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JAPÓN
MANUAL DE ENSAYOS DE
EFICACIA DE'PLAGUICIDAS
Ing. Kazumi Sagayama (JOCV)*
Ing. Danilo Dardón
(ICTA)**
Chimaltenango, febrero de 2001
* Investigadora Científica Voluntaria Japonesa
** Investigador Científico del ICTA, Guatemala
Area de Productos de Exportación
JAPóN
MANUAL DE ENSAYOS DE
EFICACIA DE PLAGUICIDAS
Ing. Kazumi Sagayama (JOCV) *
Ing. Danilo Dardón
(ICTA) **
Chimaltenango, febrero de 2001
* Investigadora Científica Voluntaria Japonesa
** Investigador
Científico del 1CTA, Guatemala
,
Area de Productos de Exportación
INTRODUCCION
En Guatemala existen problemas de plagas (insectos, nema todos, bacterias, hongos, virus,
malezas y otras) en los diferentes cultivos que se producen en el país.
Para el control de las plagas, los productores usan diversos plaguicidas aplicados en forma
irracional y unilateral, que ponen en riesgo la salud de los guatemaltecos y que además
contaminan el ambiente, que ocasiona otros daños ecológicos.
Un ejemplo de los escasos estudios documentados sobre el uso de plaguicidas en
Guatemala, específicamente de un área hortícola (tomate, sandía y otras hortalizas) y de
granos básicos (maíz, frijol, SOl"gO
y arroz) es el municipio de El Progreso, del departamento
de Jutiapa, donde Way Medrano en su estudio, indica en el cuadro 1, las cantidades y tipos
de plaguicidas que usaron los agricultores de ese municipio, durante el año de 1994.
Cuadro 1
Cantidad y tipo de plaguicidas que usaron los agricultores
municipio de El Progreso, Jutiapa, durante 1994.
Tipo de Plaguicida
de el
Cantidad
Kiloaramos
Litros
xxxx
5,400.0
Cloro
xxxx
313.0
Desinfectantes en polvo
142.7
xxxx
Detergentes
426.3
xxxx
Fertilizantes foliares
67,500.0
3,500.0
Fertilizantes granulados
450,000.0
xxxx
Fungicidas
8,910.0
1,000.0
Herbicidas
6,818.0
36,240.0
Insecticidas
6,150.0
21,660.0
Insecticidas caseros + creolina
xxxx
1,250.0
34721.7
Jabones
xxxx
Fuente: Way Medrano, F.J. 1994. Deterioro, contaminación y posibilidad de
mejoramiento, El Progreso, Jutiapa. Universidad de San Carlos de Guatemala,
Facultad de Arquitectura, Tesis de maestría en Diseño, Planificación y Manejo
Ambiental.
Adherentes
Para tratar de evitar .el uso desmedido de plaguicidas, el Instituto
Agrícolas (JCTA) y otras organizaciones han impulsado programas
Plagas (MIP).
de Ciencia y Tecnología
de Manejo Integrado de
Sin embargo, la falta de apoyo político, el desconocimiento para su aplicación en el sector
gubernamental
y en el sector privado organizado o no, los programas "MIP" no han sido
masivamente aplicados entre los productores nacionales, sino más bien han sido aplicados
selectivamente en cultivos No Tradicionales de Exportación CArveja China, Bróculi y otros).
Además la falta de un control adecuado por parte de los Ministerios de Agricultura y el de
Salud Pública, para determinar los plaguicidas que se venden libremente en el mercado
guatemalteco. ha fomentado el contrabando de plaguicidas que no aparecen registrados
legalmente en el país.
Con ello se tienen otros riesgos para los usuarios y el medio ambiente, entre algunos se
pueden tener: productos de mayor toxicidad, productos prohibidos en otros países por sus
efectos nocivos, productos sin eficacia comprobada y otros no determinados.
Po!"ello es que el JCTA, con la colaboración de los voluntarios japoneses ha iniciado una
serie de investigaciones sobre algunos plaguicidas con énfasis en los ya autorizados y con
registro, para contribuir a usar éstos enforma más raciona! a! estima!"su eficacia, después
de transcurrido algún período en su uso y una plaga en particular.
Este manual espera contribuir a! conocimiento para desarrollar investigaciones de
laboratorio, invernadero y campo, para estimar la eficacia de los plaguicidas y que su uso
sea el más adecuado y de esta forma se disminuyan las cantidades de plaguicidas que se
aplican en el país para minimizar los riesgos en la salud de los guatemaltecos y bajar los
niveles de contaminación ambiental de Guatemala.
INDICE
INTRODUCCION
1.
SECCION DE LABORATORIO
1.
1.1
1.2
1.3
1.4
1.5
1.6
1.7
1.8
FUNGICIDAS
Preparación del medio de cultivo de papa dextrosa de agar (PDN
Aislamiento de patógenos de las plantas
Aislamiento del micra-organismo del suelo
Densidad del patógeno
Manejo para la elaboración de un herbario de enfermedades
Ensayo de la inhibición del crecimiento del micelio
Ensayo del papel filtro del disco
Manejo para la cultivación del patógeno de Phytophthora infestans
8
10
12
2.
2.1
(1)
(2)
2.2
(1)
(2)
2.3
(1)
(2)
INSECTICIDAS
Aislamiento de nematodos
Manejo para el aislamiento de raíz
Manejo para el aislamiento de tierra
Mecanismo de la epidermis del insecto y la permeabilidad
Mecanismo de epidermis
Permeabilidad de epidermis
Ensayo del fisiológico de la columna vertebral del insecto
Revelación de la columna vertebral del insecto
Acción de los insecticidas a la columna vertebral de insecto
13
13
13
14
15
15
17
18
18
18
3.
REGULADORES DEL CRECIMIENTO
19
4.
HERBICIDAS .
21
II.
SECCION DE INVERNADERO
1.
1.1
1.2
1.3
1.4
1.5
(I)
FUNGICIDAS
Ensayo de efecto preventivo
Ensayo de efecto residual
Ensayo de efecto curativo
Ensayo de penetración
Ensayo de patógenos del suelo
Vaporización artesanal
2.
2.1
2.2
2.3
2.4
INSECTICIDAS
Manejo para la cría de insectos
Ensayo de efecto contacto
Ensayo de penetración
Ensayo de efecto por alimentos
1
1
3
5
6
7
22
22
22
24
25
26
27
28
29
30
III. SECCION DE CAMPO 29
1.
FUNGICIDAS
31
2.
INSECTICIDAS
34
l.
SECCION DE LABORATORIO
1.
