitelino. La cabeza esta bajo el ala derecha. El embrión se encuentra todo el tiempo en movimiento. La única dirección en sus movimientos es cámara de aire ya que el cuerpo ocupa todo el resto del huevo. Al examinar los huevos se ve claramente el cuello del embrión, que sobresale hacia la 69 Diego Antonio Valdez Jojoa cámara de aire. Esta es una de las señales de que el embrión tiene posición correcta y está bien preparado para liberarse del cascarón. Atestigua también la posición del embrión el lugar en que comienza a quebrarse la cáscara del huevo. Ante una posición correcta del cuello del embrión y la cabeza los movimientos del embrión hacen que el cascarón se rompa cerca de la cámara de aire o de la mitad del huevo. Ante una posición incorrecta el embrión pica el cascarón más abajo del medio del huevo o en su extremo agudo (7). 2.12. CONTROL DEL REGIMEN DE INCUBACIÓN. El control del régimen de incubación es una de las medidas más importantes durante todo el proceso de la incubación, debe controlarse por las indicaciones de los instrumentos de medición y también por las señales biológicas 2.12.1. Control de la temperatura ambiente en la incubadora. Las temperaturas de trabajo de las incubadoras son de 3738°C, raramente surge la necesidad de mantener una 70 Diego Antonio Valdez Jojoa temperatura mayor o menor de estos límites. Durante la primera mitad de la incubación (antes de cerrarse la membrana alantoides en la punta aguda del huevo) y especialmente durante los primeros 5- 6 días, el embrión reacciona al aumento de temperatura acelerando su crecimiento y desarrollo. El embrión reacciona de una manera distinta a las temperaturas más bajas en este período. Se retrasa la disminución del peso de la clara, la yema bajo el embrión se deslíe en poca cantidad, el sistema circulatorio en la yema se forma más tarde y tiene poca sangre. El alantoides crece lentamente y cubre con retardo el contenido del huevo. Como resultado el embrión se desarrolla y crece lentamente. Por tal razón el nacimiento comienza más tarde del plazo habitual. Durante la segunda mitad de la incubación la influencia de la temperatura sobre el embrión depende de cómo se desarrollo el mismo durante la primera mitad de la incubación, si el desarrollo fue bueno y el alantoides cubrió a tiempo todo el contenido del huevo y la temperatura en la incubadora aumenta durante la segunda mitad de la incubación (especialmente los últimos 5- 6 días) se retarda en el embrión el aprovechamiento de la clara y la yema por lo que disminuye el peso del cuerpo. El resultado de esto es que el nacimiento comienza antes de tiempo y a veces los embriones absorben mal el saco vitelino por lo que el anillo umbilical se cierra mal. Si el desarrollo del 71 Diego Antonio Valdez Jojoa embrión se retraso y el alantoides cubrió con retardo el contenido del huevo, el embrión reacciona de una manera completamente distinta a la temperatura durante la segunda mitad de la incubación. En este caso la temperatura elevada, dentro de los límites indicados, influye favorablemente sobre la nutrición y crecimiento del embrión y un nacimiento a tiempo. La temperatura baja retarda el aprovechamiento de la clara y la yema, se retiene el crecimiento del embrión y la terminación de la incubación. La acción prolongada fuera de los límites establecidos puede provocar graves alteraciones patológicas en el desarrollo del embrión. Estas alteraciones son características tanto para las altas temperaturas como para las bajas. Los caracteres de estas perturbaciones permiten determinar correctamente la causa de la muerte de los embriones por falta o exceso de calor. Son señales características de falta de calor las siguientes. - Atraso general del desarrollo, particularmente al comienzo de la incubación. Al revisar los huevos con el ovoscopio a los 6- 8 días se nota que los embriones son 72 Diego Antonio Valdez Jojoa pequeños, se encuentran cerca de la cáscara. Como resultado se retrasa el nacimiento y este se prolonga durante varios días. - Atraso de la formación del sistema circulatorio y hematopoyesis, anemia. El sistema circulatorio en la yema está mal desarrollado y los vasos sanguíneos tienen poca sangre, por eso el huevo tiene un color rosado. Al abrir los huevos con embriones muertos se observa gran anemia de las membranas y del embrión mismo. - Lento aprovechamiento de los elementos de la clara y la yema, por tal razón, el embrión crece mal y tiene poco peso durante todos los periodos de incubación. - Las membranas provisorias se forman después de los plazos habituales y crecen lentamente. - Al observar los huevos en el ovoscopio antes de pasarlos a las bandejas de nacimiento, en casi ningún huevo sobresale el cuello del embrión en la cámara de aire. Si la temperatura baja es notable y prolongada, los 73 Diego Antonio Valdez Jojoa pollos obtenidos tienen el saco vitelino grande y generalmente lleno de una yema líquida. Una temperatura de más de 41°C en la incubadora provoca la muerte rápida de los embriones en cualquier periodo de la incubación. Son señales características de recalentamiento las siguientes: - El desarrollo del embrión se acelera por el aprovechamiento de los nutrientes, especialmente durante los primeros días de incubación, pero al final empeora el aprovechamiento de la clara y la yema, se retiene el crecimiento. Como resultado en la mayoría de los huevos comienza el nacimiento prematuramente. - El aceleramiento del desarrollo y crecimiento del embrión transcurre en forma irregular en diferentes partes del cuerpo del mismo. Por esto, son muy frecuente los casos de monstruosidades. Al comienzo de la incubación estas están relacionadas con alteraciones del sistema nervioso y órganos sensitivos. - El recalentamiento de los huevos durante los primeros días de la incubación provoca diferentes deformaciones 74 Diego Antonio Valdez Jojoa de la cabeza: la acrania (mal desarrollo de los huesos del cráneo por lo cual el cerebro queda descubierto); la hernia cerebral; diferentes deformaciones de los ojos (ciclopía, anizoftalmia, microftalmia, desplazamiento de los ojos, etc.); deformaciones diferentes de los huesos de la cara. - La hematopoyesis es muy activa. Los vasos sanguíneos están muy llenos de sangre por lo que existe hiperemia y hemorragias en el cuerpo del embrión y en el campo vascular de la yema. - El sistema circulatorio en la yema está bien desarrollado y lleno de sangre. Los huevos tienen un color rojo intenso - En los primeros periodos es posible que el embrión se pegue al cascarón, posteriormente la posición incorrecta del embrión y torceduras de las patas. - El anillo umbilical (ombligo) se cierra temprano pero mal, en su lugar queda una cicatriz. Se perturba la coordinación entre la absorción del saco vitelino por el 75 Diego Antonio Valdez Jojoa embrión y el cierre del ombligo. Como resultado el saco vitelino no se absorbe completamente (7). 2.12.2. Control de la humedad. Durante la mayor parte del tiempo de incubación la evaporación del agua del huevo depende directamente de la humedad reinante en la incubadora. Si aumenta la humedad, disminuye la evaporación del agua y si disminuye, aumenta la evaporación del huevo. Pero a medida que el alantoides va cubriendo poco a poco todo el interior del cascarón, disminuye la dependencia de la evaporación del agua del huevo de la humedad en la incubadora. Al final de la incubación, cuando en el huevo queda ya poca agua, la evaporación depende de la intensidad del metabolismo del embrión. Cuanto mejor se aprovechen la clara y la yema, tanto más agua se evapora del huevo. Cuando la evaporación de agua de los huevos disminuye durante los primeros días de incubación, esto no provoca ningún cambio patológico y hasta favorece el paso del agua con los elementos disueltos en ella a la yema, de este modo mejoran las condiciones de alimentación de los embriones y disminuye su mortalidad. A medida que crece el alantoides, la 76 Diego Antonio Valdez Jojoa evaporación del agua se efectúa cada vez más a cuenta del agua que segrega el embrión junto con los productos del metabolismo a la cavidad de esta membrana. Hacia el final de la incubación, en el alantoides queda poco líquido. Esto favorece su atrofia a tiempo. El alantoides comienza a secarse, su sistema circulatorio pierde contacto con el sistema circulatorio del embrión. Son señales características de humedad excesivamente alta las siguientes: - Ante una elevada humedad los microorganismos que se encuentran en el cascarón, se desarrollan rápidamente y destruyen la clara y la yema. Como resultado aparecen huevos con manchas de diverso tamaño y completamente negros a trasluz. - Se retiene el crecimiento del alantoides al partir del 6° día y la cámara de aire se presenta pequeña. - La eclosión se atrasa mucho (más de un día) y se prolonga por mucho tiempo. 77 Diego Antonio Valdez Jojoa - Inmediatamente después de la eclosión sale del huevo el líquido del alantoides y este toma un aspecto desagradable. El líquido se torna espeso y seca rápidamente, cerrando el pequeño orificio en el cascarón y el embrión muere. - Si el orificio ya es grande, el líquido del alantoides al secarse pega el pico, la cabeza y a veces el ala del embrión a las fárfaras o al cascarón. Los movimientos del embrión se detiene y este muere. - El líquido del amnios es muy pegajoso por lo que los pollitos nacen muy pegajosos y al secarse pega el plumón por lo que los pollitos parecen cubiertos por un caparazón. Estos pollitos mueren rápidamente. - A consecuencia del tamaño pequeño del embrión y de la gran cantidad de líquido en el huevo, el embrión realiza movimientos desordenados lo que provoca la rotura del saco vitelino y en este caso todo el embrión se cubre de yema líquida. Por tal razón el embrión muere antes de comenzar la eclosión. En estos casos, en los embriones muertos se observa con frecuencia edematizaciones en el cuello y cabeza. 78 Diego Antonio Valdez Jojoa - En los “embriones muertos sin desarrollar” autopsiados todo el tubo digestivo desde el buche, que está ampliado, hasta el recto está lleno de líquido. Esta es la señal más característica de una humedad excesivamente elevada, ya que otras afecciones de los órganos internos nos recuerdan el cuadro de la falta de calor. Los pulmones frecuentemente están hiperemizados. Son señales de humedad excesivamente baja las siguientes: - La cámara de aire aumenta rápidamente de tamaño. - La membrana alantoides puede cerrarse prematuramente. - La eclosión y el nacimiento comienzan prematuramente. Señales características de una humedad baja son la sequedad de las fárfaras y su gran resistencia. Durante la eclosión se caen los pedacitos de cascarón, pero las fárfaras no se rompen. 79 Diego Antonio Valdez Jojoa - La eclosión es “seca” ya que en el huevo hay muy poco líquido del alantoides. Los restos de líquidos en el huevo después del picaje se evaporan rápidamente. Esto dificulta el movimiento del embrión, además, puede comenzar a secarse el plumón. Y apenas una parte del plumón seco es un obstáculo casi insalvable para los movimientos del embrión. Esto provoca su rápida muerte. - El nacimiento es lento y difícil. Frecuentemente algunos embriones necesitan ayuda. Como en estos casos el alantoides ya está seco a esta altura, no se producen hemorragias. - Los pollos obtenidos son pequeños pero de mucho movimiento (7). 2.12.3. Control del intercambio de aire (ventilación). El cambio de aire en la incubadora debe asegurar un contenido de no más de 0,2 a 0,3% de anhídrido carbónico y un 21% de oxígeno. El embrión es más sensible al exceso de anhídrido carbónico que a la falta de oxígeno. Por eso el aire sucio en la incubadora como consecuencia de una mala 80 Diego Antonio Valdez Jojoa ventilación tiene influencia nociva sobre el desarrollo de los embriones. El exceso de anhídrido carbónico y la falta de oxígeno en el aire de la incubadora pueden provocar por si solo la muerte de los embriones. La posición incorrecta de los embriones y en consecuencia la ruptura del cascarón en la mitad del polo fino del huevo y no en el polo grueso indica que la ventilación de la incubadora es deficiente. Se sobre entiende que solo el picage masivo del cascarón en el polo fino puede servir de señal de un intercambio de aire insuficiente en la incubadora o de que a la misma llega aire puro en pocas cantidades. Otra señal de asfixia en los embriones muertos durante la mitad de la incubación es que los vasos sanguíneos del alantoides están muy congestionados, la hiperemia del embrión y hemorragias en la piel de este. Como consecuencia de lo último, el líquido del amnios se tiñe de rojo (hematoamnios). Se deben evitar los errores en el diagnóstico de un mal nacimiento, hecho muy frecuente. Si no existen señales bien claras de alteraciones en la temperatura y humedad (o no la saben distinguir) frecuentemente se dice que la causa de una elevada mortalidad se debe a una mala ventilación (7). 