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INDICE
1.
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14.
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17.
18.
19.
20.
21.
22.
23.
24.
Introducción
Objetivo
Alcance
Definiciones
Referencias
Tomas de muestras LABPRO
Instrucciones recepción e ingreso de pacientes
Instr. Citación, Identificación del Paciente y Toma de Muestras
Instrucciones Identificación de las Muestras
Instrucciones Toma de Muestras
a. Extracción de sangre venosa
b. Obtención de muestras de orina
c. Muestras microbiológicas
d. Exámenes de hematología y coagulación
e. Exámenes de bioquímica y hormonas
f. Detección drogas de abuso
g. Papanicolao
Cuadro resumen contenedores exámenes
Instrucciones transporte de las muestras
Instrucciones recepción de las muestras
Instrucciones muestras urgentes
Instrucciones solicitud de exámenes adicionales
Instrucciones almacenamiento de las muestras
Nómina exámenes subcontratados
ANEXO 1 Instrucciones Hemorragias ocultas
ANEXO 2 Instr. Rec. Orina 24 horas
ANEXO 3 Instr. Ex. Parasitologico seriado de dep.
ANEXO 4 Instr. Test de Graham
ANEXO 5 Instr. Hidroxiprolina
ANEXO 6 Instr. Espermiograma
ANEXO 7 Instr. Catecolaminas
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25. ANEXO 8
Instr. Metanefrinas
26.
27.
28.
29.
30.
31.
32.
33.
Form. Envio de muestras
Consentimiento VIH
Cadena custodia drogas
Instr. Frotis hemogramas
Instr. Carga de glucosa
Instr. Orina pacientes sexo femenino
Instr. Orina pacientes sexo masculino
Listado de exámenes.
ANEXO 9
ANEXO 10
ANEXO 11
ANEXO 12
ANEXO 13
ANEXO 14
ANEXO 15
ANEXO 16
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1.- INTRODUCCION
LABORATORIO CLINICO PROVIDENCIA LTDA, comprometido en brindar el mejor y más
oportuno servicio de apoyo al diagnóstico y manejo clínico de sus pacientes, pone a su
disposición el presente Manual de Toma de Muestras con el propósito de establecer
el marco teórico-práctico que debe regir a todos los procedimientos involucrados en la
fase pre-analítica, para garantizar la máxima calidad y cumplir con las expectativas y
necesidades de nuestros pacientes
Nuestro Laboratorio cuenta con tecnología de última generación, un equipo de
profesionales altamente motivado y técnicamente competente para satisfacer la
demanda clínica, y por sobre todo, ofrece su mejor disposición para que cada
determinación de laboratorio que se realice, alcance la mayor correlación clínicalaboratorio.
Finalmente , el Director Técnico esta permanentemente a disposición de los
Médicos , para colaborar en el diagnostico e interpretación de la pruebas de
laboratorio y asesorar, si se requiere, en la toma de decisiones en situaciones
clínicamente complicadas, para otorgar a nuestros pacientes la mejor oportunidad en
el diagnostico, tratamiento y control evolutivo de su situación clínica.
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OBJETIVO
El objetivo de este Manual es contar con una referencia normalizada de todas las acciones que
intervienen en la etapa pre-analitica de los examenes de laboratorio, para garantizar resultados
confiables, oportunos, trazables y representativos.
3
ALCANCE
Este Manual de aplica a todas las unidades de toma de muestras de LABPRO.
4
DEFINICIONES
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LABPRO
Laboratorio Clínico procesador:
Es el laboratorio que analiza las muestras de
diagnóstico procedentes de las distintas salas de toma de muestras.
Muestra:
Cualquier material humano, incluyendo, entre
otros, secreciones, sangre y sus componentes, fluidos corporales y tejidos a los cuales
se les pueda efectuar exámenes de laboratorio.
Estabilidad de la Muestra:
Capacidad de una muestra, cuando se mantiene en
unas condiciones adecuadas, de mantener los valores de sus analitos o componentes
lo más cercano a sus valores reales originales.
Sala de Toma de Muestras:
Espacio físico donde los profesionales de salud
realizan tareas de obtención, recepción e identificación de muestras biológicas
humanas. En este manual de distinguen:
Sala de Toma de Muestra Interna: Ubicadas en las dependencias propias de LABPRO,
atendidas por su propio personal.
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Sala de Toma de Muestras Externa: Pertenecientes a unidades dentro de servicios
clínicos o centros médicos, en que personal externo a LABPRO realiza el proceso de
toma de muestras de acuerdo a lo especificado en este Manual y la legislación vigente.
