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GUÍA DE MONITOREO DE PLAGAS
UVA DE MESA
Lobesia botrana
Brevipalpus chilensis
Chanchitos blancos
INTRODUCCIÓN
2
INSTRUCTIVO PARA LA UTILIZACIÓN DE ESTE MANUAL
3
FALSA ARAÑITA DE LA VID
4
POLILLA DEL RACIMO DE LA VID
10
CHANCHITOS BLANCOS
15
BIBLIOGRAFÍA
20
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Índice
1
Introducción
El monitoreo de plagas en huertos es un componente esencial tanto del
Manejo Integrado de Plagas como de las Buenas Prácticas Agrícolas, en
cuyo caso permite al productor tomar sus decisiones de control avalado por
la presencia concreta de las plagas cuantificadas en su huerto. Establecer un
sistema de monitoreo, aumenta las probabilidades de éxito en el control de
plagas, evitando aplicaciones innecesarias. Lo anterior, implica un ahorro
y la protección de la fauna benéfica presente en el huerto que mantiene
controladas otras plagas (Referencia: Ripa, Luppichini).
Esta guía de campo proporciona al productor y profesionales del sector
agrícola una herramienta que les permitiría identificar, monitorear e
interpretar en forma práctica las plagas presentes en su huerto de uva de
mesa, en este caso Brevipalpus chilensis (Falsa arañita roja de la vid), Lobesia
botrana (Polilla del racimo de la vid) y Pseudococcus (Chanchitos blancos).
El monitoreo efectivo (efectuado en la época oportuna, examinando las
estructuras de la planta que corresponda y analizando los registros) nos
permitirá mejorar las formas de control utilizadas.
Brevipalpus chilensis corresponde a una plaga endémica, de connotación
cuarentenaria en fruta de exportación y en cultivares destinados a la
vinificación, causa un daño de importancia económica, principalmente en
variedades tintas. Son ácaros fitófagos que se caracterizan por poseer un
cuerpo pequeño muy aplanado, generalmente ovalado y de setas dorsales
cortas. Esta plaga se distribuye en Chile, desde la región de Arica y Parinacota
a la región de Los Ríos.
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Lobesia botrana fue detectada oficialmente por primera vez en Chile en la
zona de Linderos, región Metropolitana en abril del 2008 (Ripa & Luppichini,
2010). La plaga, originaria de Europa, ataca a los viñedos, su larva provoca
un daño directo al alimentarse de los racimos, produciéndose una pudrición
y deshidratación de las bayas. En Chile se encuentra distribuida desde la
región de Atacama a la Región de la Araucanía (Fuente: SAG). Debido al
grave daño fitosanitario que este insecto produce al sector agrícola, el SAG
la declaró bajo control obligatorio mediante la Resolución N°4.287 de 2014
(Deroga Resolución N°6.853, de 2013).
2
La familia Pseudococcidae (Chanchitos blancos), corresponde a especies
polífagas, plaga de cultivos agrícolas, ornamentales y forestales. Esta familia,
constituye colonias sobre los frutos, hojas, madera, así como también en
las raíces de numerosas plantas cultivadas y malezas. Es una de las plagas
de mayor presencia en las plantaciones frutícolas, generando problemas
cuarentenarios para algunos mercados (FDF, 2010). En Chile se distribuye
entre las regiones de Arica y Parinacota y la región de La Araucanía (Ripa &
Larral, 2008).
Instructivo para la utilización
de este manual
La vid es hospedera de alrededor de medio centenar de artrópodos en
Chile. Sin embargo, no todos los insectos y ácaros asociados a la planta
representan plagas de importancia económica. En el presente manual se
ha seleccionado a Lobesia botrana (Polilla del racimo de la vid), Brevipalpus
chilensis (Falsa arañita roja de la vid), y Pseudococcus (Chanchitos blancos),
por ser unos de los principales insectos y ácaros asociados al cultivo de uva
de mesa, para cada uno de los cuales se ha elaborado una ficha que entrega
información con respecto a la plaga, sus enemigos naturales y la forma
de cómo ejecutar el monitoreo. Se incluyen imágenes para el apoyo en el
reconocimiento de las plagas, el daño que generan y del monitoreo.
La estructura para cada ficha se explica en el siguiente diagrama:
Para cada plaga se ha desarrollado un capítulo
denominado “CONOCIMIENTO DE LA PLAGA”.
Uva de Mesa. Polilla del racimo de la vid
Conocimiento de la Plaga
Nombre común
Se da el nombre con que comúnmente se
denomina a cada plaga y su nombre científico.
Nombre científico
Polilla del racimo de la vid
Lobesia botrana
Hospederos
La literatura señala a la vid como hospedero primario. Otros hospederos
importantes mencionados son: Kiwi, caqui, olivo, mora, guindo y
ciruelo (Ripa & Luppichini, 2010). Además cerezo, duraznero, granado,
groselleros, berries; entre otros, reportándose ataques puntuales y
ocasionales en algunos de éstos (Fuente: USDA).
La descripción de los insectos o ácaros junto con
las imágenes permite el reconocimiento de la
plaga.
Descripción
Los huevos son lenticulares, de color amarillento a gris claro translúcido,
depositados generalmente de forma aislada sobre tejido y frutos de la vid.
Su diámetro varía entre 0,5 a 0,9 mm. Al final de su desarrollo se distingue
la cápsula cefálica o cabeza negra de la larva.
Las larvas (Figura 6) presentan 5 estados larvarios, con tamaños desde
1 mm hasta de 12 a 15 mm cuando está completamente desarrollada. Al
emerger, es color blanco cremoso con la cabeza café oscuro a negro, y a
medida que se va desarrollando la cabeza se torna café claro y el cuerpo
verdoso amarillento, dependiendo del contenido intestinal. Tienen
movimientos muy ágiles y posee peine anal.