FUNGICIDAS
En caso de que alguna planta este enferma, a causa de un patógeno se tiene que investigar. Sí el
patógeno puede ser cultivado artificalmente, se procede a aislar el patógeno. En la superficie de la lesión
generalmente hay varios gérmenes. Primero Se eliminan, después aislar el patógeno que es el objetivo.
Tenga cuidado con el manejo de la asepsia especialmente.
1.1
Preparación del medio de cultivo de papa dextrosa de agar (PDA)
Ingredientes:
20g de agar, 20g de dextrosa, 200g de papa y 10001111
de agua destilada.
Procedimiento:
l.
Se debe pelar y lavar las papas
(200g).
2.
Se debe cortar las papas en
cuadrados pequeños de 2 cm
aproximadamente. Y coiocaria en
1000 mI de agua destilada.
3.
Se debe tapar la olla hasta que la
papa este cocida.
4.
Se procede a colar con la tela sobre
el Erlenmeyer frasco. Y se filtra el
agua de la papa.
1
5.
Se debe medir el agua de la papa y si
es necesario aforar hasta los 1000 mi
con agua destilada.
7.
Se caliente en una olla que contenga
agua hirviendo. Luego se coloca el
beaker dentro. Se debe mezclar
continuamente.
9.
Se procede a taparlos con aluminio
para evitar accidentes.
6.
Posteriormente se añade el agar
(20g) y la dextrosa (20g)
8.
Luego se coloca en un Erlenmeyer,
pero no se debe llenar a su totalidad.
10. Se esteriliza en autoclave.
2
1.2
Aislamiento de patógenos de las plantas
~
/
Alcohol etílico al 80%
~
1.
Cortar la lesión de la planta 5 mm de la
infección con tijeras.
/
.
"
2.
Colocar pedazos (añicos) de las hojas en
alcohol etílico al 80% durante unos
segundos.
'e
~
Solución
Agua
esterilizada
~deSOlimán
Pedazo
3. Además se ponen en la solución de
Solimán (x 1000) durante un minuto.
4.
Esterilizar las pinzas con la llama de un
mechero. Después mover pedazos
(añicos) de las hojas en agua esterilizada.
6.
Sacar los pedazos (añicos) de las hojas
con pinzas esterilizados.
5. Agitar el Erlenmeyer frasco y lavar
pedazos (añicos) de las hojas.
Medio de cultivo
IF¿¿??l1l4¡
7. Pegar pedazos (añicos) de las hojas en el
medio de cultivo preparado, la caja de
Petrí se deja de forma invertida.
8.
Cerrar la tapa y poner la caja de Petrí
invertida.
3
u
\1
9. Colocar la caja de Petrí en la incubadora.
y cultivar durante unos días, 20 a 25 "C.
10. Las hifas de hongo crecen alrededor de
pedazos (añicos) de las hojas.
Tapón de algodón
11. Raspar las hifas con inoculador. (El
manejo de la asepsia)
12. Inocular de fondo el medio de cultivo en
tuvo de ensayo en declive a este lado
tranquilamente. (El manejo de la
asepsia.)
Etiqueta
Patógeno
13. Cultivar 20 a 25
Manera de preparar
"C
durante
14. El patógeno que haber aislado
puramente. ( Pegar la etiqueta y lo
conservar.
unos días.
el agua esterilizada:
Agregar agua destilada en el Erlenmeyer
minutos.)
frasco y esterilizar con autoclave (I20"C, 15
A
1.3
Aislamiento del micro-organismo del suelo
Ingredientes:
lSg de agar, 30g de dextrosa, 3.0g de NaNO], 1.Ogde KH2P04, O.Sgde KCI,
0.5g de MgS04-7H20, O.Olg de FeS04-7H20 (CZAPEK-DOX agar ), 1.0 mI de
0.1 N-Hel esterilizado y 1000ml de agua destilada.
Procedimiento:
l.
Agregar un poco de suelo en 5 mI de agua
esteri lizada.
3.
Colocar 1.0 mi de (2) con pipeta
esterilizada en la caja de Petrí esterilizada.
Se debe colocar 1.0 mi de O IN-HCI en
acerca.
S.
Lo remover muy bién. Darle vuelta al
derecho, izquierdo y oblicuamente.
7.
Sacar patógeno individual con inoculador. Y
cultivar en CZAPEK-DOX agar aún más.
8.
Observar color, la formación de espora, si
hay micelio de aire o no, y otras
características como color, forma en el
patógeno aislado.
6.
2.
Debe mezclar muy bien.
4.
Agregar CZAPEK-DOX agar solucionado
(lSml, 40-S0 °C).
Cuajar el medio de cultivo. Después se
coloca los petrís a la inverza y cultivar
durante 3 a 4 dias.
5
1.4
Densidad de patógenos
Investigar
l.
utilizando la cámara de Neubauer.
Preparar
la suspensión
Cámara de Neubauer
de patógenos.
Cubreobjeto
Vista lateral
{.
r==-v ~
i1
rnrn de profundidad
2.
'==l
4
Hacer caer la suspensión de patógenos
en el lugar juntamente
con inoculador.
3. Esperar 2 a 3 minutos hasta que los
0.05 mm
patógenos se hundan en la suspensión.
c"'""'
.~
I
\.
4.
5.
Observar al microscopio con 150 a 200
aumentos.
/
Contar número de patógenos que están
en 4 muestras.
Para contar el número de patógenos que están en las4 muestras hacerlo 10 veces. Y
calcular su promedio. Con viene volver a cambiar la suspensión de patógenos 5 veces más.
Finalmente calcular promedio de todo.
Si existen patógenos en la línea, se cuentan solo 2 líneas que son de arriba y abajo o
izquierda y derecha. En la suspensión adecuada presentará los patógenos que están en
cada muestra. Si no está, comienza diluir de nuevo y empiece el proceso.
2
1
3
4
5
6
7
8
9
10
Promedio
Suspensión1
2
3
4
5
z=
nX 106 X d (el número I ml)
Z: Densidad de patógeno en 1mI, n: Promedio en 4 medidas, d: Porcentaje de dilución
!PRINCIPIO
EVO.
O.lmm
J
mm
O.lmm de
profundidad
1muestra es 0.05 mm de ancho.
L= O.IX O.IX 0.1=0.001 mI
L: Volumen de 4 muestras
1 ml =1,000 mm"
Para cambiar el volumen de 4 muestras en
1ml, multiplicar el promedio en 4 muestras
por 106.
6
1.5
Manejo para la elaboración de un herbario de la enfermedad.
Las enfermedades de las plantas proceden de muchas especies de patógenos. Por eso se
tiene que investigar la causa de la enfermedad y que el patógeno la produce. Para eso se
tienen muchos formas de identificación .. Una es elaborar el herbario de la enfermedad
como método eficaz para proporcionardatos básicos, A continuación se presentan los pasos
a seguir para la elaboración de un herbario.
