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Año 12 • Nº 28 • Noviembre de 2013 • Entrega gratuita para todo el país • Tiraje 30.000 ejemplares Laboratorios Santa Elena se integró al Grupo Virbac Se comunicó la adquisición de la totalidad del paquete accionario de Laboratorios Santa Elena por parte del Grupo Virbac. Virbac es el mayor grupo farmacéutico internacional independiente que se encuentra dedicado 100% a la salud animal. Se trata de una empresa de origen francés de gran desarrollo, pionero en el mercado de animales de compañía y con un desarrollo dinámico en el mer- cado de los animales productores de alimentos. Virbac se encuentra presente en más de 100 países y tiene una facturación anual mayor a 700 millones de Euros. Cuenta con más de 4100 colaboradores en todo el mundo. Laboratorios Santa Elena se convierte en la filial número 30 de la compañía fuera de Francia. Páginas 2 y 3 Virus respiratorio sincitial bovino (BRSV) en terneros Se confirma la presencia del BRSV en un cuadro de neumonía enzoótica. Si bien, este es el primer trabajo que detecta la presencia de este virus en cuadros de neumonía, en Uruguay ya fue demostrada la presencia de anticuerpos para el BRSV, determinándose una alta seroprevalencia (95%) en los bovinos. En otros países, tales como Italia (69%), México (52%) y Ecuador (80%) se ha demostrado, también, una alta prevalencia de animales infectados con BRSV. Es sabido que el BRSV predispone a neumonías bacterianas en animales en corrales de engorde al disminuir los mecanismos de defensa del pulmón. Páginas 14 y 15 Clostridium perfringens tipo A aislamiento en bovinos Se logró aislamiento de Clostridium perfringens tipo A en un caso de yeyunitis hemorrágica en un bovino lechero. El animal afectado presentaba dolor abdominal, depresión y caída brusca de la producción de 46 a 10 litros diarios. No responde al tratamiento y muere a las 24 horas. A la necropsia el intestino delga- do se presentaba hemorrágico con coágulos de sangre de color casi negro y restos necróticos de mucosa en su interior. Del contenido yeyunal se aisló en cultivo puro y se confirmó por PCR el Clostridium perfringens tipo A, sugiriendo una relación causal con la enfermedad. Página 13 Premio Nacional de inNOVAción 2013 para Laboratorios Santa Elena Laboratorios Santa Elena fue galardonado con el Premio NOVA en la categoría Industria. Se trata del Premio Nacional de InNOVAción 2013. Es un reconocimiento a su destacada labor en el campo de la biotecnología. Los premios NOVA son un reconocimiento a las empresas que con su capacidad Enfermedades reproductivas Leptospirosis El Selenio innovadora aportan a la mejora de la calidad de vida y al progreso económico de nuestro país. Su objetivo es premiar el talento y esfuerzo de quienes dedican parte de su vida en pro de la innovación. Página 16 Páginas 4 y 5 Páginas 6 al 11 Página 12 2 LECHUZA ROJA Noviembre de 2013 Editorial Carta a clientes y amigos por Dr. Gonzalo Leániz Presidente Estimados clientes y amigos: Con mucho gusto queremos comunicarles que los accionistas de Laboratorios Santa Elena han acordado con la empresa Virbac de Francia, que ya tenía una minoría de las acciones, la adquisición de la totalidad de las acciones de Laboratorios Santa Elena. Virbac es el mayor grupo farmacéutico internacional independiente que se encuentra dedicado 100 % a la salud animal. Fue creada hace 45 años por el veterinario Pierre-Richard Dick, cuya familia controla la empresa, estando hoy presente en más de 100 países. Virbac y Laboratorios Santa Elena comparten orígenes similares y los mismos valores éticos, de servicio a sus clientes y compromiso con la sociedad. En sus 55 años de historia Laboratorios Santa Elena ha contribuido con su trabajo al desarrollo del mercado pecuario del país, la exportación y la salud pública de su población, apostando a la innovación y al desarrollo de productos veterinarios de calidad reconocida. Virbac ha elegido a Laboratorios Santa Elena para ser un centro fundamental de desarrollo de vacunas para América Latina y otros mercados. Con esta integración global, los productos veterinarios uruguayos podrán llegar a muchos mercados y seremos participes de este fantástico desafío. Esta muy buena noticia, que nos enorgullece y nos alienta a nuevos desafíos, abre nuevas esperanzas para el desarrollo de la biotecnología creada en nuestros laboratorios y con nuestra gente. Es también una muy buena noticia para nuestros clientes, que contaran con un portafolio de productos más completo y de excelente calidad. Queremos trasmitirles la continuidad del equipo humano que hoy conformamos, buscando la excelencia y el servicio a nuestros clientes a quienes continuaremos atendiendo como siempre. Junto con Virbac seremos todavía mejores en este desafío. Nuestros agradecimientos y saludos a todos. Mirando más lejos por Dr. Eduardo J. Ottonelli Director La integración de Laboratorios Santa Elena al Grupo Virbac de origen francés es una excelente noticia. Implica el reconocimiento al desarrollo de una empresa uruguaya que en el ámbito nacional y regional ha sabido convertirse en referente en salud animal. Con más de 55 años de historia Santa Elena es hoy símbolo de innovación, investigación y calidad en productos veterinarios, con un fuerte foco en productos para la ganadería. Por su parte Virbac es una empresa de alcance mundial con un fuerte crecimiento en todos los continentes, siendo la mayor empresa veterinaria dedicada exclusivamente a la salud animal. Es una empresa que originalmente ha sido líder en productos para mascotas y que se encuentra en una importante expansión en el área de los animales de producción. No hay dudas de que se trata de una adquisición fuertemente sinérgica que supera y potencia para Uruguay y el mundo las posibilidades que una empresa de base exclusivamente local puede tener. Algunas de las ventajas de esta nueva etapa que se abre son: 1) Más exportación de productos uruguayos: Los productos elaborados en Uruguay contarán con múltiples mercados de destino a través de la red mundial de Virbac. 2) Desarrollo e investigación local: Virbac tiene centros de investigación en varias partes del mundo y ahora en Uruguay la red de investigación se potencia con el objetivo de nuevos productos para la ganadería. Santa Elena Virbac será un punto neurálgico para el desarrollo de vacunas para todo el grupo internacional. 3) Más inversiones: La presencia local de Virbac no solamente reafirma las inversiones que la empresa está ejecutando sino que junto con el crecimiento previsto se visualizan mayores inversiones. 4) Mano de obra calificada: El desarrollo de la empresa a nivel local prevé la incorporación de más puestos de trabajo con un fuerte componente de técnicos capacitados. 5) Intercambio tecnológico: El liderazgo de Virbac en innovación permite una total integración del equipo científico de Santa Elena con referentes mundiales en múltiples áreas de conocimiento. 6) Nuevos productos: El mercado uruguayo se verá favorecido en forma creciente con la incorporación de la extensa gama de productos Virbac reconocidos mundialmente por su excelente calidad. Hoy el grupo humano de Laboratorios Santa Elena Virbac está mirando más lejos, visualizando el futuro con optimismo, con mayor crecimiento, más innovación y nuevos productos para el Uruguay y el mundo. Noviembre de 2013 LECHUZA ROJA 3 Laboratorios Mensaje Santa Elena, a los empleados una empresa de Santa Elena Virbac por Eric Marée, Presidente de Virbac En un evento realizado en el día 13 de setiembre en el Salón Multiespacio de la ExpoPrado Laboratorios Santa Elena comunicó la adquisición de la totalidad de su paquete accionario por parte del Grupo Virbac. Virbac es el mayor grupo farmacéutico internacional independiente que se encuentra dedicado 100% a la salud animal. Se trata de una empresa de origen francés de gran desarrollo, pionero en el mercado de animales de compañía y con un desarrollo dinámico en el mercado de los animales productores de alimentos. Virbac se encuentra presente en más de 100 países y tiene una facturación anual mayor a 700 millones de Euros. Cuenta con más de 4100 colaboradores en todo el mundo. Laboratorios Santa Elena se convierte en la filial número 30 de la compañía fuera de Francia. En un mensaje a los empleados de Laboratorios Santa Elena Eric Marée, presidente de Grupo manifestó que la adquisición “permitirá avanzar juntos, más rápido y más lejos tanto en las inversiones industriales como en la innovación y el desarrollo de la gama de vacunas de Santa Elena en América Latina e igualmente más allá. El Grupo Virbac está firmemente decidido a desarrollar las vacunas en todo el mundo y Laboratorios Santa Elena debe ser uno de los centros fundamentales en particular en las vacunas bovinas.” En el evento en la Expo Pra- do los directores de Laboratorios Santa Elena, Dres. Gonzalo Leániz, Thierry Gozlan y Eduardo Ottonelli trasmitieron su satisfacción por el anuncio a la vez que informaron la continuidad del equipo humano que hoy conforma la empresa. El Dr. Thierry Gozlan, quien es también Director de América Latina del grupo, manifestó que tanto a nivel investigación, desarrollo e industrial como a nivel comercial, las sinergias, las complementariedades y el conocimiento generarán excelentes perspectivas de crecimiento duradero. Laboratorios Santa Elena se encuentra ejecutando un importante proyecto de inversión que le permitirá ampliar sus capacidades productivas y “Laboratorios Santa Elena y Virbac acaban de pasar un punto decisivo luego de la primera etapa del año 2010, en la cual Virbac llegó a ser un accionario minoritario de Laboratorios Santa Elena. La colaboración de las dos empresas ha sido muy fructuosa desde entonces, a tal punto que la segunda etapa, la toma de participación completa, prevista desde el principio, fue adelantada. logísticas. Además de importantes mejoras en su planta ac- Esta toma de participación nos permitirá avanzar juntos, más rápido y más lejos tanto en las inversiones industriales como en la innovación y el desarrollo de la gama de vacunas de Laboratorios Santa Elena en América Latina e igualmente más allá. El Grupo Virbac está firmemente decidido a desarrollar las vacunas en todo el mundo y Laboratorios Santa Elena debe ser uno de los centros fundamentales en particular en las vacunas bovinas. Por lo tanto es una nueva era que se abre hoy para todos los empleados de Santa Elena que podrán así contribuir al desarrollo mundial de Virbac en inmunología. Bienvenidos al Grupo Virbac y les deseo mucho éxito a los equipos de Laboratorios Santa Elena.” tual, está en construcción un nuevo sitio industrial en un pre- dio de 22.000 metros cuadrados. 