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Proyecto:
AISLAMIENTO Y EVALUACIÓN DE LA
CAPACIDAD ANTAGÓNICA DE ENEMIGOS
NATURALES NATIVOS DE COSTA RICA
CONTRA NEMATODOS FITOPARÁSITOS,
BACTERIAS Y HONGOS FITOPATÓGENOS
QUE ATACAN ARROZ
Personal Responsable
• Coordinador general: PhD Víctor Cartín Leiva.
Escuela de Ciencias Agrarias.
• Co-coordinadora: MSc Martha Orozco Aceves.
Escuela de Ciencias Agrarias.
• Co-coordinador: MSc Fabio Chaverri. Escuela
de Ciencias Ambientales.
• Nematólogo: MSc Alejandro Esquivel. Escuela
de Ciencias Agrarias.
• Fitopatólogo: MSc German Rivera. Escuela de
Ciencias Agrarias.
• Micorrizólogo: MSc Eduardo Salas. Escuela de
Ciencias Agrarias.
Lugar donde se llevará a cabo
• Laboratorio de Biología y Ecología de
los organismos del suelo y control
biológico. ECA.
• Laboratorio de Nematología. ECA.
• Laboratorio de Fitopatología. ECA.
Control de Poblaciones
CONTROL
NATURAL
ANTAGONISMO
CONTROL
BIOLÓGICO
ANTAGONISMO
Acciones contraproducentes entre organismos o
grupos de organismos. Puede ser de 4 tipos:
•
•
•
•
Competencia
Antibiosis
Micoparasitismo
Estimulación de defensas de la planta
• Principio Ecológico: Todo organismo tiene un
enemigo natural que lo antagoniza.
OBJETIVOS
• General
• Establecer una colección de enemigos
naturales nativos de Costa Rica que
presenten potencial para ser utilizados
como controladores biológicos de
nematodos fitoparásitos, bacterias y
hongos fitopatógenos en arroz.
Continuación Objetivos
• Específicos
• 1. Aislar enemigos naturales de nematodos
fitoparásitos, enemigos naturales de bacterias y
hongos fitopatógenos y cepas de hongos
micorrizógenos mediante diversas técnicas a partir de
suelo de campos arroceros.
• 2. Evaluar la patogenicidad in vitro de los enemigos
naturales aislados contra Meloidogyne spp. contra
Sarocladium
oryzae,
Pyricularia
grisea,
Thanatephorus cucumeris, Helminthosporium oryzae
y Pseudomonas fuscovaginae para seleccionar los
más eficientes.
Continuación Objetivos
• 3. Evaluar la efectividad en plantas de arroz
de los enemigos naturales seleccionados
contra Meloidogyne spp. y contra algunas
bacterias y hongos fitopatógenos a nivel de
invernadero.
• 4.
Evaluar
el efecto protector contra
Meloidogyne spp. de las cepas de hongos
micorrizógenos aislados de plantas de arroz.
Proceso de Escalamiento
PATOGENICIDAD EN CAMPO
PATOGENICIDAD EN INVERNADERO
PATOGENICIDAD in vitro
AISLAMIENTO
Metodología
• Muestreo: zonas arroceras del país.
• Muestras: suelo y plantas que
presenten síntomas de afección por
nematodos y plantas sanas.
Aislamiento de Enemigos Naturales
de Nematodos
• Metodologías:
•
•
•
•
EN de huevos
EN de estadíos vermiformes
EN de hembras expuestas
Parásitos misceláneos: Pasteuria penetrans,
Paecilomyces lilacinus, Nematophtora
gynophila Pochonia chlamydosporia y
Dactylella oviparasitica.
Aislamiento de Enemigos Naturales
de Bacterias y Hongos Fitopatógenos
• Metodología:
• Diluciones y vaciado en placa de suelo y
hojas sanas.
• Observación directa de microorganismos:
Trichoderma spp., Gliocladium spp.,
Paecilomyes spp., Bacillus spp., Pseudomonas
spp., actinomicetes, cianobacterias.