81 Diego Antonio Valdez Jojoa 2.12.4. Control de la posición y volteo de los huevos. Antes del nacimiento el embrión ocupa una posición determinada, en la cual puede liberarse fácilmente del cascarón. Durante el periodo de incubación el embrión cambia su posición varias veces en determinado orden. Si este orden se altera en algún periodo de la incubación, el embrión ocupa una posición incorrecta en el momento del nacimiento. La posición del embrión y sus cambios dependen en gran parte de la posición de los huevos. Si el huevo se incuba con la parte redonda y la cámara de aire hacia abajo, el embrión puede desarrollarse durante mucho tiempo situándose en la punta aguda del huevo (esto se ve inmediatamente al mirar los huevos en el ovoscopio). Al final de la incubación el embrión muere al nacer, ya que su pico no llega a la cámara de aire. El embrión y sus membranas, principalmente el alantoides, se sitúan correctamente si el huevo se incuba en posición horizontal o con una inclinación según el eje mayor de unos 45°. En este caso es necesario dar vuelta al huevo varias veces al día en 90º. Esto es necesario para que no siempre unas mismas partes de las membranas del embrión tengan 82 Diego Antonio Valdez Jojoa contacto con la cáscara, la clara, la yema y entre ellas mismas. Si no se voltean los huevos durante los primeros días de incubación, el embrión quedará presionado por la yema hacia el cascarón. Como de la superficie de este se evapora el agua, el embrión queda rápidamente pegado a las fárfaras, su desarrollo se detiene y muere. Al mirar los huevos en el ovoscopio, un embrión semejante se ve como un cuerpo negro pegado al cascarón que no se desplaza junto con el contenido del huevo. Esto puede ocurrir también ante temperaturas muy elevadas, baja humedad y gran velocidad de circulación del aire. Pero, a diferencia de estos casos, si no se da vuelta a los huevos, el embrión se pega absolutamente en todos los huevos por una parte determinada. Después de que el alantoides ocupa toda la superficie interna del cascarón, se hace indispensable dar vuelta a los huevos para que aquella crezca bien y ocupe la posición correcta. El alantoides pasa fácilmente entre la serosa y el cascarón, creciendo al principio en dirección a la cámara de aire y bajando luego hacia el polo fino del huevo. Pero en este periodo toda la clara es presionada hacia la punta aguda del huevo y se pega al cascarón. Por eso si no se da vuelta al huevo o bien el ángulo de su giro en posición inclinada es pequeño, el alantoides no pasará entre la clara y el cascarón. 83 Diego Antonio Valdez Jojoa Sus bordes crecerán bajo la yema y al encontrarse se serrarán dejando sin cubrir la clara en la punta agua del huevo. En estos casos la clara se trasluce en la punta aguda del huevo de la misma manera que al comienzo de la segunda semana de incubación. Si no se voltean los huevos hasta el final de la incubación, a mediados de la misma el alantoides se une al saco vitelino. Como resultado de esto, el saco vitelino no se absorbe por el embrión o se rompe y cubre de yema todo el huevo (7). 2.13. SÍNDROMES QUE APARECEN EN LA INCUBACIÓN. De toda la variedad de síndromes, algunos se presentan con más frecuencia que otros en la práctica de las incubaciones masivas. Algunos de estos síndromes son específicos de factores determinados que los provocan. Otros caracterizan un gran número de factores, por ejemplo, deformaciones de la cabeza como acrania, hernia cerebral, falta de ojos, etc.; son específicos de altas temperaturas en los primeros días de incubación. Otros como embriones paticortos pueden ser provocados por la insuficiencia de riboflavina, biotina, manganeso y otras causas como la alteraciones del 84 Diego Antonio Valdez Jojoa metabolismo, resultado de la incubación de huevos de bajo valor biológico. 2.13.1. Micromelia. Es una anomalía grave de los embriones ligada a alteraciones características en la formación de los cartílagos y la osificación de los huesos de las extremidades. Esta denominación de micromelia se introdujo para subrayar el origen alimenticio y no hereditario de esta. Cuando se está en presencia de esta enfermedad, las patas y a veces las alas de los embriones se ven sumamente cortas. La tibia es corta, torcida y se engrosa. El tarso también es corto y torcido. En las alas también se han recortado y engrosado los huesos largos: el húmero y el radio. La micromelia nutricional está acompañada de muchas otras lesiones. A las patas cortas y torcidas se agregan a veces deformaciones en el cráneo. La cabeza es ancha, la mandíbula inferior queda sin desarrollar completamente y esta parte del pico resulta mas corta. La parte superior del pico, por el contrario aumenta de tamaño y se dobla hacia abajo y el pico adquiere la forma de pico de loro. La columna vertebral en la parte del cuello está a veces torcida. Se altera el desarrollo del 85 Diego Antonio Valdez Jojoa plumón. Las papilas plumíferas aumentan su tamaño y no se abren en zonas de la piel, por eso parece que el cuerpo del embrión está cubierto de cabezas de alfileres y no de plumón. Algunas papilas plumíferas se abren aunque más tarde, y el plumón sale torcido, ensortijado, erizado. El cuerpo de los embriones muertos prematuramente es a veces edematoso. Los dedos están espasmódicamente estirados, o por el contrario doblados hacia atrás. Entre el tercero y cuarto dedos puede haber una membrana (sin dactilia). En la mayoría de los casos la micromelia viene acompañada de una retención del crecimiento. Las posibles causas de la aparición de embriones macromélicos son: la insuficiencia en los piensos de elementos como riboflavina, biotina y manganeso (7). 2.13.2. Ataxia. Esta anomalía se caracteriza por la incoordinación de los movimientos musculares de los pollitos nacidos. La forma más común de manifestaciones de la ataxia son los movimientos frecuentes de la cabeza hacia arriba y atrás, opistótonos. En otros casos la cabeza de los pollitos cae sobre la espalda y efectúan movimientos giratorios continuos o periódicos. A esta 86 Diego Antonio Valdez Jojoa forma de ataxia se llama epistocistosis. El embrión no puede recoger las patas ni pararse sobre ellas. Los movimientos de la cabeza son prolongados durante mucho tiempo, generalmente el pollo muere bastante rápido. Es menos frecuente la segunda forma de ataxia, la emprostocistosis; en este caso la cabeza de los polluelos está doblada hacia abajo y hacia atrás, en dirección de la cola. Esta enfermedad es provocada por la insuficiencia de biotina y manganeso. Y a veces la falta de tiamina también la provoca (7). 2.13.3. Perosis (Tendón deslizado, deslizable o caído, articulación deslizable). Esta enfermedad influye sobre el desarrollo de los huesos. El síntoma más característico de esta enfermedad es el engrosamiento de la articulación tibio-metatarciana y la torcedura del extremo inferior de la tibia y del extremo superior del metatarso. Como resultado se desplaza la articulación y el tendón de Aquiles que es la prolongación del músculo tensor del metatarso. 87 Diego Antonio Valdez Jojoa La perosis se provoca por la insuficiencia de manganeso, ácido fólico, biotina, ácido nicotínico y posiblemente vitamina B12 en la ración de las reproductoras (14). ___________________________ 88 Diego Antonio Valdez Jojoa CAPÍTULO III 3. MATERIALES Y MÉTODOS 3.1. MATERIALES. Los materiales que se emplearon en el trabajo investigativo se clasifican de la siguiente manera: 3.1.1. Materiales de Campo. a. Físicos. - Madera. - Espuma flex. - Termómetros. - Bandejas para el agua - Lámparas de halógeno. - Agua. - Ovoscopio. - Bomba de mano. - Escoba. - Franela. 89 Diego Antonio Valdez Jojoa - Varilla redonda de hierro. - Serrucho, - Martillo. - Clavos. - Flexómetro. b. Químicos - Glutaquat ®. Desinfectante para las incubadoras y huevos. (composición por 100ml: glutaraldehido 40ml, clorato de alquil dimetil benzil amonio 10ml, vehiculo c.s.p. 100ml c. Biológicos. - Huevos criollos fértiles 3.1.2. Materiales de escritorio. - Lápiz, - Bolígrafo. - Cuaderno de notas. - Papel Bond - Computador. 90 Diego Antonio Valdez Jojoa - Impresora. - Cámara fotográfica. 3.2. MÉTODOS 3.2.1. Ubicación Geográfica. El trabajo práctico se lo realizará en el Sector Naste Alto, perteneciente a la Parroquia de Tomebamba, Cantón Paute, Provincia del Azuay; a 500 m de la vía Paute- Dug DugGuarainag, en las siguientes coordenadas: - Altitud 2530 m.s.n.m. - Latitud 02º 45’ Sur - Longitud 78º 39’ W 3.2.2. Método de Incubación. Se empleó el método de incubación artificial utilizando una incubadora artesanal de fabricación casera para los tratamientos A y B, y como testigo una incubadora de fabricación comercial de las siguientes características: 91 Diego Antonio Valdez Jojoa - Incubadora automática, volteo cada hora, temporizador. - Funcionamiento en 120V. 250 W. 50/60 Hz. - 3 bandejas incubadoras para 60 huevos cada una. - 1 cubeta nacedora en la parte inferior. - Ventilación forzada mediante ventilador - Regulación automática de temperatura por sistema electrónico digital. - Medidas aprox. 42 kg de peso, 77 x 40 x 93 cms. - Capacidades totales aproximadas: Codornices: 594 Gallinas: 180 3.2.3. Construcción de la Incubadora Artesanal. La incubadora artesanal se construyó de tal forma que sus materiales de fabricación mantengan los requerimientos y condiciones necesarias para la incubación, dichos materiales son económicos y de fácil adquisición como la madera, espuma flex, clavos, alambres, etc. Las dimensiones de la incubadora de fabricación artesanal son las siguientes: 92 Diego Antonio Valdez Jojoa - Alto 125cm - Ancho 70cm - Profundidad 70cm. Para establecer las condiciones y requerimientos físicos de la incubación (temperatura, humedad, intercambio gaseoso, etc.) dentro de la estructura base se implementó diferentes sistemas que se detalla a continuación. a. Sistema de Calefacción.- Este fue un sistema eléctrico, compuesto por una lámpara halógena de 150W en la parte superior, para conservar el calor las paredes de la estructura de madera se revistieron con espuma flex de 1,5cm de espesor. La regulación de la temperatura en el interior de la incubadora se realizó gracias al empleo de un termostato de fabricación sencilla y de bajo costo. b. Mantenimiento de la Humedad.- Para mantener una suficiente humedad ambiental en el interior de la incubadora se empleo una bandeja con agua colocada en la parte inferior de la incubadora. De esta forma con la temperatura ambiente dentro de la incubadora, el 93 Diego Antonio Valdez Jojoa agua se calienta y se evapora lentamente manteniendo el porcentaje óptimo de humedad (ver Anexo # 16). c. Sistema de Movimiento y Volteo de los Huevos.Para mover y voltear los huevos se empleó un sistema mecánico cuya fuerza motriz fue la del agua. Este sistema consta de 2 ruedas de bicicleta, una pequeña y otra grande, la rueda pequeña está fijada al eje de rotación de las bandejas y está unida a una rueda grande (rueda posterior sin piñones) mediante una banda de caucho. La rueda grande se fijó a la pared externa del habitáculo que se empleó para la incubación. Esta rueda tiene 4 recipientes pequeños de metal equidistantes uno del otro en la parte externa. La fuerza motriz -el agua- proviene de una acequia que pasa a 30m del local y es llevada mediante manguera hacia el mismo. Al dejar caer el agua en uno de los tarros, este se llena, por el peso del agua, hace girar la rueda grande y a su vez gira la rueda pequeña por ayuda de la banda de caucho. La velocidad con que las ruedas giraban dependía de la cantidad de agua que llegaba por la mangara manteniendo una relación directa, es decir que mientras mayor cantidad de agua llegaba, la velocidad con que giraban las ruedas era 94 Diego Antonio Valdez Jojoa también mayor. Para que exista un volteo cada hora, se necesitaba que la rueda grande gire 7 vueltas en una hora, por lo tanto la cantidad de agua requerida era de 2lt por minuto. d. Sistema de Ventilación e Intercambio Gaseoso.