La pupa mide entre 4 a 9 mm de longitud y se encuentran escondidas
debajo de la corteza, en pliegues de las hojas, en refugios de los racimos
o en el suelo, generalmente envueltas por un capullo blanco sedoso.
El tamaño del adulto dependerá de la calidad del sustrato de alimentación
utilizado a lo largo del estado larvario. Posee un mosaico en las alas
anteriores, este contrasta con el tinte grisáceo más o menos uniforme de
las alas posteriores. Su tamaño en reposo es de 6-8 mm de longitud y su
envergadura alar es de unos 10-13 mm (Figura 8).
El daño que produce la plaga sobre el cultivo
es brevemente descrito y se complementa con
imágenes.
Brevemente se describe el ciclo y desarrollo de la
plaga en la temporada.
Ciclo y desarrollo en la temporada
Esta polilla presenta tres generaciones y eventulamente una cuarta
parcial en la zona central de Chile. Inverna como pupa bajo el ritidomo de
la vid, frecuentemente en la cara interior de los brazos y porción superior
del tronco. La emergencia de los primeros adultos, de pupas invernantes,
ocurre desde octubre a noviembre en la Región Metropolitana. El
segundo vuelo se estima que se inicia a partir de la segunda quincena de
diciembre, dando origen a la segunda generación. La tercera generación
se inicia probablemente desde fines de enero y se extiende hasta marzo
(Ripa & Luppichini, 2010).
Se nombran y describen los enemigos naturales
que se incluirán para su monitoreo en campo.
10
Para cada plaga se ha elaborado un capítulo
denominado “GUÍA DE MONITOREO Y
CONTROL”.
Enemigos naturales a incluir en monitoreo
Enemigos naturales a incluir en monitoreo
Dibrachys cavus, es una microavispa (Figura 9) que parasita prepupas y
pupas de varios lepidópteros, entre ellos L. botrana.
Goniozus legneri, también es una microavispa parasitoide de larvas.
El adulto es de color negro, la hembra adormece a la larva y coloca sus
huevos sobre ella (Figura 10), desde donde emergen larvas de la polilla
que se alimentan externamente de la larva de Lobesia hasta matarla.
Trichogramma nerudai (Figura 11) es un microhimenópetro al cual se le
ha encontrado parasitando huevos de Lobesia. Estos parasitoides actúan
sobre huevos, lo que tiene la ventaja de eliminar la plaga sin que alcance
a provocar daño.
Chrisoperla defreitasi (crisopas) (Figura 12) son insectos del grupo de los
neurópteros depredadores, es decir, se alimentan de la presa, cazan y se
alimentan de más de un individuo.
Estas especies podrían ser de mucha utilidad como alternativas o
complemento a las aplicaciones químicas, particularmente en zonas
urbanas o en períodos del año en que se ha terminado con las aplicaciones
de pesticidas (Gerding et al, 2014).
Dibrachys cavus, es una microavispa (Figura 9) que parasita prepupas y
pupas de varios lepidópteros, entre ellos L. botrana.
Goniozus legneri, también es una microavispa parasitoide de larvas.
El adulto es de color negro, la hembra adormece a la larva y coloca sus
huevos sobre ella (Figura 10), desde donde emergen larvas de la polilla
que se alimentan externamente de la larva de Lobesia hasta matarla.
Trichogramma nerudai (Figura 11) es un microhimenópetro al cual se le
ha encontrado parasitando huevos de Lobesia. Estos parasitoides actúan
sobre huevos, lo que tiene la ventaja de eliminar la plaga sin que alcance
a provocar daño.
Chrisoperla defreitasi (crisopas) (Figura 12) son insectos del grupo de los
neurópteros depredadores, es decir, se alimentan de la presa, cazan y se
alimentan de más de un individuo.
Estas especies podrían ser de mucha utilidad como alternativas o
complemento a las aplicaciones químicas, particularmente en zonas
urbanas o en períodos del año en que se ha terminado con las aplicaciones
de pesticidas (Gerding et al, 2014).
Figura 6. Larva instar IV de
Lobesia botrana
Las especificaciones del objetivo a monitorear,
los lugares o estructuras junto con el tamaño y
la ubicación de las muestras son indispensables
para implementar el monitoreo de plagas.
Para realizar correctamente el monitoreo se
describe la forma de cómo monitorear.
Figura 6. Larva instar IV de
Lobesia botrana
Figura 7. Daño en uva de mesa var.
Crimson Seedless por L. Botrana
Figura 7. Daño en uva de mesa var.
Crimson Seedless por L. Botrana
Tamaño real:
2 cm
Tamaño real:
2 cm
1 cm
1 cm
Adulto
0
Pupa
Técnica de detección empleada en laboratorio
Observación visual de la fruta: Verificar existencia de perforaciones en las
bayas producto de la entrada de la larva.
Observación bajo la lupa estereoscópica 40X de individuos: En larvas la
identificación taxonómica debe ser realizada por personal especializado.
En insectos adultos, la identificación se logra a través de observación
visual de los detalles alares antes descritos.
11
Monitoreo con trampas con feromonas
Trampa
Densidad
Época
Ubicación
Frecuencia
Tipo delta de
Pherocon EGVM
1 trampa cada
2 ha.
A más tardar a
fines de agosto
A la altura de la
vegetación de la
planta
Revisión cada
14 días
Cambio de
feromona
mensual
Mínimo 2
trampas por
huerto
Entre el techo
de las plantas y
la altura de los
racimos
Además, se incluyen
imágenes para
la ayuda en la
identificación de la
plaga y sus enemigos
naturales. El tamaño a
escala real de la plaga
también ayuda para
su reconocimiento.