1. Agregar la misma cantidad de ácido
acético glacial yagua.
(La solución
ácido acético al 50%.)
2, Agregar acetato de cobre básico al
beaker donde está al ácido acético en
solución y mover constantemente, al
final se hace la solución saludada.
3. Agregar el agua tres veces el volumen
esta solución.
4. Agregar la hoja que tiene el síntoma.
5. Calentar el recipiente a fuego lento.
6. Primero el color de la hoja cambia de
verde a amarilla. Pero después cambia
:a';,"~j:~otr¿;7
sesaca
7. Lavar la hoja que tiene algún síntoma
inmediatamente.
9. Pegar la etiqueta
y conservarlo.
8. Agregar la hoja en la solución diluido
de formaldehído 20 veces más en agua.
7
1.6
Ensayo de inhibición del crecimiento del micelio
Ingredientes:
PDA (Es deseable que se use el medio de cultivo de PDA comercial), fungicidas, 100 mI del
ErIenmeyer, el tubo de ensayo, la caja de Petrí esterilizada, 1 mi de pipeta, inoculador, agua destilada y
el patógeno que se investiga.
Procedimiento:
1.
Preparar 49.5 mi del medio de cultivo de
PDA en 100 mI del Erlenmeyer yagua
esterilizada en tubo de ensayo para que
diluya la solución. Al mismo tiempo
esterilizar pipetas.
3.
Diluir un décimo y un centécimo. (Por
ejemplo : agregar lml de solución en un
tubo de ensayo que tiene 9 mI de agua
esterilizada.)
5.
Agregar 0.5 ml de solución de fungicida en
49.5 mi de PDA (40-50 'C). O sea que diluir
un centécimo finalmente. Y mezclar muy
bien.
2.
Agregar el fungicida en un tubo de ensayo
que tiene 10 ml de agua esterilizada.
4.
Preparar las soluciones diluidos de fungicida
que se investiga.
6.
Agregar 50 mi de PDA que tiene fungicida
en las 3 cajas de Petrí esterilizadas con
uniformidad. Cuajar el medio de cultivo
durante 2 a 3 horas.
8
-7.
Sacar la punta de la colonia con los
patógenos cultivados de antemano con un
sacabocado de 5 mm de diámetro.
8.
9.
Contar la proporción de inhibición de crecimiento
con base a la siguiente fórmula:
para cada uno de los ingredientes
Inhibición
Colocar las hifas individuales de patógeno s
cortados en disco del medio de 5 mm a los
extremos de la caj a de Petrí durante unos 3 a
10 dias. Y medir el diámetro de las hifas.
de fungicida ,
de Crecimiento en Porcentaje (%)= (l-B/A)X 100
A: Diámetro de la colonia de hifas en mm sin aplicación
B: Diámetro de la colonia de hifas en mm con aplicación
En caso de un fungicida A 50WP que contiene 50% de ingrediente
Fungicida
A 50WP 0.2 g
+
10 mI de
Agua esterilizada
9ml
9ml
1 mi
1 mi
9 rnl
l ml
•
10000 ppm
0.5 mi
+
1000 ppm
0.5 mI
+
100ppm
0.5 mI
+
gggg
49.5 rnl de PDA
100 ppm de ingrediente
49.5 mI
10ppm
10ppm
0.5 mI
+
49.5 ml
49.5 mI
1.0 ppm
0.1 ppm
9
1.7
Ensayo del papel filtro del disco
Tapón de algodón
Patógeno
1. Preparar el patógeno aislado
puramente que se investiga.
2.
Diluir el fungicida en la concentración
que se investiga.
Tapón de algodón
Papel filtro
Medio de cultivo
3.
Preparar
PDA.
200m! del medio de cultivo de
4.
Preparar el papel filtro homogéneo.
v
1. Estampar el círculo que tiene un
diámetro de 6 a 8 mm con el saca corcho.
6.
7. Empapar el papel filtro del disco con
suficiente fungicida preparado (2).
8 . Colocar el papel filtro del disco en la
tabla de vidrio esterilizada.
9.
Tapar con el papel filtro del disco de
arriba unas veces ligeramente para
que se elimine la solución.
Ponerlos en la caja de Petrí, luego se
esterilizan (170"C, 30 min.).
10. Con ello termina la preparación del
papel filtro del disco ya impregnado de
fungicida.
10
11. Quemar el medio de cultivo de 'PDA
preparado (3) con agua caliente.
12. Enfriar en unos 50 a 55 'C.
A
"-<0
14. Mezclar PDA inoculado rápidamente
teniendo cuidad que no tenga contacto
el tapón de algodón.
~
13. Inocular
patógeno
en
PDA con
inocula dar unas veces. (El manejo de la
asepsia).
Ibz77//777777zJI
16. Cerrar la tapa y dejar hasta
inoculado hasta que solidifique .
•
15. Agregar 15 a 20 ml de PDA inoculado
en la caja de Petrí esterilizada.
«>:<,
~
18. Dejar durante 10 a 20 minutos hasta
fungicida se difunde en PDA inoculado
suficientemente.
Diámetro de
círculo
17. Pegar 4 papeles de filtro del disco que
absorbe el fungicida preparado CIo) en
PDA inoculado.
~
V
\
19. Cultivar
durante
unos
días
en
20 "C.( Poner III ~Iljll de Petrí invertida.)
PDA
(.1"
'~"-r"--r--,~
O
20. Si un fungicida tiene eficacia, en el
círculo se observará el micelio que se
inhibe. Después se podrá medir el
diámetro del círculo. (Si es eficaz,
tamaño del diámetro del micelio del
inhibido SE' observará.) a > ¡P > eficacia
11
1.8
Manejo para la cultivación del patógeno de Phytophthora infestans
Cultivar el patógeno de Phytophthora infestans se utilizan tubérculos de papa o hojas de tomate, luego se
inoculan, porque el patógeno selecciona el medio de cultivo adecuado para su cultivo y crecimiento.
Ingredientes :
Papas, atomizador, recipiente plástico, toalla de papel, maya, beaker yagua destilada.
Procedimiento:
l. Los tubérculos fueron pelados y cortados en
rodajas de lOmm, posteriormente, se lavan y
se dejan reposar para secarlas. Luego se
colocan en cajas plásticas para mantener la
humedad.
2.
Inocular con los zoosporangios. Estos se
obtienen de las hojas que presentaban los
síntomas de la enfermedad en cultivos y se
depositan en un beaker con agua destilada y
se agitan para que los zoosporangios
contenidos quedaran en el agua.
3.
Las cajas plásticas quedan cerradas durante
unos 7 días, donde crecieron los
zoosporangios. Luego se vuelve a agitar los
tubérculos en agua destilada para realizar el
mismo procedimiento con nuevos tubérculos
y así mantener el patógeno en el laboratorio.
