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MODULACIÓN ESTROGÉNICA DEL SISTEMA KISSPEPTINA/GPR54 VÍA GPR30 EN CÉLULAS GT1 Hernández Martínez C.(1); Martínez de la Escalera G.(2) (1) Fac. Ciencias Naturales / Lic. Biología Universidad Autónoma de Querétaro (2) Instituto de Neurobiología (INB) Universidad Nacional Autónoma de México. Resumen. Se analizó el mecanismo de acción del estradiol sobre neuronas GnRHérgicas en la línea celular inmortalizada GT1-7. Mediante RT-PCR en tiempo real, se determinó el efecto del 17β-estradiol sobre el nivel de expresión de GPR54, y se comparó la magnitud del mismo con el efecto de dos agentes agonistas del receptor GPR30 como son el 4-hidroxitamoxifeno y el G-1, observandose en ambos casos un aumento en los niveles del ARNm de GPR54, lo cual indica que este sistema se regula vía GPR30. Introducción. La organización de la función reproductiva se lleva a cabo por señales neurales y hormonales que inciden sobre las neuronas neurosecretoras de la hormona liberadora de gonadotropinas o GnRH, las que comandan la función del eje. Entre los mecanismos que controlan la secreción de las gonadotropinas destacan las asas de retroalimentación positiva y negativa por parte del estradiol. Dada la ausencia o la cantidad limitada del receptor a estrógenos (RE) (hoy denominado receptor a estrógenos α o REα) expresado en neuronas GnRHérgicas (Shivers et al, 1983; Fox, et al., 1990; Herbison y Theodosis, 1992; Huang y Harlan, 1993; Lehman y Karsch, 1993), en un tiempo se consideró que los efectos estrogénicos no podrían ocurrir de forma directa, y se sugirió que la regulación de la liberación de la GnRH por estrógenos estaría mediada por mecanismos de acción indirectos. Estos mecanismos indirectos podrían presentarse en diversas combinaciones, dando como resultado efectos de retroalimentación tanto negativa como positiva (Herbison y Pape, 2001). Con el descubrimiento de un segundo receptor a estrógenos (hoy denominado β o REβ) (Kuiper et al., 1996), la biología de los estrógenos en general fue reevaluada. Se encontró que este segundo receptor se expresa y funciona en neuronas GnRHérgicas (Skynner e al., 1999; Herbison et al, 2001; Hrabovszky et al., 2001). Esto sugirió que los esteroides gonadales podrían influir directamente sobre las neuronas GnRHérgicas. Recientemente se descubrió un tercer receptor a estrógenos, que a diferencia de los dos señalados anteriormente y que operan a nivel nuclear ejerciendo acciones genómicas, este último es membranal y se encuentra acoplado a proteínas G, y es denominado GPR30 (Hewitt, et al 2005). Este receptor presenta una alta selectividad para estradiol en comparación con estrona y estriol (Thomas et al., 2005). El descubrimiento de este nuevo receptor ha ayudado a explicar algunos mecanismos rápidos de acción estrogénica. En los últimos años se describió un nuevo sistema de neurotrasmisión aferente a las neuronas GnRHérgicas, denominado sistema Kisspeptinas/KiSS-1R, que ha revolucionado los conceptos de la regulación neuroendócrina de la reproducción. Las Kisspeptinas son péptidos que actúan como reguladores de las neuronas secretoras de la GnRH, participando en la pubertad y en el funcionamiento normal del eje reproductivo (De Roux et al, 2003, Seminara et al., 2003, Seminara y Kaiser, 2005; Messager, 2005a; Messager, 2005b; Tena-Sempere, 2005; Aparicio, 2005; Vogel, 2005; Popa et al, 2005; Dungan et al., 2006). Actúan a través de un receptor acoplado a proteínas G, llamado GPR54 o KiSS-1R (Stafford et al., 2002). El estudio del sistema reproductor ha avanzado considerablemente mediante el desarrollo de líneas celulares GnRHérgicas inmortalizadas, como es el caso de las células GT1, las cuales presentan muchas de las características fisiológicas de las neuronas GnRHérgicas in