Huevo
cabeza
negra
L4 (6,0 - 7,0 mm)
Pupas
(5-6 mm)
Adulto
(6 mm)
L1 (0,9 - 1,5 mm)
L4 (6,0 - 7,0 mm)
L5 (10,0 - 11,0 mm)
L1 (0,9 - 1,5 mm)
L3 (4,5 - 5,0 mm)
L2 (1,9 - 3,0 mm)
Macho
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Huevo
cabeza
Hembra
Macho
Adulto
(6 mm)
Pupas
(5-6 mm)
11
Adulto
Larvas de L. botrana
parasitadas
Pupas en
capullo,
Goniozus
Figura 9. Parasitoide de pupas:
Dibrachys
Figura 10. Parasitoide de larvas:
Goniozus legneri.
Figura 11. Parasitoide de huevos:
Trichogramma nerudai.
Figura 12. Predador:
Chrysoperla sp.
1ª generación
2ª y 3ª
generación
Ubicación
Frecuencia
Antes del
estado botones
florales
separados
Después de
las primeras
capturas
Distribución
homogénea en
el huerto con
énfasis en orillas
2 veces por
semana
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Monitoreo de racimos
Racimos
Sin sacarlos de
la planta
13
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Estados de desarrollo Lobesia botrana
Huevo
amarillo
negra de Mesa. Polilla del racimo de la vid
Uva
Huevo (0,6 - 0,8 mm)
0
Pupa
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Fuente: FDF
Estados de desarrollo Lobesia botrana
Hembra
1er
2º
3er
4º
5º
estadío estadío estadío estadío estadío
Fuente: FDF
Huevo
amarillo
Guía de Monitoreo y Control
Huevos
L5 (10,0 - 11,0 mm)
1er
2º
3er
4º
5º
estadío estadío estadío estadío estadío
L3 (4,5 - 5,0 mm)
Huevos
L2 (1,9 - 3,0 mm)
Adulto
Huevo (0,6 - 0,8 mm)
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Daño
Las larvas de primera generación se alimentan de los botones florales y
los agrupa con hilos de seda, formando glomérulos.
Las larvas de las siguientes generaciones se alimentan de las bayas (Figura
7), perforándolas e introduciéndose en ellas (Fuente: FDF). Este daño
favorece el desarrollo de colonias de hongos como Botrytis, Aspergillus,
Penicillium y Rhizopus (Ripa & Luppichini, 2010). Existe la posibilidad de
encontrar estados pupales en el interior de la baya.
3
Uva de Mesa. Falsa arañita de la vid
Conocimiento de la Plaga
Nombre común
Nombre científico
Falsa arañita de la vid
Brevipalpus chilensis
Hospederos
Vid, kiwi, chirimoyo, higuera, granado, limonero, mandarino, naranjo,
pomelo, caqui, malezas, otras especies silvestres y ornamentales como
ligustrina, sauce y especias nativas como palqui y Lobelia ap.
Descripción
Los huevos son ligeramente ovoidales, de color rojo brillante, lisos y
pueden estar en grupos o separados.
Las larvas son de color rojo brillante y tienen 3 pares de patas.
Las ninfas (protoninfa y deutoninfa) tienen 4 pares de patas, son más
grandes que las larvas y con morfología similar al adulto.
La hembra adulta es un pequeño ácaro rojo de forma ovoidal muy
aplanada dorsoventralmente, de longitud no superior a 0,5 mm. Por su
parte media del lado dorsal se observa un ligero relieve transversal que
a veces presenta una coloración más oscura. Este ácaro presenta baja
movilidad, pues posee apéndices locomotores muy cortos (Olivares et al.,
2014). El macho es de menor tamaño que la hembra y su cuerpo es más
triangular (Figuras 3 y 4).
Daño
Esta especie de ácaro se puede encontrar en variedades como Riber,
Cardinal, Crimson Seedless y otras. En algunos casos puede causar
deshidratación y encarrujamiento de las bayas. La alimentación de este
ácaro causa daño en brotes, hojas, pedicelos, raquis, yemas y bayas, en
ataques intensos causa pardeamiento y necrosis en el tejido de las hojas
(Ripa & Luppichini, 2010). La presencia misma del ácaro en racimos es
causal de rechazo para la uva de exportación al mercado de USA.
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Ciclo y desarrollo en la temporada
4
El ciclo de B. chilensis incluye los estados de huevo, larva, protoninfa,
deutoninfa y adulto (Figura 5). En vid inverna como hembra adulta, bajo
la corteza y yemas de la vid. Ovipone en primavera sobre brotes y hojas
nuevas, de preferencia por su envés. Los primeros estadíos se ubican en
las hojas, reproduciéndose y aumentando en densidad hacia el verano.
Presenta 5 o más generaciones en la temporada y cuando comienza el
receso de la planta, el ácaro se traslada a la madera, donde inverna.
Enemigos naturales a incluir en monitoreo
- Cynodromus californicus
- Cynodromus chilenensis
- Phytoseiulus persimilis
- Euseius fructicolus
- Typhlodromus Pyri
Estos
enemigos
naturales
son ácaros depredadores de
B. chilensis (Figuras 1 y 2). Se
Figura 2.
reconocen por ser piriformes, su
Figura 1. Ácaro
Cynodromus
depredador
californicus
rápido desplazamiento en hojas,
por presentar largas setas y una
Longitud
0
coloración translúcida brillante a
aproximada para
adultos.
rojizas cuando se han alimentado
0,5 cm
de ácaros o sus huevos.
La liberación del ácaro fitoseido Typhlodromus pyri disminuye la densidad
de B. chilensis en viñedos. Este fitoseido se alimenta de los estados
juveniles de esta arañita, razón por la que se debe liberar en períodos de
mayor abundancia de estos estados (Ripa & Luppichini, 2010).