El ejemplo de evaluación de los fungicidas usando el procedimiento de anterior.
l.
Mojar la hoja en la solución diluida de
fngicida
que
se investiga.
Inocular
zoosporangios despues de secar, y cubrirlos.
2.
Dentro de unos 7 días se aparece el síntoma.
Medir porcentaje de la hoja dañada.
12
2.
INSECTICIDAS
2.1
Aislamiento de nematodos
Nematodos pertenecientes
a nematelmintos,
dañan los cultivos agrícolas frecuentemente.
Los nematodos tienen muchas especies, por ejemplo Meloidogyne sp., Pratylenchus sp.,
Aphelenchoides sp. y otras. Realizar el aislamiento
para observar nematodos con el
microscopio.
(1) Manejo para el aislamiento
lo
de raíz
Escoger raíces que contengan
nematodos que están en desarrollo y los
nudos que se manifiesten en la muestra.
Los nema todos son parásitos de los
cultivos agrícolas, pueden obtenerse
por ejemplo la zanahoria y otros.
2.
Lavar con agua las raíces, sacando
cuidadosamente
los restos de tierra.
@
o
b
o
,
4. Colocar dentro de la caja de Petrí.
3.
Cortar cada una de los partes
con tijeras.
/
@
¡-\!
""
1:)
5.
del nudo
~~' ',' .'.:: .' r:
"
""
)
6. Agregar unas gotas de agua y dejarlas
durante un determinado tiempo,
c>,
Romper el nudo con pinzas.
@.~~
..
..
,
'
7. Tomar un poco de la muestra con
pipeta y moverla a vidrio de reloj.
8.
O
Observar la solución con un
estereoscopio,
13
I
(2) Manejo para el aislamiento de tierra
Composición del aparato tipo Bearman para aislar nematodos.
Tamiz
Embudo
'"t
Llave de mariposa
Vidrio de
[J
:6r
Pedestal
2.
Extraer tierra que contenga nematodos
vivientes en el campo.
hule
~
1. Pegar el embudo grande al tubo de
goma, y parar la punta con abrazadera
de pinza. Poner el tamiz o la cesta de
bambú en el embudo. (Poner debajo
vidrio de reloj.)
4. Envolver la tierra con tela. (Es mejor
que tipo de la tela blanqueada de
algodón.)
3.
Pesar 50g de tierra.
Agua
5. Poner la tierra que se envolvió con tela
en el tamiz o la cesta de bambú que
está dentro del embudo.
tl
~
7. Abrir la abrazadera de pinzas, hacer
caer unos gotas de agua sobre el vidrio
de reloj.
6. Agregar agua hasta llenar el embudo y
dejarlo.
o
8. Observar la solución con un
estereoscopio.
14
I
2.2
Mecanismo de la epidermis del insecto y la permeabilidad
La permeabilidad de la epidermis del insecto depende de el mecanismo de epidermis y
cantidad de cera. Además tiene relaciones estrechas con la resistencia del insecto.
Generalmente en los insecticidas de epidermis, puede demostrar la eficacia de insecticidas.
Investigar sobre las partes de epidermis del insecto y la permeabilidad.
(1) Mecanismo de epidermis
CD El ejemplo 1
Mosca
parafina liquida
y metanol
1. Agregar parafina liquida y metanol en
vidrio de reloj y conservar la mosca en
esta solución.
2. Observar una mosca con un
estereoscopio.
3. Aparecer espumas innumerables desde la
superficie de epidermis de la mosca.
4. La espuma* continua ocurriendo durante unos minutos hasta que el agua, del cuerpo
se pierda.
5. Entender que la cera de epidermis es eliminada por parafina.
/NOTA)
Es mejor que utilice agua y metanol como una prueba. En caso de que esos no ocurra
indica que no hay presencia de ceras.
* : Agua que sale de la mosca y parafina líquida más metanol diferencian la densidad. Por
eso se puede ver como la espuma ópticamente.
15
@ El ejemplo 2
o:
.•..
.
~
i
~
~.~-:
;t;:../
t:J
~
1. Agregar alúmina en polvo en el tubo de
ensayo.
2.
Introducir una mosca en el tuvo de
ensayo. y sacudirlo durante 10 minutos.
Agua
3.
Sacar una mosca e introducirla en el
tubo que contiene veneno, y de último
matarla.
5. Agregar la mosca en amoniaco de plata
solución. *
4.
Lavar una mosca con agua.
6. Exponer la mosca a la luz durante unos
minutos.
2. Observar con un estereoscopio. (Comprender que la epidermis se tiñe de negro y la capa
de cera de la epidermis es eliminado')
!ATENCION!
El Fenol de la capa interior de cera toca el amoniaco de plata solución. Ocurre la reacción
que tiñe de negro y se precipita porque la plata es reducida. En caso que la epidermis del
insecto posea la capa de cera gruesa se tarda mucho más tiempo en teñirse.
¡NOTA)
Es mejor que siempre se elabore el testigo ya que a este no se le agrega el polvo de alúmina.
* : Amoniaco de plata solución : Tocar un poco de nitrato de plata soluciona con 20 ml de
agua destilada.
transparente.
Además agregar
amoniaco líquido poco a poco hasta que el líquido sea
16
CID El ejemplo 3
A
A
8
1. Agregar una o dos larvas en el tubo de
ensayo A y B. (El tubo de ensayo A se
coloca en el beaker que con tiene hielo
para bajar la temperatura. Entonces la
larva está inmóvil.
;¡;¡
~1?~@10~
3. Dejar durante un determinado tiempo,
luego se coloca en cada caja de Petri A
final decide si vive o no.
(2) Permeabilidad
2. Si la larva esta inmóvil, agregar la
materia de inactivo como Sílice en el
tubo de ensayo.
Sílice no tiene actividad como insecticidas
jamás. Pero la parte de la capa de cera de
la epidermis es quitado por el polvo, porque
el insecto se mueve. Entonces los insectos
mueren
porque
el agua
se pierde
rápidamente. En caso del tubo de ensayo A,
insectos no mueren porque los insectos
están inmóviles.
de epidermis
""",
""
2. Preparar el tubo de vidrio delgado que
se le introduce un poco de fenolftaleÍna
en la punta.
, Epidennis del insecto
1. Cortar la epidermis del insecto ancho
todo lo posible.
Epidermis del insecto
Solución alcalina
Epidermis del insecto
Fenolftaleína
3. Cubrir la punta
que contiene
fenolftaleÍna
con la epidermis
insecto y atar con el hilo delgado.
4. Introducir la punta del tubo de vidrio
en la solución alcalina que hizo por
amoniaco o otros.
