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* 
Dr. Luis R. Martínez Córdova
Dr. Marcel Martínez Porchas
* Seres
vivos que por su pequeño tamaño no
pueden ser observados a simple vista.
* Incluye organismos autótrofos o heterótrofos, de
diversos grupos taxonómicos:
* Procariontes
* Eucariontes unicelulares
* Eucariontes pluricelulares
* 
* Productores
y consumidores
de OD
* Degradadores
de materia
orgánica
* Reciclamiento de nutrientes
* Fuente de alimento para
organismos superiores en la
cadena trófica
* 
* Elaboración
y procesamiento
alimentos como: pan, queso,
vino, cerveza, etc.
* Biorremediación de efluentes
* En acuacultura como fuente de
alimento de larvas y adultos
* Ingrediente
de dietas para
humanos y acuícolas.
* Degradan
materia orgánica bajo condiciones
aeróbicas o anaeróbicas (bacterias autótrofas
y/o heterótrofas),
* Remueven
de forma efectiva compuestos
nitrogenados y fósforo (microalgas), metales,
hidrocarburos y otros (bacterias)
* 
* Tratamiento
* Nitrificantes
* Remoción
* En
de efluentes y
descargas de aguas residuales
(Hoffmann, 2002).
de metales pesados
(Wilde y Benemann,1993)
*  Efluentes
agroindustriales
(González et al., 1997)
* Efluentes
acuícolas (MartínezCórdova et al. 2011)
* 
para biofiltros
en acuacultura (Yamashita
et. al. 2011).
consorcios microbianos
(biopelículas o bioflóculos)
para el tratamiento de
efluentes acuícolas
(Samocha et al., 2007;
Sánchez et al. 2013)
* Las
quimio-autotróficas transforman el amonio a
nitritos por la vía de la hidroxilamina. Pertenecen
a los grupos de las β- y γ-Proteo-bacterias y
utilizan CO2 como fuente de carbono (Koops y
Pommerening-Roser, 2001).
* Las nitrificantes transforman los nitritos a nitratos.
Pertenecen al grupo de las α- y γ-Proteo-bacterias,
filo Nitrospirae (Fiencke et al., 2005; ChávezCrooker y Obreque-Contreras, 2010).
* 
* Cianobacterias
como Microcoleus chthonoplastes,
Spirulina sp., Oscillatoria sp., Schizothrix sp.,
Calothrix sp., Phormidium sp., etc. transforman NH3 en
compuestos con toxicidad baja o biomasa
* Bacterias
heterotróficas descomponen y asimilan:
alimento no consumido, detritus, heces y organismos
muertos.
* La
inducción de microorganismos heterotróficos, en
combinación con protocolos adecuados de aireación
puede traer beneficios ecológicos y económicos.
* 
* L a
fitoremediación es un proceso de bioremediación “amigable”, ya que contaminantesnutrientes son removidos por plantas con ahorro
de energía, y recuperación de recursos (Kwon et
al., 2013).
* Mayormente
se usan macroalgas, y las microalgas
en menor medida (Hemaiswarya et al., 2011).
* Sin
embargo, tienen amplio potencial en la
remoción de metales pesados, colorantes
industriales, gases tóxicos, petroquímicos, etc.
(Doshi et al., 2007; Lim et al., 2010; Chiu et al.,
2011).
* 
* Microalgas
se han usado para la nutrición larvaria de
diversas especies de camarones y peces (Brown,
2002).
* Diversos
microorganismos han sido usados como pre y
probióticos para mejorar la calidad del agua-sedimento
y la condición nutricional, sanitaria e inmune de
diversas especies cultivadas.
* Mas
recientemente como biomasa nutricional directa,
con resultados muy prometedores (Becerra-Dórame et
al. 2012; Emerenciano et al. 2012; Martinez-Cordova
et al. 2014).
* 
* Benefician al hospedero:
* a)
por exclusión competitiva de patógenos en el
tracto digestivo
* b)
induciendo una respuesta inmune que luego
puede ser efectiva contra patógenos
* c)
aportan enzimas exógenas que coadyuvan a la
digestión de los alimentos ingeridos por el
hospedero (Balcazar et al., 2006).
* 
* Levaduras (Gatesoupe, 2007)
* Microlagas (Gómez-Gil et al., 2002)
* Bacterias
acidolácticas (Lara-Flores et al., 2003;
Campa-Córdova, 2011)
* Bacterias del género Vibrio (Alavandi, 2004)
* Otras
bacterias de diferentes grupos (Das et al.,
2008).
* 
* L a
efectiv idad de probióticos comerciales,
particularmente la relación costo-eficiencia de ha sido
muy cuestionada.
* Por ello que ha sido sugerido utilizar microorganismos
inespecíficos aislados de sitios similares al lugar en
donde se van a utilizar.
* La eficiencia probiótica de células libres en la columna
de agua, es también cuestionable, y por ello se han
utilizado células inmovilizadas con una mayor eficacia.