HEMBRA
MACHO
Figura 3. Adultos de
Brevipalpus chilensis
Figura 4. Huevos de
Brevipalpus chilensis
Ciclo biológico de Brevipalpus chilensis
Larva
Ninfas
Hembra adulta, vista en microscopio
Figura 5. Ciclo biológico de Brevipalpus chilensis
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Adultos
Fuente: FDF
Huevos
5
Malezas Hospederas Potenciales de Brevipalpus chilensis
Nº
Nombre común
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
1 Achicoria silvestre
6
Nombre científico
Cichorium intybus
Familia
Asteraceae
Ciclo de vida
Anual o Bianual
2 Alfilerillo
Erodium cicutarium
Geraneaceae
Anual
3 Ballica
Lolium multiflorum
Poaceae
Anual
4 Bolsita del pastor
Capsella bursa-pastoris
Brassicaceae
Anual o Bianual
5 Chufa
Cyperus esculentus
Cyperaceae
Perenne
6 Correhuela
Convolvulus arvensis
Convolvulaceae
Perenne
7 Falso té
Bidens aurea
Asteraceae
Perenne
8 Galega
Galega officinalis
Fabaceae
Perenne
9 Hiedra
Hedera helix
Araliaceae
Perenne
10 Hierba del chancho
Hypochoeris acaulis
Asteraceae
Perenne
11 Lechuguilla
Lactuca serriola
Asteraceae
Anual o Bianual
12 Lengua de gato
Galium aparine
Rubiaceae
Anual
13 Llantén menor
Plantago Lanceolata
Plantaginaceae
Perenne
14 Maicillo
Sorghum halepense
Poaceae
Perenne
15 Malva
Malva nicaensis
Malvaceae
Perenne
16 Malvilla
Anoda cristata
Malvaceae
Anual
17 Ñilhue
Sonchus asper
Asteraceae
Anual o Bianual
18 Palqui
Cestrum parqui
Solanaceae
Perenne
19 Pichoga
Euphorbia helioscopia
Euphorbiaceae
Anual
20 Pila-Pila
Modiola caroliniana
Malvaceae
Perenne
21 Rábano silvestre
Paphanus raphanistrum
Brassicaceae
Anual o Bianual
22 Romaza
Rumex crispus
Polygonaceae
Perenne
23 Senecio
Senecio vulgaris
Asteraceae
Anual
24 Verbena
Verbena bonariensis
Verbenaceae
Perenne
25 Verdolaga
Portulaca oleracea
Portulacaceae
Anual
26 Vinagrillo
Oxalis micrantha
Oxalidaceae
Anual
27 Yuyo
Brassica rapa
Brassicaceae
Anual
28 Zanahoria silvestre
Daucus carota
Apiaceae
Anual o Bianual
Árboles y arbustos Hospederos Potenciales de Brevipalpus chilensis
Nombre común
Nombre científico
Familia
1
Acacio
Robinia pseudoacacia
Papilionaceae
2
Acacio capensis
Acacia capensis
Fagaceae
3
Álamo negro
Populus nigra
Salicaceae
4
Álamo blanco
Populus alba
Salicaceae
5
Aromo
Acacia dealbata
Mimosaceae
6
Ceibo
Erythrina umbrosa Kunth
Fagaceae
7
Crateus
Crataegus pyracantha
Rosaceae
8
Encina
Quercus ilex
Fagaceae
Espino
Acacia caven
Fagaceae
Eucaliptus
Eucalyptus spp.
Myrtaceae
9
10
11
Maitén
Maytenus boaria
Celastráceae
12
Maqui
Aristotelia chilensis
Elaeocarpaceae
13
Membrillero
Cydonia oblonga
Rosaceae
14
Ombú
Phytolacca dioica
Phytolaccaceae
15
Palqui
Cestrum parqui
Solanaceae
16
Peumo
Cryptocarya alba
Lauraceae
17
Quillay
Quillaja saponaria
Rosaceae
18
Quintral
Tristerix corymbosus
Loranthaceae
19
Romerillo
Baccharis linearis
Asteraceae
20
Rosal
Rosa spp.
Rosaceae
21
Sauce
Salix babylonica
Salicaceae
22
Vid
Vitis vinifera
Vitaceae
23
Zarzamora
Rubus ulmifolius
Rosaceae
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Nº
7
Uva de Mesa. Falsa arañita de la vid
Guía de Monitoreo y Control
Monitoreo en campo
Se realiza con el fin de estimar y registrar su abundancia y sus enemigos
naturales en las diferentes estructuras y evaluar además el efecto de las
medidas de manejo.
Monitoreo en campo de B. chilensis en vid
Estructura
Método
Época
Unidad de
muestreo por
cuartel
Tronco, brazos y
cargadores
Levantar
ritodomo y
examinar
Invierno y
prebrotación
30 plantas
Brotes
Abrir el brote y
examinar
BrotaciónPrimavera
30 brotes,
1 por planta
Hojas
Examinar,
especialmente
el envés
Desde brotes de
10 cm. a término
de temporada
90 hojas en
30 plantas
Racimos
Examinar raquis
y bayas
Desde cuaja a
cosecha
30 racimos,
1 por planta
Monitoreo en laboratorio
El objetivo de este monitoreo son los huevos, ninfas y adultos vivos o
muertos de cualquier estado del ácaro mediante el método de arrastre
por lavado. Sólo para exportación de fruta a USA mediante procedimiento
“Systems approach”.
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Monitoreo en laboratorio de B. chilensis en vid
8
Estructura
Unidad de
muestreo
Método
Época
Resultados
cuantitativos
Racimos y hojas
100 racimos y/u
hojas obtenidas
al azar
Lavado por
arrastre
Brotación a
cosecha
Número
de ácaros
detectados en
muestras de 100
hojas o racimos
Observación
bajo lupa
estereoscópica
Uva de Mesa. Falsa arañita de la vid
Técnica de lavado por arrastre
Disponer los
tamices uno sobre
otro, colocando el
tamiz de 20 mesh
sobre el de mayor
fineza (200 mesh).