!NOTA)
la
de
5. Comprender
que solución alcalina
penetra en la epidermis del insecto por
el color de líquido que cambia el rojo.
Los insectos de otra clase tienen deferencia
en el mecanismo de la epidermis y el
grosor de la capa de cera. Por eso la
penetración es diferente (En caso de este
decidir el cambio de color de solución
alcalina.) Es interesante que se traten
varios insectos.
17
2.3
Experimento fisiológicode la columna vertebral del insecto
La columna vertebral de los insectos es un aparato circulatorio. Es importante que se
investigue está fisiología para comprender el mecanismo de acción de insecticidas.
Investigar sobre el mecanismo del pulso utilizado en los saltamontes.
(1) Revelaci6n de la columna vertebral del insecto
Pierna
Cabeza ..--.'AJ~I.1!¿~
Alas
1.
Preparar los saltamontes con un alfiler.
2.
Primera vez cortar la cabeza, pierna y
alas. Luego despejar el lado del
abdomen a lo largo de estómago. Y
quitar la tabla de abdomen.
4.
Observar del la columna vertebral de
insecto.
Alfiler
Columna vertebral
Músculo
\0,•••
-
3.
-r-r-r-r-r-r-
Plato de anatomía
Colocar la tabla de la espalda abajo, y
fijar con alfiler en el plato de la
anatomía. Luego sacar el aparato
digestivo, el órgano reproductor y otras
partes cuidadosamente. Revelar la
columna vertebral que está a lo largo
de la tabla de espalda.
IATENCIONl
A veces es mejor que se agregue gota a
gota la solución de Ringer (0.65% de NaCl,
0.014% de KCl, 0.012% de CaC12,0.012%
de NaHC03 y 0.001 % de NaH2P04) para
saltamontes.
(2) Acci6n de los insecticidas a la columna vertebral de insecto.
2.
1.
Investigar el cambio del pulso de la
columna vertebral. Luego aplicar la
solución preparada sobre la columna
vertebral.
18
3.
REGULADORES DEL CRECIMIENTO
En el regulador del crecimiento está involucradas varias hormonas vegetales como
Oxycina, Giberelina y Cinetina, como ejemplo para investigar el efecto hormonal sobre la
crecimiento de la hoja de nabo. Sí se podrá comprender la acción de la Giberelina o
Cinetina.
U
~
1. Sembrar 300 semillas de nabo en la
maceta. Y regar la planta cada día.
3.
Si se deja 24 horas en el lugar oscuro,
la hoja primaria llegará a tamaño de
0.6 a 0.8 cm".
2. Dentro de 10 a 20 días. cuando las
hojas primarias crecen 0.4 a 0.5 cm",
se traslada la maceta a un lugar
oscuro.
4.
Estampar las hojas cuando alcancen el
tamaño de 0.5 cm de diámetro con el
saca corcho y cortar pedazos de hoja.
6.
Mezclar en agua destilada
floten las hojas.
/
5.
7.
Las hojas en pedazos obtenidas flotan
en agua destilada. Se necesita 15
muestras aplicadas con el regulador del
crecimiento.
1.50 g de Ca(N03)2-4H20
0.25 gde KCl
0.25 g de MgS04-7H20
0.05 g de KH2P04
20.0 g de Dextrosa
Hacer la solución para cultivar.
~
8.
¡
~eagua
para que
destilada
~
Solucionar el regulador del crecimiento
en la solución para cultivar.
!ATENCIONj
La concentración de Cinetina usada para investigar puede ser 0.01 a 10 mgll, Giberelina
es 0.1 a 100 mgll. Y hacer 4 tipos de concentración generalmente.
Otras hormonas
vegetales se puede consultar literatura.
19
/
(¡
Hoja del disco
9. Agregar 10 ml de la solución en la caja
de Petrí.
10. Sacar las hojas del disco de agua
destilada (6). y quitar el exceso de agua
del papel filtro.
Luz de 1000 Lux
28·C
11 I
11u""",11
11. Pesar las 15 hojas (muestras) de disco
según la dilución de investigar hasta
los grados de mg.
11. Cerrar la tapa y dejar en el lugar que
tiene unos 28 'C, la luz de 1000 Lux
durante 20 horas. (Cuidar las hojas que
no se hundan)
Medida
1. La cantidad de producción
Sacar las hojas (muestras) de la caja de Petrí y quitar el agua del papel filtro. Después
medir las 15 hojas (muestras) según el regulador del crecimiento usado o su concentración.
2. La superficie de la hoja
Copiar las hojas (el mismo tamaño) en otro papel filtro. Luego cortar para obtener el peso
de 15 hojas (muestras).
Hoja del disco
®®®(])
®®®©0
00®0©
•••••
•••••
e ••••
!ATENCION!
Sobre la superficie de la hoja, se hace igualmente antes de hacer el ensayo.
Resultado de la consideración ( Diferencias en el crecimiento)
1. Sí tiene la significación comparado con el testigo, se puede pensar que la acción se debe
a la Giberelina o Cinetina.
2. Si el aumento del peso fresco es más grande que la superficie, se puede pensar que la
acción en de Cinetina.
3. Si el aumento de la superficie es más grande que el peso fresco, se puede pensar que la
acción es de la Giberelina.
20
4.
HERBICIDAS
Es importante conocer el efecto del herbicida en la germinación, así como en la raíz,
además la selección del tóxico que puede tener o no efecto en las gramíneas y plantas de
hojas anchas, también puede verse el efecto hormonal o no del herbicida.
Para probar el manejo de los herbicida se hizo un resumen de como debe hacer el
experimento.
1. Diluir el herbicida en la concentración
que se investiga.
2. Colocar2 o 3 gotas de la dilución con
herbicida sobre el papel filtro en una
caja de Petrí. Deje que el papel filtro
absorba la solución a investigar.
""
J
e
.. .. ..
@
..
.
... .
3. Sembrar 10 a 20 semillas (de las
gramíneas o de plantas con hojas
anchas puede ser nabo, tomate y otro)
en la caja de Petrí.
v
\j
4. Cerrar la tapa, y colocar en la
incubadora, este a temperatura
adecuada (aproximadamente 20'25"C)
para germinar de semilla durante 2 a 5
días.
Resultado de la consideración
1. Comprender que el efecto sobre la germinación se mide por el porcentaje de
germinación.
2. Comprender que el efecto sobre la raíz se mide por el porcentaje de crecimiento de la
raíz.
3. Comprender que la selección toxicológica es en base a la forma que actúa el herbicida
sobre las gramíneas y plantas de hojas anchas.
4. Comprender que la acción hormonal de herbicida puede verse si tiene o no la aparición
de síntomas de deformidad de tejidos vegetales.