vivo (Martínez de la Escalera y Clapp, 2001). En estas células se encontró la expresión funcional de ambos receptores estrogénicos nucleares, REα y REβ (Poletti et al., 1994; Shen et al., 1998; Roy et al. 1999; Kallo, et al, 2001). Recientemente Jacobi y col (2007) detectaron también la expresión del ARN mensajero correspondiente al receptor GPR30. En células GT1 se ha estudiado la regulación estrogénica de la liberación de la GnRH y se han reportado efectos estrogénicos a través de mecanismos genómicos y no genómicos (Roy, et al 1999; Shen, et al, 1998; Navarro et al., 2003). De tal forma que actualmente se considera la posibilidad de una regulación del eje reproductivo por acción estrogénica directa sobre las neuronas GnRHérgicas, lo cual complementaría a los mecanismos de acción indirecta que ya han sido demostrados. Con base en la información anterior, en el presente estudio se propuso analizar el papel del receptor membranal GPR30 en la modulación estrogénica del sistema Kisspeptina/GPR54. Particularmente se determinó si en el incremento de la expresión de las moléculas KiSS-1 y KiSS-1R inducido por 17β-estradiol participa el GPR30, para lo cual se utilizó el agonista específico para este receptor, el G-1 (Bologa et al., 2006). Metodología. Se utilizo la línea celular GT1-7 en el pase 29, cultivadas con medio de cultivo Eagle modificado por Dulbecco (D-MEM) suplementado con 10% de suero fetal bovino y 5% de penicilina/estreptomicina (GIBCO BRL), manteniéndose dentro de una incubadora a 37°C, con alta humedad y 5% de CO2 en aire atmosférico. El medio de cultivo se cambió cada tercer día hasta obtener una confluencia celular entre el 80 y 90%. Durante las 48 hrs previas al tratamiento, el medio de cultivo fue sustituido por un medio de cultivo D-MEM libre de rojo de fenol (GIBCO BRL) y sin suplemento de suero fetal bovino, con el objeto de evitar algún efecto esteroideo presente en el medio. El tratamiento consistió en la exposición a 17-β-estradiol (Research Biochemicals Incorporated) disuelto en etanol, a 4-hidroximatomifeno (SIGMA), o a G-1 (CALBIOCHEM), todos ellos en concentraciones de 1, 10 y 100 nM, por un periodo de 24hr. Se utilizó un grupo control y en todos los grupos las determinaciones se realizaron por triplicado. Posterior a las 24 horas del tratamiento el medio fue retirado y las células fueron congeladas a -80°C hasta su análisis. Se extrajo el ARN total de cada una de las muestras utilizando el kit RNAqueous (Ambion). El ARN extraído de las muestras fue sometido a retrotrascripción (RT) para obtener una cadena complementaria de ADN (cDNA por sus siglas en inglés). Para verificar la eficiencia de la RT, en cada muestra se amplificó por PCR convencional un fragmento de 173 pb correspondiente al gen de β-actina, un gen de expresión constitutiva. Posteriormente se llevó a cabo la reacción en cadena de la polimerasa o PCR (por sus siglas en ingles), en la modalidad tiempo real, el cual es un método muy sensible para la cuantificación de secuencias especificas de ácidos nucleicos. Resultados y Discusión. Como se observa en la figura 1, los resultados muestran que los tres tratamientos indujeron un aumento en los niveles de expresión del GPR54, en comparación con los niveles basales observados en el grupo control. El mayor aumento se observa en dosis de 100 nM para los tres tratamientos, lo cual indicaría que esta podría ser la dosis optima para la activación del receptor GPR30. Para el caso del tratamiento con estradiol (barras rojas), se muestra claramente la tendencia de una curva dosis respuesta. La respuesta al tratamiento con 4-OHT, también tiene un patrón claro entre la dosis y la respuesta, pero las dosis menores como 1nM y 10nM produjeron una disminución en la expresión de ARNm de GPR54. Este resultado puede deberse