Lavar la fruta con
una ducha de agua
fría.
Cuando el fruto
lo requiera
(pubescentes)
se empleará
adicionalmente
un tamiz de 80
mesh, el que debe
ubicarse entre los
tamices de 20 y
200 mesh.
Lavado de
recipiente
contenedor de
muestras luego de
análisis visual.
Colocar sobre el
tamiz de 20 mesh
una cantidad de
fruta que permita
su libre lavado.
Retirar el tamiz
superior una vez
lavado.
Asperjar la
fruta con una
solución de agua
y detergente
(solución: 4ml en
1 litro de agua).
Inclinar el tamiz de
200 mesh y lavar
con agua a presión
suave, haciendo
escurrir el material
colectado hacia
un extremo del
mismo.
Arrastrar con la
ayuda de una
pizeta con agua el
contenido hacia
una placa petri.
Imagen: FDF
Criterios para la decisión de control (*)
Tomar medidas de control si el número de ácaros detectados en el
proceso de lavado es mayor a 3 individuos vivos por cada muestra de 100
hojas o racimos.
* Referencias: FDF
La eficacia de los acaricidas está condicionada a la aplicación realizada en
el huerto y al período fenológico de la planta y la plaga (Olivares et al, 2014).
En orden creciente de efectividad se pueden mencionar: detergentes,
coadyuvantes siliconados, aceites minerales del 1% al 1,5%, poseen un
efecto prolongado de control durante 45 a 60 días post aplicación (Ripa
& Larral, 2008).
En viñas, el principal control de la falsa arañita roja de la vid se realiza sobre
la población presente en invierno en prebrotación con aceite mineral al
2%, para evitar daño sobre los brotes. En uva de mesa las poblaciones del
ácaro son muy escasas.
Control químico: Plaguicidas para el control de Brevipalpus chilensis
Ingrediente activo
Concentración
Clasificación
Abamectina
1,9% p/p
Acaricida-insecticida
Spirodiclofen
24% p/v
Acaricida
Acrinatrina
7,5% p/v
Acaricida-insecticida
Fenpropatrina
10% p/v
Acaricida
Rotenona
50% p/p
Acaricida-insecticida
Aceite parafínico
99,5% v/v
Acaricida-insecticida-fungicida
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Control Químico
9
Uva de Mesa. Polilla del racimo de la vid
Conocimiento de la Plaga
Nombre común
Nombre científico
Polilla del racimo de la vid
Lobesia botrana
Hospederos
La literatura señala a la vid como hospedero primario. Otros hospederos
importantes mencionados son: Kiwi, caqui, olivo, mora, guindo y
ciruelo (Ripa & Luppichini, 2010). Además cerezo, duraznero, granado,
groselleros, berries; entre otros, reportándose ataques puntuales y
ocasionales en algunos de éstos (Fuente: USDA).
Descripción
Los huevos son lenticulares, de color amarillento a gris claro translúcido,
depositados generalmente de forma aislada sobre tejido y frutos de la vid.
Su diámetro varía entre 0,5 a 0,9 mm. Al final de su desarrollo se distingue
la cápsula cefálica o cabeza negra de la larva.
Las larvas (Figura 6) presentan 5 estados larvarios, con tamaños desde
1 mm hasta de 12 a 15 mm cuando está completamente desarrollada. Al
emerger, es color blanco cremoso con la cabeza café oscuro a negro, y a
medida que se va desarrollando la cabeza se torna café claro y el cuerpo
verdoso amarillento, dependiendo del contenido intestinal. Tienen
movimientos muy ágiles y posee peine anal.
La pupa mide entre 4 a 9 mm de longitud y se encuentran escondidas
debajo de la corteza, en pliegues de las hojas, en refugios de los racimos
o en el suelo, generalmente envueltas por un capullo blanco sedoso.
El tamaño del adulto dependerá de la calidad del sustrato de alimentación
utilizado a lo largo del estado larvario. Posee un mosaico en las alas
anteriores, este contrasta con el tinte grisáceo más o menos uniforme de
las alas posteriores. Su tamaño en reposo es de 6-8 mm de longitud y su
envergadura alar es de unos 10-13 mm (Figura 8).
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Daño
10
Las larvas de primera generación se alimentan de los botones florales y
los agrupa con hilos de seda, formando glomérulos.
Las larvas de las siguientes generaciones se alimentan de las bayas (Figura
7), perforándolas e introduciéndose en ellas (Fuente: FDF). Este daño
favorece el desarrollo de colonias de hongos como Botrytis, Aspergillus,
Penicillium y Rhizopus (Ripa & Luppichini, 2010). Existe la posibilidad de
encontrar estados pupales en el interior de la baya.
Ciclo y desarrollo en la temporada
Esta polilla presenta tres generaciones y eventulamente una cuarta
parcial en la zona central de Chile. Inverna como pupa bajo el ritidomo de
la vid, frecuentemente en la cara interior de los brazos y porción superior
del tronco. La emergencia de los primeros adultos, de pupas invernantes,
ocurre desde octubre a noviembre en la Región Metropolitana. El
segundo vuelo se estima que se inicia a partir de la segunda quincena de
diciembre, dando origen a la segunda generación. La tercera generación
se inicia probablemente desde fines de enero y se extiende hasta marzo
(Ripa & Luppichini, 2010).
Enemigos naturales a incluir en monitoreo
Dibrachys cavus, es una microavispa (Figura 9) que parasita prepupas y
pupas de varios lepidópteros, entre ellos L. botrana.
Goniozus legneri, también es una microavispa parasitoide de larvas.