IATENCIONj
Se necesita el testigo absoluto (sin aplk~rión)
P:¡l':¡ r.om!':¡l':¡l'
ron Pllo~
21
1.
FUNGICIDAS
Procedimiento:
Preparar las plantas en macetas. Se les aplica cada fungicida o inocular los patógenos a investigar.
Evaluar los efecto de prevención, residualidad, curación y penetración, respectivamente, el control de los
fungicidas con base a la siguiente fórmula para medir el efecto preventivo, curativo y residual :
Control (%) = (l-B/A)X 100
A: Porcentaje de hifa dañado sin aplicación.
B: Porcentaje de hifa dañado con aplicación.
1.1
Ensayo de efecto preventivo
Aplicación de fungicidas Inoculación de patógenos
I 1 días I
7 días
1.2
Medidas de resultado
I
Ensayo de efecto residual
Inoculación de patógenos
Aplicación de fungicidas
I
7 días
El ejemplo de Mildiú polvoriento (Sphaerotheea
ensayo de maceta invernadero.
I
Medidas de resultado
7 días
I
sp.) en el cultivo del pepino (Cucumis Sativumy en el
l. Aplicar cada fungicida en la concentración la
casa fabricante recomiende ( básico) y un
décimo de esta, usar 2 plantas I atomizador en
cada fungicida. Dejar las macetas un día para
que se sequen.
En caso de residualidad, dejar las macetas
durante 7 días.
2. Preparar patógenos anticipadamente o previo
al ensayo.
3. Colocar la hoja que presenta Mildiú en 100ml
de agua destilada. Y hacer suspensión de
esporas.
22
4-a.
5.
Luego inocular con atomizador hasta que
todas las hojas se mojen uniformemente.
o
4-b.
Colocar las macetas en camas dentro de
invernadero
hasta
Mildiú
polvoriento
aparezca en hojas del testigo (sin aplicación).
6.
Medir el control de los fungicidas según el
porcentaje de hifa dañado.
Aplicar esporas sobre las hojas
directamente,uniformemente.
!ATENCIONj
Dejar las macetas sin plástico cubierto en el
invernadero después de inocular patógenos,
porque Mildiú polvoriento quiere condicion es de
saturación de humedad.
7.
Medir fítotoxicidad también.
23
1.3
Ensayo de efecto curativo
Inoculación de patógenos Aplicación de fungicidas Medidas de resultado
I 1 días I
6 días
I
El ejemplo de Tizón tardío iPhytophthora infestans) en el cultivo del tomate
(Lycopersicum esculentumi.
J.
Preparar tomate en macetas de 12 cm de diámetro y patógenos anticipadamente o previó al ensayo.
2.
Colocar las macetas en bandejas que
permiten almacenar agua. Después inocular
zoosporagios de Phytophthora infestans en
suspensión con atomizador hasta que las
hojas se mojen.
4.
Sacar las plantas de plástico transparente y se las colocan en el exterior de la habitación hasta que
las hojas se sequen naturalmente.
5.
Aplicar cada fungicida según la concentración que la casa fabricante recomiende, 2 plantas para
cada fungicida y aplicar individualmente con un atomizador. Dejar las macetas unas 5 horas para
que se sequen.
6.
Colocar las macetas en bandejas que permiten almacenar agua y cubrir las plantas con plástico
transparente igual que paso 3, hasta que el Tizón tardío aparezca en las hojas del testigo (sin
aplicación). Al fin medir el control de los fungicidas según el porcentaje de hifa dañado y
fitotoxidad.
3.
Cubrir las plantas con plástico transparente
para que aparezca el Tizón tardío que de
quiere una condición de saturación de
humedad, durante un día.
24
1.4
Ensayo de Penetración ( con papel aluminio)
Aplicación de fungicidas
1 días
I
Inoculación de patógenos
días
Medidas de resultado
I
I
1. Cubrir cada parte de la hoja: completa, la mitad y el revés con papel aluminio y luego aplicar
los fungicidas.
2. Inocular zoosporangios de Phytophthora infestans en suspensión.
3. Cubrir las plantas con plástico.
4. Observar si el síntoma de tizón tardío se presenta
aluminio.
o no en cada parte cubierta con papel
a; Hoja totalmente cubierta, b; Hoja cubierta a la mita, c; Hoja cubierta en el envés
25
1.5
Ensayo de patógenos del suelo
Ingredientes:
500g de tierra negra, 500g de afrecho, 100g de dextrosa,
de PDA, 1000ml de beaker y papel aluminio.
1000m1 de agua destilada, el medio de cultivo
Procedim iento:
l.
2.
Mezclar 500 g de tierra negra, 500 g de afrecho y 300 mI de agua dextrosa 10% ( 100g de dextrosa
1I OOOmlde agua destilada) en 1000 mI del beaker muy bién.Y tapar con papel aluminio.
Esterilizar con el autoclave durante 2 horas
(121°C).
3.
Colocar el patógeno del suelo que se
investiga previamente cultivado saque con la
punta de un sacabocado, en el medio de
cultivo de suelo(2). Y cultivar durante unos
10 días.
4.
Mezclar un décimo del suelo infecto con substrato una mezcla de tierra: arena blanca: broza en
proporción de 2 : 1 :1, respectivamente. Esta mezcla se desinfestó usando la técnica de Vaporización
artesanal del Proyecto JCT A-UNIDO *ver (l ). y cultivar unos 5-10 días hasta crecer los micelios,
5.
Sembrar cada 5 semillas o transplantar el producto agrícola en cada maceta que se reparte al suelo
preparado (4) en macetas. Luego aplicar los fungicidas según su descripción, respectivamente.
6.
Colocar en camas dentro del invernadero
hasta que la planta del testigo se muera.
7.
Medir porcentaje de germinación
dañada y la fitotoxicidad.
(1) Vaporización
o planta
artesanal
.~
1.
Calentar (45 a 200'(:) el substrato una mezcla
de tierra: arena blanca: broza en proporción
de 2 : 1 : 1, respectivamente.
2.
Luego cubrir con plástico naylon y dejar bajo
sol durante 3-5 días.
26
2.
INSECTICIDA
Los insecticidas tienen 2 tipos de acción.
l. El efecto del veneno que acuta por contacto que muestran la acción después de que los insecticidas
entren en contacto con la superficie de la piel del insecto.
2. El efecto de penetración del veneno que muestra la acción del veneno en los insectos que respiran
esa solución, se traslada al interior del cuerpo del insecto después de absorber en las hojas y raíces
de las plantas.
Seguidamente; los insecticidas de otra clase de acción tienen diferencias en el grado de efecto sobre la
mortalidad en los insectos.