4 LECHUZA ROJA Noviembre de 2013 Bovisan Total Se La vacuna más completa contra problemas reproductivos Los problemas reproductivos en los bovinos son causantes de importantes pérdidas económicas a nivel mundial. En un establecimiento con bajos índices reproductivos no es sencillo encontrar las causas de este grave problema. Además de descartar posibles problemas nutricionales y de manejo, se debe prestar especial atención a las diferentes enfermedades infecciosas, tan- to bacterianas como virales que afectan al rodeo de carne y de leche. La sintomatología que provocan estos agentes infecciosos es muy variada pero la infertilidad y el aborto son el denominador común (cuadro 1). Conocer la situación epidemiológica de estas enfermedades en un rodeo facilita la planificación de las estrategias de control. Impacto económico de los problemas reproductivos El impacto económico de las enfermedades reproductivas puede ser diferente según el tipo de explotación y las características de cada enfermedad. Es común considerar el aborto de manera genérica como el principal indicador de pérdidas económicas relacionadas a la reproducción. Tomando como ejemplo una tasa de preñez promedio del 80%, las pérdidas de terneros entre el diagnóstico de gestación y el destete pueden promediar el 6 a 10 %. Dentro de esas pérdidas la proporción de abortos promedia el 3%, y la misma cifra se maneja para las muertes perinatales. Por lo tanto, tomando como referencia Cuadro 1 Principales enfermedades infecciosas que causan síntomas reproductivos en bovinos Agente Momento en que causa problemas ¿Es zoonosis? Leptospira serovares: Wolffi, Hardjo prajitno, Pomona, Icterohaemorrhagiae Hardjo bovis, Tarassovii, Canicola, Gryppotyphosa • • • • Campylobacteriosis Campylobacter fetus subsp. venerealis Campylobacter fetus subsp. venerealis biotipo intermedius • Infertilidad • Repetición de celos 1er tercio de gestación Campylobacter fetus subsp. fetus • Abortos 5º y 6º mes de gestación Brucelosis Brucella abortus • Abortos • Nacimiento de terneros débiles prematuros o a término Último tercio de gestación SI Diarrea viral bovina (DVB) Virus de la diarrea viral bovina tipo I (DVB tipo I) y tipo II (DVB tipo II) • • • • Durante toda la gestación NO Durante toda la gestación NO Infertilidad Abortos Muerte de terneros Ictericia, hemoglobinuria Muerte embrionaria Abortos Nacimiento de PI Malformaciones SNC, hipoplasia cerebral, alteraciones oculares • Muerte pos natal, ataxia Durante toda la gestación (según serovar) SI NO • Ovaritis, hipoplasia ovárica Rinotraqueitis infecciosa bovina (IBR) Protozoarios Clínica Leptospirosis Virus Bacterias Enfermedad Herpes virus bovino tipo 1 (HVBo-1) • Reabsorción embrionaria • Abortos • Cuadros respiratorios Herpes virus bovino tipo 5 (HVBo-5) • Meningoencefalitis Trichomoniasis Tritrichomona foetus • Infertilidad • Piómetra • Abortos ocasionales 1er tercio de gestación NO Neosporosis Neospora caninum • Abortos • Momificación 4° a 6° mes de gestación NO Noviembre de 2013 Contiene Selenio como mejorador de la respuesta inmune. Composición: Suspensión inactivada de Herpes virus bovino tipo 1 y Herpes virus bovino tipo 5; Virus de diarrea viral bovina tipo I y tipo II; Leptospira interrogans serovares Icterohaemorrhagiae, Pomona, Canicola, Wolffi, Hardjo prajitno, Tarassovi y Grippotyphosa y Leptospira borgpetersenii serovar Hardjo bovis; Campylobacter fetus subsp. venerealis, Campylobacter fetus subsp. venerealis biotipo intermedius, Campylobacter fetus subsp. fetus. Selenio 10 mg por dosis. Hidróxido de aluminio al 10%. Especies: BOVINOS una estimación de 2.9 millones de terneros paridos al año, esos porcentajes traducidos a dinero representarían aproximadamente 1.300 millones de dólares de pérdidas por año. Estos valores subestiman o ignoran otras pérdidas como por ejemplo las relacionadas con la producción potencial de leche, las complicaciones de carácter reproductivo que afectarán el desempeño del rodeo en conjunto y el riesgo de difusión de la enfermedad en animales y en los trabajadores del establecimiento, en el caso de enfermedades zoonóticas, por lo tanto las cifras estimadas serían muy superiores. Una vaca que no produce un ternero por año se transforma en un gasto, afectando la curva de rentabilidad del establecimiento, comprometiendo también la industria y al país en su conjunto. ¿Cómo mejorar esta realidad? En la actualidad la prevención de las enfermedades reproductivas causadas por virus y bacterias mediante la vacunación es indispensable para mejorar los índices reproductivos y por lo tanto incrementar las ganancias en un establecimiento ganadero o lechero. En el mercado se ofrecen infinidad de productos con diferentes indicaciones y también con variada respuesta o eficacia. Al momento de elegir una vacuna para prevenir problemas reproductivos se deben tener en cuenta estos puntos muy importantes: • La vacuna debe ser eficaz: debe generar una inmunidad protectiva y duradera. • La vacuna debe ser segura: no debe alterar el estado normal del animal ni debe generar reacción en el punto de inyección. • La vacuna debe contener los antígenos presentes en el medio local: las cepas de bacterias y virus pueden variar de una región a otra. • Es recomendable que la misma vacuna proteja contra la mayor cantidad de enfermedades presentes en un establecimiento: facilita el manejo de los animales y evita estrés innecesario. • Elegir productos con respaldo técnico reconocido. A todo esto debemos sumarle la necesidad de asesoramiento técnico y un correcto diagnóstico de las enfermedades presentes en un establecimiento para diseñar un programa sanitario de prevención y control exitoso. Ficha técnica Descripción: Vacuna inactivada para la prevención de Rinotraqueítis Infecciosa Bovina, Diarrea Viral Bovina, Leptospirosis y Campilobacteriosis en bovinos. LECHUZA ROJA 5 na (IBR), Diarrea Viral Bovina (DVB), Leptospirosis y Campilobacteriosis (Vibriosis) en bovinos. Contiene Selenio como mejorador de la respuesta inmune. Vía de Administración: SUBCUTÁNEA Dosis: 5 mL por animal. En los animales primovacunados revacunar entre los 2130 días de la primera dosis. Revacunar anualmente. Se puede aplicar en hembras gestantes. En toros la administración de doble dosis de Bovisan Total Se con revacunación ayuda en el control de la infección. Indicaciones: Presentación: Para la prevención de la Rinotraqueítis Infecciosa Bovi- Envase de 100 mL (20 dosis) y de 250 mL (50 dosis). 6 LECHUZA ROJA Noviembre de 2013 Leptospirosis en bovinos ¿Qué son las leptospiras y qué enfermedad provocan? Las leptospiras son bacterias con forma de espiral que pueden ser patógenas (tienen el potencial de causar la enfermedad en animales y humanos) o saprofitas (de vida libre y que generalmente no causan enfermedad). Para distinguir las leptospiras patógenas la unidad básica de clasificación es el serovar, que se define sobre la base de similitudes y diferencias antigénicas. Cada serovar tiene una conformación antigénica característica. Se han descrito alrededor de 200 serovares patógenos, los que han sido agrupados en 25 serogrupos. Los animales pueden infectarse por un solo serovar o en forma combinada por varios serovares. La leptospirosis es la zoonosis bacteriana de mayor distribución mundial y puede afectar a todos los mamíferos. En bovinos es una enfermedad infecciosa de alta morbilidad y baja mortalidad. Los problemas clínico-patológicos que provoca la leptospirosis en bovinos son diversos: abortos a término en vacas (leptospirosis crónica), infertilidad en vacas de cría y síndrome hemolítico e icteroanémico en terneros neonatos y al destete (Dutra, 2013a). Leptospirosis en Uruguay En Uruguay, según un estudio publicado por INIA en el 2005, la proporción de establecimientos de cría positivos a Leptospira a nivel nacional es del 71,2% y la seroprevalencia en bovinos para carne es de 38,5%. Además de los serovares Icterohaemorrhagiae, Wolffi, Canicola, Gryppotyphosa, Hardjo, Pomona y Tarassovii, en el año 2005, la Dra. Blanca Herrera en DILAVE, identificó la presencia en Uruguay de Leptospira borgpetersenii serovar Hardjo bovis. Esta se diferencia genotípicamente del serovar conocido simplemente como hardjo (Leptospira interrogans serovar Hardjo prajitno). Leptospira Foto 1 En ese año se analizaron sueros de animales de 62 establecimientos, en 48 de ellos el serovar predominante fue Hardjo bovis. Hardjo bovis es hoy la serovariedad más