- Este es un sistema de ventilación estanco, esto quiere decir que el aire se emite naturalmente formando corrientes imperceptibles. Para este sistema se realizó unos agujeros en la parte inferior de la incubadora, y otro agujero en la parte superior, el último debe de ser un poco más grande que los anteriores y con una tapa reguladora. 3.2.4. Selección de los huevos para la incubación. Los huevos seleccionados para la incubación tanto en la incubadora casera como en la incubadora de fabricación industrial fueron de un peso de 50 a 70gr aproximadamente, estos se recolectaron en la localidad en una cantidad de 100 huevos verdes-azulado y 100 huevos de color café claro por cada repetición y tratamiento. Se descartaron huevos deformes y viejos, ya que mientras más viejos son los huevos el porcentaje de incubabilidad disminuye debido a la muerte 95 Diego Antonio Valdez Jojoa embrionaria pre- incubación, por tal razón los huevos empleados fueron de máximo 8 días de postura. 3.2.5. Manejo y ovoscopiado de los huevos. Luego de haber seleccionado los huevos se procedió a limpiarlos y a desinfectarlos e iniciar la incubación. El ovoscopiado de los huevos se realizó con el fin de eliminar los huevos infértiles y los que contienen embriones muertos en su interior, para lo cual se empleo un ovoscopio de fabricación cacera el cual consiste en un cajón pequeño que en su interior tiene un foco, y en uno de sus lados presenta un orificio de tamaño un poco menor que el huevo permitiendo observar el interior del mismo. Esta actividad se realizó a los 7 y 15 días de puesto a incubar los huevos. 3.2.6. Manejo de la incubadora. Previo a la incubación definitiva, se procedió a calibrar la incubadora: Sistema de calefacción, Sistema de intercambio gaseoso y ventilación, Humedad y sistema de volteo, calibrado una vez todos los sistemas se desinfectó y se inició la incubación. 96 Diego Antonio Valdez Jojoa a. Temperatura.- La calibración de la temperatura se la realizó con el uso de un termostato y de un termómetro ambiental. Para calibrar el termostato se gira el potenciómetro, a la izquierda cuando la temperatura está baja y a la derecha cuando la temperatura está alta, este proceso se realizó hasta alcanzar la temperatura requerida para la incubación (38- 39°C). b. Humedad.- La humedad se controló empleando la tabla del anexo # 16, en donde, se toma la temperatura del agua y la del ambiente interno de la incubadora y se verifica en dicha tabla para determinar la humedad relativa. c. Volteo.- El volteo se calibró mediante el flujo de agua que llegaba por la manguera, la cantidad de agua requerida era a razón de 2lt por minuto, lo que permitía que la rueda grande gire 7 vueltas en 1 hora y la rueda pequeña 1 vuelta en 1 hora. d. Ventilación e Intercambio gaseoso.- Estos dos factores se controlaron dejando una abertura de un 1/3 de vuelta en la parte superior permitiendo así una buena ventilación e intercambio gaseoso. 97 Diego Antonio Valdez Jojoa 3.3. FACTORES DE ESTUDIO. Los factores de estudio tanto en la incubadora artesanal como testigo fueron los siguientes: - Tasa (%) de Fertilidad de los huevos criollos. o Huevos verde-azulado. o Huevos café claro. - Tasa de Incubabilidad de los huevos criollos. o Huevos verde-azulado. o Huevos cafés claro. - Eficiencia de funcionamiento de la incubadora artesanal planteada. - Costos de Fabricación e instalación. - Costos de operación y producción. 3.4. DATOS A TOMARSE. Los datos tomados de la incubadora artesanal como de la incubadora testigo fueron los siguientes: - Cantidad de huevos embrionados. o Nº de huevos verde-azulado embrionados. 98 Diego Antonio Valdez Jojoa o Nº de huevos café claro embrionados. - Cantidad de huevos eclosionados. o Nº de huevos verde-azulado eclosionados. o Nº de huevos café claro eclosionados. - Cantidad de embriones muertos. o Nº de huevos verde-azulado con embriones muertos. Primera semana. Segunda semana. Tercera semana. o Nº de huevos café claro con embriones muertos. Primera semana. Segunda semana. Tercera semana. 3.5. DISEÑO EXPERIMENTAL. Para esta investigación se empleó un D.C.A. (Diseño Completamente al Azar). En donde se estudio los siguientes tratamientos: - Trat. A. Incubación de huevos criollos de color café claro. 99 Diego Antonio Valdez Jojoa - Trat. B. Incubación de huevos criollos de color verdeazulado. - Testigo A. Incubación de huevos criollos de color café claro. - Testigo B. Incubación de huevos criollos de color verdeazulado. 3.5.1. Tratamiento A, Incubación de huevos café claro. Consta de cuatro repeticiones con la incubación de 100 huevos de color café por cada una de las repeticiones. 3.5.2. Tratamiento B, Incubación de huevos verde- azulado. De igual manera, consta de cuatro repeticiones con la incubación de 100 huevos de color verde-azulado por cada repetición. 3.5.3. Testigo A, Incubación de huevos café claro. Consta de cuatro repeticiones con la incubación de 100 huevos de color café por cada una de las repeticiones. 100 Diego Antonio Valdez Jojoa 3.5.4. Testigo B, Incubación de huevos verde- azulado. De igual manera, consta de cuatro repeticiones con la incubación de 100 huevos de color verde-azulado por cada repetición. 3.6. DISEÑO ESTADÍSTICO. - Tipo de diseño: DCA. - Número de tratamientos: 2 - Número de repeticiones: 4 - Número de U. Exp: 8 - Nº de huevos por U. Exp: 100 - Total de huevos para el DCA: 3.7. 800 ESQUEMA DEL ADEVA El esquema del ADEVA que se empleó es el siguiente: 101 Diego Antonio Valdez Jojoa F de V 3.7.1. gl Total 7 Tipo de huevos (Trat.) 1 E. Exp 6 Coeficiente de Variación. C.V. = √(CM E.Exp) x 100 X 3.7.2. Pruebas. - Prueba de aplicación de DMS o Duncan. 3.7.3. Cuadros. - Cuadro de frecuencias relativas. - Gráficos y figuras. 102 Diego Antonio Valdez Jojoa 3.8. ANÁLISIS DE COSTOS. 3.8.1. Costo de construcción de la Incubadora. Unidad Cant Madera Precio Prec. Unit Total $ 15,00 1 $ 0,70 $ 0,70 8 $ 0,75 $ 6,00 unidad 1 $ 6,50 $ 6,50 Termómetro unidad 1 $ 6,00 $ 6,00 Termostato unidad 1 $ unidad 1 $ 5,50 $ $ $ 10,00 10,00 Clavos libras Espuma Flex Plancha $ 15,00 Lámpara halógena 12,00 $ 12,00 Varilla redonda 5,50 Otros (vidrio, bisagras, alambre, etc.) Total $ 61,70 103 Diego Antonio Valdez Jojoa 3.8.2. Costo de los huevos criollos para experimento. Prec. Prec. Unidades Cantidad Unit Total $ $ 0,18 144,00 $ $ 0,18 144,00 Huevos verde- unidad 800 unidad 800 azulados Huevos café claro $ Total 3.8.3. 1600 288,00 Costos de materiales de escritorio. Artículo Unidades Cant Prec. Prec. Unit Total Cuaderno unidad 2 $ 1,00 Lápiz unidad 2 $ 0,25 $ 0,50 Esferos unidad 2 $ 0,30 $ 0,60 resma 1 $ 3,75 $ 3,75 Papel bond Total $ 2,00 $ 6,85 104 Diego Antonio Valdez Jojoa el 3.8.4. Costos de materiales químicos. Prec. Artículo Unidad Cantidad Unit Glutaquat ® cc (desinfectante) 3.8.5. 150 $ 4,50 4,50 Costo de servicios básicos Concepto Unidades Cantidad Unit Energía elect. Total $ Prec. Agua Prec. -kwt -153 $ 5,00 Prec. Total $ 5,00 $ $ 0,10 15,30 $ Total 20,30 105 Diego Antonio Valdez Jojoa 3.8.6. Costo total de la investigación Concepto Valor Costo de construcción de la incubadora $ 61,70 Costo de huevos $ 288,00 $ 6,85 químicos $ 4,50 Servicios Básicos. $ 60,00 Otros (transporte, $ 20,00 Total $ 441,05 Costo materiales de escritorio Costo de materiales 106 Diego Antonio Valdez Jojoa CAPÍTULO IV 4. RESULTADOS 4.1. HUEVOS EMBRIONADOS. 4.1.1. Cantidad de huevos café claro embrionados. La cantidad de huevos de color café claro fértiles se detalla en el siguiente cuadro. Cuadro N°1. Cantidad de huevos café claro embrionados. Rep. I II III IV Σx x 4.1.1.1. Embrionados Trat. A Testigo A Σ Rep. 82 89 171 78 85 163 83 86 169 85 82 167 328 342 670 82 85,5 83,75 Tasa de Fertilidad.- La tasa de fertilidad se determina por la cantidad de huevos embrionados dividido para la cantidad de huevos colocados en 107 Diego Antonio Valdez Jojoa la incubadora (siendo un total de 100 huevos puestos a incubar por cada repetición) y por 100, de acuerdo a esta definición, la tasa de fertilidad es la siguiente: Tasa de Fertilidad = N° de Huevos embrionados * 100 Total de huevos incubados a. Tasa de fertilidad de los huevos café claro del Tratamiento A. % de Fertilidad = (328/400)*100 % de Fertilidad = 82% Tasa de infertilidad = 100- Tasa de fertilidad T. infertilidad = 100- 82 T. infertilidad = 18% b. Tasa de fertilidad de los huevos café claro del Testigo A. % de Fertilidad = (342/400)*100 % de Fertilidad = 85.5% 108 Diego Antonio Valdez Jojoa Tasa de infertilidad = 100- Tasa de fertilidad T. infertilidad = 100- 85.5% T. infertilidad = 14.5% De acuerdo a los cálculos realizados, podemos observar que los huevos de color café claro tienen un porcentaje de fertilidad del 82%. Y un porcentaje de infertilidad del 18% en el tratamiento A mientras que el testigo muestra un 85,5% de fertilidad y un 14,5% de infertilidad. Huevos color cafe claro Embrionados 89 90 Huevos embrionados 88 84 82 86 85 86 83 82 80 85 82 Testigo A 78 78 Trat. A 76 74 72 I II III IV Repetición Gráfico N°1. Cantidad de huevos de color café claro embrionados tanto del tratamiento como del testigo. 109 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.1.2. Número de huevos verde-azulado embrionados. La cantidad de huevos de color verde-azulado embrionados se detalla en el siguiente cuadro. Cuadro N°2. Cantidad de huevos verde-azulado embrionados. Rep. I II III IV Σx x 4.1.2.1. Embrionados Σ Rep. Trat. B Testigo B 85 88 173 90 94 184 84 90 174 80 96 176 339 368 707 84,75 92 88,375 Tasa de Fertilidad.- La tasa de fertilidad de los huevos verde-azulados fue la siguiente: Tasa de Fertilidad = N° de Huevos embrionados * 100 Total de huevos incubados % de Fertilidad = (339/400)*100 % de Fertilidad = 84,75% Tasa de infertilidad = 100- Tasa de fertilidad T. infertilidad = 100- 84,75 110 Diego Antonio Valdez Jojoa T. infertilidad = 15,25% De acuerdo a los cálculos, la tasa de fertilidad de los huevos de color verde-azulado es de 84.75% y la tasa de infertilidad es de 15.25%. Huevos color verde azulado embrionados Huevos embrionados 100 90 85 96 94 95 88 90 90 85 Trat. B 84 80 80 Testigo B 75 70 I II III IV Repetición Gráfico N°2. Cantidad de huevos de color verde azulado embrionados tanto del tratamiento como del testigo. 4.2. HUEVOS ECLOSIONADOS. 4.2.1. Cantidad de huevos de color café claro eclosionados en el Tratamiento A. La cantidad de huevos eclosionados se explica en el siguiente cuadro: 111 Diego Antonio Valdez Jojoa Cuadro N°3 Cantidad de huevos de color café claro eclosionados. Tratamiento A Emb. Rep Muertos Eclosionados Σ Rep. I 39 43 82 II 43 35 78 III 38 45 83 IV 39 46 85 159 169 328 39,75 42,25 Σ Trat. x 4.2.1.1 Tasa de Incubabilidad.- determinado por el número de pollos nacidos para el número de huevos embrionados por 100. Tasa de Incubabilidad = N° de pollos nacidos * 100 N° de huevos fértiles % de Incubabilidad = (169/328)*100 % de Incubabilidad = 51,52% 112 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.2.1.2. Tasa de Tasa de mortalidad embrionaria. mortalidad embrionaria =100- % de incubabilidad % mortalidad embrionaria = 100- 51.52 % mortalidad embrionaria = 48,48% Porcentaje de incubabilidad de los huevos de color café claro. 48,48% 51,52% Embriones Muertos Pollitos Nacidos Gráfico N° 3. Porcentaje de incubabilidad de los huevos de color café claro en el tratamiento A. 4.2.2. Cantidad de huevos de color café claro eclosionados en el Testigo A. La cantidad de huevos eclosionados se explica en el siguiente cuadro: 113 Diego Antonio Valdez Jojoa Cuadro N°4 Cantidad de huevos eclosionados en el testigo A. Testigo A Emb. Rep Muertos Eclosionados Σ Rep. I 50 39 89 II 48 37 85 III 46 40 86 IV 44 38 82 Σ Trat. 188 154 342 x 47,0 38,5 4.2.2.1. Tasa de Incubabilidad.- determinado por el número de pollos nacidos para el número de huevos embrionados por 100. % de Incubabilidad = (154/342)*100 % de Incubabilidad = 45,03% 4.2.2.2. Tasa de mortalidad embrionaria. 