El adulto es de color negro, la hembra adormece a la larva y coloca sus
huevos sobre ella (Figura 10), desde donde emergen larvas de la polilla
que se alimentan externamente de la larva de Lobesia hasta matarla.
Trichogramma nerudai (Figura 11) es un microhimenópetro al cual se le
ha encontrado parasitando huevos de Lobesia. Estos parasitoides actúan
sobre huevos, lo que tiene la ventaja de eliminar la plaga sin que alcance
a provocar daño.
Chrisoperla defreitasi (crisopas) (Figura 12) son insectos del grupo de los
neurópteros depredadores, es decir, se alimentan de la presa, cazan y se
alimentan de más de un individuo.
Estas especies podrían ser de mucha utilidad como alternativas o
complemento a las aplicaciones químicas, particularmente en zonas
urbanas o en períodos del año en que se ha terminado con las aplicaciones
de pesticidas (Gerding et al, 2014).
Figura 6. Larva instar IV de
Lobesia botrana
Figura 7. Daño en uva de mesa var.
Crimson Seedless por L. Botrana
Tamaño real:
2 cm
1 cm
Adulto Huevos 1er
2º
3er
4º
5º
estadío estadío estadío estadío estadío
0
Pupa
Fuente: FDF
Estados de desarrollo Lobesia botrana
L5 (10,0 - 11,0 mm)
L4 (6,0 - 7,0 mm)
L3 (4,5 - 5,0 mm)
L2 (1,9 - 3,0 mm)
L1 (0,9 - 1,5 mm)
Huevo (0,6 - 0,8 mm)
Huevo
cabeza
negra
Hembra Macho
Pupas
(5-6 mm)
Figura 8. Estados de desarrollo de Lobesia botrana
Adulto
(6 mm)
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Huevo
amarillo
11
Adulto
Larvas de L. botrana
parasitadas
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Pupas en
capullo,
Goniozus
12
Figura 9. Parasitoide de pupas:
Dibrachys
Figura 10. Parasitoide de larvas:
Goniozus legneri.
Figura 11. Parasitoide de huevos:
Trichogramma nerudai.
Figura 12. Predador:
Chrysoperla sp.
Uva de Mesa. Polilla del racimo de la vid
Guía de Monitoreo y Control
Técnica de detección empleada
Observación visual de la fruta: Verificar existencia de perforaciones en las
bayas producto de la entrada de la larva.
Observación bajo la lupa estereoscópica 40X de individuos: En larvas la
identificación taxonómica debe ser realizada por personal especializado.
En insectos adultos, la identificación se logra a través de observación
visual de los detalles alares antes descritos.
Monitoreo con trampas con feromonas
Trampa
Densidad
Época
Ubicación
Frecuencia
Tipo delta de
Pherocon EGVM
1 trampa cada
2 ha.
A más tardar a
fines de agosto
A la altura de la
vegetación de la
planta
Revisión cada
14 días
Cambio de
feromona
mensual
Mínimo 2
trampas por
huerto
Entre el techo
de las plantas y
la altura de los
racimos
Racimos
1ª generación
2ª y 3ª
generación
Ubicación
Frecuencia
Sin sacarlos de
la planta
Antes del
estado botones
florales
separados
Después de
las primeras
capturas
Distribución
homogénea en
el huerto con
énfasis en orillas
2 veces por
semana
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Prospección de racimos
13
Control Químico
Está dirigido al control de huevos y principalmente de los estados larvarios
de cada una de las tres generaciones anuales, por lo cual se precisa de
datos de monitoreo de adultos para conocer el comportamiento de cada
ciclo de vuelo como también para realizar la aplicación en lo posible 2 a 3
días después del inicio del vuelo (González, 2014).
Número de aplicaciones mínimas que se deben realizar para el control de
L. botrana en vid:
Generaciones
Nº de Aplicaciones (*)
Primera
Segunda
Tercera
2
2
1ó2
*El número de aplicaciones dependerá del
período de protección que otorgue cada
producto, y se debe cubrir todo el período de
riesgo de cada generación según lo que indique
el SAG en sus avisos correspondientes.
