Download - FCA (UNER)
Transcript
Revista Científica Agropecuaria 7(2): 7-14 (2003) © 2003 Facultad de Ciencias Agropecuarias - UNER IDENTIFICACIÓN DE LAS PRINCIPALES ENFERMEDADES FÚNGICAS EN CÉSPEDES (CYNODON DACTYLON L.) CON FINES DEPORTIVOS DE LA CIUDAD DE PARANÁ* Marina L. BUTUS1, Norma FORMENTO2, María S. CARPONI1 1 Becaria de Iniciación a la Investigación y Co-directora del Proyecto Césped con Fines Deportivos respectivamente. Facultad de Ciencias Agropecuarias, UNER, C.C. 24, (E 3100 WAA) Paraná. Entre Ríos. Argentina. 2 Técnica de Patología Vegetal. Área de Investigación en Producción Vegetal. INTA-EEA. (E 3100 WAA) Paraná. Entre Ríos. Argentina. RESUMEN Las especies vegetales utilizadas como césped son afectadas por enfermedades que influyen en la condición óptima del campo de juego. El objetivo de este trabajo fue identificar las principales enfermedades fúngicas de la “gramilla” (Cynodon dactylon L.) que es una de las especies de mejor adaptación a céspedes con fines deportivos, del Departamento Paraná, Entre Ríos. Durante los años 2000 y 2001, se estudiaron 20 campos deportivos en los sectores correspondientes a los arcos, medio campo y laterales. Los síntomas más comunes fueron "manchas" en hojas y tallos. Con el fin de identificar los diferentes patógenos se extrajeron raíces, tallos, hojas e inflorescencias que previamente desinfectados fueron sembrados en diferentes medios nutritivos (agar papa glucosado 2 %, agar V8, agar poroto, agar agua 3 % y medio líquido de Armstrong). Las pruebas de patogenicidad con los hongos aislados se realizaron en plantas obtenidas en condiciones de invernáculo. Los hongos identificados como patógenos fueron Drechslera sp., Alternaria sp. y Curvularia sp., todos pertenecientes a la familia Dematiaceae. El género Phomopsis se determinó por primera vez en C. dactylon. El trabajo constituye el primer aporte a nivel provincial y nacional referido a la patología de céspedes con fines deportivos. Palabras clave: césped - enfermedades fúngicas - campos deportivos SUMMARY Identification of main fungus diseases in turf grass (Cynodon dactylon L.) to be used for sports in the city of Paraná The species utilized as turf grass are affected for diseases that influence in the optimum condition of play's field. The objective of this study went to identify the main fungi diseases of “bermudagras” (Cynodon dactylon), it is one of the species of better adaptation to turf grass for sports purposes, of Paraná Department, Entre Ríos. During 2000 to 2001 years, were studied 20 sports fields in arches, medium field and lateral sectors. The most common symptoms * Original recibido (05/08/02) Original aceptado (23/09/03) Marina Butus, et al. were "spots" in leaves and stems. To identify a major fungus were extracted roots, stems, leaves and inflorescences; its previously disinfected were laid in several media (potato dextrose agar 2 %, V8 agar, bean agar, water agar 3 % and Armstrong´s liquid medium). The pathogenicity tests with the isolated fungus were carried out in plants obtained on greenhouse conditions. The fungus identified as pathogens were Drechslera sp., Alternaria sp. and Curvularia sp. (Dematiaceae). The first time, the genus Phomopsis was determined in C. dactylon. This study is the first provincial and national contribution to the turf grass diseases. Key words: turf grass - Cinodon dactylon - sports fields - fungi diseases Introducción El césped es la cobertura herbácea o vegetal que cubre una superficie de tierra durante todo el año y que soporta frecuentes cortes de modo que su altura no exceda los 10 cm (Turgeon, 1991). Se utiliza en los campos de juegos para muchos deportes porque disminuye los daños frecuentes de los jugadores en la práctica de deportes enérgicos (Smiley et al., 1996). Cuando se habla de césped con fines deportivos en este trabajo, se hace referencia a campos dedicados