114 Diego Antonio Valdez Jojoa Tasa de mortalidad embrionaria =100- % de incubabilidad % mortalidad embrionaria = 100- 45.03 % mortalidad embrionaria = 54,97% Incubabilidad de los huevos de color café claro del Testigo. 45,03% 54,97% Embriones Muertos Pollitos Nacidos Gráfico N° 4. Porcentaje de incubabilidad de los huevos de color café claro en el testigo. 4.2.3. Cantidad de huevos verde-azulado eclosionados (Tratamiento B). La cantidad de huevos verde-azulados eclosionados se explica en el siguiente cuadro: 115 Diego Antonio Valdez Jojoa Cuadro N°5 Cantidad de huevos de color verde azulado eclosionados. Tratamiento B Emb. Rep Pollitos Muertos nacidos Σ Rep. I 40 45 85 II 47 43 90 III 37 47 84 IV 38 42 80 Σ Trat. 162 177 339 x 40,5 44,25 4.2.3.1. Tasa de Incubabilidad.- determinado por el número de pollos nacidos para el número de huevos embrionados y por 100. % de Incubabilidad = (177/339)*100 % de Incubabilidad = 52,21% 4.2.3.2. Tasa Tasa de mortalidad embrionaria. de mortalidad embrionaria =100- % incubabilidad 116 Diego Antonio Valdez Jojoa de % mortalidad embrionaria = 100- 52,21 % mortalidad embrionaria = 47,79% Incubabilidad y muerte embrionaria de los huvos de color verde azulado (Tratamiento B) 47,79% 52,21% Embriones Muertos Pollitos Nacidos Gráfico N° 5. Porcentaje de incubabilidad y muerte embrionaria de los huevos de color verde-azulado (Tratamiento B). 4.2.4. Cantidad de huevos verde-azulado eclosionados (Testigo B). La cantidad de huevos verde-azulados eclosionados se explica en el siguiente cuadro: Cuadro N°6 Cantidad de huevos eclosionados en el Testigo B. 117 Diego Antonio Valdez Jojoa Testigo B Emb. Rep Muertos Eclosionados Σ Rep. I 62 26 88 II 54 40 94 III 47 43 90 IV 39 57 96 Σ Trat. 202 166 368 x 50,5 41,5 4.2.4.1. Tasa de Incubabilidad.- determinado por el número de pollos nacidos para el número de huevos embrionados y por 100. % de Incubabilidad = (166/368)*100 % de Incubabilidad = 45,10% 4.2.4.2. Tasa Tasa de mortalidad embrionaria. de mortalidad embrionaria =100- % incubabilidad % mortalidad embrionaria = 100- 45,10 % mortalidad embrionaria = 54,90% 118 Diego Antonio Valdez Jojoa de Incubabilidad y muerte embrionaria de los huevos de color verde azulado en el Testigo B 45,11% 54,89% Embriones muertos Eclosionados Gráfico N° 6. Porcentaje de incubabilidad y muerte embrionaria de los huevos de color verde-azulado (Testigo B). 4.3. EMBRIONES MUERTOS. La cantidad de embriones muertos durante el experimento se clasifica de acuerdo al tiempo de incubación en: Embriones muertos en muertos en muertos en la Primera semana. Embriones la Segunda semana. Embriones la Tercera semana. 119 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.3.1. Embriones muertos encontrados en el Tratamiento A La cantidad de huevos con embriones muertos fue la siguiente: Cuadro N° 7. Embriones muertos en el Tratamiento A de acuerdo al tiempo de incubación. Tratamiento A 1° Rep. 2° Σ 3° semana semana semana Rep. I 15 11 13 39 II 13 16 14 43 III 12 10 16 38 IV 14 12 13 39 Σ Trat. 54 49 56 159 13,5 12,25 14 X 120 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.3.1.1. Porcentaje de embriones muertos en las diferentes semanas. Del total de embriones muertos (159) durante el experimento en el tratamiento A, se reparte en forma de porcentaje de mortalidad por semana de incubación así: - Embriones muertos primera semana. 33,96% - Embriones muertos segunda semana. 29,01% - Embriones muertos tercera semana. 35,22% Embriones Muertos en el Tratamiento A 33,96% 35,22% 30,82% 1° semana 2° semana 3° semana Gráfico N° 7. Porcentaje de embriones muertos en el Tratamiento A. 121 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.3.2. Embriones muertos encontrados en el Testigo A La cantidad de huevos con embriones muertos fue la siguiente: Cuadro N° 8. Embriones muertos en el Testigo A de acuerdo al tiempo de incubación. Testigo A 1° Rep. 2° Σ 3° semana semana semana Rep. I 8 4 38 50 II 10 7 31 48 III 7 5 34 46 IV 9 8 27 44 Σ Trat. 34 24 130 188 X 8.5 6 32.5 47 122 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.3.2.1. Porcentaje de embriones muertos en las diferentes semanas. Del total de embriones muertos (188) durante el experimento en el Testigo A, se reparte en forma de porcentaje de mortalidad por semana de incubación así: - Embriones muertos primera semana. 18,08% - Embriones muertos segunda semana. 12,76% - Embriones muertos tercera semana. 69,15% Embriones muertos en el testigo A deacuerdo al periodo de incubación 34; 18% 24; 13% 130; 69% 1a sem. 2a sem 3a sem Gráfico N° 8. Porcentaje de embriones muertos en el Tratamiento A. 123 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.3.3. Embriones muertos encontrados en el Tratamiento B La cantidad de huevos con embriones muertos encontrados en este tratamiento fue la siguiente: Cuadro N° 9. Embriones muertos en el Tratamiento B de acuerdo al tiempo de incubación. Tratamiento B 1° Rep. 2° 3° semana semana semana Σ Rep. I 13 9 18 40 II 14 16 17 47 III 10 12 15 37 IV 12 10 16 38 Σ Trat. 49 47 66 162 12.25 11,75 16.55 x 4.3.3.1. Porcentaje de embriones muertos en las diferentes semanas. 124 Diego Antonio Valdez Jojoa Del total de embriones muertos (162) durante el experimento en el tratamiento A, se reparte en forma de porcentaje de mortalidad por semana de incubación así: - Embriones muertos primera semana. 30,25% - Embriones muertos segunda semana. 29,01% - Embriones muertos tercera semana. 40,74% Embriones muertos en el Tratamiento B 30,25% 40,74% 29,01% 1° semana 2° semana 3° semana Gráfico N° 9. Porcentaje de embriones muertos en el Tratamiento B. 4.3.4. Embriones muertos encontrados en el Testigo B La cantidad de huevos con embriones muertos encontrados en este testigo fue la siguiente: 125 Diego Antonio Valdez Jojoa Cuadro N° 10. Embriones muertos en el Testig B de acuerdo al tiempo de incubación. Testigo B 1° Rep. 2° 3° semana semana semana Σ Rep. I 4 3 55 62 II 6 7 41 54 III 5 5 37 47 IV 7 9 23 39 Σ Trat. 22 24 156 202 x 5.5 6 39 50.5 4.3.4.1. Porcentaje de embriones muertos en las diferentes semanas. Del total de embriones muertos (202) durante el experimento en el testigo A, se reparte en forma de porcentaje de mortalidad por semana de incubación así: - Embriones muertos primera semana. 10,89% - Embriones muertos segunda semana. 11,88% - Embriones muertos tercera semana. 77,23% 126 Diego Antonio Valdez Jojoa Embriones muertos en el Testigo B 22; 11% 24; 12% 156; 77% 1a sem. 2a sem 3a sem Gráfico N° 10. Porcentaje de embriones muertos en el Testigo B. 4.4. ANÁLISIS DE VARIANCIA (ADEVA). 4.4.1. ADEVA de los huevos Embrionados. 4.4.1.1. ADEVA de los Huevos embrionados de color café claro. Cuadro N°11. Cantidad de huevos de color café claro embrionados en el tratamiento A y su respectivo Testigo. Rep. I II III IV Σx x Embrionados Σ Rep. Trat. A Testigo A 82 89 171 78 85 163 83 86 169 85 82 167 328 342 670 82 85,5 83,75 127 Diego Antonio Valdez Jojoa Huevos de color café claro embrionados. 89 # De huevos embrionados. 90 85 86 85 83 82 80 85 82 78 75 70 I II III IV Repeticiones. Embrionados Trat. A Embrionados Testigo A Gráfico N° 11. Histograma de frecuencias de huevos café claro embrionados en el experimento. Cuadro N°12. ADEVA de la cantidad de huevos de color café claro embrionados. F de V Total Trat E. Exp F Tab 5% 1% Gl 7 1 6 SC CM F cal 75,5 24,5 24,5 2,88NS 5,99 51 8,5 13,75 CV= 3,48% 128 Diego Antonio Valdez Jojoa Realizado el ADEVA, se obtuvo un F calculado de 2,88 que es inferior al F tabular al 5% y al 1% dándonos como resultado un valor No Significativo (NS) para el tratamiento y su testigo. El Coeficiente de Variación de 3.,48% nos indica que el experimento se llevo correctamente y que el porcentaje de huevos embrionados tanto en el tratamiento A como en su testigo son similares. 4.4.1.2. ADEVA de los Huevos embrionados de color verde- azulado. Cuadro N°13. Cantidad de huevos de color verde azulado embrionados por tratamiento y testigo. Rep. I II III IV Σx x Embrionados Trat. B Testigo B Σ Rep. 85 88 173 90 94 184 84 90 174 80 96 176 339 368 707 84,75 92 88,375 129 Diego Antonio Valdez Jojoa Huevos de color verde azulado embrionados. 100 95 # de huevos embrionados 96 94 88 90 90 90 85 85 84 80 80 75 70 I II III IV Repeticiones Embrionados Trat. B Embrionados Testigo B Gráfico N° 12. Histograma de frecuencias de huevos de color verde azulado embrionados en el experimento. Cuadro N° 14. ADEVA de la cantidad de huevos de color verde azulado embrionados por tratamiento y testigo. F de V Total Trat E. Exp Gl F Tab 5% 1% SC CM F cal 7 195,875 1 105,125 105,125 6,95* 5,99 6 90,75 15,125 13,75 CV= 4,40% 130 Diego Antonio Valdez Jojoa Prueba de significación de Duncan al 5%. Tratamiento Testigo B X 92 Tratamiento B 84.75 a b Realizado el ADEVA, se obtuvo un F calculado de 6,95* que es superior al F tabular al 5% pero inferior al 1% dándonos como resultado un valor Significativo (*), por lo que existe diferencias significativas entre la cantidad de huevos embrionados del Tratamiento B y su testigo con un 95% de seguridad. La prueba de significación de Duncan al 5% determina que el más eficiente en generar mayor cantidad de huevos embrionados es el testigo. El Coeficiente de Variación de 4,40% indica que el experimento se llevo correctamente. 4.4.1.3. ADEVA de los Huevos embrionados entre el Tratamiento A y el Tratamiento B. Cuadro N°15. Cantidad de huevos embrionados por tratamiento obtenidos en el experimento. Huevos embrionados Rep Trat. A Trat. B 131 Σ Rep. Diego Antonio Valdez Jojoa I 82 85 167 II 78 90 168 III 83 84 167 IV 85 80 165 328 339 667 82 84,75 83,38 Σ Trat. x # Huevos embrionados Huevos embrionados en los Tratamientos A y B 95 90 90 85 85 83 84 82 80 78 80 85 Trat. A Trat. B 75 70 I II III IV Repeticiones Gráfico N° 13. Porcentaje de huevos embrionados en los Tratamientos A y B. 132 Diego Antonio Valdez Jojoa Cuadro N° 16. ADEVA de la cantidad de huevos embrionados por tratamiento. F de V gl SC CM F Cal F tab. Total 7 91,88 0,05 0,01 NS Tratamientos 1 15,13 15,13 1,18 5,99 13,75 E. Exp. 6 76,75 12,79 CV= 4,29% Realizado el ADEVA, se obtuvo un F calculado de 1,18 que es inferior al F tabular al 5% y al 1% dándonos como resultado un valor No Significativo (NS) para los tratamientos. El Coeficiente de Variación de 4,29% nos indica que el experimento se llevo correctamente y que el porcentaje de huevos embrionados de los dos tratamientos bajo las mismas condiciones son similares. 4.4.2. ADEVA de pollitos nacidos. 4.4.2.1. ADEVA de Pollitos nacidos de huevos de color café claro. Cuadro N°17. Cantidad de pollitos nacidos de los huevos de color café claro en el tratamiento y testigo. 133 Diego Antonio Valdez Jojoa Nacidos Σ Rep. Trat. A Testigo A 43 39 82 35 37 72 45 40 85 46 38 84 169 154 323 42,25 38,5 40,375 Rep. I II III IV Σx x Pollitos nacidos de los huevos de color café claro en el tratamiento y testigo 50 39 40 Cantidad 46 45 43 40 35 37 38 30 Trat. A 20 Testigo A 10 0 I II III IV Repeticones Gráfico N° 14. Pollitos nacidos en el Tratamiento A y su testigo. Cuadro N°18. ADEVA de la cantidad de pollitos nacidos de los huevos de color café claro. F de V Total Trat E. Exp Gl 7 1 6 F Tab 5% 1% SC CM F cal 107,875 28,125 28,125 2,12NS 5,99 79,75 13,75 13,3 134 Diego Antonio Valdez Jojoa CV= 9,29% Del ADEVA, se obtiene un F calculado de 2.12NS, que es un valor No Significativo al 5% y 1% demostrandonos que no existen diferencias significativas entre el Tratamiento y el testigo. El Coeficiente de Variación es del 9,29%, indicándonos que el experimento se llevo correctamente. 4.4.2.2. ADEVA de Pollitos nacidos de huevos de color verde azulado. Cuadro N°19. Cantidad de pollitos nacidos por tratamiento y testigo. Rep. I II III IV Σx x Nacidos Σ Rep. Trat. B Testigo B 45 26 71 43 40 83 47 43 90 42 57 99 177 166 343 44,25 41,5 42,875 135 Diego Antonio Valdez Jojoa Pollitos nacidos de los huevos de color verde azulado en el tratamiento y testigo. 