Control químico: Listado de Plaguicidas autorizados por el SAG (*)
Nombre comercial
Ingrediente activo
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Clasificación
Período de
Protecc. (días)
ADMIRAL 10 EC
Piriproxifeno
10% p/v
Larvicida
18
ALSYSTIN 480 SC
Triflumuron
48 % p/v
Larvicida
12 a 14
AMPLIGO 150 ZC
Cloratranilliprol /
lambda-cihalotrina
10% p/v / 5% p/v
Ovicida-larvicida
15 a 25
AVAUNT 30 WG
Indoxacarb
30% p/p
Ovicida-larvicida
14
BELT 480 SC
Flubendiamida
BETK-03 WP
Bacillus thuringiensis
Cepa N1, N2 y N2
48% p/v
Larvicida
20
1,81 % p/p
Larvicida
15
BIFENTRIN 10 EC
AGROSPEC
BULL Y BULL CS
Bifentrina
10 % p/v
Larvicida
7
Gamma cihalotrina
5,9% p/p
Larvicida
16
BULLDOCK 125 SC
Betaciflutrina
12,5% p/v
Larvicida
12 - 17
CAPTURE 10 EC
Bifentrina
10 % p/v
Larvicida
15
CORAGEN
Clorantraniliprole
20% p/v
Ovicida-larvicida
21
DANITOL 10 EC
Fenpropatrina
10% p/v
Larvicida
10 a 15
DELEGATE
Espinetoram
25% p/p
Larvicida
16 a 18
DIPEL WG
Bacillus thuringiensis
64 g/Kg
Larvicida
7 a 13
ENTRUST
Espinosad
80% p/p
Larvicida
16 a 18
GREKO 90 SP
Metomilo
90% p/p
Ovicida-larvicida
15
HALMARK 75 EC
Esfem valerato
Larvicida
14
IMIDAN 70 WP
Fosmet
70% p/p
Larvicida
INTREPID SC
Metoxifenozida
24% p/v
Ovicida-larvicida
JAVELIN WG
Bacillus thuringiensis
sub especie kurstaki
85% p/p
Larvicida
KARATE ZEON
Lambdacihalotrina
5% p/v
Ovicida-larvicida
KUIK 90 SP
Metomilo
LAMBDA
CIHALOTRINA 5 EC Lambda cihalotrina
AGROSPEC
14
Concentración
75 g/l
18
18 a 20
10
15 a 25
90% p/p
Larvicida
17
5% p/v
Larvicida
7
18 a 20
LORSBAN 75 WG
Clorpirifos
75% p/p
Larvicida
MIMIC 2F
Tebufenozida
24% p/v
Ovicida-larvicida
17
POLARIS 40 WP
Metidation
40% p/p
Larvicida
14
PROCLAIM FORTE
Benzoato de
emamectina
5% p/p
Ovicida-larvicida
20 a 25
PYRINEX 25 CS
Clorpirifos
25 % p/v
Larvicida
22
SUCCESS 48
Espinosad
44,2% p/p
Larvicida
16 a 18
TALSTAR 10 EC
Bifentrina
10 % p/v
Larvicida
15
ZERO 5 EC
Lambda cihalotrina
5% p/v
Larvicida
18
Isonet L
Acetato de (E,Z) - 7,9
- Dodecadenilo
67% p/p
Rak 2 plus
Acetato de (E,Z) - 7,9
- Dodecadenilo
8,5% P/P
150 a 180
*Fuente SAG: Tabla modificada del Listado de Plaguicidas autorizados por SAG para el control de
L. botrana, actualizado al 21 de noviembre de 2014.
Uva de Mesa. Chanchitos blancos
Conocimiento de la Plaga
Nombre común
Nombre científico
Chanchito blanco de cola larga
Pseudococcus longispinus
Chanchito blanco de los frutales
Pseudococcus viburni
Hospederos
Chanchito blanco de cola larga: Vid, cítricos, palto, olivos y otros. Además
caqui, mango, ornamentales y forestales.
Chanchito blanco de los frutales: Vid, paltos, cítricos, kiwi y otros. Además
ciruelo, caqui, nectarino, peral y manzano (Fuente: FDF).
Descripción
Las hembras adultas tienen un cuerpo blando, forma oval, aplanado
y miden aproximadamente 4 mm de largo. Están cubiertos por una
cera blanquecina pulverulenta. Por sus bordes tienen proyecciones
filamentosas de cera blanca, que alcanza su mayor longitud en la parte
caudal. Por su parte ventral se observa un fino estilete que le permite
extraer los nutrientes de la planta.
Los huevos son depositados en grupos y son de color rosado anaranjado.
P. longispinus no coloca huevos, se reproduce por crías vivas.
Los machos son pequeños insectos alados, de apariencia frágil y provistos
de dos apéndices caudales blancos. P. longispinus se caracteriza por
poseer sus filamentos caudales más largos que P. viburni (Fuente: FDF).
Las ninfas son de aspecto similar a la adulta, sin embargo, es común que
no se observen los filamentos caudales prominentes, debido a una muda
reciente (Ripa & Larral, 2008).
Daño
Ciclo de desarrollo en la temporada
Por lo general presentan varias generaciones anuales superpuestas, lo
que en general origina una población mixta de adultos y juveniles variable
entre verano e invierno. Las poblaciones se mantienen protegidas bajo
el ritidomo de la parra, en cortes de poda, anillados, en raíces de la
parra y malezas hospederas. Las ninfas migratorias nacen a partir de
agosto en la Región de Atacama y desde mediados de septiembre hacia
el sur, distribuyéndose hacia los sarmientos para colonizar los brotes
primaverales. Luego colonizan los racimos florales donde provocan
los daños antes descritos. Su desarrollo continúa en el follaje, ramas y
racimos. Los machos se originan a partir de ninfas de segundo estadío.
Estas forman un capullo algodonoso alargado del cual emergerá un
adulto (Fuente: FDF) (Figura 18).
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Debido a que las hembras se alimentan directamente del floema, ya sea la
raíz o la parte aérea, producen un debilitamiento de la planta por succión
de savia elaborada y pueden ser transmisores de virus. Afectan la calidad
de racimos por la acumulación de mielecilla y la posterior presencia de
fumagina. Además, la contaminación por la presencia misma del insecto
en cualquiera de sus estados puede producir rechazos por mala calidad
o razones cuarentenarias. Pueden afectar flores y frutos recién cuajados
produciendo su aborto (Fuente: FDF) (Figuras 13 y 14).
15
Enemigos naturales a incluir en monitoreo
En Chile están descritos una serie de parasitoides y depredadores de
chanchitos blancos.
Para efectos del monitoreo se incluirá:
Cryptolaemus montrouzieri: Los adultos y larvas son depredadores de
chanchitos blancos. Las larvas se encuentran cubiertas de secreciones
de cera blanca y son similares en cierta medida al mismo chanchito. El
adulto corresponde a una chinita de 5 mm de largo por 3 de ancho. Es de
color negro con cabeza y abdomen de color rojo-anaranjado (Figura 15).
Chrysoperla spp.: Estos insectos se denominan crisopas. Son
depredadores de chanchitos y se reconocen en su estado larval por sus
mandíbulas curvadas y desarrolladas (Figura 16).
Pseudaphicus spp.: Son pequeñas avispas cuya hembra parasita ninfas y
adultos de chanchitos. El parasitismo se reconoce por la presencia de una
“momia” por la acción de la larva del parásito en el interior del cuerpo del
chanchito.