a la existencia de una inhibición por parte del 4-OHT a dosis bajas o a una sobre estimación del grupo control. En el caso del G-1, el agonista específico del receptor GPR30, las dosis mayores (10 y 100 nM) también muestran una relación dosis-respuesta, pero la menor (1 nM) no sigue este patrón. La dosis mayor de G-1 (100nM) fue donde se observó el mayor nivel de expresión del ARNm de GPR54. El análisis estadístico mostró diferencias significativas entre dosis en los tres grupos tratados (P<0.05), así como con el grupo control (P<0.05). El aumento de los niveles del ARNm de GPR54 demuestra que este sistema esta modulado por estrógenos vía el receptor GPR30. Será necesario replicar este experimento para poder concluir con toda certeza si el 4-OHT tiene un efecto dual (inhibitorio a dosis pequeñas y facilitador a dosis mayores) o bien esta observación fue producto de la variabilidad observada en el grupo control. Fig.1. Efecto del 17β-estradiol así como también los agonistas del receptor GPR30 4-OHT y G1 sobre el incremento del ARNm de GPR54 en células GT1-7. En cada gráfica se muestran los promedios del error estándar. Los cálculos fueron realizados utilizando el método para determinación de expresión relativa por PCR en tiempo real denominado ΔΔCp. Diversos grupos de investigación han demostrado que el sistema kisspeptina/GPR54 esta modulado por estrógenos, y nuestros resultados no solo confirman este concepto, sino que lo extienden al proponer que al menos en parte esta modulación implica al receptor membranal GPR30. Actualmente, se considera que el GPR54 es una molécula muy importante en la regulación de la función reproductiva, desarrollando un papel crucial en el proceso de la pubertad (Seminara et al., 2003). La kisspeptina se ha considerado también un componente importante de la secreción de la GnRH, el desarrollo de la pubertad y el mantenimiento de la función normal de la reproducción en el adulto, todo ello inter-dependiente de esteroides sexuales. Por esta razón consideramos que es importante hacer un análisis adicional midiendo y comparando los niveles de expresión del ARNm de la propia Kisspeptina, para saber si esta juega un papel autócrino en estas células. Conclusiones. El sistema Kispeptina/GPR54 esta modulado vía GPR30 en neuronas GnRHérgicas. Los agonistas del receptor GPR30 (G1 y 4-OHT) tienen un efecto máximo en la dosis de 100 nM. Bibliografía. • Aparicio SA. Kisspeptins and GPR54 the new biology of the mammalian GnRH axis. Cell Metab. 1(5):293-6. 2005. • Bologna CG, Revankar CM, Young SM, Edwards BS, Arterburn JB, Kiselyov AS, Parker MA, Tkachenko SE, Savchuck NP, Sklar LA, Oprea TI, Prossnitz ER. 2006. Virtual and biomolecular screening converge on a selective agonist for GPR30. Nat Chem Biol. 2(4):2007-12. 2006. • De Roux N Genin E, Carel JC, Matsuda F, Chaussain JL, Milgrom E. Hypogonadotropic hypogonadis due to loss of function of the KiSS1-derived peptide receptor GPR54. Proc Natl Acad Sci USA. 15; 100 (19):10972-6. 2003. • Dungan HM, Clifton DK, Steiner RA. Minireview: kisspeptin neurons as central processors in the regulation of gonadotropin- releasing hormone secretion. Endocrinology. 147(3):1154-8. 2006. • Fox SR, Harlan RE, Shivers BD, Pfaff DW. Chemical caracterization of neuroendocrine targets for Progesterone in the female rat brain and pituitary. Neuroendocrinol. 51,276-283. 1990. • Herbison AE, y Theodosis DT. Localisation of oestrogen receptor in preoptic neurons containing neurotensin but not tyrosine hydroxylase, cholecystokinin or lutenizing hormona-releasing hormona in the male and female rat. Neuroscience.50, 283-298. 1992. • Herbinson AE, Pape JR. New evidence for estrogen receptor in gonadotropinreleasing hormone neurons. Front Neuroendocrinol. 