prevalente en bovinos junto con el serovar Pomona (Dutra, 2013b). En la zona este de Uruguay (especialmente zonas bajas) se considera una enfermedad endémica-epidémica, es decir que siempre hay casos y cada cierto tiempo y por determinadas circunstancias ocurren epidemias de la enfermedad. Presenta un patrón estacional otoño-invierno muy marcado (Archivo vet año 1 nº 2, año 2 nº 1). ¿Cómo se diagnostica un animal infectado por leptospira? El diagnóstico debe basarse en la correcta combinación de la historia clínica del rodeo, la ubicación de los animales y los resultados del laboratorio. El diagnóstico definitivo es el aislamiento de las leptospiras del feto y la vaca abortada aunque esto último es muy difícil de realizar. La prueba de Aglutinación Microscópica (MAT: Micro Aglutination Test) es la prueba serológica estándar para el diagnóstico de leptospirosis (OIE, 2008). La interpretación de los resultados serológicos es fundamental para llegar a un diagnóstico. Los aspectos a considerar son: títulos de anticuerpos y su persistencia, serovares presentes y síntomas reproductivos de los animales muestreados. La prueba de MAT no permite diferenciar anticuerpos vacunales de los provocados por la infección, pero los animales vacunados en general presentan títulos al MAT bajos a moderados para varios serovares. Comúnmente dichos títulos tienden a desaparecer en forma rápida (Herrera, 2006). ¿Cómo se previene la enfermedad? La vacunación es la práctica más recomendada para la prevención de la enfermedad. La respuesta inmunitaria proporcionada por las bacterinas es específica para cada serovar de leptospira y la protección dependerá de la utilización de vacunas que contengan los serovares predominantes de la región. Por lo tanto, solo la prevención con una vacuna que contenga Hardjo bovis en su formulación puede prevenir los abortos causados por ese serovar (Herrera, 2006). Laboratorios Santa Elena hace historia en la prevención de esta enfermedad. Acompañando los diagnósticos realizados en Uruguay y la región se actualizaron las composiciones de las vacunas a través de los años; desde una primera vacuna Lepto 3 con los serovares Pomona, Wolffi e Icterohaemorrhagiae; luego Lepto 6 con el agregado de los serovares Grypotyphosa, Tarassovi y Canicola; posteriormente Lepto 7 con la incorporación de la serovariedad de Hardjo prajitno llegando posteriormente a Bovisan Lepto 8 y Bovisan Total Se con la incorporación de Hardjo bovis. (Foto 1) Cuadro 1 Vacunas evaluadas % protección (serovar pomona) Título MAT (previo a desafío) Vacuna 1 90 NR Vacuna 2 80 NR Vacuna 3 100 NR Prueba de potencia para vacunas contra leptospira en cobayos comparada con títulos de anticuerpos obtenidos por MAT. NR: no reactivo. Noviembre de 2013 Bovisan Total Se presenta en su formulación 8 cepas de leptospiras: Leptospira interrogans serovares Icterohaemorrhagiae, Pomona, Canicola, Wolffi, Hardjo prajitno, Tarassovi y Grippotyphosa incluyendo Leptospira borgpetersenii serovar Hardjo bovis. ¿Cómo sabemos si una vacuna contra leptospiras es eficaz? Los anticuerpos IgG generados por la vacunación se ponen en evidencia mediante ensayos de seroprotección en hámsteres desafiados con altas dosis de leptospiras vivas (prueba de potencia para vacunas contra leptospiras recomendada por OIE). Actualmente Laboratorios Santa Elena está incorporando al control de vacunas con leptospiras la prueba de Inhibición del crecimiento (IC). Esta prueba in vitro evalúa los niveles de anticuerpos neutralizantes protectores presentes en el suero sanguíneo de animales vacunados en medios de cultivo (Acha y Szyfres, 2003; Tabata, 2002). El uso de la prueba de microaglutinación (MAT) como indicador de eficacia de vacuna no ha sido aceptado por los organismos internacionales. No se ha demostrado correlación entre los títulos de anticuerpos y la protección conferida por una vacuna en pruebas de desafío referenciadas. El Departamento Técnico de Laboratorios Santa Elena ha confirmado que animales vacunados que sobrevivieron al desafío con cepas virulentas de leptospira tenían títulos negativos al MAT, mientras que murieron el 100% de los animales testigos no vacunados (cuadro 1). Las vacunas de Laboratorios Santa Elena contra leptospirosis son evaluadas con respecto a su potencia de acuerdo a la metodología recomendada internacionalmente, con pruebas que incluyen la vacunación y posterior descarga de cepas vivas en animales de laboratorio (hámsteres). Asimismo se evalúa la inmunogenicidad en base a pruebas de inhibición de crecimiento (IC) en bovinos vacunados. LECHUZA ROJA 7 Jornada Científica: “Leptospirosis Bovina” En el mes de mayo se realizaron las Jornadas Científicas “Leptospirosis Bovina” organizadas por Laboratorios Santa Elena y que contaron con la participación de importantes técnicos especialistas en la enfermedad. La Leptospirosis es una enfermedad de tal trascendencia clínica y económica que ameritaba la realización de un evento dedicado en exclusividad a analizarla. Se desarrolló en el Hotel de Prado y contó con la presencia como disertantes de los Dres.Blanca Herrera (ex Jefe del Servicio de Leptospirosis del DILAVE), Fernando Dutra (DILAVE Treinta y Tres), Martín Breijo (Unidad de modelos y experimentación Facultad de Medicina UDELAR), Milton Cattaneo (Ciencias microbiológicas Facultad de Veterinaria), Alejandro Buschiazzo (Instituto Pasteur) y Raúl Casas Olascoaga (Academia Nacional de Veterinaria). En la mesa redonda final participaron también la Dra. Gabriela Willat (Minis- terio de Salud Pública) y el Dr. Gustavo Decuadro. La organización científica estuvo a cargo del Departamento de Investigación y Desarrollo que dirige el Lic. Eduardo Reolon. En el presente número de Lechuza Roja damos un destaque especial a esta importante enfermedad y les traemos algunas de las presentaciones realizadas en la jornada, que ampliaremos en el próximo número. Dres.Blanca Herrera (ex Jefe del Servicio de Leptospirosis del DILAVE) y Raúl Casas Olascoaga (Academia Nacional de Veterinaria). Lic. Eduardo Reolon (Gerente del Departamento de Investigación y Desarrollo). Dr. Milton Cattaneo (Ciencias microbiológicas Facultad de Veterinaria). 8 LECHUZA ROJA Noviembre de 2013 Jornada Científica “Leptospirosis Bovina” Dra. Blanca Herrera: “No se olviden de la Leptospira” La Leptospirosis, enfermedad febril producida por la bacteria Leptospira interrogans, afecta a humanos y un amplio rango de animales, incluyendo a mamíferos, aves, anfibios, y reptiles. Los principales síntomas en la mayoría de los casos en humanos son: fiebre, dolores de cabeza, dolores musculares, articulares y óseos, coloración amarillenta de la piel y mucosas, insuficiencia renal, hemorragias y afectación de las meninges. Se trasmite de animales a los seres humanos, por lo que se clasifica dentro del grupo de las zoonosis, y varía desde una afección hasta una enfermedad mortal. Las infecciones humanas aparecen por contacto directo con orina o tejidos de animales infectados, o bien de forma indirecta, por contacto con agua o tierra contaminadas. La bacteria entra al organismo por la piel o mucosas, se dispersa por la sangre atacando diversos órganos y se elimina por la orina, siendo el contacto con ésta un medio de transmisión. Por ser una enfermedad muy importante, La Leptospirosis merecía una jornada y el Laboratorio Santa Elena lo hizo posible el 10 de mayo en el Hotel del Prado. Seis especialistas en el tema expusieron sus conocimientos en sus diferentes charlas, y la jornada terminó con una reflexión final y una mesa redonda. La Dra. Blanca Herrera fue la responsable de abrir el ciclo con su discurso para introducirnos en la Leptospirosis. El mismo comenzó por una breve historia de la Leptospirosis en el Uruguay, desde que se hizo el primer aislamiento por el Dr. Casas en 1959, y además hizo hincapié en que la Facultad de Veterinaria fue la pionera en estudiar dicha enfermedad. Gracias a que el Dr. Casas consiguió una beca para la Dra. Mercedes Agorio, para hacer un adiestramiento en Francia, en CEPANZOO, el Doctor Per- domo fundó el Laboratorio de Leptospirosis apoyado por el Dr. Casas y el Dr. Cachione y el mismo quedó a cargo de la Doctora Mercedes Agorio. Antes no existía dónde estudiar la Leptospirosis, y el Dr. Leaniz, ya en 1965, había realizado un muestreo de 950 sueros y había encontrado una proporción de seros positivos del 21%, es decir que era necesario insistir en que la Leptospirosis era una problemática que debía ser estudiada en nuestro país. El laboratorio DILAVE “Miguel C. Rubino” hizo un diagnóstico ininterrumpido de los sueros animales, desde 1970 hasta la actualidad y un diagnóstico en los humanos hasta el 2005, cuando las autoridades de la DILAVE consideraron que no era de valor hacer el diagnóstico humano. Actualmente, gracias a un proyecto creado por el Dr. Schelotto, la Leptospira se sigue estudiando en el Instituto de Higiene. Luego de esta introducción histórica, la Dra. Herrera pasó a explicar qué es la Leptospirosis y dijo que a la hora de hablar de la misma “tenemos que diferenciar en ésta a los huéspedes accidentales de los de mantenimiento”. Los huéspedes de mantenimiento son aquellos que aseguran la perpetuación de la infección, mientras que cuando hablamos de huéspedes accidentales nos estamos refiriendo a una especie animal que se infecta por la variedad de la enfermedad que elimina otra especie. “Por ejemplo: Los caninos tienen una variedad de mantenimiento, la canícola, que no da cua- dros agudos sino que da cuadros terminales. En cambio si se infecta por una variedad de