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LINEAMIENTOS EN LOS PROGRAMAS DE
VIGILANCIA ETV
MALARIA
La malaria es una de las enfermedades infecciosas de más alto poder epidémico y
constituye un evento cuya vigilancia, prevención y control revisten especial interés en
la salud pública.
En Colombia cerca del 75 % de los casos de malaria son detectados en la red de
microscopía existente en las áreas rurales de los municipios con alta transmisión de
la enfermedad; 15 a 20% se realiza en las ESES municipales y 5 al 10% en
instituciones de mayor complejidad.
Las acciones de diagnóstico y tratamiento de la malaria en Colombia están incluidas
dentro del Plan Obligatorio de Salud (POS) del Sistema General de Seguridad Social
en Salud (SGSS). El Ministerio de la Protección Social adquiere los medicamentos
para tratamiento de la malaria y los distribuye de forma gratuita a través de las
instituciones rectoras de la salud pública en cada entidad territorial. Los actores
responsables por la prestación de los servicios en las zonas endémicas de malaria
deben coordinar acciones para que la población tenga acceso gratuito a diagnóstico
precoz y el tratamiento oportuno.
MALARIA
Errores de diagnostico:
•
•
•
•
•
•
•
•
No sospechar la enfermedad
No investigar antecedentes de visitas a zonas endémicas
Subestimar la gravedad
Diagnostico parasitológico equivocado
Una sola gota gruesa negativa, sin gota gruesa seriada
No hacer parasitemia de control
No tener en cuenta los diagnósticos diferenciales
No realizar una adecuada anamnesis e indagar sobre automedicación
Estadios Parasitarios
Trofozoitos jovenes
Trofozoitos maduros
Esquizontes
Gametocitos
FORMAS ASEXUADAS
FORMAS SEXUADAS
Malaria
Plasmodium falciparum
Responsable de la mayoría
de casos complicados de
malaria y muertes
Malaria
Plasmodium vivax
Mayor número de casos en
nuestro país.
Infección Mixta
CRITERIOS PARA DEFINIR INFECCION MIXTA
1. Formas sexuadas (gametocitos) de P. falciparum + formas
de P. vivax.
2.Establecer la cantidad de formas parasitarias compatibles con
P. falciparum y con P. vivax, en 100 formas parasitarias
observadas. P. falciparum es mayor o igual al 40%.
Infección Mixta
Recuento Parasitario
- Importancia pronóstica.
- Decisión en conducta y
tratamiento inicial.
- Seguimiento
en
la
respuesta terapéutica
(detección
de
resistencia).
Recuento Parasitario
o Recuento =
FORMULA
# formas parasitarias x 8.000 leuc/µl
200
Plasmodium falciparum:
Se realizar el recuento de formas asexuadas
Y se informa la presencia de gametocitos en el caso de P. falciparum.
Plasmodium vivax:
Se realiza un solo recuento de todas las formas
en el caso de P. vivax.
Recuento Parasitario
• ≥100 parásitos en 200 leucocitos, se registra el resultado en términos
de cantidad de parásitos por 200 leucocitos.
• <100 parásitos después de contar 200 leucocitos, la cuantificación de
parásitos se debe continuar hasta contar 500 leucocitos. Se cuentan
todos los parásitos en el campo final aunque el recuento de leucocitos
sea superior a 500.
• Cuando hay muchos parásitos en la gota gruesa:
Cuente 500 parásitos en el número de leucocitos presentes.
Recuento: 510 parásito
•
______________________ x 8.000
•
20 leucocitos
LEISHMANIASIS
• La Leishmaniasis es una zoonosis que puede afectar la piel, las mucosas o las
vísceras, resultado del parasitismo del protozoario flagelado del género
Leishmania en los macrófagos, introducido al organismo por la picadura de un
insecto flebótomo.
• Las presentaciones clínicas de la enfermedad varían de acuerdo con:
• La especie de Leishmania
• La respuesta inmune del hospedero y el estado evolutivo de la enfermedad.
• La especie infectante está determinada por el vector que la transmite, y a su
vez la presencia del vector está determinada por las condiciones ecológicas de
cada región.
• Las formas de presentación clínica de Leishmaniasis son: la forma cutánea,
mucosa o mucocutánea y visceral.
Leishmaniasis cutánea







Ulcera típica es redondeada
Bordes eritematosos, engrosados
Centro limpio
Fondo granuloso
Infiltrada en la base
Lesiones únicas o múltiples
Indoloras
Métodos Diagnósticos
1) Examen directo
 Es un método rápido, económico y de fácil realización. La
sensibilidad es de un 85% a 90%
 Se recomienda la toma de más de una muestra de una misma
lesión, tres preparaciones tanto del borde activo como del centro
de la úlcera, lo cual aumenta la sensibilidad.