22, 292-308. • Herbinson AE, Synner MJ, Sim JA. Lack of detection of estrogen receptor-α transcripts in mouse gonadotropin –releaing hormone neurons. Endocrinol. 42,493. 2001. • Hewitt SC, Deroo BJ, Korach KS. Signal transduction. A new mediator for an old hormone? Science. 11; 307(5715):1572-3. 2005. • Hrabovsky E, Steinhauser A, Barabas K, Shughrue PJ, Petersen SL, Merchenthaler I, Liposits Z. Estrogen receptor-β immunoreactive in luteinizing hormone-realsing hormone neurons of the rat brain. Endocrinol. 142,3261-3264. 2001. • Huang X y Harlan RE. Absence of androgen receptors in LHRH immunoreactive neurons. Brain Res. 624, 309-311. 1993. • Jacobi JS, Martin C, Nava G, Jesiorski MC, Clapp C, Martínez de la Escalera G. 17-Betaestradiol Directly Regulates the Expresión of Adrenergic Receptor and Kisspeptin/GPR4 System in GT1-7GnRH Neurons. Neuroendocriology.Aug 29. 2007. • • • • • • • • • • • • • • • • • Kallo I, Butler JA, Barkovics-Kallo M, Goubillon ML, y Coen CW. Oestrogen receptor beta-inmunoreactivity in gonadotropin releasing hormone-expressing neurones: regulation by oestrogen. J Neuroendocrinol. 13,741-748. 2001. Kiuper GG, Enmark E, Pelto-Huikko M, Nilsson S, Gustafsson JA. Cloning of a novel receptor expressed in rat prostate and ovary. Proc Natl Acad Sci USA. 11, 5925-5930. 1996. Lehman MN y Karsch FJ. Do gonadotropin –releasing hormone neurons. Endocrinol. 133, 887-895. 1993. Martínez de la Escalera G y Clapp C. Regulation of Gonadotropin-Releasing Hormona Secretion: Insights from GT1 inmortal Gn RH neurons. Archives of medical Research. 32, 486-498. 2001 Messager S, Chatzidaki EE, Ma D, Hendrick AG, Zahn D, Dixon J, Thresher RR, Malinge I, Lomet D, Carlton MB, Colledge WH, Caraty A, Aparicio SA. Kisspeptin directly stimulates gonadotropin-releasing hormone release via G protein-coupled rceptor54. Proc Natl Acad Sci USA. 102(5) :1761-6. 2005a. Messager S. Kisspeptin and its receptor: new gatekeepers of puberty. J Neuroendocrinol. 17 (10): 687-8. 2005b. Navarro CE, Saeed SA, Murdock C, Martínez-Fuentes AJ, Arora KK, Krsmanovic LZ, Catt KJ. Regulation of cyclic adenosine 3´,5´-monophosphate in immortalized gonadotrophin-releasing hormone neurons. Mol Endocrinol. 17:1792-1804. 2003. Popa SM, Clifton DK, Steiner RA. A KiSS to remember. Trends Endocrinol Metab. 16(6):249-50. 2005. Roy D, Angelini NL y Belsham DD. Estrogen directly reprreses gonadotropinreleasing hormone (GnRH) gen expression in estrogen receptor-α (ERα ) and ERβ-expressing GT1-7 GnRH neurons. Endocrinol. 140, 5045-5053. 1999. Shivers BD, Harlan RE, Morreell JI, Pfaff DW. Absence of oestradiol concentration in cell nuclei of LHRH-inmunoreactive neurons. Nature. 304-345. Seminara SB, Kaiser UB. 2005. New gatekeepers of reproduction: GPR54 and its cognate ligand, KiSS-1. Endocrinology. 146(4):1686-8. 1983. Shen ES, Meade EH, Perez MC, Deecher DC, Negro-Vilar A, López FJ.. Expresion of functional estrogen and galanin messenger ribonucleic acid immortalized luteinizing hormone-releasing hormone neurons: Estrogenic control of galanin gene expression. Endocrinol. 139, 939-948. 1998. Skynner MJ, Sim JA, Herbinson AE. Detection of estrogen alpha and beta messenger ribonucleic acids in adult gonadotropin-releasing hormone neurons. Endocrinol. 140, 5195-201. 1999. Stafford LJ, Xia C, Ma W, Cai Y, Lui M. Identification and characterization of mouse metastasis-suppressor KiSS1 and its G-protein-coupled receptor. Cancer Res. 1;62(19):5399-404. 2002. Tena-Sempere M. Hypotalamic KiSS-1: the missing link in gonadotropin feedback control? Endocrinology. 146 (9): 3683-5. 2005. Thomas P, Pang Y, Filardo EJ, Dong J. Identity of an estrogen membrane receptor coupled to a Gprotein in human breast cáncer cells. Endocrinology. 2005, 146(2):624-32. 2005. Vogel G. Reproducive biology. A powerful first KiSS-1. Science. 309(5734):551-2. 2005.