a la práctica de fútbol, rugby y hockey, que son los deportes más importantes en el Dpto. Paraná (Laurencena et al., 2000). Una de las especies de césped mejor adaptada a las condiciones climáticas y edáficas de Entre Ríos es Cynodon dactylon (L.) Persoon, planta perenne, con estolones y rizomas; tallos de 10 a 30 cm de largo, delgados, glabros, erectos o decumbentes; las hojas poseen láminas de 0,5 a 6,5 cm de largo por 1 a 3,5 mm de ancho, aplanadas, en ocasiones dobladas (PROCYMAF, 2002). Es una especie megatérmica, es decir que requiere temperaturas entre 24 y 25 ºC para su óptimo desarrollo. Las especies vegetales utilizadas como césped son atacadas por numerosos organismos patógenos y plagas que afectan notablemente la calidad del mismo impidiendo la condición óptima para el juego, fin esencial de los campos deportivos. En diversos países se han citado las 8 enfermedades de los céspedes (Farr et al., 1995). Para Cynodon sp. se han determinado Mucilago crustacea (“sofocamiento”), Physarum cinereum (“moho en inflorescencias y hojas”), Physarum sp. (“moho”), Polymixa graminis (“podredumbre radicular”), Phytophthora sp. (“mancha foliar”), Pythium sp. (“podredumbre de raíces”), Fusarium sp. (necrosis y muerte de raíces), Sclerospora farlowii (“mildiu”), Erysiphe graminis (“oídio”), Sclerotinia homeocarpa (“dollar spot”), Puccinia cynodontis (“roya”), Ustilago cynodontis (“carbón”), Thanatephorus cucumeris (“manchones”). Diversas manchas foliares producidas por Bipolaris cynodontis, Bipolaris sp., Cercospora seminalis, Curvularia sp., Drechslera gigantea, Exserohilum rostratum, Helmisthosporium sp, Nigrospora sp., Periconia sp., Pyricularia grisea, Colletotrichum graminicola, Septoria cynodontis han sido mencionadas; Phoma sp. y Rhizoctonia sp. como organismos causales de “podredumbre de raíz”. Para Lolium se han mencionado Phytophthora cactorum (“tizón foliar”), Pythium sp. (“podredumbre radicular”), Sclerophthora macrospora (“mildiu”), Claviceps purpurea (“cornezuelo”), Erysiphe graminis (“oídio”), Gibberella sp. (“podredumbre radicular”), Sclerotinia homeocarpa (“dollar spot”), Puccinia sp. (“royas”), Tilletia controversa (“caries”), Ustilago sp. (“carbón”), Thanatephorus cucumeris (“manchones”) y RCA. Rev. cient. agropecu. 7(2): 7-14 (2003) Identificación de las principales enfermedades fúngicas en césped (Cynodon dactylon) con fines... “manchas foliares” ocasionadas por Bipolaris sp., Curvularia sp., Drechslera sp., Cladosporium sp., Pyricularia sp., Phyllosticta sp., Colletotrichum graminicola, Septoria sp., etc. Rhizoctonia sp. ha sido citado como organismo causal de “tizón foliar” y “podredumbre de raíces” (Farr et al., 1995). Periconia sp. además de ser patógeno en gramíneas, es capaz de producir una patotoxina (Fernández Valiela, 1978). El estudio de la etiología y el manejo integrado de las enfermedades es incipiente en el país. La elección de especies inadecuadas, la utilización de tratamientos sanitarios y culturales inapropiados, generan un incremento considerable de los organismos perjudiciales. Uno de los principales problemas de mantenimiento que presentan los céspedes de los campos deportivos son las enfermedades producidas por los hongos. Estos provocan daños en las plantas por tres mecanismos: liberación de toxinas con efecto de intoxicación, esclerosis vascular con interrupción del flujo de savia y parasitismo celular donde la actividad metabólica del huésped se orienta en beneficio del hongo patógeno. La dispersión de los mismos se puede realizar mediante fragmentos de micelio, modificaciones del micelio (esclerocios o rizomorfos) y esporas (ya sean de origen sexual o asexual). Todas son formas perdurables que diseminan la enfermedad tanto en el espacio como en el tiempo, asegurando su permanencia en períodos de déficit hídrico o de temperaturas altas. Las esporas se producen en grandes cantidades cuando las condiciones ambientales son óptimas y se dispersan por el viento, agua de riego, insectos, maquinarias, etc (Zulueta et al., 1994). El objetivo del presente trabajo fue la identificación de las principales enfermedades fúngicas de C. dactylon en campos deportivos de la ciudad de Paraná (Entre Ríos). RCA. Rev. cient. agropecu. 