Tomadoras de muestras:
Personal instruido y competente para realizar la
toma de muestras de distintos tipos y para distintas clases de examenes, con título
profesional de Técnico en Enfermería o Laboratorio Clínico.
Instructivo de Toma de Muestras: Documento claro y conciso que normaliza los
pasos a seguir en la actividad de Toma de Muestras, según las caractersticas de cada
una.
Recipiente Primario:
Contenedor adecuado (tubo, frasco, etc.,)
donde se deposita directamente la muestra biológica a analizar.
Recipiente Secundario:
Contenedor adecuado que permite transportar
uno o más recipientes primarios. En nuestro laboratorio corresponde a gradillas y
bolsas plásticas.
Recipiente Terciario:
Contenedor adecuado que permite transportar
uno o más recipientes secundarios.
En nuestro laboratorio corresponde a cajas
refrigeradas.
Tiempo de Respuesta:
Es el tiempo que transcurre desde que se
recepciona una muestra en el laboratorio y entra en procesamiento, hasta que se
emite el resultado de los examenes.
Muestras Urgentes por Solicitud Medica:Son aquellas que requieren un resultado
inmediato para tomar decisiones terapeuticas urgentes.
Muestras Urgentes por Caracteristicas del Proceso: Son aquellas muestras que, por las
caracteristicas propias del analito a determinar o cuantificar, se deben procesar de
inmediato.
Valores Críticos o de Alerta:
Corresponde a un resultado de exámenes que
pueden representar un riesgo para la integridad del paciente.
Alícuota:
Volumen pequeño de muestra, que se separa de la
muestra original para ser guardado en condiciones especiales, con el objeto de poder
realizar estudios posteriores, en caso de ser requeridos y permite su trazabilidad a la
muestra de origen.
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Combrobante de Laboratorio:
Registro impreso que permite el actual sistema
computacional de LABPRO al ingresar una solicitud de exámen.
-
Director Técnico de Laboratorio: Es el profesional que tiene la competencia
necesaria para asumir la responsabilidadante la autoridad sanitaria, de la calidad de los
analisis que se realizan en un laboratorio clínico, de acuerdo a la legislación vigente.
REFERENCIAS
a.NCh 2547 Of. 2003/ISO 15189
para la calidad y la competencia.
b.-
Laboratorios Clínicos. Requisitos particulares
NCh 9000 – 2001. Fundamentos y Vocabulario.
c.Requisitos de transporte de muestras de diagnóstico para garantizar la estabilidad
de sus propiedades biológicas.. Generalitat de Catalunya. Departamento de Sanidad y
Seguridad Social.
d.Manual de toma de muestras para estudio bacteriológico, parasitológico y
micológico. Departamento de Laboratorio Clínico repartición Microbiologia, Hospital de
Clínicas Facultad de Medicina Montevideo – Uruguay 2004.
e.-
Decreto 433 MINSAL
f.-
Manual Toma de Muestras Laboratorio Bionet.
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Centro Medico Medicuba
Salesianos 1178
San Miguel
Centro Medico Trinidad
Departamental 9000
PAC
Centro Medico 22 ½
Gr Avenida
La Cisterna
Centro Medico Cimar
Eliodoro Yañez
Providencia
INSTRUCCIONES RECEPCION e INGRESO de PACIENTES
1.El personal encargado de recibir al paciente en las dependencias de LABPRO debe
saludar cordialmente al paciente, identificandose claramente con su nombre y apellido
2.Solicite al paciente la orden de exámenes, verifique códigos y previsión, proceda a
vender el bono y/o cobrar las prestaciones según corresponda. Solo ingrese las
prestaciones claramente identificadas en la solicitud, no interprete la orden, si alguna
prestación no esta claramente, consulte al médico solicitante, no ingrese prestaciones al
sistema si no tiene la seguridad de lo solicitado.
3.Si corresponde, le entregará al paciente los instructivos necesarios para la
preparación de los examenes, que se encuentran al final de este Manual como Anexos.
4.Informe al paciente el tiempo de espera para la obtención de resultado y como se
puede acceder a ellos (retiro en la unidad de toma de muestras o vía Web si el servicio
esta disponible en su sucursal).
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5.Ingrese los datos al sistema informático del laboratorio, INFOLAB,agregando
observaciones de hipótesis diagnóstica y los datos del médico solicitante que faciliten su
contacto en caso de ser necesario.
6.-
Solicite al paciente un número telefónico de contacto y el de su médico tratante.
7.Agradesca al paciente su preferencia e indiquele que a continuación será llamado
para la obtención de la muestra, en un tiempo no inferior a los 5 minutos para garantizar
una óptima extracción.