57 60 Cantidad 50 45 43 40 40 47 43 42 Trat. B 26 30 Testigo B 20 10 0 I II III IV Repeticiones Gráfico N° 15. Cantidad de pollitos nacidos de los huevos de color verde azulado (Tratamiento y testigo). Cuadro N°20. ADEVA de la cantidad de pollitos nacidos de los huevos de color verde azulado (Tratamiento y testigo). F de V Total Trat E. Exp Gl F Tab 5% 1% SC CM F cal 7 514,88 1 15,13 15,125 0,18NS 5,99 13,75 6 499,8 83,29 CV= 21,28% Del ADEVA, se obtiene un F calculado de 0.18, que es un valor No Significativo al 5% y 1% lo que nos demuestra que no existen diferencias significativa entre el tratamiento y el testigo 136 Diego Antonio Valdez Jojoa en lo que respecta a la cantidad de pollitos nacidos de huevos de color verde azulado. El Coeficiente de Variación es del 21,28%, y que al estar dentro de los límites, indica que el experimento fue llevado correctamente. 4.4.2.3. ADEVA de Pollitos nacidos en el tratamiento A y B. Cuadro N°21. Cantidad de pollitos nacidos por tratamiento obtenidos en el experimento. Pollitos Nacidos Rep Trat. A Σ Rep. Trat. B I 43 45 88 II 35 43 78 III 45 47 92 IV 46 42 88 169 177 346 42,25 44,25 43,25 Σ Trat. x 137 Diego Antonio Valdez Jojoa Pollitos nacidos en los tratamientos A y B 50 43 45 Cantidad 40 45 47 43 46 42 35 30 Trat. A 20 Trat. B 10 0 I II III IV Repeticiones Gráfico N° 16. Cantidad de pollitos nacidos de los tratamientos A y B del experimento. Cuadro N°22. ADEVA de la cantidad de pollitos nacidos por tratamiento en el experimento. F de V gl SC CM F Cal F Tab. Total 7 97,5 0,05 0,01 NS Tratamientos 1 8 8 0,53 5,99 13,75 E. Exp. 6 89,5 14,91 CV= 8,93% Del ADEVA, se obtiene un F calculado de 0.53, que es un valor No Significativo al 5% y 1% lo que nos demuestra que bajo las mismas condiciones en este sistema de incubación, la cantidad de pollitos nacidos en los tratamientos A y B, son 138 Diego Antonio Valdez Jojoa similares. El Coeficiente de Variación es del 8,93%, lo que nos indica que el experimento se llevo correctamente. 4.4.3. ADEVA de la Mortalidad embrionaria 4.4.3.1. ADEVA de la mortalidad embrionaria en la primera semana de incubación en huevos de color café claro. Cuadro N°23. Cantidad de embriones muertos en la primera semana de incubación. Tratamiento A y su testigo. Rep. I II III IV Σx x Muertos 1a semana Trat. Testigo Σ Rep. A A 15 8 23 13 10 23 12 7 19 14 9 23 54 34 88 13,5 8,5 11 139 Diego Antonio Valdez Jojoa Embriones muertos en la primera semana de incubación. Huevos de color café claro. Cantidad 20 15 15 13 10 8 10 14 12 Trat. A 9 7 Testigo A 5 0 I II III IV Repeticiones Gráfico N° 17. Cantidad de embriones muertos en la primera semana de incubación. Huevos de color café claro. Cuadro N°24 . ADEVA de la cantidad de embriones muertos de los huevos de color café claro. F de V Total Trat E. Exp Gl SC CM 7 1 60 50 6 10 F Tab 5% 1% F cal 50 30,00** 5,99 13,75 1,67 CV= 11,73% 140 Diego Antonio Valdez Jojoa Prueba de significación de Duncan al 5% Tratamiento Tratamiento A Testigo A Xi 13.5 8.5 a b Del ADEVA, se obtuvo un F calculado de 30.00, valor mayor a F tabular al 5% y 1%, lo que indica que las diferencias entre el tratamiento A y su testigo son altamente significativas tanto al 5% como al 1% con respecto a la mortalidad en la primera semana de incubación. Realizada la prueba de significación de Duncan al 5% se puede establecer que el testigo (Incubación de huevos de color café claro en incubadora comercial), genera menor mortalidad embrionaria en la primera semana de incubación con respecto al tratamiento A (incubación de huevos de color café claro en incubadora artesanal). El Coeficiente de Variación obtenido es de 11,73%, lo que significa que el experimento se llevo correctamente. 141 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.4.3.2. ADEVA de la mortalidad embrionaria en la primera semana de incubación en huevos de color verde azulado. Cuadro N°25. Cantidad de embriones muertos en la primera semana de incubación. Tratamiento B y su testigo. Rep. I II III IV Σx x Muertos 1a semana Trat. Testigo Σ Rep. B B 13 4 17 14 6 20 10 5 15 12 7 19 49 22 71 12,25 5,5 8,875 Embriones muertos en la primera semana de incubación de los huevos de color verde azulado. Cantidad. 15 14 13 12 10 10 7 6 5 4 5 Trat. B Testigo B 0 I II III IV Repeticiones 142 Diego Antonio Valdez Jojoa Gráfico N° 18. Cantidad de embriones muertos en la primera semana de incubación. Huevos de color verde azulado. Cuadro N°26 . ADEVA de la cantidad de embriones muertos de los huevos de color verde azulado en el tratamiento y testigo. F de V Total Trat E. Exp Gl F Tab 5% 1% SC CM F cal 7 104,875 1 91,125 91,125 39,76** 6 13,75 2,29 5,99 13,75 CV= 17,05% Prueba de significación de Duncan al 5% Tratamiento Tratamiento B Xi 12.25 Testigo B 5.5 a b Del ADEVA, se obtuvo un F calculado de 39.76, valor mayor al F tabular al 5% y 1%, lo que indica que las diferencias entre el tratamiento B (incubación de huevos de color verde azulado en incubadora artesanal) y su testigo (incubación de 143 Diego Antonio Valdez Jojoa huevos de color verde azulado en incubadora comercial) son altamente significativas con respecto a la mortalidad en la primera semana de incubación. Realizada la prueba de significación de Duncan al 5% podemos establecer que el que menor mortalidad embrionaria genera en esta etapa es el testigo (incubación en incubadora comercial). El Coeficiente de Variación obtenido es de 17,05%, lo que significa que el experimento se llevo correctamente. 4.4.3.3. ADEVA de embriones muertos en la primera semana de incubación entre el tratamiento A y B. Cuadro N°27. Cantidad de embriones muertos en la primera semana de incubación durante el experimento. Embriones muertos 1° semana Rep Trat. A Σ Rep. Trat. B I 15 13 28 II 13 14 27 III 12 10 22 IV 14 12 26 Σ Trat. 54 49 103 13,5 12,25 12,88 x 144 Diego Antonio Valdez Jojoa Embriones muertos Mortalidad embrionaria en los tratamientos A y B en la primera semana de incubación. 16 14 12 10 8 6 4 2 0 15 13 14 13 14 12 12 10 Trat. A Trat. B I II III IV Repeticiones Gráfico N° 19. Embriones muertos en la primera semana de incubación en los Tratamientos A y B. Cuadro N°28 . ADEVA de la cantidad de embriones muertos en la primera semana de incubación. Tratamientos A y B. F de gl SC CM F Cal F Tab. Total 7 16,88 0,05 0,01 NS Tratamientos 1 3,13 3,13 1,36 5,99 13,75 E. Exp. 6 13,76 2,3 CV= 11,77% Al obtener un F calculado de 1.36, que es no significativo a los valores de F tabular al 5% y al 1%, podemos decir que las 145 Diego Antonio Valdez Jojoa diferencias existentes entre la mortalidad del tratamiento A y el tratamiento B, son mínimas y que al obtener un valor de 11.77% en el Coeficiente de Variación indica que el experimento fue llevado correctamente. 4.4.3.4. ADEVA de la mortalidad embrionaria en la Segunda semana de incubación en huevos de color café claro. Cuadro N°29. Cantidad de embriones muertos en la segunda semana de incubación. Tratamiento A y su testigo. Rep. I II III IV Σx x Muertos 2a semana Trat. Testigo Σ Rep. A A 11 4 15 16 7 23 10 5 15 12 8 20 49 24 73 12,25 6 9,125 146 Diego Antonio Valdez Jojoa Embriones muertosa en la 2° semana de incubación. Huevos color café claro. Cantidad 20 15 16 11 12 10 10 8 7 5 4 5 Trat. A Testigo A 0 I II III IV Repeticiones Gráfico N° 20. Cantidad de embriones muertos en la segunda semana de incubación. Huevos de color café claro. Cuadro N°30. ADEVA de la cantidad de embriones muertos de los huevos de color café claro en la segunda semana de incubación. F de V Total Trat E. Exp Gl SC CM F cal 7 108,875 1 78,125 78,125 15,24** 6 30,75 5,13 F Tab 5% 1% 5,99 13,75 CV= 24,80% 147 Diego Antonio Valdez Jojoa Prueba de significación de Duncan al 5% Tratamiento Tratamiento A Xi 12.25 Testigo A 6.5 a b Del ADEVA, se obtuvo un F calculado de 15.24, valor mayor a F tabular al 5% y 1%, indica que las diferencias entre el tratamiento A y su testigo son altamente significativas con respecto a la mortalidad en la segunda semana de incubación. Realizada la prueba de significación de Duncan al 5% podemos establecer que el que menor mortalidad embrionaria genera en la segunda semana de incubación es el testigo (incubación en incubadora comercial). El Coeficiente de Variación obtenido es de 24.80%, lo que se establece que en esta etapa existió mucha variación. 148 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.4.3.5. ADEVA de la mortalidad embrionaria en la Segunda semana de incubación en huevos de color verde azulado. Cuadro N°31. Cantidad de embriones muertos en la Segunda semana de incubación. Tratamiento B y su testigo. Rep. I II III IV Σx x Muertos 2a semana Trat. Testigo Σ Rep. B B 9 3 12 16 7 23 12 5 17 10 9 19 47 24 71 11,75 6 8,875 Embriones muertos en la segunda semana de incubación. Huevos de color verde azulado. Cantidad 20 16 15 10 12 9 10 7 5 Trat. B Testigo B 5 3 9 0 I II III IV Repeticiones Gráfico N° 21. Cantidad de embriones muertos en la segunda semana de incubación. Huevos de color verde azulado. 149 Diego Antonio Valdez Jojoa Cuadro N°32 . ADEVA de la cantidad de embriones muertos en la segunda semana de incubación de los huevos de color verde azulado. F de V Total Trat E. Exp Gl F Tab 5% 1% SC CM F cal 7 114,875 1 66,125 66,125 8,14* 6 48,75 8,13 5,99 13,75 CV= 32,1% Prueba de significación de Duncan al 5% Tratamiento Tratamiento B Xi 11.75 Testigo B 6.0 a b Del ADEVA, se obtuvo un F calculado de 8.15, que es significativo al 5% pero no al 1%, indicando que las diferencias entre el tratamiento B y su testigo son significativas únicamente al 5% con respecto a la mortalidad en la segunda semana de incubación. Realizada la prueba de significación de Duncan al 5% establece que la menor mortalidad en la segunda semana de incubación, la genera el testigo. El Coeficiente de Variación 150 Diego Antonio Valdez Jojoa obtenido es de 32,1%, lo que significa que en esta etapa del experimento existió mucha variabilidad. 4.4.3.6. ADEVA de embriones muertos en la Segunda semana de incubación en los tratamientos A y B. Cuadro N°33. Cantidad de embriones muertos en la segunda semana de incubación durante el experimento. 2° semana Rep Trat. A Σ Rep. Trat. B I 11 9 20 II 16 16 32 III 10 12 22 IV 12 10 22 Σ Trat. 49 47 96 12,25 11,75 12 x 151 Diego Antonio Valdez Jojoa Embriones muertos en las segunda semana de incubación. Tratamiento A y B. Cantidad. 20 15 16 16 11 9 10 12 10 12 10 Trat. A Trat. B 5 0 I II III IV Repetición. Gráfico N° 22. Cantidad de embriones muertos en la Segunda semana de incubación. Tratamientos A y B. Cuadro N°34. ADEVA de la cantidad de embriones muertos en la segunda semana de incubación de los Tratamientos A y B. F de V gl SC CM F Cal F Tab. Total 7 50 0,05 0,01 NS Tratamientos 1 0,5 0,5 0,06 5,99 13,75 E. Exp. 6 49,05 8,25 CV= 23,93% Del ADEVA, se obtuvo un F calculado de 0.06, que es no significativo al 5% y 1%, lo que nos indica que las condiciones de incubación en el experimento produjeron similar grado de mortalidad embrionaria en ambos tratamientos en la segunda 152 Diego Antonio Valdez Jojoa semana de incubación. El Coeficiente de Variación es de 23,93%, al ser un valor elevado, sin embargo por estar dentro de los límites, concluimos que el experimento se llevo correctamente. 4.4.3.7. ADEVA de la mortalidad embrionaria en la Tercera semana de incubación en huevos de color café claro. Cuadro N°35. Cantidad de embriones muertos en la tercera semana de incubación. Tratamiento A y su testigo. Rep. I II III IV Σx x Muertos 3a semana Trat. Testigo Total A A 13 38 51 14 31 45 16 34 50 13 27 40 56 130 186 14 32,5 23,25 153 Diego Antonio Valdez Jojoa Embriones muertos en la tercera semana de incubación. Huevos de color café claro 38 Cantidad 40 34 31 27 30 20 13 Trat. A 16 14 13 Testigo A 10 0 I II III IV Repeticiones Gráfico N° 23. Cantidad de embriones muertos en la tercera semana de incubación. Huevos de color café claro. Cuadro N°36. ADEVA de la cantidad de embriones muertos de los huevos de color café claro en la segunda semana de incubación. F de V Total Trat E. Exp Gl 7 1 6 SC 755,5 684,5 71 CM F cal 684,5 57,85** 11,83 F Tab 5% 1% 5,99 13,75 CV= 14,79% 154 Diego Antonio Valdez Jojoa Prueba de significación de Duncan al 5% Tratamiento Xi Testigo Tratamiento A 32.5 14 a b Del ADEVA, se obtuvo un F calculado de 57.85, valor mayor al F tabular al 5% y al 1%, lo que indica que las diferencias entre el tratamiento A y su testigo son altamente significativas con respecto a la mortalidad en la tercera semana de incubación de los huevos de color café claro. Realizada la prueba de significación de Duncan al 5% podemos establecer que la menor mortalidad embrionaria generada en esta etapa corresponde al Tratamiento A (incubación de huevos de color café claro en incubadora artesana). El Coeficiente de Variación obtenido es de 14.79%, por lo que se establece que el ensayo fue llevado de la mejor manera. 