7(2): 7-14 (2003) Materiales y métodos Durante los años 2000 y 2001 se estudiaron los siguientes campos deportivos: de Hockey: Club Atlético Talleres (C.A.T) y Paraná Rowing Club (P.R.C); de Sóftbol: Club Atlético Estudiantes (C.A.E), Club Don Bosco (C.D.B) y C.A.T.; de Golf: C.A.E.; de Rugby: C.A.E, P.R.C y Capibá Rugby Club; de Fútbol: Club Atlético Peñarol, C.D.B, Cancha de Fútbol de la Facultad de Ciencias Agropecuarias, Atlético Neuquén Club, Club Oro Verde, Club Palermo, Club Sportivo Urquiza, Club Interprofesional, Club Toritos de Chiclana, Club Patronato de la Juventud Católica y Federación Argentina Trabajadores de la Salud. Se tomaron 60 muestras totales (30 por año), extraídas durante todo el año y en distintos sectores del campo deportivo: medio campo, arcos y laterales para representar las diferentes situaciones de manejo y condiciones de juego (3 muestras constituidas por 10 submuestras por cada sector). Cada submuestra consistió en cilindros de tierra y material vegetal de 15 a 20 cm de diámetro aproximadamente; el material vegetal fue separado en inflorescencias, hojas, tallos y raíces. Cabe destacar que es frecuente la consociación de C. dactylon con Lolium multiflorum Lam., las que poseen hábitos estivales e invernales, respectivamente, por lo cual C. dactylon se recolectó en primavera-verano y Lolium, en otoño-invierno. Para la caracterización de los síntomas en los órganos vegetales se utilizó microscopio estereoscópico, y en algunos casos fue necesario utilizar cámaras húmedas por 24 a 36 horas, con la finalidad de observar fructificaciones sobre los síntomas. Para el aislamiento de microorganismos fúngicos se desinfectaron superficialmente los tejidos enfermos con alcohol al 70 % (30 segundos) e hipoclorito de sodio al 1 % (1 minuto); las raíces, tallos e inflorescencias se cortaron en trozos de 1 mm de ancho (aproximadamente) y las manchas foliares se dividieron en trocitos pequeños (0,25 mm2) con parte de tejido enfermo y sano. Estos, se sembraron en medios de cultivo, agar papa glucosado (APG) 2 %, agar agua (AA) 3 % y agar poroto (AP) 1 % y la incubación de los aislamientos en cajas de Petri se realizó en estufa a 25-26 ºC. 9 Marina Butus, et al. La identificación de los hongos se realizó en base a las características morfológicas de las colonias (forma, crecimiento, color, etc.) y el estudio de las fructificaciones típicas con la utilización de distintas claves taxonómicas (Barnett & Barry, 1998; Booth, 1997; Hanlin, 1990 y 1998; Sneh et al, 1994). Para realizar las pruebas de patogenicidad con los hongos aislados en forma más frecuente, éstos, se sembraron en medios de incremento de esporos; se utilizaron: agar V8 (AV8) y agar poroto (AP) 1 % para Drechslera sp.; agar agua (AA) 3 %, APG 2 % y AV8 para Alternaria sp.; APG 2 %, agar extracto de alfalfa, AA 3 %, AV8 y AP 1 % para Curvularia sp. y medio líquido de Armstrong para Fusarium sp (French y Hebert; 1980; CMI, 1986). Las plantas de C. dactylon se obtuvieron de semillas, sembradas en verano, las que germinaron en forma óptima entre los 15 y 20 días, en macetas plásticas de 13 cm de diámetro utilizando tierra de vivero, se rotularon y colocaron en bandejas de aluminio en un soporte sobreelevado del suelo en condiciones semicontroladas. En el invierno fueron ubicadas en invernáculo para evitar que temperaturas por debajo de los 10 ºC, indujeran su latencia (una etapa fundamental para su supervivencia). Para la inoculación artificial se emplearon plantas entre 8 y 11 meses de edad, con hojas bien desarrolladas. Para