otra especie como puede ser la icterohaemorrhagiae de las ratas, ahí sí hace los cuadros agudos y nace la Leptospirosis canina con síndrome ictérico”. Y agregó: “Entonces el huésped accidental hace cuadros agudos y por ejemplo, la vaca se infecta con una Pomona, la Pomona no es propia de la especie, entonces va a hacer un cuadro importante y detectable pero no elimina por mucho tiempo la Leptospira, en cambio los huéspedes de mantenimiento en el caso del bovino que tenemos la Leptospirahardjo elimina 2 y 3 años y los síntomas son más apagados”. (Cuadro 1) La Dra. Herrera consiguió que la OPS (Organización Panamericana de la Salud) creara una Comisión Honoraria de Leptospirosis que logró trabajos muy interesantes. Algunos de sus logros más importantes fueron: desglosar la Leptospirosis de la lista de zoonosis que era de denuncia obligatoria para los humanos, hacer la primera guía de control y manejo de Leptospirosis animal y humanos, y lograr hacer un estudio de bovinos y humanos de gran extensión que abarcó dos escenarios: Colonia y San José. La Dra. Herrera manifestó que tradicionalmente los laboratorios de salud pública y los laboratorios animales han trabajado de manera aislada y considera que se debería trabajar en equipos conformados por veterinarios, médicos y biólogos, porque los trabajos individuales no sirven. Cerró la charla promoviendo la creación de una Red de Laboratorios de Zoonosis para lograr mejores resultados. Cuadro 1 Huésped Accidental Serovar (variedad) H. de mantenimiento Hombre - Felinos y Suinos Canícola Caninos Hombre - Caninos y Felinos Icterohaemorrhagiae Ratas Hombre - Caninos, Felinos Pomona Suinos ,bovinos Hombre - Caninos ,Felinos Grippotyphosa An. Silvestres Hombre - Otras especies Hardjo Bovinos Hombre - Caninos Bratislava Suinos y equinos 9 LECHUZA ROJA Noviembre de 2013 Jornada Científica “Leptospirosis Bovina” Dr. Fernando Dutra: “La Leptospirosis tiene claramente un patrón endémico-epidémico” El Jefe del Laboratorio Regional Este DILAVE Miguel C. Rubino ubicado en Treinta y Tres, tituló su charla “Leptospirosis en bovinos en la región este”. En la misma se habló acerca de la importancia de dicha enfermedad y se intentó hacer una evaluación económica de costo-beneficio sobre si la vacunación es rentable tanto para vacas como para terneros. El Dr. Dutra mencionó que los problemas clínicos patológicos que presenta la enfermedad son: abortos,insuficiencia renal, disminución de la masa de glóbulos rojos y de plaquetas, defectos de coagulación e infertilidad. Y los síntomas son fiebre, depresión, muestran una marcada anemia y la orina es color sangre. El laboratorio donde trabaja el Dr. Fernando Dutra está en Treinta y Tres pero tiene una zona de influencia bastante más amplia, gracias a que reciben información de más de 300 veterinarios que remiten o han remitido muestras al laboratorio. Los médicos veterinarios envían muestras y se procesan en el laboratorio.De este modo se ha logrado obtener datos desde 1988 hasta la fecha. Pero si bien los datos que el Dr. Dutra maneja son de la zona este del país, se podría generalizar esta información al resto del territorio nacional ya que no hay grandes diferencias en la geografía uruguaya. En el Laboratorio Regional Este DILAVE consideran que la Leptospirosis es una enfermedad endémico-epidémica, lo que significa que es una enfermedad que se mantiene a lo largo del tiempo en un nivel estable, incluyendo variaciones estacionales pero a su vez afecta a un número de individuos superior al esperado en algunas épocas específicas del año (otoño y primavera). Es decir que siempre está ocurriendo y cada tanto, por determinadas circunstancias,ocurren epidemias de la enfermedad. El Dr. Dutra mantiene que a la hora de evaluar si es conve- Cuadro 1 Beneficio neto versus Abortos Hacer nada Vacunar Costo Riesgo Costo Riesgo -11628 0.32 -5677 0.11 0 0.68 -1608 0.89 Nada beneficio -3720 riesgo -11628 Tratar beneficio -2055 riesgo -5677 Si No Rodeo zona baja: 1200 vacas cría y 85% preñez. Se asume: 2 dosis vacuna/año (U$S 0.65 c/u), 65% efectividad de vacuna, 32% de probabilidad de brote sin vacuna (7 picos en 22 años) y 11% con vacuna, U$S 300 ternero al destete, 3.8% de abortos sin vacuna y 1.33% con vacuna. niente o no la vacunación son varios los factores que hay que tener en cuenta. Uno de ellos es que, como la Leptospira habita dentro de los túbulos renales, es muy difícil combatir la enfermedad debido a que al interior de los túbulos no llegan ni los anticuerpos ni las células T porque es un hábitat aislado. De ahí la importancia de la vacuna. Siguiendo con la evaluación de si es o no conveniente vacunar, el Dr. Dutra también tiene en cuenta de qué animal se está hablando. Esto se debe a que hay más cantidad de problemas clínicos en vacas que en terneros. A su vez, los brotes de las dos especies ocurren en momentos del año diferentes. En las vacas el pico se da en agosto, mientras que los terneros tienen un pico en otoño y otro pico en primavera. Este dato es muy importante para la vacuna, debido a que para evitar los abortos vacunos hay que vacunar en otoño (por marzo, abril, mayo), antes que la vaca se infecte con la Leptospira del ambiente. A esta altura del año se debe dar una dosis de la vacuna, pero como ninguna vacuna dura más de 4 meses de eficacia, la segunda dosis debería darse en primavera para cubrir todos los problemas supuestos de infertilidad que pueda tener la vaca. Vacunar cuando ya están ocurriendo los abortos no sirve para nada. Para realizar un cálculo de si la vacuna es o no efectiva desde el punto de vista económico en las vacas, el Dr. Dutra comparó a un productor que no hace nada con un productor que vacuna con este plan que él esbozó, siendo el precio de la vacuna U$S 0.66. El Dr. aclaró que al principio todos pierden plata, el que vacuna y el que no. Es que nunca se gana plata con ninguna enfermedad, pero si se vacuna se podrá perder menos, y si no se vacuna se pierde plata y se aumenta el riesgo. (Cuadro 1) Para realizar el mismo cálculo en terneros, El Dr. Dutra tomó 3 opciones: no hacer nada, vacunarlos o tratarlos. Tratar a los terneros implica que el productor o el veterinario aprenda a reconocer la enfermedad y comience a tratar a todos los terneros con antibióticos, con ampicilina estrepto 25 mg por kilo que es la dosis indicada para la Leptospira. En este caso, si comparamos económicamente que es más conveniente, el que pierde menos plata es el que espera a que aparezca el brote y lo controla con antibióticos. Vacunando a los terneros se disminuye el riesgo de ocurrencia de la enfermedad pero no se gana plata. Pero si el productor lo que realmente desea es minimizar el riesgo y no le va a importa perder un poco más de plata, entonces la recomendación es la vacuna. (Cuadro 2) Cuadro 2 Beneficio neto versus Muerte Terneros Nada Si No Vacunar Tratar Costo Riesgo Costo Riesgo Costo Riesgo -9900 0.18 -1300 0.06 1800 0.18 0 0.82 -1300 0.94 0 0.82 9900 Nada beneficio neto -1782 riesgo Vacunar beneficio neto -1300 riesgo -1300 Tratar beneficio neto -324 riesgo -1800 Mismo rodeo, 1000 terneros al destete. Se asume: 2 dosis vacuna al destete (U$S 1.3), DHE 25mgKg (U$S 1.8), 65% efectividad vacuna, 18% riesgo de brote. Ternero: U$S 300. Es decir que la conclusión de la evaluación económica del Dr. Dutra es que la vacuna y el costo-beneficio de la vacuna son altamente favorables en vacas. 10 LECHUZA ROJA Noviembre de 2013 Jornada Científica “Leptospirosis Bovina” Dr. Martín Breijo: “Actualmente los test serológicos no están validados como para sustituir las pruebas de potencia de desafío” El Dr. Martín Breijo, Director de la Unidad de Reactivos y Biomodelos de Experimentación de la Facultad de Medicina, dio una charla sobre las consideraciones generales para el desarrollo de las vacunas contra la Leptospirosis. Para el Dr. Breijo la vacuna tiene que lograr mostrar al Sistema Inmune los antígenos (sustancia que desencadena la for- mación de anticuerpos) capaces de lograr una respuesta protectora. El problema es que al hablar de la vacunación contra la Leptospirosis, una de las cosas que están claras es que la protección está restringida sólo a la variedad o serovar al que está expuesto el animal. Así, cada vacuna tiene que tener los serovares específicos que están actuando en cada caso. Partiendo de esta premisa, el Dr. Breijo se pregunta “¿cómo armamos un producto? y ¿cómo podemos controlarlo?”