* 
* Para seleccionar un probiótico adecuado, es necesario:
* a) Tener de información relacionada al uso de
* probióticos
* b) Adquisición de candidatos potenciales a ser utilizados
como probióticos
* c)
Evaluación de su habilidad para competir con cepas
patogénicas
* d) Evaluación de su posible patogenicidad
* e) Evaluación de los efectos de los probióticos
en el
hospedero y
* c)
Evaluación de la relación costo/beneficio (Gomez-Gil et
al., 2000).
* 
* L os
camarones y algunos peces no son
eficientes en la captura y utilización de
microorganismos directamente de la columna
de agua, pero si pueden hacerlo cuando están
asociados superficies fijas (mallas, telas,
palos, piedras, etcétera) o flotantes (partículas
suspendidas diversas). A estas asociaciones se
les conoce como BIOPELÍCULAS y
BIOFLÓCULOS, respectivamente.
* 
* En bioflóculos para L. vannamei. PC de 28.7 a
43.1% y lípidos 2.11 a 3.62% (Maicá et al. 2012):
* En bioflóculos para tilapia: PC de 38%; lípidos:
3.16 y 3.23% (Azim y Little, 2008)
* En biopelículas para carpa: PC de 10% y lípidos
1% (Mridula et al. 2003)
* En biopelículas y bioflóculos para camarón: PC
de 17 % y lípidos de 2 a 3 % (Becerra-Dórame,
2012).
* 
* Los bioflocs y biopelículas utilizadas como
alimento en acuicultura presentan cantidades
considerables de:
* Aminoácidos esenciales
* Ácidos grasos esenciales y
* Perfiles de vitaminas usualmente adecuados para
peces y crustáceos (Ekasari et al. 2014; MartínezCórdova et al. 2014).
* 
* 
I
* Azim and Little (2008) evaluaron sistemas de bioflocs
para el cultivo de Oreochromis niloticus con 24 y 35% PC.
La calidad nutricional de los flóculos fue adecuada para
las tilapias obteniendo superviviencia de 100% y
producción 45% superior en BFT, con ambos PC.
* Asaduzzaman et al. (2010) añadieron CHO para subir la
tasa C:N de 10:1 a 20:1 en un cultivo de peces y camarón
basado en perifiton, teniendo un aumento significativo (>
20%) en la biomasa del perifiton y la producción de
camarones y peces.
* 
* Bianchi et al.(1990) reportan que entre 70 y 80% de
ganancia en peso de L.vannamei cultivado en laboratorio
fue atribuíble al consumo de bioflocs.
* Arnold et al. (2009) encontraron que la sobrevivencia y
peso semanal de P. monodon en un sistema con sustratos y
biopelículas fue de 85% y 1 g, respectivamente, mientras
que 74% y 0.8 g se obtuvieron sin el uso de las mismas.
* 
* Trat.
PC
* 100% A + F
30.65
14.54
45.28
* 85% A + F
28.19
15.93
51.06
* 70% A + F
30.47
15.60
47.06
* 55% A + F
29.76
16.07
44.06
Carbohidratos
Cenizas
* UAS: Audelo-Naranjo et al. (2010, 2011); biopelículas
en sustratos artificiales para el cultivo hiperintensivo
de L. vannamei: parámetros de producción mucho
mejores que en control.
* 
* UNISON: Becerra-Dorame et al. (2011, 2012) sistemas
basados autótrofos y heterótrofos para maternización
y preengorda de L. vanname: excelente respuesta
productiva (FCR <0.7) y sustituyendo Artemia.
* Medina-Felix et al. (2014). Harina de microalgas en
dietas para L. vannamei infectado con WSSV: Mejoró
sobrevivencia y condición fisiológica.
* 
* UNISON: Lopez-Elías et al (2015) sustituyeron
harina de pescado por harinas vegetales y
bioflocs para tilapia. No encontraron diferencias
en los parámetros de producción.
* Una exhaustiva revisión sobre el uso de sistemas
basados en microorganismos para el cultivo de
camarones y peces ha sido recientemente
publicada por Martínez-Córdova et al. (2014).
* 
* La diversidad de microorganismos en el medio
acuático representa un indiscutible recurso por el
cual la acuacultura puede ser una empresa
sustentable.
* El uso de microorganismos en acuacultura se
divide en dos grandes áreas: nutrición y
biorremediación.
* 
* Información documentada
y suficiente sobre el
valor nutricio de consorcios microbianos para
varias condiciones de cultivo.
* Las experiencias internacionales, regionales e
institucionales sobre el uso de sistemas basados
en microorganismos son muy promisorias
promisorias.
* 
* Elegir adecuadamente el tipo de sistema a
implementar de acuerdo a condiciones particulares.
* Seleccionar el tipo de microorganismos (específico
o inespecífico) que mejor se adapte a ello.
* Manejar adecuadamente el sistema tomando en
cuenta aspectos como:
* Formas y sistemas de aireación y movimiento de
agua
* Aspectos nutricionales (alimento formulado acorde)
* Mejoramiento genético aplicado a estos sistemas.
*