Para investigar cada uno de los efectos, se hizo la concentración que se diluyo en la solución y se espera
que la mitad de insectos muera llamada DL 50.
2.1
Manejo para criar del insectos
El ejemplo de Gusano del follaje (Plutela xylostella) en el cultivo del repollo (Brassica oleracea var
capitatay.
1. Cubrir las hojas de la planta parásita con el
parafilm comercial hasta que los insectos que
se hace objeto de la investigación pongan
huevos sobre parafilm.
3.
2.
Guardar los parafílmes que tienen los huevos
en el refrigerador ( menos de ]O"C) hasta que
se reunieron los todos huevos obtenidos para
investigar un número suficiente.
Colocar los parafílmes guardados sobre las
hojas de repollo preparado en maceta dentro
de la caja. Después las larvas que salen de los
huevos que unen para. tener las larvas de la
misma edad.
27
2.2
Ensayo de efecto contacto
1. Diluir el insecticida en la concentración
que se investiga.
2. Preparar el cilindro de vidrio (viales)
según el tamaño de insecto.
Tela
Larvas
Tela
3. Agregar 20 a 50 insectos en el cilindro
de vidrio y pegar la tela en la parte de
arriba y abajo.
-.
--------
4. Conservar en la solución durante 2
minutos.
Papel filtro
5. Poner los insectos mojados en el
escapelo y eliminar la solución.
6. Agregar los insectos en la caja de Petrí
y cubrirlo con tapa de alambre para
que no escapen.
7. A los 2 días contar número de los
insectos que mueren.
28
2.3
Ensayo de penetración
2. Cultivar la planta parásita
en la
solución de insecticida así como el
hidropónico que fijen en el tocón con
algodón.
1. Diluir el insecticida en la concentración
que se investiga.
Inocular
/~Afidos,
Larvas etc.
----.
Th
!!
3.
-
,.'
Pinzas
pulgo
~
nes etc.
1-
- Pincel delgado
Inocular 20 a 50 insectos en la planta.
En caso de insectos grandes se inoculan con pinzas. Los más pequeños
inoculan individualmente con un pincel delgado.
«
5 mm) se
4. A los 2 días contar número de los insectos que se mueren. Al fin calcular la mitad de
insectos muera llamada DL 50 que se usa la prueba de Pro bit.
29
2.4
Ensayo de efecto por alimentos
El ejemplo de Falso medidor (Tricnoplllsia ni) en el cultivo del repollo (Brassica oleracea var capitata).
l. Buscar las plagas que se hace objeto de la
investigación. Y criar las plagas en una caja
artifícialmente.
3. Conservar cada 3 hojas en insecticidas de la
concentración
que
el
fabricante
recomienda( básico) y un décimo, durante
unos minutos.
5. Colocar 3 hojas en un recipiente plástico que
contenga el agua en algodón. Después
inocular unos 10 larvas con pinzas.
.A~~
••• _
2. Cortar la hoja de repollo preparado en maceta
con la tijera.
4. Sacar las hojas de vasos y colocar fuera hasta
que las hojas se sequen naturalmente.
Cubrir con tela para que las larvas no se
escapen y dejar unos 3 días.
7. Medir número de las larvas que se mueren a
los 3 diás.
30
111. SECCION DE CAMPO
1.
FUNGICIDAS
El ejemplo de Tizón tardío (Phytophthora infestansv en el cultivo del papa (Solanum tuberosumi.
1.
Decidir el producto agrícola y la enfermedad que se hace objeto de la investigación
fungicidas que se evaluan. Luego lea la recomendación comercial a investigar.
Cuadro
los
1 Productos utilizados en Guatemala y su descripción
Nombre
Comercial
ACROBATMZ
69WP
Aliette 80WG
Antracol 70WP
BRAVO 50SC
CHAMPION
77P.M.
CURZATEM
72WP
DITHANE
80WP
Folpan 80WP
Positron Duo 69
WP
Previcur 72SL
Dosis de Aplicación
Nombre Genérico
DIMETOMORF 9%
+ MANCOZEB 60%
0.75kg/200l
Intervalo de
Aplicación
7-10 días
FOSETfL-AL
3-6g11
8 días
1.5-2.5kg/300-6001
0.75-11/2001
2-3.251/ha
0.45kg/200l
7 días
7 días
RHONEPOULENC
Baver
ZENECA
7-14 días
SUPERB
2-3kglha
3-5 días
DUPONT
2.0-3.0kglha
1.0-1.5kg/2001
l.5 gf1
2-2..5 kg/ha
5-8 días
7 días
5-12 días
ROHM
HAAS
INCISA
Bayer
5-10 días
AgrEvo
7-14 días
NOVARTIS
80%
PROPINEB 70%
CLOROT ALONlLO
50%
HIDROXIDO DE
COBRE 77%
CIMOXANIL 8%
+ MANCOZEB 64%
MANCOZEB 80%
FOLPET 80%
[PROV ALICARB 9% +
PROPINEB 60%
PROPAMOCARB 72%
1.5-2.5 cm" /l + Derosal
50SC lcm3/l
2-2.5kg/ha
MET ALAXIL-M 8%
RlDOMfL
+ MANCOZEB 60%
GOLDMZ68
..
La dOSISde aplicación utilizada fue base a 1,000l/ha
2.
y seleccionar
Casa que
Distribuye
CYANAMID
Preparar el terreno y sembrar semillas de producto agrícola de la variedad sensible al Tizón tardío y en
la época que la enfermedad que se hace objeto de la investigación aparece en forma natural.
Sembrar 30 semillas (tubérculos entre 50-1 OOg) de
papa variedad: se usó Catalina ( sensible al Tizón
tardío) sembrada en un surco durante la época de
lluvia, para cada tratamiento se tuvieron tres
repeticiones
surco).
para un total de 45 surcos (8m X lm/
31
3.
Medir cada fungicida utilizando exactamente 25 cc del producto y aplicar cada fungicida continuamente
en cada surco según su descripción, además se deben aplicar en todo el follaje de la planta
cuidadosamente.
Se puedenmejorar las aplicaciones de los productos, si tienen pipetas, el pesa de campo y el uso
pantallas protectoras (barreras protectoras).
4. Finalmente se evalua la severidad del daño causado por la enfermedad en unos hojas
/planta, con base en porcentaje, se usa la escala de severidad.
o: No hay lesión o tejido sano.
m~~R-;;;;::[;;::-;J
J: Lesión inferior al 20%.
2: Lesión inferior al 40%.
3: Lesión inferior al 60%.
4: Lesión inferior al 80%.
5: Lesión o tejido dañado al 100%
Contar el control valor según la severidad.
Control (%) = (l-B/A)X
100
A: Severidad de hifa sin aplicación.
B: Severidad de hifa con aplicación.