. Actualmente la prueba de vacunación y desafío es la metodología validada para la evaluación de potencia de vacunas de Leptospira. Básicamente el modelo que se usa consiste en inmunizar al animal, se esperan 15 días y se le hace un desafío intraperitoneal. Luego durante 28 días se evalúa muerte y lesiones histopatológicas, se intenta re aislar el agente y si los animales sobreviven es porque la vacuna protege. Pero claramente este modelo presenta varias desventajas porque, primero, la Leptospirosis es una zoonosis, por lo tanto los investigadores corren riesgo a contagiarse, por lo que las pruebas de desafío en gran escala no se pueden hacer en cualquier infraestructura. Segundo, implica el uso de animales para los test, cosa que se está intentando cada vez más dejar de lado. Según el Dr. Breijo, los test serológicos son la estrategia del futuro para tratar de mejorar los sistemas de evaluación de la vacuna. El problema es que actualmente los test serológicos no están validados como para sustituir las pruebas de potencia de desafío. “En el Uruguay no existe un Sistema Nacional de Evaluación de Vacunas, por lo tanto esto tiene un impacto negativo sobre el funcionamiento del sistema”, manifestó el Dr. Breijo, ya que considera que esto pone en riesgo el estado sanitario de los animales, también pone en riesgo la salud de la población y al no haber un control de calidad, a la hora de elegir la vacuna se empiezan a priorizar otros elementos como el precio, la presentación, etc. Lo que el Dr. Breijo recomienda es crear un Sistema Nacional de Control de Vacunas. Y afirmó que él cree en un Sistema Nacional pero que éste no puede ser sostenido por una sola pata, sino que tiene que estar vinculado al Ministerio de Ganadería Agricultura y Pesca, a la Academia Uruguaya y a las Industrias Nacionales. Para el Dr. Martín Breijo con esas tres instituciones vinculadas, sí es viable hacer un Sistema Nacional de Control de Vacunas, que no solamente se encargue de controlar el producto, sino también debe tener la capacidad de diagnosticar lo que está pasando, lograr aislar patógenos, lograr madurar ensayos y lograr desarrollar pruebas de potencia. Noviembre de 2013 LECHUZA ROJA 11 Jornada Científica “Leptospirosis Bovina” Dr. Casas Olascoaga: “Diagnósticos clínicos y serológicos deberían ser complementados con el aislamiento y caracterización” El Dr. Raúl Casas Olascoaga cerró la jornada de charlas haciendo una reflexión sobre los aspectos etiológicos, ecológicos y epidemiológicos de la Leptospirosis. Explicó que la leptospirosis es una enfermedad primariamente de los animales pero que en realidad es una zoonosis, es decir que es transmisible de los animales a los seres humanos. A su vez, acotó que la distribución geográfica de la Leptospirosises de gran amplitud, que incluso hay variedades que se presentan en todos los continentes del mundo, mientras que otras variedades se presentan en determinadas regiones, según su ecología y reservorios silvestres y el vínculo existente con los seres humanos y especies domésticas. La leptospirosis, predomina en los países tropicales y subtropicales donde ocurren precipitaciones pluviales abundantes y el suelo es neutro o alcalino, factores ecológicos que favorecen la sobrevivencia de las leptospiras. Las zonas o regiones bajas con acumulación de agua y persistencia de alta humedad favorecen la sobrevida de las leptospiras, las cuales, son excretadas por diferentes vías: mayoritariamente por la orina de los animales reservorios y de los animales infectados o por la leche de hembras infectadas en lactación. Según el Dr. Casas, es posible controlar los brotes y casos pero no sería posible erradicarla debido a la multiplicidad de variedades de patógenos y a su versatilidad para mantenerse y sobrevivir en multiplicidad de reservorios animales. En los seres humanos se presenta en casos esporádicos y en brotes epidémicos. En general, la infección se produce por exposición a aguas, alimentos o aerosoles de suelos contaminados con orina de animales infectados y animales reservorios. Hay varios grupos de trabajadores que están especialmente expuestos a un mayor riesgo, por ejemplo: en arrozales, cañaverales, mineros, en alcantarillados, en mataderos y frigoríficos, trabajadores rurales que conviven en forma estrecha con diversas especies animales o ingieren productos animales no tratados. También son más propensos a contraer la enfermedad las poblaciones de gente y animales que viven en asentamientos marginales y en proximidad a los basureros, en las márgenes de ríos y arroyos donde proliferan ratas y otros roedores. También el personal de laboratorio que trabaja con cepas de leptospiras patógenas suelen estar en riesgo si no se aplican las normas estrictas de higiene y bioseguridad. La infección se transmite por vía directa o indirecta, por abrasiones cutáneas, vía respiratoria u oral. El Dr. Casas agregó que hay muchos animales silvestres, entre ellos los roedores, que están adaptados y son inmunes a las leptospiras y constituyen reservorios que no muestran signos clínicos, no presentan lesiones y son excretores urinarios de prolongada duración. Además, explicó que cada especie animal puede ser huésped de uno o más “serovares” o variedad de Leptospirosis y explicó algunos de ellos: El serogrupo Pomona tiene el Serovarpomona cuyos huéspedes principales son el bovino y el cerdo, pero puede infectar a otras especies animales y a la especie humana. El reservorio principal de Leptospiracanícola es el perro pero puede causar infección en porcinos, bovinos, zorros, felinos y ocasionalmente puede afectar a los seres humanos. Icterohaemorrhagiae tiene como reservorio principal las ratas, que mantienen un equilibrio biológico con el agente infeccioso y diseminan al ambiente enorme cantidad de bacterias por largo tiempo. Causa infección y enfermedad en el hombre, en los caninos, porcinos, equinos y bovinos (terneros) ocasionalmente en otros animales domésticos como los felinos. En el Serogrupo Sejroe se encuentran los serovares sejroe, hardjo y wolffi. Hardjo tiene dos varieda- des genotípicas importantes, Hardjobovis y Hardjoprajitno, que tienen como reservorio principal al bovino, causando una infección muchas veces inaparente pero de significación por estar involucrado en problemas de infertilidad, aborto y retención de placenta. Para cerrar la charla, Casas Olascoaga recomendó que en nuestro país se hicieran diagnósticos clínicos y serológicos, complementados con el aislamiento y caracterización de las cepas de las variedades que actúan en las infecciones de las especies de animales domésticos y en los reservorios de animales silvestres. 12 LECHUZA ROJA Noviembre de 2013 Selenio El Selenio (Se) es un elemento que se encuentra en forma constante pero en pequeñas cantidades en los tejidos animales. Investigaciones de tipo bioquímico ubican al Selenio como uno de los micronutrientes esenciales para los animales. Se ha documentado que la deficiencia de Selenio conlleva a una gran variedad de problemas médicos, que pueden variar desde una necrosis hepática hasta una reducción del sistema inmunocompetente. En vacas se ha relacionado la deficiencia de Selenio con la retención de placenta. Con respecto al sistema inmunitario KiremidjianSchumache et al. (1994) des- cribieron los beneficios de suplementación con Selenio: • Mayor resistencia a infecciones microbianas y virales • Mejora de la función de neutrófilos • Mayor producción de anticuerpos • Mayor proliferación de linfocitos T y B en respuesta a antígenos Bovisan Total Se contiene Selenio como un ingrediente clave en su complejo adyuvante. Pruebas de campo realizadas recientemente en Brasil por técnicos de la Universidad de San Pablo con la vacuna Bovisan Total Se, ha confirmado que la dosis de Selenio cumple la doble función de aporte seguro del mineral y mejora la respuesta inmune en los bovinos. Se utilizaron 32 bovinos divididos en dos grupos de 16. Un grupo recibió Bovisan Total Se y el otro una formulación especial sin selenio (grupo control). Ambos se revacunaron a los 21 días. Cada grupo fue a su vez subdividido en dos grupos de 8, recibiendo un grupo suplemento proteico con selenio y el otro suplemente proteico sin selenio. Se colectó sangre para análisis de Selenio y niveles de IgM e IgG de todos los animales desde el día cero hasta el día 120 pos vacunación. Los animales que fueron vacunados con Bovisan Total Se siempre mantuvieron un Gráfica 1 Influencia de Selenio de Bovisan Total Se sobre el nivel sérico de Selenio Gráfica 2 Aumentos porcentuales de Ig M en relación al tiempo cero para el grupo que recibió el Selenio en la vacuna Bovisan Total Se y para el grupo control (vacuna sin Selenio). nivel sérico de Selenio por encima de los niveles del grupo control hasta el día 63, (Gráfica 1). Adicionalmente es bueno considerar que el universo de aplicación de Bovisan Total Se, puede incluir zonas con presencia de Selenio que determinen ingestas superiores a las recomendadas de este mineral. Para este caso se pudo com- probar que la vacunación y revacunación de Bovisan Total Se, en animales suplementados con Selenio en la ración no generó ningún tipo de toxicidad ni reacción adversa. En la gráfica 2 se observa que el grupo que recibió Bovisan Total Se presentó un mayor aumento porcentual de IgM que el grupo que recibió la vacuna sin Selenio. LECHUZA ROJA Noviembre de 2013 Aislamiento de Clostridium perfringens tipo A en un caso de yeyunitis hemorrágica en bovino por Cattáneo, M.1, Dutra, F.2, Quinteros, C.2, Romero, A.2,Bermúdez, J.1 Resumen Haemorrhagic Bowel Syndrome (HBS) o Yeyunitis Hemorrágica (YH) es una enfermedad de los bovinos adultos que produce una enteritis aguda necrótica y hemorrágica. Se propone al Clostridium perfringens tipo A como posible agente etiológico.El objetivo de este trabajo es comunicar el aislamiento de Clostridium perfringens tipo A en un caso de yeyunitis hemorrágica en un bovino lechero.El animal afectadopresentaba dolor abdominal, depresión y caída brusca de la producción de46 a10 litros diarios. No responde al tratamiento y muere a las 24 horas. A la necropsia el intestino delgado se presentabahemorrágico con coágulos de sangre de color casi negro y restos necróticos de mucosa en su interior. Del contenido yeyunal se aisló en cultivo puroy seconfirmó por PCR el Clostridium perfringens tipo A, sugiriendo una relación causal con la enfermedad. Introducción Haemorrhagic Bowel Syndrome (HBS) o Yeyunitis hemorrágica (YH) es una enfermedad esporádica de los bovinos adultos caracterizada por una enteritis aguda, necrótica y hemorrágica, con la formación de coágulos de sangre intraluminal, preferentemente en yeyuno (Dennison, 2002; 2005). Esta