4.4.3.8. ADEVA de la mortalidad embrionaria en la tercera semana de incubación en huevos de color verde azulado. Cuadro N°37. Cantidad de embriones muertos en la Segunda semana de incubación. Tratamiento B y su testigo. 155 Diego Antonio Valdez Jojoa Rep. I II III IV Σx x Muertos 3a semana Trat. Testigo Total B B 18 55 73 17 41 58 15 37 52 16 23 39 66 156 222 16,5 39 27,75 Embriones muertos en la tercera semana de incubación. Huevos de color verde azulado 55 60 Cantidad 50 41 37 40 30 20 18 17 16 15 23 Trat. B Testigo B 10 0 I II III IV Repeticiones Gráfico N° 24. Cantidad de embriones muertos en la Tercera semana de incubación. Huevos de color verde azulado. 156 Diego Antonio Valdez Jojoa Cuadro N°38 . ADEVA de la cantidad de embriones muertos en la tercera semana de incubación de los huevos de color verde azulado. F de V Total Trat E. Exp Gl SC CM F cal 7 1537,5 1 1012,5 1012,5 11,57* 6 525 87,50 F Tab 5% 1% 5,99 13,75 CV= 37,1% Prueba de significación de Duncan al 5% Tratamiento Xi Testigo Tratamiento B 39 16.5 a b Del ADEVA, se obtuvo un F calculado de 11.57, que es significativo al 5% pero no al 1%, lo que nos indica que las diferencias entre el tratamiento B y su testigo son significativas únicamente al 5% con respecto a la mortalidad en la tercera semana de incubación. Realizada la prueba de significación de Duncan al 5% podemos establecer que la menor mortalidad en la tercera semana de incubación, la genera el Tratamiento. El 157 Diego Antonio Valdez Jojoa Coeficiente de Variación obtenido es de 32,1%, lo que significa que existió mucha heterogeneidad. 4.4.3.9. ADEVA de embriones muertos en la Tercera semana de incubación en los Tratamientos A y B. Cuadro N°39. Cantidad de embriones muertos en la tercera semana de incubación en los tratamientos A y B. Muertos 3° semana Rep Trat. A Σ Rep. Trat. B I 13 18 31 II 14 17 31 III 16 15 31 IV 13 16 29 Σ Trat. 56 66 122 x 14 16,5 15,25 158 Diego Antonio Valdez Jojoa Embriones muertos en la tercera semana de incubación. Tratamientos A y B 18 Cantidad 20 15 17 16 14 13 15 16 13 Trat. A 10 Trat. B 5 0 I II III IV Repeticiones Gráfico N° 25. Porcentaje de embriones muertos en la Tercera semana de incubación en los tratamientos A y B. Cuadro N°40 . ADEVA de la cantidad de embriones muertos en la tercera semana de incubación en los tratamientos A y B. F de V gl SC Total 7 23,5 Tratamientos 1 12,5 E. Exp. 6 11 F Cal CM F Tab. 0,05 0,01 12,5 6,83* 5,99 13,75 1,83 CV= 8.87% 159 Diego Antonio Valdez Jojoa Prueba de Significación de DUNCAN Tratamiento Xi B 16.5 a A 14 b Realizado el ADEVA, se obtuvo un valor de F calculado de 6.83* que es mayor al valor de F tabular al 5% pero no al 1%, por lo que existen diferencias significativas de la mortalidad en la tercera semana de incubación entre el tratamiento A y tratamiento B con el 95% de seguridad.. La prueba de significación de DUNCAN al 5% determina que el más eficiente en generar una mortalidad baja en la tercera semana de incubación entre los dos tratamientos es el “A” (Incubación de huevos de color café claro). Con el 8.87% obtenido en el Coeficiente de Variación dilucidamos que el experimento se llevo de la mejor manera. 160 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.5. ANÁLISIS DE COSTOS. 4.5.1. Costos fijos. Cuadro N° 41. Costos de la incubadora artesanal. Precio Prec. Unit Total Unidad Cant Madera Clavos $ 15,00 $ 15,00 libras 1 $ 0,70 $ 0,70 Plancha 8 $ 0,75 $ 6,00 unidad 1 $ 6,50 $ 6,50 Termómetro unidad 1 $ 6,00 $ 6,00 Termostato unidad 1 $ 12,00 $ 12,00 Espuma Flex Lámpara halógena Varilla redonda unidad 1 $ 5,50 $ 5,50 Otros (vidrio, bisagras, alambre, etc.) $ 10,00 $ 10,00 Total $ 61,70 161 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.5.2. Costos variables. Los costos variables están determinados por el costo de los huevos, materiales químicos, servicios básicos (luz, agua, etc.) Cuadro N°42 Costo de los huevos criollos para la incubación. Prec. Concepto Unidades Cantidad Unit Prec. Total Huevos verde- unidad 800 $ 0,18 $ 144,00 unidad 800 $ 0,18 $ 144,00 1600 $ 288,00 azulados Huevos café claro Total Cuadro N° 43 Costos de materiales químicos. Prec. Artículo Glutaquat ® (desinfectante) Unidades Cantidad Unit cc 150 162 Prec. Total $ 4,50 $ 4,50 Diego Antonio Valdez Jojoa Cuadro N° 44 Costo de servicios básicos. Prec. Concepto Unidades Cantidad Unit Agua Energía elect. -- -- kwt 153 Prec. Total $ 5,00 $ 5,00 $ 0,10 $ 15,30 Total $ 20,30 Cuadro N° 45 Costo por depreciación de la incubadora. Concepto Valor del equipo Incubadora $ 61.70 Vida útil (por Valor periodo de depreciable incubación) 24 $ 2,57 Cuadro N° 46 Costo de servicios básicos. Prec. Concepto Unidades Cantidad Unit Jornal Horas 4 163 $ 1,00 Prec. Total $ 4,00 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.5.3. Costo operativo de cada huevo puesto a incubar en el experimento. El costo operativo de cada huevo puesto a incubar en la incubadora artesanal empleada en el experimento se describe en el siguiente cuadro. Cuadro N° 47. Costo operativo de cada huevo puesto a incubar bajo el sistema de incubación artificial empleando incubadora artesanal. Artículo Huevos Unidad Cantidad Prec Unit ($) Total -- Energía eléctrica Kwh 100 $ 0,18 $ 18,00 153 $ 0,10 $ 15,30 $ 0.41 Agua -- -- -- Desinfección. cc 10 0.03 $ 0.30 depreciación -- -- -- $ 2,57 Mano de obra horas $ 4,00 Total -- Costo por 4 $ 1.00 -- Costo operativo por unidad en 164 $ 40.58 $ 0,41 Diego Antonio Valdez Jojoa El costo operativo de cada huevo es de $ 0.41 aproximadamente. 4.5.4. Costo de producción de cada pollito obtenido en el experimento en cada tratamiento. 4.5.4.1. Costo de producción de los pollitos obtenidos en el tratamiento A. El costo de producción de cada pollito obtenido en el Tratamiento A es el siguiente: Costo de producción = Costos operativos totales/pollitos nacidos vivos Costo de producción = ($ 0.41*400)/169 pollitos nacidos Costo de producción = $ 164/169 pollitos Costo de producción = $ 0.97 165 Diego Antonio Valdez Jojoa 4.5.4.2. Costo de producción de los pollitos obtenidos en el tratamiento B. El costo de producción de cada pollito obtenido en el Tratamiento B es el siguiente: Costo de producción = Costos operativos totales/pollitos nacidos vivos Costo de producción = ($ 0.41*400)/177 pollitos nacidos Costo de producción = $ 164/177 pollitos Costo de producción = $ 0.93 4.5.5. Costo de producción de cada pollito obtenido de los testigos. Par poder obtener el costo de producción de los pollitos obtenidos en los testigos debemos determinar el costo operativo de cada huevo puesto a incubar en la incubadora comercial. 166 Diego Antonio Valdez Jojoa Cuadro N° 48. Costo operativo de cada huevo puesto a incubar en la incubadora testigo (incubadora comercial). Artículo Huevos Unidad Cantidad Prec Unit ($) Total -- 100 $ 0,18 $ 18,00 60 $ 0,10 $ 6,00 Energía eléctrica Kwh Agua -- $ 0.10 Desinfección. $ 2.30 Uso de equipo $ 5.00 Total -- -- -- -- Costo operativo por unidad en 4.5.5.1. $ 31.40 $ 0,31 Costo de producción de los pollitos obtenidos en el testigo A. El costo de producción de cada pollito obtenido en el Testigo A es el siguiente: Costo de producción = Costos operativos totales/pollitos nacidos vivos Costo de producción = ($ 0.31*400)/154 pollitos nacidos Costo de producción = $ 124/154 pollitos 167 Diego Antonio Valdez Jojoa Costo de producción = $ 0.80 4.5.5.2. Costo de producción de los pollitos obtenidos en el testigo B. El costo de producción de cada pollito obtenido en el Testigo B es el siguiente: Costo de producción = Costos operativos totales/pollitos nacidos vivos Costo de producción = ($ 0.31*400)/166 pollitos nacidos Costo de producción = $ 124/166 pollitos Costo de producción = $ 0.75 De acuerdo al análisis de costos realizado, el valor de producción de pollitos obtenidos de huevos de color café claro bajo el sistema de incubación artificial empleando incubadora artesanal es de $ 0.97 (noventa y siete centavos de dólar.) frente a un valor de $ 0,80 (ochenta centavos de dólar.) por cada pollito obtenido bajo incubación en incubadora comercial. De la misma manera, el valor de producción de pollitos obtenidos de huevos de color verde azulado empleando incubadora artesanal es de $ 0.93 (noventa y tres centavos de 168 Diego Antonio Valdez Jojoa dólar.) frente a un valor de $ 0,75 (setenta y cinco centavos de dólar.) por cada pollito obtenido en incubadora comercial. ____________________ 169 Diego Antonio Valdez Jojoa CAPÍTULO IV 5. CONCLUSIONES De acuerdo con los resultados obtenidos y basándonos en los objetivos planteados al principio de esta investigación, se concluye que: - La generación de cualquier alternativa tecnológica en incubación artesanal que se plantee obtener merece de un constante esfuerzo y mejoramiento de cada una de las condiciones y requerimientos de ésta para obtener un producto que sea económico y aplicable a cualquier sector que se destine (campesino, aficionado, profesional). - Realizando los análisis estadísticos de los resultados obtenidos podemos decir que en esta investigación, en el proceso de la incubación mediante el empleo de incubadora artesanal, no existió diferencias significativas entre los Tratamientos (A y B) y sus testigos en relación a cantidad de huevos embrionados y cantidad de pollos nacidos, pero si se encontró diferencias significativas en la 170 Diego Antonio Valdez Jojoa mortalidad de la primera, segunda y tercera semana en cada uno de los tratamientos y sus testigos. Y solo diferencia significativa entre los tratamientos A y B en la mortalidad en la tercera semana de incubación. - Basándonos en los resultados obtenidos, concluimos que, la eficiencia del funcionamiento de la incubadora artesanal empleada es limitada por lo que se deberá ajustar más a los requerimientos técnicos y del manejo adecuado del aparato, así como las características y el manejo de los huevos antes de la incubación (recolección, transporte almacenamiento etc.). - El costo de producción de cada pollito nacidos de huevos de color café claro y verde azulado ($ 0.97 y $ 0.93 respectivamente) obtenidos en la incubadora artesanal es superior al costo de producción de los pollitos obtenidos en la incubadora comercial, la cual fue el testigo ($ 0.80 y $ 0.75 respectivamente) por lo tanto, rechazamos la Hipótesis alternativa planteada “El costo de producción de pollitos criollos BB es bajo en relación al costo de producción de pollo obtenido en incubadora comercial”. 171 Diego Antonio Valdez Jojoa CAPÍTULO VI 6. RECOMENDACIONES Para las personas interesadas en generar nuevas alternativas tecnológicas recomendamos que: - Al generar una alternativa tecnológica, se debe estudiar todos los aspectos fundamentales para este fin antes de empezar dicho proyecto, esto permite que los problemas que se vayan presentando durante el desarrollo de cualquier tecnología, se solucionen adecuadamente. Por tal razón, para obtener un producto que reúna todas las condiciones necesarias para el buen funcionamiento, se requiere de un largo proceso en donde se detectan continuos problemas que hay que superarlos, ya que ningún aparato tecnológico se logra con el primer intento. De igual manera, para las personas interesadas en producir pollitos criollos BB, ya sean campesinos o aficionados recomendamos que: 172 Diego Antonio Valdez Jojoa - Se destine como una actividad de tipo familiar en la que se emplee huevos de la misma granja, de esta manera se acorta el tiempo de clueques de las gallinas y empiezan la postura nuevamente en pocos días. - La incubación artificial se emplee para ayudar a la programación de la repoblación de las aves de corral en las granjas agropecuarias, de esta manera se dispondrá de una buena cantidad de aves durante todo el año. - Cualquier tipo de incubadora (industrial o artesanal) que se vaya a emplear para este fin debe ser previamente probada y asegurarse que mantenga las condiciones técnicas y físicas requeridas para la incubación. - La selección de los huevos para la incubación debe ser minuciosa, no se deben poner a incubar huevos infecundos, rotos, sucios, viejos, deformes, con cáscara demasiado gruesa o que no se conozca la procedencia ni el tiempo de almacenamiento ya que esto afecta directamente con la fertilidad e incubabilidad de los mismos. 