8.Si su unidad de toma de muestra no posee sistema informático del laboratorio,
debe incluir toda esta informacion en la planilla para envío de muestras que le
proporcionará el laboratorio, la que se adjunta como Anexo 9.
8
INSTRUCCIONES – CITACION – IDENTIFICACION DEL PACIENTE Y TOMA DE MUESTRA
1. Una vez ingresados los datos al sistema informático, personal de toma de muestras
llamará al paciente a la unidad de toma de muestras.
2. Junto con saludar e identificarse, le preguntará al paciente su nombre para realizar una
identificación activa del paciente, Si corresponde a VIH o Drogas de abuso, le solicitará
además su cédula de identidad.
3. Una vez realizada la verificación, le explicará el procedimiento a efectuar para la
obtención de la muestra (punción venosa, muestra de orina, etc.) y responderá las
consultas sobre el procedimiento. Limitándose a su labor y cargo, sin emitir ningún
comentario adicional.
4. Si corresponde, le solicitará al paciente el consentimiento informado en el caso de
exámen de VIH o la Cadena de la Custodia en el caso de drogas de abuso, documentos
que están disponibles en todas las unidades de toma de muestras LABPRO. Si el
paciente es menor de edad, el apoderado deberá llenar estos instrumentos. Ambos
instrumentos son de carácter obligatorio y sin ellos no se puede realizar la toma de
muestra, ambos se detallan en el Anexo 10 y 11 respectivamente.
5. Prepare todo el material necesario para el procedimiento con anterioridad a la
obtención de la muestra (previo a ligar al paciente)
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6. Previo a la extracción, consultar al paciente por horas de ayuno, si es un nivel
plasmático, la dosis del fármaco; si está sometido a algún tratamiento médico y
cualquier dato que pueda contribuir a la interpretación de los resultados. Además,
consulte siempre por problemas previos en extracciones de sangre (lipotimia). Si la
respuesta es afirmativa, obtenga la muestra con el paciente recostado en una camilla.
7. En pacientes menores de 12 años y mayores de 60, ademá de todo aquel paciente que
manifieste padecer diabetes o problemas metabólicos, si se les solicita determinación
de glucosa, HOMA o perfil bioquímico, incluir siempre tubo gris (fluoruro).
8. En el caso de orina completa, sedimento y urocultivo, realizar el aseo previo a la
obtención de la muestra. Si el paciente no accede, dejar constancia de esto en la
sección observaciones del sistema informatico del laboratorio. Consultar al paciente si
esta en tratamiento con antibióticos y consignar esta información en el sistema
informático del laboratorio, sección observaciones de toma de muestra.
9. Si por alguna razón debe quedar pendiente la obtención de una de las muestras
solicitadas (ej. Orina de 24 horas), dejar constancia de esto en la sección observaciones,
especificando lo que queda pendiente, la fecha y el nombre de quien efectúa la
observación.
10. En el caso de clearence de creatinina, la muestra de sangre debe ser obtenida con un
maximo de 48 horas de diferencia con la muestra de orina, por lo que se suguiere
realizar los exámenes de sangre el día en que el paciente lleva la muestra de orina al
laboratorio y no antes para evitar confusiones. Incluir el peso y talla del paciente.
11. En el caso de antígeno prostático específico
abstinencia sexual de al menos 48 horas.
(PSA), el paciente debe tener una
12. El tiempo de ayuno recomendado es de mínimo 8 horas y máximo 12 horas, en caso de
tiempos diferentes, y si el paciente insiste en la realización de los exámenes, dejar
constancia en sección observaciones.
13. Frente a cualquier duda, consultar siempre a su superior directo.
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14. Para las solicitudes de curva de tolerancia a la glucosa, resistencia a la insulina o
pruebas post carga de glucosa, referirse a instrucciones detalladas en Anexo 13
15. Preocuparse de que el paciente no presente molestias antes de despedirlo de la toma
de muestra y al hacerlo, agradecer su preferencia.
9
INSTRUCCIONES IDENTIFICACION DE LAS MUESTRAS
Una vez obtenida la muestra, rotular el o los contenedores en la presencia del paciente, si
cuenta con el sistema informático del laboratorio, obtenga las etiquetas respectivas y rotule los
contenedores, siempre de manera posterior a la obtención de la muestra.
Si no cuenta con el sistema informático del laboratorio, rotule los contenedores con el nombre
y los dos apellidos del paciente, con letra clara, además de incluir la fecha de obtención de la
muestra.
No olvide incluir cualquier dato que pueda contribuir a la interpretación de los resultados,
además de consultar al paciente por el ayuno o cualquier otra información de utilidad.