enfermedad fue diagnosticada en el año 1991 en Estados Unidos en bovinos lecheros y se considera emergente en muchos países. Luego otras enfermedades con hallazgos similares fueron descriptas y definidas como HBS o YH (Ceci, 2006). Se relaciona a Clostridium perfringens tipo A (CPA) y Clostridium perfringens tipo A con el gen de la toxina beta2 (ß2) como posibles agentes etiológicos del HBS (Ceci, 2006). La toxina alfa, necrótica y letal, es considerada el principal factor patógeno de la infección por el CPA (Niilo, 1980; Costa, 2004). Actualmente el gen de la toxina ß2 se encuentra en todos los tipos de Foto 2 Enteritis necro-hemorrágica (H) con trombosis venosa (T) y gran cantidad de bacilos (flechas) (Dr. Fernando Dutra, 2012) Clostridium perfringens (C. perfringens) (A, B, C, D y E). Esta toxina tiene efectos citotoxicos y es letal para ratones (Gilbert, 1997).Hay autores que describen la asociación entre C. perfringens tipo A ß2 positivos con enfermedades intestinales en caballos, suinos, ovinos y caprinos (Songer, 1996; Ceci, 2006). Por otro lado se considera a CPA como parte de la flora normal intestinal y por esto es cuestionable su participación como agente etiológico de las enfermedades gastrointestinales (Songer, 1996). Objetivo El objetivo de esta publicación es comunicar el aislamiento de Clostridium perfringens tipo A en un caso de yeyunitis hemorrágica en un bovino lechero. Caso clínico y patología El caso ocurrió en un predio lechero pequeño de la 12ª sección de Cerro Largo. Se vió afectada 1 de 7 vacas raza Holando, de 4ª lactancia, de alta producción. Las vacas pastoreaban una pradera de 2º año de trébol rojo, lotus y raigrás, y se suplementaban con 7 kg/d de una ración de alta energía. La vaca afectada tenía una producción de 46 L/d y un comportamiento normal. Ocho días después de parida deja de comer, presenta dolor abdominal, depresión y la producción baja bruscamente de 46 a 10 litros diarios. El animal cae en decúbito esternal, muestra atonía ruminal, deshidratación, disentería, temperatura de 37 ºC y mucosas anémicas; no responde al tratamiento y muere a las 24 horas. En la necropsia se encontró hepatomegalia, riño- nes pálidos, sufusiones en serosas, derrames serosanguinolentos en cavidades y los intestinos congestivos y hemorrágicos. A nivel del intestino delgado, varias asas del yeyuno estaban distendidas y repletas de coágulos de sangre de color casi negro y restos necróticos de mucosa en su interior. (Foto 1) El estudio histológico realizado en el DILAVE Laboratorio Regional Este mostró una severa enteritis necrótico-hemorrágica caracterizada por destrucción completa de la mucosa y la lámina propia, numerosas venas trombosadas en la submucosa y gran cantidad de bacilos intralesionales, lesiones todas compatibles con una enterotoxemia clostridial. (Foto 2) Diagnóstico bacteriológico Muestras de contenido yeyunal fueron enviadas al Laboratorio del Departamento de Ciencias Microbiológicas de la Facultad de Veterinaria para el estudio bacteriológico. En primera instancia se realizó un frotis directo y tinción de Gram, y luego se realizaron estudios para detectar Escherichia coli , Salmonella spp y C. perfringens. Para aislamiento de Salmonella spp. se sembró en caldo tetrationato y se subcultivó en medio Salmonella-Shigella y para aislar E. coli en medio Mac Conkey. Para aislar C. perfringens se sembró en placas de agar sangre a 37 ºC en forma anaerobia y medio Cooked Meat (CM). Las colonias hemolíticas crecidas en el agar sangre se sembraron en CM y a las 24 horas el crecimiento obtenido se centrifugó y se filtró por 0.2μ. (Foto 3). Con este filtrado se inocularon ratones blancos y se rea- Foto 3 Placa agar sangre con aislamiento (Dr. Milton Cattáneo, 2012) lizó la técnica de seroneutralización con antitoxinas de referencia alfa, beta y épsilon de C. perfringens (WHO). Las colonias aisladas se estudiaron genéticamente utilizando la técnica de PCR (Polymerase Chain Reaction) para identificar los genes para las toxinas alfa, beta, ß2 y épsilon. En la muestra recibida solo se aisló e identificó C. perfringens tipo A siendo negativo para Salmonella spp. y Escherichia coli. En la tinción de Gram del contenido intestinal se observaron únicamente bacilos cortos Gram positivos en forma abundante. Se identificó en las placas de agar sangre anaerobia un solo tipo de colonia con doble hemólisis. Los ratones inoculados murieron con hemorragias por orificios naturales y en cavidades serosas. La técnica de seroneutralización resultó positivo para toxina alfa y negativa para toxina beta y épsilon. Por PCR se detectó la presencia del gen de la toxina alfa, siendo negativo para beta, ß2 y épsilon. Discusión y conclusión Los resultados epidemiológicos, clínicos, patológicos y de laboratorio son similares a los descriptos en casos de HBS lo que nos indicaría que el caso estudiado se trataría del mismo cuadro (Dennison, 2002; 2005; Ceci, 2006). Esta enfermedad ocurre en forma esporádica, es altamente letal y afecta principalmente vacas adultas de alta producción al comienzo de la lactación, como sucedió en este caso. Además se la asocia al consumo de alimentos con alto contenido de carbohidratos y proteínas y baja fibra (Ceci, 2006). Se propone al C. perfringens tipo A como agente 13 Foto 1 Necrosis hemorrágica de yeyuno (Dr. Fernando Dutra, 2012) etiológico y su asociación con la toxina ß2 en la gravedad de las lesiones (Dennison, 2002; 2005; Ceci, 2006), pero esto se discute debido a que este agente es un comensal normal del intestino (Songer, 1996). En nuestro trabajo se aisló C. perfringens tipo A ß2 negativo en estrecha relación con lesiones típicas de clostridiosis intestinal lo cual sugiere, pero no confirma, que la asociación no es espuria sino causal. Actualmente no se sabe si C. perfringens tipo A puede causar la enfermedad por si solo o si necesita de factores predisponentes (Ceci, 2006). Agradecimientos Al Dr. Gonzalo Macció por la remisión del caso y la información aportada. Referencias Ceci, L.; Paredies, M.; Sasanelli, D.; de Caprariis, F.; Guarda, M.T.; Carelli, G. (2006) Haemorrhagic Bowel Syndrome in Dairy Cattle: Possible Role of Clostridium perfringens Type A in the Disease Complex. J. Vet. Med. A. 53, 518-523. Costa, G.M.; Assis, R.A.; Lobato, F.C.F.; Abreu, V.L.V.; Santos, J.L.; Uzal, F.A. (2004) Diarréia em leitoes lactentes por Clostridium perfringens tipo A em granjas tecnificadas nos estados de Minas Gerais e Sao Paulo. Arq. Bras. Med. Vet. Zootec. V. 56, n.3. Pág.: 401- 404. Dennison, A.C.; Van Metre, D.C.; Callan, R.J.; Ellis, R.P. (2002) Hemorrhagicbowelsyndrome in dairycattle: 22 cases (1997-2000). JAVMA. Vol. 221, No. 5, 686-689. Dennison, A.C.; Van Metre, D.C.; Morley, P.S.; Callan, R.J.; Ellis, R.P. (2005) Comparison of the odds of isolation, genotypes, and in vivo production of major toxins by Clostridium perfringens obtained from the gastrointestinal tract of dairy cows with hemorrhagic bowel syndrome or left-displaced abomasum. JAVMA. Vol. 227, No. 1, 132-138. Niilo, L (1980) Clostridialperfringens in Animal Disease: a review of current knowledge. Can. Vet. J. 21: 141148. Songer, j.G. (1996) Clostridial enteric disease of domestic animals.Clinical Microbiology Reviews.Vol. 9, No 2, 216-234. WHO (World Health Organization), Central Veterinary Laboratory, Weybridge.UK. 1 2 Área de Bacteriología. Departamento de Ciencias Microbiológicas. Facultad de Veterinaria. UdelaR. Uruguay. [email protected] DILAVE Miguel C Rubino, Laboratorio Regional Este, Avelino Miranda 2045, Treinta y Tres, Uruguay. 14 LECHUZA ROJA Noviembre de 2013 Neumonía enzoótica asociado al virus respiratorio sincitial bovino (BRSV) en terneros en Uruguay por Rivero, R.1*; Sallis, E.S.V.2; Callero, J.L.3; Luzardo, S.3; Gianneechini, R.1; Matto, C.1; Adrien, M.L.4; Schild, A.L.3 Resumen Se describe un foco de neumonía asociado al virus respiratorio sincitial bovino (BRSV) ocurrido en Julio de 2012 en una propiedad donde se realizaba recría de terneros, en el Departamento de Flores. La morbilidad fue de 6,71% y la mortalidad 6,57%. Los principales síntomas clínicos fueron tos, disnea, taquipnea, descarga nasal y ocular, y fiebre. Se realizó la necropsia de dos animales que murieron por insuficiencia respiratoria. En ambos se destacaba pulmones con consolidación anteroventral, enfisema y edema caudo-dorsal. En la histopatología en pulmón se observó neumonía broncointersticial, bronquiolitis necrotizante y alveolitis exudativa con presencia de sincitios epiteliales. Cortes de pulmón, fijados en formol, fueron analizados por la técnica de inmunohistoquímica. Utilizando esta técnica se comprobó que hubo marcación positiva con el anticuerpo anti-BRSV en las células epiteliales bronquiolares y las células sincitiales de los dos terneros necropsiados, confirmando la presencia del virus en el cuadro de neumonía. Palabras clave: Virus respiratorio sincitial bovino, complejo respiratorio bovino, confinamiento. Introducción En Uruguay el crecimiento de la agricultura y la intensificación de la producción ganadera 1 Laboratorio Regional Noroeste DILAVE “Miguel C. Rubino”, MGAP. CC.57037, CP.60.000, Paysandú, Uruguay. 2 Laboratorio Regional de Diagnóstico, Facultad de Veterinaria, Universidad Federal de Pelotas, Brasil. 3 Medico Veterinario, Ejercicio Liberal, Uruguay. 4Departamento de Salud en los Sistemas Pecuarios. Facultad de Veterinaria, UdelaR, Paysandú. *Autor de correspondencia: [email protected]. 1 Comunicación Personal. Dr. Rodolfo Rivero, Laboratorio Regional Noroeste, DILAVE, Paysandú. 