173 Diego Antonio Valdez Jojoa - Al empezar la incubación de una cierta cantidad de huevos empleando incubadoras ya sea artesanal o de fabricación industrial, deben revisar constantemente la humedad, temperatura, ventilación, intercambio gaseoso, posición y volteo de los huevos, así, se estará asegurando un buen porcentaje de nacimientos. - De igual manera recomendamos la incubación artificial de huevos de gallina criolla (runa) por las características de resistencia que estas poseen frente a las enfermedades (digestivas, respiratorias) e inclemencias medioambientales (heladas, lluvias). - Por ser un ave autóctona, se podría emplear este sistema de incubación como una forma de mejorar la producción. 174 Diego Antonio Valdez Jojoa CAPÍTULO VII 7. RESUMEN El presente trabajo cuyo tema es “Producción de pollitos criollos BB con dos tipos de huevos (verde-azulado y café claro) mediante el empleo de incubadora artesanal” elaborado por el Sr. Diego Antonio Valdez Jojoa, se realizó a partir del 17 de octubre del año 2006 y finalizo el 17 de mayo del año 2007 en el sector Naste, parroquia Tomebamba, cantón Paute, provincia del Azuay, Republica del Ecuador. La investigación tuvo como propósito generar una alternativa tecnológica que permita aumentar los ingresos económicos en los hogares del sector rural, mediante la incubación artificial de huevos criollos empleando incubadora artesanal construida con materiales de fácil adquisición. El trabajo comprende 2 tratamientos y dos testigos con 4 repeticiones cada uno y 100 huevos incubados por repetición, dando un total de 1600 huevos incubados. Al realizar el Análisis de Varianza (ADEVA) de los resultados, se obtuvieron diferencias no significativas entre los Tratamientos (A y B) y sus testigos en la cantidad de huevos 175 Diego Antonio Valdez Jojoa embrionados y pollitos nacidos, pero si se encontró diferencias significativas en la mortalidad de la primera, segunda y tercera semana en cada uno de los tratamientos y sus testigos. Entre tratamientos A y B se encontró diferencias significativas en la mortalidad en la tercera semana de incubación. Finalmente se concluye que la generación de una alternativa tecnología requiere tiempo y dedicación para obtener un producto que funcione adecuadamente. Del mismo modo concluimos que el costo de producción de cada pollito BB obtenido en el experimento es superior al del obtenido industrialmente por lo que se rechaza la Hipótesis planteada recomendando que: se mejore los diferentes sistemas que permitan mantener los factores físicos de la incubación, la selección de los huevos a incubar sea minuciosa para así asegurar el nacimiento de una mayor cantidad de pollitos fuertes y sanos, y, que este aparato sea empleado en lugares de difícil acceso o lejos de zonas pobladas y comerciales. En el siguiente cuadro podemos observar en forma general los resultados obtenidos en el experimento: 176 Diego Antonio Valdez Jojoa Huevos color Huevos color Concepto café claro verde azulado Trat. A Testigo Trat B Testigo Huevos incubados 400 400 400 400 Huevos no embrionados 72 58 61 32 Huevos embrionados 328 342 339 368 Embriones muertos 1° semana 54 34 49 22 Embriones muertos 2° semana 49 24 47 24 Embriones muertos 3° semana 56 130 66 156 Pollitos Nacidos 169 154 177 166 177 Diego Antonio Valdez Jojoa CAPITULO VIII 8. SUMARY The present work whose topic is "Production of Creole chickens BB with two types of eggs (green-blued and clear coffee) by means of the employment of handmade incubator" elaborated by Mr. Diego Antonio Valdez Jojoa, this was carried out starting October 17th of 2006 and conclude May 17th of 2007 in the sector Naste, parish Tomebamba, Paute, county of the Azuay, Republic of the Ecuador. The investigation had as purpose to generate a technological alternative that allows to increase the economic revenues in the homes of the rural sector, by means of the artificial incubation of Creole eggs using built handmade incubator with materials of easy acquisition. The work understands 2 treatments and two witness with 4 repetitions each one and 100 eggs incubated by repetition, giving a total of 1600 incubated eggs. When carrying out the Analysis of Variance (ADEVA) of the results, non significant differences were obtained among the Treatments (A and B) and their witness in the quantity of embryons eggs and born chickens, but if she was significant 178 Diego Antonio Valdez Jojoa differences in the mortality of the first one, second and third week in each one of the treatments and their witness. Among treatments A and B was significant differences in the mortality in the third week of incubation. Finally you conclude that the generation of an alternative technology requires time and dedication to obtain a product that works appropriately. In the same way we conclude that the cost of production of each chicken BB obtained in the experiment is superior to the one of the one obtained industrially by what the outlined Hypothesis is rejected recommending that: improve the different systems that allow to maintain the physical factors of the incubation, the selection of the eggs to incubate it is meticulous it stops this way to assure the birth of a bigger quantity of strong and healthy chickens, and that this apparatus is an employee in places of difficult access or far from populated areas and commercial. In the following square we can observe in general form the results obtained in the experiment: 179 Diego Antonio Valdez Jojoa Item Incubated eggs Not embryons eggs Embryons eggs Embryons dead 1° week Embryons dead 2° week Embryons dead 3° week Born chickens Eggs color brown Eggs blued green clear color Treatment Treatment A Witness B Witness 400 400 400 400 72 328 58 342 61 339 32 368 54 34 49 22 49 24 47 24 56 169 130 154 66 177 156 166 180 Diego Antonio Valdez Jojoa CAPÍTULO IX 9. BIBLIOGRAFÍA 1. ALLCROFT W. M. “Incubación e incubadoras”. 5ª Edición. Editorial ACRIBIA, Zaragoza- España. 1974. 112 pp. 2. CARTANYÀ Aleu Pedro. “Curso completo de Avicultura”. 2ª Edición. Editorial CEDEL. BarcelonaEspaña. 1977. 178 pp. 3. ENSMINGER M. E. “Producción Avícola”, 1ª Edición. Editorial “El Ateneo”, Buenos Aires- Argentina. 1979. 283 pp. 4. GAMBOA Calderón Carolina. “Guía de Incubación Artificial”. Ediciones Generemos Vida (Folleto). 66 pp. 5. GIAVARINI Ida. “Tratado de Avicultura”. Edisiones OMEGA S.A. Barcelona- España. 1971. 375 pp. 181 Diego Antonio Valdez Jojoa 6. MALCOM Reid W. y Colab. “Crianza de Aves de Corral Saludables Bajo Condiciones Primitivas”. 1ª Edición. Publicación: Christian Veterinary Misión. Seattle. 1995. pgs. 23- 34. 7. ORLOV M. V. “Control Biológico en la Incubación”. 1ª Edición, Segunda reimpresión 1987. Editorial Pueblo y Educación. La Habana- Cuba. 167 pp. 8. SARDA J. Roberto, VIDAL P. Arnaldo. Revista “Avicultura Ecuatoriana”. Patología de la Incubación , N° 114, Año XXII- 2007. Editorial AGROEDITAR CIA. LTDA, pag. 6. 9. STRECKER Otto. “Huevos Planificación Comercial”, Manual práctico para la recogida, preparación comercial y venta. Editorial Acribia. ZaragozaEspaña. 1968. pag. 75. 10. BOERJAM Marleen. PAS REFORM, World Poultry, 2004, “La incubación de carga única es la opción más natural”. Disponible en Internet desde: http://www.engormix.com/s_articles_view.asp?art=10 00 182 Diego Antonio Valdez Jojoa 11. Di MARINO Sonia. Directora Centro de Información Nutricional. “El alimento Huevo”. Año 2003. Disponible en Internet desde: http://www.engormix.com/s_articles_view.asp?art=16 6&AREA=AVG 12. EXPOCA Sa Interactive S.L. – Copyright 1999- 2006, “Cómo hacer una incubadora casera para aves de corral” disponible en Internet desde: http://www.misanimales.com/mascotas/aves/index.cf m?pagina=mascotas_aves_024_024 13. GOULD Geoffrey and Barbara Publicado en la revista BirdBreeder en Febrero de 1996 Parrot Preservation Society A Non Profit Arizona Corporation 8711 Peak Road #299, Scottsdale, AZ 85255. Traducido por Manuel Saco. Disponible en “Incubación”, Internet desde: http://www.parrotpro.com/incubatesp.htm 14. R. A. Ernst, F.A. Bradley, M.E. Delany, U.K. Abbott and R.M. Craig Animal Science Department, University of California, Davis, CA 95616. Poultry fact 183 Diego Antonio Valdez Jojoa sheet no. 33. Cooperative extension – University of California. “Problemas comunes de incubación: causas y Remedios” July 1999. Disponible en internet desde: http://www.geocities.com/raydelpino_2000/problemas causasremediosincubacion.html 15. RICAURTE Galindo Sandra Lisette. M.V.Z. “Análisis de control de calidad en incubación de huevos”, disponible en Internet desde: http://www.engormix.com/analisis_control_calidad_in cubacion_s_articulos_860_AVG.htm 16. SARDÁ Jova, Roberto Dr. Ciências Investigador. Especialista en Incubación Artificial Instituto De Investigaciones Avícolas. La Habana, Cuba, año 1999. “Efecto de la duración del precalentamiento natural de los huevos en su incubabilidad”. Disponible en Internet desde: http://www.iia.cu/teminc01.htm 17. SARDÁ Investigador. Jova Roberto, Especialista Dr. en Ciências Incubación Artificial,Instituto De Investigaciones Avícolas. La 184 Diego Antonio Valdez Jojoa Habana, Cuba, año 2002. “Régimen de Incubación Artificial”. Disponible en Internet desde: http://www.iia.cu/teminc02.htm 18. SMITH Tom W. Universidad del Estado de Mississippi. Texto obtenido de Caja de Herramientas de Gestión Empresarial. “ Procedimiento para la incubación de huevos” Disponible en Internet desde: http://www.infomipyme.com/Docs/GT/Offline/agroindu stria/incubacionhuevos.htm 19. WIKIPEDIA. Enciclopedia libre “El Huevo”. Disponible en Internet desde: http://es.wikipedia.org/wiki/Huevo_%28biolog%C3%A Da%29 CAPÍTULO X 185 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXOS. ANEXO # 1 ESQUEMA DE DISTRIBUCIÓN DE TRATAMIENTOS Y REPETICIONES EN EL EXPERIMENTO. R E P E T I C I O N E S Tratamiento B Tratamiento A (Incubación huevos verdes) (Incubación huevos cafés) IV II I III IV II 50cm III I 50cm Escala: 1cm: 16,6cm 186 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 2 HOJA DE CAMPO # 1 PARA LA TOMA DE DATOS (Embrionados y No embrionados). UNIVERSIDAD DE CUENCA FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS ESCUELA DE MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA HOJA DE CAMPO #1 Tratamiento B Tratamiento A Rep. Embrionados No emb Rep Embrionados No emb IV II I III II IV III I 187 Diego Antonio Valdez Jojoa 188 III II I 3° Sem. Rep II 2° Sem. Nacidos IV 1° Sem. Embriones muertos II I IV . Rep TRATAMIENTO B (H verdes) 1°Sem. 2° Sem. 3°Sem. Embriones Muertos. nacidos TRATAMIENTO A (Huevos cafés) HOJA DE CAMPO #2 ANEXO # 3 HOJA DE CAMPO #2 PARA LA TOMA DE DATOS (Embriones muertos en la primera, segunda, tercera semana de incubación y pollitos nacidos). Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 4 PLANO ELÉCTRICO DEL TERMOSTATO PARA EL CONTROL DE LA TEMPERATURA EN EL SISTEMA DE CALEFACCION. 189 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 5 SISTEMA DE VENTILACIÓN (Entrada y salida de aire). Sale aire caliente Entra aire frío 190 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 6 SISTEMA DE MOVIMIENTO Y VOLTEO. DISPOSITIVO DE VOLTEO Eje de volteo de las bandejas de incubación. 191 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 7 PLANO DE LA INCUBADORA EMPLEADA Nota: Todas las medidas son en centímetros. 192 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 8 ESQUEMA DEL SISTEMA DE MOVIMIENTO SISTEMA MOTRIZ Ruedas de bicicleta empleadas en el sistema de volteo. 193 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 9 INCUBADORA ARTESANAL EMPLEADA EN EL EXPERIMENTO 194 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 10 INCUBADORA ARTESANAL EMPLEADA EN EL EXPERIMENTO 195 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 11 EJEMPLO. Cálculo del Análisis de Varianza (ADEVA) de embriones muertos en la tercera semana de incubación durante el experimento. Cuadro N°39. Cantidad de embriones muertos en la tercera semana de incubación durante el experimento. 3° semana Rep Trat. A Σ Rep. Trat. B I 13 18 31 II 14 17 31 III 16 15 31 IV 13 16 29 Σ Trat. 56 66 122 x 14 16,5 15,25 Cálculos: 1.- Factor de correlación (FC) FC = (Σxij)2/ rt FC = 1222/ 8 = 1860,5 2.