En caso de urocultivo, consultar si esta en tratamiento con antibióticos por cualquier razón.
Todos estos datos deben ser ingresados al sistema o registrados en la planilla de envío de
muestras.
10 INSTRUCCIONES TOMA DE MUESTRAS
1. Extracción de Sangre
a.- Sangre Venosa
De acuerdo a las Normas Internacionales emitidas por el Clinical and Laboratory
Standards Institute (CLSI) vigentes en la actualidad, existen sólo dos formas de obtener
sangre venosa de un paciente, estas son:
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La tradicional y disponible en todas las tomas de muestras de cualquier
laboratorio, consiste en la extracción mediante jeringa, aguja, o mariposa para
venopunción, usando contenedores que no poseen vacío en su interior.
Muestra obtenida mediante sistema cerrado al vacío.
Las muestras deben obtenerse por uno u otro método, jamas debe mezclarse la
metodología, esto quiere decir, si no se dispone del sistema al vacío completo y solo
se tiene tubo al vacío, una vez obtenida la muestra, ésta debe vaciarse al tubo
destapando primero éste y trasvasijando a través de las paredes como en el sistema
tradicional.
Jamas debe trasvasijarse la muestra pinchando con aguja el tapón del tubo al vacío,
el traspaso de muestra a través de aguja corriente es el más importante factor de
hemolisis en las muestras.
Es imprescindible contar con todos los materiales e insumos necesarios para el
procedimiento, previstos con anterioridad, las improvisaciones generan riesgos de
bioseguridad y deterioran la calidad de atención a los pacientes.
Debe disponerse de guantes, tórulas, parche, agujas, jeringas, adaptador para sistema
al vacío, contenedores en volumenes adecuados, ligadura, alcohol, lapiz o etiquetas
para rotular las muestras una vez obtenidas, al lado del paciente.
A. Transmitir tranquilidad al paciente instruyéndole respecto al procedimiento a realizar,
especialmente si se trata de jovenes o niños. Ante pacientes aprensivos o que manifiestan
abierto temor se recomienda tomar muestras con el paciente acostado sobre camilla o en
silla de respaldo reclinable.
Debe verificarse que el paciente no contiene ningún tipo de alimentos u objetos en su
boca. Ante quejas o sensaciones puntuales de malestar por parte del paciente es
importante acoger su planteamiento, la preservacion de la buena relación paciente –
operador garantizará la buena calidad de la atención así como en casi todos los casos,
impedirá la emisión de un reclamo o melestia mayor.
B. Verificar la adecuada condición técnica del material a utilizar, ligadura, tubos con
anticoagulante visible, etc.
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C. Seleccionar el sitio de punción y proceder a limpiarlo. Utilizar alcohol de 70°, dejar
evaporar antes de puncionar. Para determinación de alcohol en sangre, usar agua
destilada para limpiar.
Jamas debe obtenerse muestras para análisis de laboratorio desde la misma extremidad por
donde se pasa fleboclisis esta situación, siempre altera el valor predictivo de los exámenes
por tanto, aún cuando sean realizados por el laboratorio, no serán útiles para el estudio o
diagnostico clínico.
D. Orden exigido en la obtención de muestras.
1°
Tubo sin aditivo (rojo/amarillo).
2°
Tubo para exámenes de coagulación (celeste).
3°
Tubos con aditivos (lila, verde, gris, etc.).
E. Sólo una vez obtenidas las muestras, identificarlas al lado del paciente. Se prohibe rotular
o etiquetar los contenedores antes de obtener la muestra.
F. Luego de obtenidas las muestras, eliminar el material cortopunzante en los contenedores
destinados para ello.
b.- SangreArterial (Gases Arteriales)
a)
En el caso de necesitar una muestra de sangre arterial, este procedimiento sólo es
realizado por las enfermeras encargadas de las tomas de muestras o personal
debidamente autorizado por la dirección técnica.
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b)
Detecte la ubicación de la arteria mediante la busqueda del pulso. Luego, realice
la punción arterial. Al finalizar, comprima la zona por al menos 3 minutos para evitar la
formación de hematomas. Utilce jeringa heparinizada y mantenga la muestra en cadena
de frío. Envíe de inmediato a laboratorio para su procesamiento.
2.-
Obtención de Muestras de Orina.
Orina completa, sedimento de orina u urocultivo.
a. La muestra idónea es la orina de segundo chorro, de la primera micción de la mañana,
de lo contrario, se sugiere tomar una muestra con un mínimo de tres horas de
retención.
b. Técnica en mujeres.