hojas y tallos se realizó una pulverización con suspensión de esporas en agua destilada con dos gotas de Tween 20 (tensioactivo), la que se aplicó directamente sobre el tejido vegetal (Cuadro 1) con atomizador manual según técnicas de CMI (1985). Para raíces, el método usado fue el de inmersión de raíces heridas en suspensión de esporas y/o micelio de Fusarium. La tierra de las raíces de las plantas a inocular, se extrajo por decantación natural después de 2 horas de lavado bajo agua corriente. Las raíces se cortaron a 5 cm aproximadamente del nivel del cuello de las plantas y posteriormente, se sumergieron en la suspensión fúngica durante 15 minutos y se transplantaron en macetas (CMI, 1985), lo que se registra en el (Cuadro 2). Cuadro 1. Condiciones de pruebas de patogenicidad por inoculación de hojas y tallos de C. dactylon Hongos inoculados Drechslera sp. Alternaria sp. Curvularia sp. Edad de las plantas 8 meses 8 meses y 15 días 8 meses y 15 días Edad del inóculo Concentración (conidios/ml) Fecha de inoculación Cámara húmeda (horas) Observación de síntomas (días) 15 días 1 x 106 28/08/01 36 7 7 días 0,6 x 106 4/09/01 36 10 7 días 1 x 106 4/09/01 36 10 Cuadro 2. Condiciones de pruebas de patogenicidad por inoculación de raíces de C. dactylon Hongos inoculados Fusarium oxysporum Fusarium sp. (1) Fusarium sp. (2) Edad de las plantas 9 meses 9 meses 9 meses Edad del inóculo 7 días 7 días 7 días 5,8 x 106 micelio Concentración (con./ml) 2,2 x 107 Fecha de inoculación 9/10/01 9/10/01 9/10/01 Cámara húmeda (horas) 36 36 36 Observación de síntomas (días) 40 40 40 Las plantas inoculadas fueron mantenidas en cámara húmeda durante 36 horas (recipientes cerrados cubiertos con polietileno negro) y posteriormente ubicadas en condiciones de alta humedad (superior al 90 %) y temperatura semicontroladas. Transcurrido este lapso se ubicaron bajo condiciones naturales con luz 10 natural, temperaturas moderadas y riego controlado. Se realizó un seguimiento periódico hasta la aparición de los síntomas y se reaisló con la finalidad de corroborar la correspondencia con el microorganismo original, dando cumplimiento a los postulados de Koch. RCA. Rev. cient. agropecu. 7(2): 7-14 (2003) Identificación de las principales enfermedades fúngicas en césped (Cynodon dactylon) con fines... Resultados y discusión En las hojas, el hongo más frecuente fue Drechslera con un 35,1 % (Fig. 1). En orden de importancia se ubicaron Curvularia sp. (15,9 %), Alternaria sp. (11,4 %) y con menor presencia los géneros Fusarium, Phomopsis, Nigrospora, Exserohilum, Helminthosporium, Phoma y Rhizoctonia. Alt.+Rhiz.+Thielav. Rhiz. Phoma Epic. Helm. Exser. Dicty. Nigr. Fus. Phomop. Drechs.(A) D. tret. Alt. Curv. Drechs.(B) 0 2 4 6 8 10 12 14 16 18 20 Frecuencia relativa (%) Figura 1. Frecuencia relativa de distintos géneros de hongos aislados en hojas de C. dactylon, respecto al número total observado Referencias: Drechs. (B).: Drechslera sp., Curv.: Curvularia sp., Alt.: Alternaria sp., Drechs. (A).: Drechslera sp., D. tret.: Drechslera tretramera, Phomop.: Phomopsis sp., Fus.: Fusarium sp., Nigr.: Nigrospora sp., Dicty.: Dictyoarthhrinium, Exser.: Exserohilum sp., Helm.: Helmisthosporium sp., Epic.: Epicoccum sp., Phoma sp., Rhiz.: Rhizoctonia sp.y Alt. + Rhiz. + Tthielav.: Alternaria sp. + Rhizoctonia sp. + Thielaviopsis sp. En los tallos, los hongos más frecuentes fueron Drechslera sp. y Curvularia sp, con un 37,8 % y 27 %, respectivamente (Fig. 2). Además, se identificaron con una menor frecuencia otros patógenos como Bipolaris sp., Exserohilum sp., Colletotrichum sp., Phomopsis sp. y Nigrospora sp.; como hongo saprófito fue determinado el género Dictyoarthrinium sp. En raíces de C. dactylon , los géneros aislados más frecuentemente en forma relativa fueron Fusarium y Curvularia con un 46,7 % y 13,3 %, respectivamente (Fig. 3), considerando como 100 %, 30 muestras de los años 2000 y 2001. Se aisló otro patógeno como RCA. Rev. cient. agropecu. 