 Si la úlcera presenta signos de sobre-infección bacteriana, se
debe administrar tratamiento antibiótico durante cinco días previo
a la realización del examen directo
2) Biopsia de piel
3) Cultivo
Frotis Directo
FROTIS (RASPADO)
DEL BORDE INTERNO
DE LA ÚLCERA
Lectura Frotis Directo
•
SE DEBE OBSERVAR TODO EL
EXTENDIDO
OJO:
UN EXAMEN DIRECTO POSITIVO CONFIRMA
UNA
LEISHMANIASIS, PERO UNO
NEGATIVO NO LA DESCARTA.
EVALUACION DEL DESEMPEÑO
Evalúa la competencia técnica de los profesionales de los
laboratorios que conforman la Red de Laboratorios en el
Departamento para asegurar la calidad en los diagnósticos.
Evaluación Indirecta del Desempeño
Evaluación retrospectiva del diagnóstico de rutina a un porcentaje
determinado de muestras de la Red Diagnostica.
El material analizado en la evaluación indirecta del desempeño,
corresponde a la programación que se realiza al inicio del año
por parte de las Bacteriólogas del Programa. Esta información
se notifica a cada una de las instituciones y en ella se
especifica los meses y los municipios que deben participar.
Resultado Evaluación Indirecta Del
Desempeño
AÑO 2016
Total de Muestra
%
Cumplimiento
Observaciones
de
ENERO
FEBRERO
MARZO
ABRIL
MAYO
JUNIO
86
45
334
248
174
363
96%
93%
90%
92%
78%
81%
En el mes de mayo: el porcentaje de cumplimiento fue de 78%, 12
laboratorios clínicos presentaron errores en la identificación de
especie parasitaria en Malaria y 7 laboratorio clínico presento error en
la identificación de Amastigotes de Leishmania
En el mes de junio: el porcentaje de cumplimiento fue de 81%, 14
laboratorios clínicos presentaron errores en la identificación de
especie parasitaria en Malaria y 4 laboratorio clínico presento error en
la identificación de Amastigotes de Leishmania
Institución Remitente: ____________________________________
No Láminas positivas/mes: ____
Municipio: _____________________
No Láminas Negativas/mes: _____
Informe Mes de: ____________________
No Láminas Enviadas ______ Bacterióloga Responsable_______________
Fecha del Envío de muestras: Día___ Mes___ Año ___ Responsable y Fecha del Recibo de muestras: ____________________________ Día___ Mes ____ Año____
RESULTAD
O
Dx.
Código Mx.
LSPN
I.P.S
Tipo
ETV
Recuento
Parásitos
ERRORES TÉCNICOS DE LA MUESTRA
%
Concordancia
Inadecuada
IPS
LSPN
IPS
LSPN
Dx.
Recuento
Identificación
ESPESOR
Gruesa
Delgada
DISTRIBUCION
Tocando
Bordes
Irregular
COLORACION
D.H
Inadecuada
Contaminada
Precipitada
.
ERRORES TECNICOS
Total
Láminas
Supervisadas
Láminas Positivas
Concordantes
No
No
%
Láminas Negativas
Concordantes
Espesor
No
No
%
No. Total
Errores
Indice Kappa
General
Especie
Distribució
n
Coloración
Identificación
% de
Error
General
Evaluación Directa Del Desempeño
Esta evaluación se realiza dos veces al año y consta de la
preparación de material evaluativo (5 láminas de Malaria y 2 de
Leishmaniasis) con sus respectivos casos clínicos. El volumen
de material preparado consta de 500 láminas de Malaria, que
corresponde a 100 evaluaciones dirigidas a Laboratorios
Clínicos y Puestos de Microscopia y 50 láminas de
Leishmaniasis que corresponde a 25 evaluaciones dirigidas a
Laboratorios Clínicos.
Resultado Evaluación Directa Del
Desempeño
AÑO 2016
% de Concordancia
Número de Laboratorios con
concordancia mayor o igual al
90%
Número total de Laboratorios
Participantes en la evaluación
PRIMERA EVALUACION EXTERNA DIRECTA DEL
DESEMPEÑO
El porcentaje de concordancia total entre laboratorios
clínicos fue del 71%, debido a que 18 laboratorios
clínicos presentaron errores en los resultados de la
evaluación externa directa del desempeño en malaria,
11 laboratorios clínicos en Leishmaniasis y 9 puestos de
microscopia presentaron errores en los resultados de la
evaluación externa directa del desempeño en malaria.