Ver resultados
obtenidos en Chimaltenango,
Guatemala,
año 2000.
Cuadro 2 Eficiencia
de los fungicidas para el control de Tizón tardío en el cultivo de papa
Primero dato
Segundo dato
Severidad
Control
Severidad
Control
Nombre Genérico
(! Hoja)
(%)
(1Hoja)
(%)
(Producto Comercial)
0.14
0.19
0.32
1.87
1.91
2.14
0.32
0.45
1.24
0.86
0.44
3.32 (Daño
Cimoxanil 8%+Mancozeb 64%
Clorotalonilo 50%
Dimetomorf9%+Mancozeb
64%
Folpet 80%
Fosetil- Al 80%
Hidróxido de Cobre 77%
Iprovalicarb 9%+Propineb 60%
Mancozeb 80%
Metalaxil-M 8%+Mancozeb 60%
Propamocarb 72%
Propineb 70%
Sin Aplicación (Testigo)
95.8
94.3
90.4
43.7
42.5
35.5
90.4
86.4
62.7
74.1
86.7
66.4%)
0.28
94.1
0.59
87.6
0.82
82.8
3.84
19.5
3.80
20.3
3.50
26.6
0.92
80.7
1.71
64.2
2.88
39.6
2.64
44.7
1.74
63.5
4.77 (Daño 95.4%)
'"
Se evaluó 5 hojas/planta,
cada surco 30 plantas.
32
Fotografías
Eficiencia de los fungicidas aplicados en papa variedad Catalina en campo.
(lCTA Chimaltenango,
Cuadro 3
Septiembre, 2000)
A continuación se presenta la distribución de los fungicidas aplicados en cada
surco en el campo
DITHANE 80 WP
RIDOMIL GOLD MZ 68
ACROBAT MZ 69 WP
TESTIGO
Antracol 70 WP
Previcur 72 SL
Positron Duo 69 WP
CHAMPION 77 P.M.
."
Aliette 80 WG
Folpan 80 WP
BRAVO 50SC
CURZATE M 72 WP
Folpan 80 WP
BRAV050SC
Aliette 80 WG
DITHANE 80 WP
CURZATE M 72 WP
TESTIGO
Antracol 70 WP
ACROBAT MZ 69 WP
RIDOMIL GOLD MZ 68
Positron Duo 69 WP
Previcur 72 SL
CHAMPION 77 P.M.
Previcur 72 SL
Antracol 70 WP
Positron Duo 69 WP
CHAMPION 77 P.M.
Folpan 80 WP
ACROBAT MZ 69 WP
BRAV050SC
CURZATE M 72 WP
Aliette 80 WG
DITHANE 80 WP
TESTIGO
RIDOMIL GOLD MZ 68
33
2.
INSECTICIDAS
El ejemplo de Minador de la hoja (Liriomyza huidobrensist en el cultivo del cebolla IAllium cepa)
l. Decidir el producto agrícola y la plaga que se hace objeto de la investigación y seleccionar
insecticidas que se evaluan. Luego lea la recomendación comercial a investigar.
Cuadro 4 Productos utilizados en Guatemala
Nombre Comercial
AMBUSHIOEC
Confidor 70 WG
Lannate 90 WP
Malation
VERLAQ 1.8 EC
VYDATE24SL
La dOSiS de aplicación
y su descripción
Nombre Genérico
PERMETRINA
10%
IMIDACLOPRID 70%
METOMIL90%
MALATION %
ABAMECTINA 1.8%
OXAMll..24%
..
utilizada fue base a I,OOOl/ha
2. Transplantar plantas de cebolla preparadas
variedad: en tablas durante la época de sin
lluvia, para cada tratamiento se tuvieron dos
repeticiones
m/tabla):
los
para un total de 14 tablas (10m X 2
Dosis de
Aplicación
Intervalo de
Aplicación
0.7-1.51/ha
250 giba
5-8 días
14-21 días
240-600 giba
1.5-2.01/ha
0.6-1.21/ha
2-5I/ha
7 días
---7 días
7-14 días
7 días
3. Medir cada insecticida utilizando exactamente
25 cc del producto y aplicar cada insecticida
continuamente en cada surco según su
descripción, además se deben aplicar en todo el
follaje de la planta cuidadosamente.
4. Finalmente se evalua la severidad del daño causado por la plaga en unos hojas /planta y porcentaje de la
planta dañada Pero la hoja dañada que es causado por la plaga hay que confirmar.
Cuadro 5 A continuación se presenta la distribución
en cada tabla en el campo
AMBUSHIOEC
Confidor 70 WP
Testigo
Malation
VYDATE24SL
VERLAQ 1.8 EC
Lannate 90WP
de los insecticidas
aplicados
VYDATE24 SL
Lannate 90 WP
VERLAQ 1.8 EC
Testigo
AMBUSH IOEC
Malation
Confídor
34
Ver resultados obtenidos en Chimaltenango, Guatemala, año 2000.
Cuadro 6 Eficiencia de los insecticidas para el control de Minador de la hoja
en el cultivo del cebolla
Nombre Genérico
(Producto Comercial)
Planta dañada
/ Total planta
Abamectina 1.8%
Imidacloprid 70%
Malation %
Metomíl 90%
Oxamil80%
Permetrina 10%
Sin Aplicación (Testigo)
90/l40
77/140
89/139
90/146
109/143
100/138
106/135
Daño
(%)
64.3
55.0
64.0
61.6
76.2
72.5
78.5
Severidad
(/ Planta)
1.6
1.3
1.5
1.5
1.8
1.6
2.1
Control
(%)
23.8
38.1
28.6
28.6
14.3
23.8
Minador de la hoja (Liriomyza huidobrensis¡
t.
Gusano cortador (Spodpotera sp. )
Huevos de Gusano cortador (Spodpotera sp.)
Mancha púrpura (Alternaría porri )
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Aditamentos necesarios para mayor eficacia
en las aplicaciones de plaguicidas.
(IeTA)
ICTA:
INSTITUTO DE CIENCIA Y TECNOLOGIA AGRICOLAS
.~
JAPÓN
JOCV :
VOLUNTARIOS JAPONESES EN COOPERACION
TECNICA CON EL EXTRANJERO
(AGENCIA DE COOPERACION INTERNACIONAL DEL JAPON)
Adi tamen tos necesarios para mayor eficacia
en las aplicaciones de plagicidas.
ICTA:
ISTITUTO
DE CIENCIA Y TECNOLOGIA
AGRICOLAS
JAPÓN
JOCV:
VOLUNTARIOS JAPONESES EN COOPERACION
TECNICA CON EL EXTRANJERO
(AGENCIA DE COOPERACION INTERNACIONAL
DEL JAPON)