7(2): 7-14 (2003) Bipolaris sp., parásitos secundarios (de patogenicidad débil) como Sclerotium bataticola y antagonistas como Chaetomium. Además, se aisló el hongo Periconia sp.. Cabe destacar, que diversos géneros son mencionados por primera vez, ya que no se hallaron registros en la bibliografía revisada, entre ellos Chaetomiun sp., género determinado como especie antagonista, Alternaria sp. mencionado como saprófito o patógeno, Sclerotium bataticola, conocido por su acción como patógeno débil o secundario y Drechslera tetramera. Farr et al. (1995) nombra a D. gigantea como organismo causal de la “mancha zonada” o 11 Marina Butus, et al. “eyespot” en C. dactylon. Cabe destacar como importante el hallazgo de Phomopsis sp. hongo de patogenicidad reconocida en diversas familias botánicas, pero no mencionado en gramíneas con excepción de Phomopsis oryzae-sativae en Oryza sativa citada por Punithalingam y Sharma, 1979 y en semillas de Triticum aestivum de germoplasma francés y argentino en el año 2002 (Formento, 2002). Nigr. Coll. Exser. D. tret. Drechs.(B) Curv. 0 5 10 15 20 25 30 Frecuencia relativa (%) Figura 2. Frecuencia relativa de distintos géneros de hongos aislados en tallos de C. dactylon, respecto al número total observado Referencias: Curv.: Curvularia sp., Drechs. (A): Drechslera sp. (A), Drechs. (B): Drechslera sp. (B), Fus.: Fusarium sp., D. tret.: Drechslera tretramera, Bip.: Bipolaris, Exser.: Exserohilum, Dicty.: Dictyoarthhrinium sp., Coll.: Colletrotichum sp., Phomop.: Phomopsis sp. y Nigr.: Nigrospora sp. S.bat. Peric. Alt. F.s. + F. spp. Bip. Chaet. Curv. Fus. 0 10 20 30 40 50 Frecuencia relativa (%) Figura 3. Frecuencia relativa de distintos géneros de hongos aislados en raíces de C. dactylon, respecto al número total observado Referencias: Fus.: Fusarium sp., Curv.:Curvularia sp., Chaet.: Chaetomium sp., Bip.: Bipolaris sp., Fus. s. + F. spp.: Fusarium solani + Fusarium spp., Alt.: Alternaria sp., Peric.: Periconia sp., S. bat.: Sclerotium bataticola. 12 RCA. Rev. cient. agropecu. 7(2): 7-14 (2003) Identificación de las principales enfermedades fúngicas en césped (Cynodon dactylon) con fines... Los medios de cultivos para el incremento de inóculo seleccionados por su rápido crecimiento y alta producción de conidios fueron: medio AV8 para Drechslera sp. (A) y Alternaria sp., AA 3 % y APG 2 % para Curvularia sp. y el medio líquido de Amstrong para Fusarium sp. Los síntomas observados posteriormente a la infección artificial, correspondieron a los hallados inicialmente, pero cabe destacar que los síntomas pueden presentar modificaciones según las condiciones artificiales de inoculación, biotipo (cepa del microorganismo empleado), características propias de las especies vegetales (ejemplo: tipo y grosor de cutícula, etc). El hongo Drechslera sp. (A) ocasionó en hojas y tallos "manchas" de aproximadamente 0,5 mm de ancho y 1,5-2 mm de longitud de color pardo oscuro, algunas de las cuales presentaron centro color crema. Alternaria sp. produjo en hojas “manchas” alargadas de 0,5 mm de ancho y de 2-6 mm de longitud, aproximadamente, con centro amarillo y destacadas líneas negras paralelas y borde negro. Comienzan en los márgenes de las hojas y luego coalescen hacia el centro provocando que éstas se plieguen por su nervadura media, lo que se hace más notable en la base de la lámina foliar. En tallos y hojas inoculados con Curvularia sp. se detectaron “manchas” circulares de aproximadamente 1,5 mm de ancho y 5 mm de longitud, de color amarillas en el centro y borde pardo oscuro a negro. Se las observa inicialmente en el margen foliar y, posteriormente se unen hacia el centro provocando un acartuchamiento de la hoja. El hongo de suelo, Fusarium oxysporum: produjo en las raíces, pequeñas “manchas” necróticas de aproximadamente 0,5 mm de ancho y 10 a 30 mm de longitud; cortes transversales de la raíz permitieron observar una necrosis en la epidermis y RCA. Rev. cient. agropecu. 