91
125
CHAGAS
Enfermedad parasitaria producida por el
protozoo flagelado Trypanosoma cruzi y
transmitida por insectos hematófagos de la
familia Reduviidae.
CHAGAS
Signos de puerta de entrada
•Signo de Romaña
• Edema bipalpebral unilateral
• Róseo-violáceo (indoloro)
• Congestión conjuntival
• Adenopatía pré-auricular
Diagnostico de Laboratorio
•Para realizar el diagnóstico del laboratorio, existen
distintos procedimientos
técnicos. Los directos o
parasitológicos, que se basan en la demostración de la
presencia del parásito en sangre circulante y
excepcionalmente en biopsia y los inmunológicos, que
detectan la presencia de anticuerpos anti- Trypanosoma
cruzi
DENGUE
Los primeros síntomas en la forma clásica de dengue
son fiebre y cefalea asociado a mialgias, artralgias,
astenia y adinamia, además de dolor retro ocular y rash
cutáneo.
Esta etapa es la frecuente en la mayoría de los
pacientes aunque algunos continúan hacia una etapa
crítica, en la que hay un riesgo alto de muerte si no se
trata a tiempo, y otros presentan formas atípicas o
graves de dengue dirigidas a la lesión de un órgano
específico como encéfalo, miocárdio, riñón o hígado.
DENGUE NS1 Ag IgG/ IgM
Es
una
prueba
inmunocromatografica de un
paso diseñada para detectar el
antígeno del virus del Dengue
NS1 y los anticuerpos contra el
virus del Dengue IgG/IgM, de
manera
cualitativa
y
diferencial.
Identificación AC IgM
• Los anticuerpos IgM para Dengue aparecen en el
suero al quinto día de iniciado el cuadro febril y
persiste dos o tres meses.
• Su presencia indica infección actual o reciente.
• La muestra debe obtenerse en los casos que
presenten cuadro febril con mas de cinco días de
evolución
Medidas de Vigilancia Por Laboratorio
• La vigilancia virológica provee información sobre los
serotipos
de los virus circulantes y detecta
oportunamente la introducción de nuevos serotipos en
un área
• Identificación de anticuerpos
• EEI Enviar el 10% de las muestras NEGATIVAS
procesadas en el mes y total de POSITIVAS
ZIKA - CHIKUNGUYA
• Tanto el aislamiento viral, como la detección molecular del virus, pueden
realizarse a partir de sueros obtenidos durante los primeros cinco días de
inicio del cuadro febril, aunque el tercer día de inicio de síntomas es el
momento óptimo para lograr la detección del virus o su material genético.
La muestra debe obtenerse de pacientes que presenten cuadros febriles
agudos con menos de cinco días de evolución desde el inicio de los
síntomas, de acuerdo con las consideraciones dadas por el laboratorio
de virología del INS.
Escenario epidemiológico y tipo de población Para la
detección de la circulación viral y confirmación de casos por
laboratorio
Escenario epidemiológico y tipo de
población
Población a riesgo, sin importar si hay o no
transmisión confirmada por laboratorio de
en el municipio de ocurrencia
Muestra de
sangre
Si
Tipo de caso al
ingreso al SIVIGILA
Sospechoso
Población general procedente del extranjero
Ajuste según
resultado de
laboratorio
Confirmado
(Laboratorio o
Clínica) o
descartado
Confirmado o
descartado
Si
Sospechoso
Población en zonas de riesgo en municipios
con confirmación de circulación viral por
laboratorio
No
Confirmado por
clínica
No aplica
Población en zona de riesgo, en municipios
sin confirmación de circulación viral por
laboratorio
Si
Sospechoso
Confirmado o
descartado
ZIKA
Manejo y remisión de muestras
•
Las muestras de suero deben ser almacenadas en condiciones de
congelación (-10 a -20°C) y enviadas al Laboratorio de Salud Pública
Departamental dentro de las primeras 48 horas después de su
recolección. A su vez, el Laboratorio de Salud Pública debe garantizar
las mismas condiciones de almacenamiento y transporte para remitir al
Laboratorio de Virología del Instituto Nacional de Salud.
•
Estas muestras deberán ser remitidas al Laboratorio de Salud Pública
con la documentación respectiva: ficha epidemiológica de datos básicos
código 217, ficha de laboratorio con todos los campos diligenciados
(fecha de inicio de síntomas y fecha de recolección de la muestra) e
historia clínica.