Leucopis sp.: Las larvas de estos insectos depredan chanchitos. Son de
color blanco, sin patas y llegan a medir alrededor de 2 mm. En estado
adulto son pequeñas moscas de unos 2 mm de largo, de color gris con 2
franjas más oscuras en la parte superior del tórax (Fuente: FDF) (Fig. 17).
Figuras 13 y 14: Chanchitos blancos en uva de mesa
Tamaño real:
0
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
1 cm
16
Figura 15. Larva de
C. montrouzieri
Figura 16. Larva de
Chrysoperla sp.
Fuente: FDF
Figura 17. Larva de Leucopis sp.
Ciclo biológico de Pseudococcus viburni
Huevos
1er estadío (Crawler)
MACHOS
2º estadío
HEMBRAS
3er estadío
Macho adulto
Hembra adulta
Figura 18. Ciclo biológico de Pseudococcus viburni.
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
FOTOS: FDF
Prepupa - pupa
17
Uva de Mesa. Chanchitos blancos
Guía de Monitoreo y Control
Detección mediante el uso de trampas de cartón corrugado
Permite detectar los estados móviles y oviposturas de la plaga.
Trampas cartón corrugado
Estructuras
Trampas
Ubicación
Metodología
Frecuencia
Bandas
de cartón
corrugado
Mínimo 1 trampa
por árbol en
20 árboles por
huerto
Ramas madres
más de 3 años
de edad o en
base de tronco
de la parra
Determinar
presencia de
huevos, ninfas
y adultos en
trampas
Desde brotación
a caída de hojas
Bandas de
10 - 20 cm de
alto
Instalar la parte
corrugada hacia
dentro
En focos
de mayor
infestación
cuartel
Retirar
individuos
y volver a
amarrarla
Quincenalmente.
Semanalmente
1 mes antes de
cosecha y hasta
cosecha
Detección mediante observación visual de la plaga
Este método permite detectar hasta un 3% de infestación en el campo.
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
Observación visual
18
Muestra
Estructura
Objetivo
Materiales
Frecuencia
20 árboles por
huerto
Hojas cercanas a
frutos, corteza y
frutos
Ninfas, adultos,
masa de huevos
Lupa de
mano 10-20X,
pinceles, frascos
de vidrio, cooler,
bolsas de papel
para traslado de
muestras.
Durante todo
el año
Distribución
al azar
5 muestras de
cada estructura
Para ninfas de 1er
instar procesar
la muestra
mediante
técnica de
arrastre por
lavado
Uso de trampas con feromona sexual
Permite detectar el movimiento poblacional de la plaga y su curva se verá
reflejada mediante las capturas de machos voladores, mostrando cuando
la plaga presenta la mayor actividad.
Trampas con feromona sexual
Trampas
Ubicación
Metodología
Frecuencia
Mínimo 3 trampas
por huerto
2 metros de altura
puesta a 30 cm
al interior de la
planta
Remover el piso
engomado y
contar bajo la lupa
estereoscópica
40X
1 vez por semana
Distancia de 50
metros entre
trampas en
huerto
Monitorear hasta
abril-mayo
Control químico*
Oportunidades de
control
Comportamiento de la
plaga
Ingrediente activo
Brotación a inicio de
floración
Dispersión de ninfas
migratorias
Buprofezin, Clorpirifos,
Diazinon, Metomilo,
Profenofos, Dimetoato
Cuaja a previo cierre
del racimo
Infestación y alimentación
en racimos
Imidacloprid, Thiametoxam,
Acetamiprid
Pre cosecha
Alimentación y ovipostura
en el racimo
Imidacloprid, Metomilo,
Carbarilo
Post cosecha
Alimentación y reproducción
e invernación
Clorpirifos, Profenofos
Malezas hospederas de Chanchitos blancos
Nº
Nombre común
Nombre científico
1.
Achicoria
Cichorium intybus
2.
Cicuta
Conium maculatum
3.
Galega
Galega officinalis
4.
Hinojo
Foeniculum vulgare
5.
Malva
Malva nicaeensis
6.
Ñilhue
Sonchus sp.
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
* Fuente INIA: Tabla modificada de INIA, 2010.
19
Bibliografía
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•FDF. 2010. Guía de elementos básicos para el monitoreo y
la detección de Chanchitos blancos para implementar MIP
acorde a los requerimientos BPA.
•FDF. Plagas de importancia cuarentenaria. Detección y
reconocimiento en laboratorio.
•GONZÁLEZ R. 2014. Biología y manejo fitosanitario de la
Polilla Mediterránea, Lobesia botrana y de otras polillas de la
vid en Chile (Lepidóptera: Tortricidae). Facultad de Ciencias
Agronómicas, Universidad de Chile.
•INIA. 2010. Biología, manejo y control de chanchitos
blancos. Boletín INIA Nº 204.
•RIPA R. & P. LARRAL. 2008. Manejo de plagas en paltos y
cítricos. Instituto de Investigaciones Agropecuarias.
•RIPA R. & P. LUPPICHINI. 2010. Manejo de plagas de la vid.
Instituto de Investigaciones Agropecuarias.
•SERVICIO AGRÍCOLA Y GANADERO. Ámbitos de acción.
Lobesia botrana o polilla del racimo de la vid. Disponible
en: http://www.sag.cl/ambitos-de-accion/lobesia-botranao-polilla-del-racimo-de-la-vid
G U Í A D E M O N I T O R E O D E P L A G A S - U VA D E M E S A
•GERDING M., D. CASTRO, M. RODRÍGUEZ & P. CABEZAS.
2014. Enemigos naturales útiles en el manejo de Lobesia
botrana. Revista Red Agrícola.
20
GUÍA DE MONITOREO DE PLAGAS
UVA DE MESA