- Suma de cuadrados totales (SC Total). 196 Diego Antonio Valdez Jojoa SC Tot. = Σx2ij- FC SC Tot. = (132+ 182 + … + 162) – FC SC Tot. = 1884- 1860,5 = 23,5 3.- Suma de cuadrados de tratamientos (SC Trat). SC Trat. = (Σxi2j / r) – FC SC Trat. = [(562 + 662)/ 4] – FC SC Trat. = (7492/4) – FC SC Trat. = 1873 – 1860,5 = 12,5 4.- Sumatoria cuadros del error experimental (SC E. Exp). SC E. Exp. = SC Tot. – SC Trat. SC E. Exp. = 23,5 – 12,5 = 11 5.- Cuadrado medio de tratamientos (CM Trat.) CM Trat. = SC Trat./gl Trat. CM Trat. = 12,5/1 = 12,5 6.- Cuadrado medio del error experimental (CM E. Exp.). 197 Diego Antonio Valdez Jojoa CM E. Exp. = SC E. Exp./gl E. Exp. CM E. Exp. = 11/6 = 1,83 7.- F calculado (F Cal.) F Cal. = CM Trat. / CM E. Exp. F Cal. = 12,5 / 1,83 = 6,82 8.- Coeficiente de Variación (CV) CV = [(√ CM E. Exp)./ X] *100 CV = [ (√ 1.83)/15.25] *100 CV = (1,35/15.25)*100 = 8,87% Cuadro N°40. ADEVA de la cantidad de embriones muertos en la tercera semana de incubación durante el experimento. F de V gl SC Total 7 23,5 Tratamientos 1 12,5 E. Exp. 6 11 F Cal CM F Tab. 0,05 0,01 S 12,5 6,83 5,99 13,75 1,83 CV= 8.87% 198 Diego Antonio Valdez Jojoa Prueba de significación de DUNCAN al 5% D = Q&(2;3;…;p,fe)Sx D = Q 0.05(2,6)0.67 D = 3.46 * 0.67 D = 2.32 Tratamiento X B 66 a A 56 b Prueba de significación. DUNCAN B – A = 66 – 56 = 10 2.32 S Realizado el ADEVA, se obtuvo un valor de F calculado de 6.83* que es significativo al 95% de seguridad pero no significativo al 99%, por lo que existen diferencias significativas de la mortalidad en la tercera semana de incubación entre la incubación de huevos cafés claro y la incubación de huevos de color verde-azulado con un 95% de seguridad. Con el 8.87% obtenido en el coeficiente de variación dilucidamos que el experimento se llevo de la mejor manera. La prueba de significación de DUNCAN al 5% determina que el más eficiente en generar una mortalidad baja en la tercera semana de incubación es el tratamiento A (Incubación de huevos de color café claro). 199 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 13 CANTIDAD DE HUEVOS EMBRIONADOS POR TRATAMIENTOS Y TESTIGO. Huevos embrionados por tratamiento y testigo. 380 368 360 350 342 340 339 328 330 320 310 300 Trat. A Testigo Huevos color café claro Trat B Testigo Huevos color verde azulado Tratamie ntos CANTIDAD DE POLLITOS NACIDOS POR TRATAMIENTO Y TESTIGO. Pollitos Nacidos por tratamiento y testigo Cantidad Cantdad 370 180 175 170 165 160 155 150 145 140 177 169 166 154 Trat. A Testigo Huevos color café claro Trat B Testigo Huevos color verde azulado Tratamientos 200 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 14 CANTIDAD DE EMBRIONES MUERTOS POR TRATAMIENTO Y TESTIGO. Embriones muertos por tratamiento y testigo 250 Cantidad 200 159 202 188 162 150 100 50 0 Trat. A Testigo Huevos color café claro Trat B Testigo Huevos color verde azulado Tratamientos EMBRIONES MUERTOS EN LOS TRATAMIENTOS Y TESTIGOS EN LA PRIMERA SEMANA DE INCUBACIÓN. Embriones muertos 1° semana 60 54 49 Cantidad 50 34 40 30 22 20 10 0 Trat. A Testigo Huevos color café claro Trat B Testigo Huevos color verde azulado Tratamientos 201 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 15 EMBRIONES MUERTOS EN LOS TRATAMIENTOS Y TESTIGOS EN LA SEGUNDA SEMANA DE INCUBACIÓN. Embriones muertos 2° semana 60 Cantidad 50 49 47 40 24 30 24 20 10 0 Trat. A Testigo Huevos color café claro Trat B Testigo Huevos color verde azulado Tratamientos EMBRIONES MUERTOS EN LOS TRATAMIENTOS Y TESTIGOS EN LA TERCERA SEMANA DE INCUBACIÓN. Cantidad Embriones muertos 3° semana 180 160 140 120 100 80 60 40 20 0 156 130 66 56 Trat. A Testigo Huevos color café claro Trat B Testigo Huevos color verde azulado Tratamiento 202 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 16 TABLA DE PORCENTAGE DE HUMEDAD RELATIVA SEGÚN LA TEMPERATURA DEL AGUA Y DEL AMBIENTE. Temperatura del agua en grados C° 18,3 18,9 19,4 20,0 20,6 21,1 21,7 22,2 22,8 23,3 23,9 24,4 25,0 25,6 26,1 26,7 27,2 27,8 28,3 28,9 29,4 30,0 30,6 31,1 31,7 32,2 32,8 33,3 33,9 34,4 35,0 35,6 36,1 36,7 37,2 37,8 38,3 38,9 Temperatura en grados C° del aire en la incubadora. 36,1 36,7 37,2 37,8 38,3 16 14 13 13 12 17 16 15 14 13 19 18 17 16 14 21 20 19 18 17 23 22 21 19 18 25 24 23 21 20 27 26 24 23 22 29 26 26 25 24 32 30 28 27 26 34 32 31 29 28 36 34 33 31 30 38 36 35 33 32 41 39 37 35 34 43 41 39 38 36 45 43 42 40 38 48 46 44 42 40 50 48 46 44 43 53 51 49 47 45 58 53 51 49 47 58 58 54 52 50 61 59 56 54 52 64 62 59 57 55 67 64 62 59 57 70 67 65 62 60 73 70 68 65 63 76 73 71 68 65 79 76 74 71 68 83 80 77 74 71 86 83 80 77 74 89 86 83 80 77 93 89 86 83 80 96 93 90 86 83 100 96 93 90 86 100 96 93 90 100 96 93 100 96 100 38,9 11 12 13 16 17 19 21 23 24 26 28 30 32 34 36 39 41 43 45 48 50 52 55 58 60 63 66 68 71 74 77 80 83 86 90 93 97 100 Fuente: http://www.parrotpro.com/incubatesp.htm 203 Diego Antonio Valdez Jojoa ANEXO # 17 PROBLEMAS COMUNES DE INCUBACIÓN: CAUSAS Y REMEDIOS Observación: Excesiva infertilidad PROBLEMAS Infertilidad Real CAUSAS REMEDIOS Técnicas de Inseminación mal ejecutadas Inseminar con mayor frecuencia y con la debida profundidad usando un esperma de buena calidad Hembras sin inseminar, Mala relación machos/hembras Inseminar a las hembras; reemplazar machos; usar mas machos/100 hembras Preferencias de montas en algunas divisiones de la nave Cambie a las hembras de división para que sean montadas por otros gallos Machos estériles Reemplace los machos Los machos no montan Vea si hay una enfermedad, problemas de nutrición, problemas en las patas o si existe una dominación social por parte de las hembras Machos muy viejos Use machos jóvenes; refuerce la monta natural con la Inseminación artificial si aun tiene que seguir usando los machos viejos Observación: Mortalidad superior al 3% en los 3 primeros días de INCUBACIÓN PROBLEMAS Pre-ovoposicionado muerto Fértil, sin desarrollo (FSD) CAUSAS REMEDIOS Variedades de razas con cruces consanguíneos Evitar la excesiva consanguinidad, usar machos jóvenes Partenogénesis in gallo No usar reproductores Gallo y Gallinas que muestren alta incidencia de partenogénesis Huevos almacenados a temperaturas bajas Almacene los huevos fértiles a una temperatura adecuada (entre 13 y 20 grados C) Periodo de almacenamiento de los huevos muy largo 204 Almacene los huevos fértiles de gallinas, faisán, patas, ocas y codornices por un tiempo máximo de una semana; los huevos de gallinas y perdices por un tiempo máximo de dos Diego Antonio Valdez Jojoa semanas Huevos lavados con agua excesivamente caliente Limpie los huevos en seco; descarte los huevos sucios; baje la temperatura del agua en la lavadora; Intente producir huevos limpios Desarrollo positivo(DP) Horario de recogida de huevos mal programado durante las épocas de calor o de frio. Cuando la temperatura en el interior de la nave o en los nidos exceda los 20 grados, recoja los huevos durante varias veces al día Blastodermo sin embrión (BSE) Temperatura inadecuada en el almacén de los huevos Almacene los huevos fértiles a una temperatura adecuada (entre 13 y 20 grados C) Periodo de almacenamiento de los huevos muy largo Almacene los huevos fértiles de gallinas, faisán, patas, ocas y codornices por un tiempo máximo de una semana; los huevos de gallinas y perdices por un tiempo máximo de dos semanas Procedimientos bruscos en el transporte o en el manejo de los huevos Hay que manejar los huevos con cuidado desde el momento de su recolección hasta el nacimiento de los pollitos Enfermedades (ejemplos: micoplasmas, Enfermedad de Newcastle) Inspeccione el lote de reproductores para ver su estado general de salud o por condiciones especificas Esperma viejo o anormal revise las Técnicas de Inseminación; use machos mas jóvenes Huevos de lotes de reproductores con cruces consanguíneos Algunas perdidas son inevitables con cruces consanguíneos; cambie a los machos y/o introduzca animales con otra genética Almacenaje de los huevos a temperaturas inadecuadas o temperatura inadecuada durante el periodo de preincubación No permita la pre-incubación de los huevos van ha ser colocados en la incubadora; Revise la temperatura en el cuarto de almacenamiento de los huevos; Asegúrese de que la temperatura en la incubadora sea de (37,5° C); Huevos de aves alojadas en naves situadas a mas de 1500 metros de altura Evite alojar a las aves reproductoras a estas altitudes Embrión cístico Observación: Mortalidad superior al 5% a los 4 días antes del traslado PROBLEMAS Muchos embriones CAUSAS REMEDIOS Temperatura inapropiada 205 Revise la precisión de los termómetros Diego Antonio Valdez Jojoa muertos Apagón de luz sin causa conocida Si la luz fallase, abrir las puertas de las maquinas hasta que la luz vuelva Inadecuado volteo de huevos Los huevos deben ser volteados por lo menos tres veces al día Huevos de lotes de reproductores con cruces consanguíneos Evitar la excesiva consanguinidad, Mala ventilación en la sala de INCUBACIÓN o en las incubadoras Proveer la ventilación adecuada para el apropiado cambio de aire Enfermedades o huevos infectados Use huevos de lotes de aves sanas; No lave los huevos en agua fría Observación: Mortalidad superior al 8% después de efectuar el traslado PROBLEMAS Los embriones mueren antes de comenzar a romper la cáscara Embriones débiles que no son capaces de romper el cascaron o lo hacen con mucho esfuerzo Muchos pollitos recién nacidos están pegados al cascaron. Pollitos nacidos, pero CAUSAS REMEDIOS Temperaturas bajas durante la INCUBACIÓN; Humedad muy alta Mantenga una temperatura de 37.5° C en el termómetro de bulbo seco y una temperatura de 30° C en el termómetro de bulbo húmedo en las incubadoras con ventilación forzada. Huevos infectados No lave los huevos en agua fría; incube solo los huevos limpios desde el nido Mala nutrición de los lotes reproductores Revise las formulas de los reproductores, casi todas las vitaminas y minerales conocidos, si no están incluidas en la dieta o si son deficientes, pueden causar mortalidad y mala calidad de pollitos, Ciertos factores genéticos letales Use razas vigorosas Deficiencia de Vitamina E Use siempre pienso fresco o suplementar el agua de beber con vitamina E Humedad muy baja en la Nacedora Mantener una temperatura de 32.5° C en el termómetro de bulbo húmedo, desde que empiezan a nacer los pollitos Excesivos residuos de albúmina causados por una alta humedad y/o baja temperatura durante la incubación Revise la precisión de los termómetros y de los termostatos, vigile la temperatura y la humedad Enfermedades, Use huevos de lotes de aves sanas 206 Diego Antonio Valdez Jojoa murieron Mal posicionados Los pollitos nacieron muy temprano, delgados y hacen mucho ruido Los pollos nacen tarde, son blandos y letárgicos Muerte súbitas en cualquier momento Sobrecalentamiento en las nacedoras, humedad baja en la nacedora, Revise la temperatura y la humedad de la nacedora Deficiencias nutricionales Use piensos balanceados Huevos colocados con la punta mas pequeña hacia arriba Coloque los huevos en la posición adecuada en las bandejas (con la punta mas ancha hacia arriba ) Temperaturas muy altas durante el periodo de INCUBACIÓN Revise la precisión de los termómetros, una variación de 0.5° C por encima de los 37.5° C causara un adelantamiento de los nacimientos aproximadamente de 24 horas Temperatura muy baja y humedad muy alta durante el periodo de INCUBACIÓN Revise la precisión de los termómetros, una variación de 0.5° C por debajo de los 37.5° C causara una demora en los nacimientos Huevos viejos Incube exclusivamente huevos frescos; permita un mayor tiempo de nacimientos al colocar con unas horas de antelación los huevos viejos en la incubadora Fumigación inapropiada No fumigue los huevos entre las 24 y 96 horas de su incubación. Derrames de mercurio en la incubadora o la nacedora Revise por si hay termómetros o termostatos rotos, limpie el derrame de mercurio inmediatamente Fallos eléctricos o mecánicos de la maquinaria o problemas de sobrecalentamientos Revise por lo menos dos veces al día la temperatura de la incubadora, consulte el manual del fabricante para conocer los procedimientos de su correcto mantenimiento Fuente:http://www.geocities.com/raydelpino_2000/problemasca usasremediosincubacion.html 207 Diego Antonio Valdez Jojoa