2 Comunicación personal. Dra. María Cristina Easton, Laboratorio Central, DILAVE, Montevideo. 3 Comunicación personal. Dr. Fernando Dutra, Laboratorio Regional Este, DILAVE, Treinta y Tres. y lechera han provocado un incremento en el número de animales en confinamiento, principalmente en la etapa de criarecria como en la terminación de bovinos para producción de carne. Conjuntamente, se ha registrado en los últimos años, un aumento en el diagnóstico de enfermedades respiratorias, siendo una de las patologías más comunes en el Litoral oeste y Este de nuestro País.2 En las enfermedades respiratorias de los terneros, también denominado complejo respiratorio bovino o “neumonía enzoótica”, participan varios agentes virales en asociación con bacterias y Chlamydia psitaci. El virus respiratorio sincitial bovino (BRSV) es el agente más importante, seguido del virus parainfluenza-3 (PI-3), herpesvirus bovino tipo 1 (BoHV-1), virus de la diarrea viral bovina (BVDV) y adenovirus tipo 3. Los agentes bacterianos más importantes que causan neumonía secundaria son: Mannheimia haemolytica, Pasteurella multocida, Streptococcus pneumoniae y Mycoplasma bovis (Driemeier & Moojen. 2007). El BRSV es un virus ARN, envuelto, no segmentado, de sentido negativo, que pertenece al género Pneumovirus de la familia Paramyxoviridae (Lamb & Parks 2007). Según Valarcher & Taylor (2007) en rodeos lecheros este virus puede ser responsable por más del 60% de las enfermedades respiratorias epizoóticas y hasta un 70% en rodeos de carne. La morbilidad es alta, de 60 a 80%, mientras que la mortalidad puede alcanzar el 20% (Valarcher & Taylor, 2007). La enfermedad se diagnostica más comúnmente en otoño e invierno, aunque puede ocurrir en verano (Stott y col. 1980). El virus se transmite por contacto directo o aerosoles y el periodo de incubación es entre 2 a 5 días (Valarcher & Taylor. 2007). El BRSV se distribuye a nivel mundial. En Brasil el virus fue detectado por primera vez en 1988 (Gonçalves y col. 1993), mientras que el cuadro clínicopatológico se describió en 1997 (Driemeier y col. 1997). En Uruguay, si bien la enfermedad no ha sido confirmada, mediante un estudio serológico utilizando la técnica de ELISA, Costa y col. (2000) obtuvieron un 95% de seroprevalencia positiva al BRSV en una población de 100 bovinos. durante 35 minutos a temperatura ambiente. Como cromógeno fue utilizado 3-3-diaminobencidina (DAB, SigmaAldrich, MO, USA). Los tejidos fueron coloreados con hematoxilina. Como control negativo fueron sometidos a la misma técnica cortes de pulmón de un animal sano. Resultados Figura 1 Figura 1: Ternero afectado por BRSV. El animal se encuentra en decúbito esternal, con cuello estirado, respiración a boca abierta (severa disnea) y sialorrea. Los Laboratorios Regionales Este y Noroeste, el Departamento de Patobiología del Laboratorio central de la División de Laboratorios Veterinarios “Miguel C. Rubino”, tienen en sus registros sospechas de brotes de BRSV en base a diagnósticos histopatológicos y presencia de células gigantes sincitiales, sin la comprobación de la presencia del agente viral. 3-4 El objetivo del presente trabajo es describir un cuadro de neumonía en terneros asociado a la presencia del BRSV basado en la epidemiología, hallazgos anatomo-patológicos y confirmación por la técnica de inmunohistoquímica. Materiales y métodos Obtención de datos epidemiológicos y toma de muestras El brote ocurrió en el mes de julio de 2012, en una propiedad donde se realizaba la suplementación alimenticia en corral de 730 terneros de entre 6 y 11 meses de edad, ubicada en la 6º seccional policial del Departamento de Flores. En dos visitas al predio se recabó información sobre las características del sistema productivo, de la alimentación, del manejo sanitario, así como información sobre el número de animales en riesgo, enfermos, y muertos como consecuencia de la enfermedad. Patología Se realizaron dos necropsias y fragmentos de los órganos fueron fijados en formol bufferado al 10%, embebidas en parafina, cortadas en secciones de 5 micras de espesor y teñidas con Hematoxilina y Eosina (HE). Aislamiento bacteriano Con el objetivo de detectar posibles agentes bacterianos involucrados con la afección de los animales, se sembraron muestras de los pulmones de ambos animales en medios Agar Sangre (Oxoid, UK) y Agar Mac Conkey (Oxoid, UK), las mismas se incubaron a 37ºC durante 72 horas en aerobiosis (Quinn y col. 1994). Inmunohistoquímica para la detección de antígenos virales Se realizó la técnica de inmunohistoquímica para la detección de antígenos del BRSV en cortes de pulmón que estaban incluidos en parafina, de ambos terneros. Los cortes histológicos de pulmón de 5 μm de espesor, fueron desparafinados en xilol, luego en alcohol y por último fueron lavados con agua destilada. Seguidamente, se bloqueó la peroxidasa endógena con una solución de peróxido de hidrógeno, durante 30 minutos a temperatura ambiente. Posteriormente se realizó la recuperación antigénica con citrato (pH 6,0) en horno microondas de uso doméstico por 10 minutos en la potencia máxima (1300 Watt). El bloqueo se realizó con caseína y suero fetal bovino al 5% durante 15 minutos, cada uno. Las muestras fueron incubadas durante 2 horas a 37°C con un anticuerpo primario policlonal anti-BRSV (VMRD, Pullman, WA, USA) en una dilución de 1:50. Posteriormente, los cortes fueron incubados con el anticuerpo secundario con avidina-biotina, usando un kit comercial (ABC kit, Vector Laboratories, Burlingame, USA), Datos epidemiológicos Los animales de raza cruza carnicera, se encontraban en un potrero de campo natural de 20 ha de superficie, con muy poca disponibilidad de materia seca y con acceso al agua a través de bebederos. La dieta era a base de concentrados y estaba compuesta en base materia seca por: 56% ensilaje de planta entera de sorgo, 34% ensilaje grano húmedo de sorgo y 10% núcleo vitamínico-mineral. La misma era administrada en comederos colectivos, de cemento, a razón de un 3% del peso vivo, equivalente a 4,5 kg/animal, dos veces por día. Los animales tenían diversos orígenes y al ingreso eran desparasitados con antihelmínticos. Posteriormente eran vacunados con doble dosis separadas por 21 días, con vacunas contra clostridiosis (Clostridium chauvoei, septicum, perfringens tipo D y C, sordelli, novyi tipo B y C y haemolyticum) y enfermedades respiratorias (Pasteurella multocida, Manhemia haemolytica, Salmonella dublin y Escherichia coli K99). En total enfermaron 49 animales y murieron 48, en un período de 28 días (morbilidad 6,71% y mortalidad 6,57%). Los signos clínicos observados fueron: fiebre, tos, disnea, posición ortopneica, descarga nasal, lagrimeo, taquipnea y algunos presentaban seria dificultad respiratoria, con respiración con boca abierta (Figura 1), viéndose afectados los terneros de menor edad. Patología En las necropsias realizadas se observó que las mucosas ocular, bucal y peneana estaban cianóticas. Los principales hallazgos macroscópicos estaban restrictos al sistema respiratorio. En la tráquea se observó abundante espuma en el interior y la mucosa congestiva. Los lóbulos cráneo-ventrales del pulmón estaban consolidados, de color rojo intenso y textura gomosa. Las áreas caudo-dorsales no LECHUZA ROJA Noviembre de 2013 Figura 2A Figura 2B Figura 2: A: Pulmón bovino: Bronquiolitis necrotizante, aplanamiento y metaplasia del epitelio respiratorio con formación de sincitio epitelial (Flecha) HE, 600X. B: Pulmón bovino: Infiltración del septo alveolar por células mononucleares, alveolos con neutrófilos y macrófagos, presencia de sincitio epitelial (Flecha) HE, 600X. colapsaban, presentaban edema y áreas de enfisema intersticial. No había lesiones de significado patológico en el resto de los órganos. Los alteraciones histopatológicas más significativas se restringían a los pulmones, donde se observó bronquiolitis, necrosis del epitelio bronquiolar con formación de sincitios epiteliales, alveolitis exudativa caracterizada por abundante presencia de neutrófilos, macrófagos y células sincitiales con obliteración total de la luz alveolar, severa infiltración del septo alveolar por células mononucleares, granulocitarias y macrófagos alveolares (Figura 2A y 2B). También se encontraron áreas extensas de atelectasia, con áreas de enfisema. En los bronquios y bronquiolos se observó aplanamiento del epitelio respiratorio, con presencia de células necróticas. En el intersticio había severo edema y congestión. Bacteriología En las muestras de ambos pulmones no hubo aislamiento de colonias bacterianas de significación patógena. Inmunohistoquímica Los pulmones de los dos terneros analizados presentaron marcación positiva para el BRSV que fue observada en las células epiteliales de los bronquiolos y en células gigantes multinucleadas (sincitios) de ambos terneros (Figura 3A y 3B). Discusión y conclusiones En base a los signos clínicos, hallazgos patológicos y resultados de la inmunohistoquímica se confirma la presencia del BRSV en un cuadro de neumonía enzoótica. Si bien, este es el primer trabajo que detecta la presencia de este virus en cuadros de neumonía, en Uruguay ya fue demostrada la presencia de anticuerpos para el BRSV, determinándose una alta seroprevalencia (95%) en los bovinos (Costa y col. 2000). En otros países, tales como Italia (69%), México (52%) y Ecuador (80%) se ha demostrado, también, una alta prevalencia de animales infectados con BRSV (Luzzago y col. 2010, FigueroaChávez y col. 2010, Saa y col. 2012). En este trabajo no fueron aisladas bacterias patógenas que pudieran estar asociados al cuadro de neumonía, probablemente debido a que los animales fueron tratados previamente con antimicrobianos. Es sabido que el BRSV predispone a neumonías bacterianas en animales en corrales de engorde al disminuir los mecanismos de defensa del pulmón (Caswell & Williams. 