7(2): 7-14 (2003) hasta el floema, con el sistema vascular xilemático aparentemente sano. Se destaca que las plantas inoculadas presentaron un aspecto vigoroso, una coloración verde más oscura que las testigo, lo que podría ser la consecuencia del aislamiento de alguna cepa no agresiva y a su vez de acción antagonista y beneficiosa para el hospedante. RodríguezGálvez et al., 2000 determinaron que aislamientos no agresivos de F. oxysporum obtenidos de plantas enfermas lograron disminuir la severidad de la “marchitez del algodonero” hasta en un 85 %. Fusarium sp. tipo 1 (microconidios unicelulares, elipsoidales) ocasionó la muerte de un 35 a 40 % aproximadamente del todo el sistema radical y Fusarium sp. tipo 2 (microconidios uni o bicelulares, semilunares) produjo la muerte de raíces de un 15 a 20 % con respecto al total de la masa radical. Conclusiones La “gramilla” (Cynodon dactylon) de los campos deportivos de Paraná presentó "manchas" en hojas y tallos. Los patógenos predominantes en las “manchas foliares” fueron Drechslera, Curvularia y Alternaria (Dematiaceae). En tallos fueron Curvularia y Drechslera. El presente trabajo constituye el primer aporte al conocimiento a nivel provincial y nacional. Agradecimientos A la Lic. Ma. Isabel Laurencena y al Sr. Juan C. Velázquez. Referencias bibliográficas BARNETT, H. L.; BARRY, B. H. (1998). Illustrated Genera of Imperfect Fungi. 4th ed. APS Press. 218 p. BOOTH, C. (1977). Fusarium. Laboratory Guide to the Identification of the Major Species. CAB. 58 p. 13 Marina Butus, et al. CMI (1985). Manual para Patólogos Vegetales. Of. Reg. FAO para América Latina y el Caribe. 438 p. FARNHAM, M.; KEINATH, A.; SMITH, J. (2001). Characterization of Fusarium Yellows Resistance in Collard. Plant Disease. 85(8): 890-894. FARR, D.; BILLS, G.; CHAMURIS, G.; ROSSMAN, A. (1995). Fungi on Plants and Products in the United States. 2th ed. APS Press. 1251 p. FERNÁNDEZ VALIELA, M. V. (1978). Introducción a la Fitopatología. Vol. 3: Hongos. Colección Científica del INTA. 478 p. FORMENTO, N. (2002). Informe de Avance Anual. Proyecto Nacional 52: 2103. Desarrollo de Estrategias de Manejo Integrado de las Principales Enfermedades en la Secuencia Trigo/Soja-Maíz-en Siembra Directa. 52 p. FRENCH, E. R.; HEBERT, T. T. (1980). Métodos de Investigación Fitopatológica. IICA. Costa Rica. 289 p. HANLIN, R.T. (1998). Illustrated Genera of Ascomycetes. Vol. II. APS Press. 258 p. HANLIN, R.T. (1990) Illustrated Genera of Ascomycetes. APS Press. 263 p. LAURENCENA, M. I.; CARPONI, M.S.; SCORCIAPINO, C.; REINOSO, P.D.; BUTUS, M. L. UNER, FCA (2000) Proyecto de Investigación “Césped con Fines 14 Deportivos”, Informe de Avance Nº 6, FCA, UNER. 155 p. PROCYMAF (2002). Especies Forestales no Maderables y Maderables no Tradicionales de Zonas Áridas y Semiáridas.[3][en línea]. URL: http://www.semarnat.gob.mx/pfnm3/fichas/c ynodon_dactylon.htm 12 de may. 2003] PUNITHALINGAM, E.; SHARMA, N. D. (1979). New microfungi from Shout EasAsia. Nova Hedwigia. 31: 881-897. RODRIGUEZ-GALVÉZ, E.; GARCÍA, L.; GARCÍA, M.; CRUZ, H. (2000). Control de la marchitez del algodonero (Fusarium oxysporum f. sp. vasinfectum) con aislamientos no agresivos de F. oxysporum bajo condiciones de hidroponía. Fitopatología. 35 (4): 223-230. SMILEY, R.W.; DERNOEDEN, P.H.; CLARKE, B.B. (1996). Plagas y Enfermedades de los Céspedes. APS, Mundi Press. 98 p. SNEH, B.; BURPEE, L.; OGOSHI, A. (1994). Identification of Rhizoctonia Species, 2nd. APS Press. USA. 135 p. TURGEON, A. (1991). Turfgrass Management. Ed. Prentice Hall Regents. USA, 418 p. ZULUETA, S.; GONZÁLEZ, P.; ZULUETA, I. (1994). Céspedes y Cubiertas Vegetales. Semillas Zulueta S.A. 3er ed. Mundi-Prensa. 133 p. RCA. Rev. cient. agropecu. 7(2): 7-14 (2003)