• Purificación.
Aislamiento de Hongos
Micorrizógenos
• Metodología:
• Flotación en solución de azúcar y
cribado.
• Observación directa.
Pruebas de Antagonismo in vitro
• Enfrentamiento entre los patógenos y
los “posibles” antagonistas en platos
petri.
• Selección de los más efectivos para
probarlos en la siguiente etapa en
invernadero.
Pruebas de Antagonismo en Invernadero
• Nematodos:
• Inoculación de suelo previamente esterilizado con
larvas (J2) de Meloidogyne spp.
• Inoculación de semillas de arroz con los enemigos
naturales aislados utilizando CMC.
• Diseño de bloques al azar con los siguientes
tratamientos: antagonistas de a) huevos, b) estadíos
vermiformes, c) hembras, d) mezclas de
antagonistas, e) CMC, f) nematicida químico y g)
plantas no tratadas.
• Cosecha de plantas y medición de: peso de plantas,
peso de raíces, no. de nódulos por planta, nódulos
por g de raíz, no. de agallas por planta, agallas por g
de raíz y no. de J2 por g de suelo.
• ANDEVA
Pruebas de Antagonismo en
Invernadero
• Bacterias y hongos fitopatógenos
• Plantas de arroz en potes.
• Diseño de bloques al azar con 10 repeticiones con los
tratamientos: a) enemigos naturales seleccionados
en la prueba in vitro individualmente y en mezclas, b)
fungicida químico, c) plantas no tratadas.
• Aspersión vía foliar de los enemigos naturales y
posteriormente aplicación vía foliar de los patógenos
• Variables a medir: llenado de vainas, número de
espigas y tamaño de espigas.
• ANDEVA
Productos Esperados
Colección de antagonistas de nematodos fitoparásitos,
bacterias y hongos fitopatógenos con potencial para ser
utilizados como controladores biológicos en arroz.
Al menos tres trabajos de tesis desarrollados por
estudiantes de licenciatura o posgrado.
Al menos tres artículos científicos publicados en revistas
nacionales.
Informe final con los resultados del proyecto.
Mecanismos de Difusión
• Dos encuentros con productores para
exponer resultados.
• Publicación de artículos científicos.
• Presentación a CONARROZ de tres
avances del proyecto.
• Trabajos de tesis.
• Informe final.
Control biológico de patógenos en arroz
• International Rice Research Institute.
Filipinas.
• Patógenos: Rhizoctonia solani, Sclerotium
oryzae, Pyricularia grisea, Sarocladium oryzae
y Fusarium fuijkuroi.
• Antagonistas bacterianos: Pseudomonas spp.,
Bacillus spp., Serratia spp. y Erwinia spp.
• Antagonistas fúngicos: Trichoderma spp.,
Penicillium spp., Myrothecium verrucaria,
Chaetomium globosum y Laerisaria arvalis.
Continuación
• Pyricularia oryzae con Trichoderma
harzanium y Chaetomium globosum.
• Otros controladores: Micromonospora spp.,
Trichotecium roseum, Gliocladium roseum.
Grecia.
• Rhizoctonia solani con Trichoderma
harzianum. Venezuela.
• Rynchosporum oryzae, Helmintosporium
oryzae y Cercospora oryzae con Trichoderma
spp.
Fortalezas
• Personal con gran experiencia y trayectoria en la
UNA.
• Laboratorio de Fitopatología: experiencia en
aislamiento y pruebas de patogenicidad in vitro de
antagonistas vs hongos y bacterias fitopatógenas.
• Laboratorio de BEMS: aislamiento de hongos
nematófagos (Candelabrella musiformis, Arthrobotrys
oligospora, Dactylella spp.)
• Pruebas in vitro vs nematodos gastrointestinales de
rumiantes.
• Varias cepas de Trichoderma spp. que actúan vs
nematodos fitoparásitos.
• Varias cepas de actinomicetes.