2007). El contacto entre los animales de diferentes orígenes probablemente facilitó la transmisión del virus entre los terneros. Si bien, el potrero donde los animales estaban tenía un área de 20 ha, el número de animales era elevado lo que representó una alta carga animal instantánea (36,5 terneros/ha) que favoreció el contacto entre los mismos. La densidad animal es uno de los factores de riesgo más importantes reportados para la presentación de la enfermedad (Valacher & Taylor. 2010, Luzzago y col. 2010, FigueroaChávez y col. 2012). El transporte de animales también fue mencionado como factor de riesgo (Figueroa-Chávez y col. 2012) y probablemente también haya sido de relevancia en estos casos, debido a que los terneros eran transportados desde otras propiedades para hacer la recría en ese lugar. Factores ambientales que causan estrés y que pueden afectar el estatus inmunológico pueden favorecer la presentación de la enfermedad. Los casos se presentaron durante el invierno, lo que ha sido reportado como una de las épocas de mayor incidencia, junto con los meses de otoño (Stott y col. 1980, Van der Poel y col. 1993, Radostits y col. 2007, Valarcher & Taylor. 2007, Van Donkersgoed y col. 1993). Otros factores han sido asociados con la enfermedad tales como condiciones higiénicas desfavorables, humedad excesiva, frío, falta de ingestión de calostro en las primeras horas de vida, errores de alimentación, ventilación insuficiente, enfermedades intercurrentes (principalmente diarreas) y otras causas de estrés (Driemeier & Moojen. 2007, Radostits y col. 2007). La infección por el BRSV puede ser subclínica, leve o altamente fatal (Radostits y col. 2007). Los signos clínicos que Figura 3A Figura 3B Figura 3: A. Pulmón. Inmunohistoquímica. Nótese la marcación positiva para el anticuerpo anti-BRSV en el citoplasma de células gigantes multinucleadas en la luz de alvéolos (Flechas). 400X. B. Pulmón. Inmunohistoquímica. Control negativo. 200X. presentaron los terneros fueron típicos de la enfermedad y característicos de una enfermedad respiratoria obstructiva (Radostits y col. 2007). Los terneros son los que manifiestan en general estos signos clínicos más severos, pero pueden también observarse en animales adultos (Valacher & Taylor. 2007). También se reporta que solo un porcentaje bajo de la población de terneros manifiesta signos clínicos severos de la enfermedad y los otros se infectan sin manifestarlos (Van der Poel y col. 1993). En el brote reportado la tasa de morbilidad y mortalidad fue del 6,71% y 6,57%, respectivamente. Valacher & Taylor (2007), establecieron que la morbilidad puede variar de 60 a 80%, mientras que la mortalidad puede alcanzar el 20%. En cambio, Larsen y col. (2001), reportaron tasas de mortalidad en terneros de 4 a 7 meses de 1,6% y 8%, en dos propiedades que vacunaban contra la enfermedad. La mayoría de los trabajos reportan datos de relevamientos serológicos a nivel de rodeo (Luzzago y col. 2010, FigueroaChávez y col. 2012, Van Donkersgoed y col. 1993), o estudian la incidencia del BRSV como una causa más de neumonía en animales criados en sistemas de confinamiento (feedlot) (Gagea y col. 2006, Fulton y col. 2009), y otros trabajos se basan en la detección del virus en lavados de pulmón de animales enfermos (Uttenthal y col. 1996), pero pocos establecen datos de morbilidad y mortalidad. Gagea y col (2006) reportaron que el BRSV representó el 9% de las enfermedades virales asociadas a cuadros de neumonía y Fulton y col. (2009) establecieron que en el 4,6% de las neumonías fatales de animales de feedlot se determinó la presencia de BRSV mediante la técnica de PCR. Para el diagnóstico de la enfermedad, si bien la presencia de sincitios epiteliales a nivel bronquiolar y alveolar en el estudio histológico, es altamente sugestivo de infección por BRSV, no es determinante, ya que las infecciones por virus parainfluenza 3 o cuadros de bronconeumonía fibrinosa también pueden inducir la formación de sincitios a nivel alveolar (Caswell & Williams. 2007, Driemeier & Moojen. 2007). En este trabajo se demostró la presencia del vi- rus en las propias células sincitiales a través de la técnica de inmunohistoquímica. No fueron observados corpúsculos de inclusión eosinofílicos intracitoplasmáticos en las células sincitiales, ni en epitelio bronquiolar y alveolar como ha sido reporta- 15 do por otros autores (Caswell & Williams. 2007). El tipo de marcación obtenida mediante la técnica de inmunohistoquímica fue demostrada en trabajos previos (Haines y col. 1989, Peixoto y col. 2000). El control del BRSV se realiza a través de un manejo ambiental adecuado y la administración de calostro a los terneros en cantidad y calidad. Existe insuficiente información disponible a nivel experimental para la recomendación del uso de vacunas para el control de la neumonía enzoótica en terneros (Radostits y col. 2007). Las vacunas deberían de ser preferencialmente tenidas en cuenta en sistemas intensivos de confinamiento y alta dotación (Radostits y col. 2007). Referencias bibliográficas 1. Caswell JL, Williams KJ. (2007). Respiratory System. En: Jubb KVF, Kennedy PC, Palmer NC. Pathology of Domestic Animals. 5a. ed., Philadelphia, Ed. Elsevier, pp. 523653, Vol 2. 2. Costa M, García L, Yunus AS, Rockemann DD, Samal SK, Cristina J. (2000). Bovine respiratory syncytial virus: first serological evidence in Uruguay. Vet Res 31: 241-246. 3. Driemeier D, Pereira-Gomes MJ, Moojen V, Weiss Arns C, Vogg G, Kessler L, Maciel da Costa U. (1997). 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Epidemiological study of Enzootic Pneumonia in dairy calves in Saskatchewan. Can J Vet Res 57: 247-254. 16 LECHUZA ROJA Noviembre de 2013 Premio Nacional de InNOVAción 2013 para Laboratorios Santa Elena Laboratorios Santa Elena fue galardonado con el Premio NOVA en la categoría Industria. Se trata del Premio Nacional de InNOVAción 2013. El acto se llevó a cabo en el MUMI (Museo de las Migraciones) el 23 de octubre y trasmitido por Montecarlo Televisión. Es un reconocimiento a su destacada labor en el campo de la biotecnología. La postulación estuvo vinculada al desarrollo de la vacuna NEUMOSAN V4J5 que protege contra la Enfermedad Respiratoria Bovina y el Síndrome de Diarrea Neonatal Bovina que representan dos de los mayores problemas sanitarios de la ganadería. En la foto el Vicepresidente de la Cámara de Industrias Gabriel Murara entrega el premio al Director de Laboratorios Santa Elena Virbac Dr. Eduardo Ottonelli. Los premios NOVA son un reconocimiento a las empresas que con su capacidad Ahora puede suscribirse a Envíe sus datos personales a Millán 4175, CP 12900 Montevideo o a [email protected] y reciba LECHUZA ROJA en su domicilio. Si lo desea, recibirá también novedades por e-mail. Nombre: Apellido: Cédula de Identidad: Dirección: Código Postal: Departamento: Teléfono: Profesión: Ocupación: E-mail: Fecha de nacimiento: Deseo recibir información en mi e-mali Si / No innovadora aportan a la mejora de la calidad de vida y al progreso económico de nuestro país. Su objetivo es premiar el talento y esfuerzo de quienes dedican parte de su vida en pro de la innovación. Asimismo, buscan estimular la cultura innovadora en nuestra sociedad y demostrar que, en Uruguay, es posible innovar. NOVA distingue a las empresas ganadoras, permitiéndoles destacar sus productos y publicidad con un sello que los identifique. Además, en esta edición las empresas que resulten ganadoras también obtendrán diversos premios otorgados por las instituciones participantes. Dr. Eduardo J. Ottonelli agradeciendo el premio en nombre de Laboratorios Santa Elena Virbac. La organización del premio está coordinada por la Agencia Nacional de Investigación e Innovación (ANII) en asociación con la Cámara de Industrias del Uruguay, Cámara Nacional de Comercio y Servicios del Uruguay, Cámara Uruguaya de Tecnologías de la Información, Cooperativas Agrarias Federadas, Endeavor, Programa ART de PNUD, Red Propymes, Unión de Exportadores del Uruguay y Uruguay XXI. Se trata de un nuevo logro para la empresa que recientemente se ha integrado al Grupo VIRBAC. Otras empresas ganadoras fueron: Kizanaro en la categoría Servicios, Tryolabs en la categoría Exportadoras, HPS Gaming en la categoría TICs, Frambueslandia en la categoría Agropecuarias, Paganzaen la categoría Emprendedor, SergeantPapers en la categoría PYMES, Ikusi en la categoría Desarrollo Humano y Asociación Española Primera de Socorros Mutuos en la categoría Interés Público. LECHUZA ROJA es una publicación de Laboratorios Santa Elena S.A. - Inscripta en el MEC con el Nº 01956 - Redactor Responsable: Dr. Eduardo J. Ottonelli. Av. Millán 4175, CP 12900, Montevideo, Uruguay - Teléfono: 2307 5757* - Fax: 2307 9112 - web: www.santaelena.com.uy - e-mail: [email protected] Lechuza Roja fue la marca que durante los primeros veinte años distinguió los productos de Laboratorios Santa Elena S.A. La lechuza es símbolo de sabiduría y erudición, de conocimiento científico y experiencia. Hoy retomamos ese nombre para esta publicación como reconocimiento a quienes nos precedieron. Producción Periodística: Alejandra Caruso. Secretaría y Marketing: Mónica Guichón. Producción Gráfica: Gaudí - Tel: 2613 8121 - correo electrónico: [email protected] Microcosmos S.A. / D.L. 326.471