Este examen se realizará en la sala de baño de toma de muestras, donde se le
entregará al paciente un frasco limpio y seco, y se aplicará el procedimiento.
Las instrucciones al paciente se incluyen en el anexo N° 6. Cuando el paciente no
pueda realizarlo, o solicite ayuda, personal del laboratorio realizará el aseo
genital.
Material necesario:
-
Gasas o tórulas estériles.
Jabón neutro.
Recipiente e boca ancha con tapa rosca hermético y estéril.
Procedimiento:
-
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Lavado de manos clínicos de la persona que reliza el aseo.
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Con guantes de procedimiento, separar los labios mayores, con una gasa o tórula
empapadas en agua jabonosa (jabón neutro) lavar la vulva arrastrando siempre de
adelante hacia atrás, en forma repetida (cambiar la tórula o gasa en cada arrastre).
Enjuagar cuidadosamentecon bastante agua para eliminar los restos de jabón.
Toma de Muestra:
-
Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes.
Elimine la primera parte de la micción (primer chorro).
Recolecte la orina restante (2° chorro), llenando hasta la mitad del frasco. El frasco
debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa.
Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior.
Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado, entréguelo a la
persona que lo atendió.
Utilice papel absorbente del dispensador para secar el frasco por fuera, en caso de que
se haya mojado con orina.
Lavarse las manos después de este procedimiento.
Si requiere ayuda, solicite asistencia al personal de toma de muestras.
c. Técnica en hombres
Este examen se realizará en la sala de baño de la toma de muestras, donde s e le
entregara al paciente un frasco limpio y seco y se le dará la instrucción.
Cuando el paciente no pueda realizarlo, o solicite ayuda, personal del laboratorio
realizará el aseo genital.
-
Material necesario:
Gasas o tórulas de algodón.
Jabón neutro.
Recipiente de boca ancha con tapa rosca hermético y estéril.
-
Procedimiento:
Lavado de manos del paciente.
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Retraer en forma suave el prepusio, limpiar el glande desde la uretra con jabón neutro.
Enjuagar cuidadosamente con bastante agua para eliminar los restos de jabón.
Toma de muestra:
Abra cuidadossamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes.
Mantenga el prepusio retraido durante todo el procedimiento.
Comienze a orinar y elimine el primer chorro (+/- 10ml).
Recolecte la orina restante (2° chorro), llenando hasta la mitad del frasco. El frasco
debe sujetarse para que no tome contacto con su ropa o pierna.
Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior.
Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado.
Utilice papel absorvente del dispensador para secar el frasco por fuera, en caso de que
se haya mojado con orina.
Lavarse las manos después de este procedimiento.
d. Técnica en niños/niñas.
Personal del laboratorio realizará el aseo: realizar aseo genital con gasas o tórulas según
lo descrito anteriormente.
Material necesario:
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Gasas o tórulas de algodón.
Jabón neutro.
Recipiente de boca ancha con tapa rosca hermético y estéril.
Recolectores plástico estériles.
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Procedimiento:
-
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-
Una vez realizado el aseo, secar prolijamente los genitales con toalla nova y colocar el
recolector cuidando de no contaminarlo y que éste quede perfectamente adherido a la
piel.
Si el niño no orina al cabo de 30 minutos (sólo para urocultivo)debe cambiarse el
recolector con el mismo procedimiento anterior, un máximo de dos veces, evaluar la
posibilidad de un tercer recolector.
Cuando el niño/a orina, debe retirarse el recolector inmediatamente y traspasar la
muestra al interior de un frasco estéril. Tapar inmediatamente el frasco.
Rotular el frasco con el nombre y dos apellidos del paciente. Si el envio no es
inmediato, mantener muestra refrigerada a 4°C.
Lavarse las manos después de este procedimiento.
Orina de primera micción.
Indicada en estudio de infección por N. gonorrhoeae, Chlamydias y otras uretritis no
gonocócicas.
Procedimiento:
-
Si la muestra no corresponde a la primera orina matinal, esperar 3 a 4 horas sin
micción para tomarla. No forzar diuresis.
Realizar aseo genital según lo descrito.
Depositar los primeros 10 a 20 ml de orina en frasco estéril
Rotular en el frasco que corresponde a orina de primera micción.
Transportar al laboratorio en forma inmediata.
+ Si no se ha solicitado cultivo de Neisseria gonorrhoeae (gonococo) la muestra
debe mantenerse refrigerada a 4°C.
+ Si se solicita cultivo de Neisseria gonorrhoeae (gonococo) la muestra no debe
refrigerarse.
PARA DETERMINACION BIOQUIMICAS CON ORINA AISLADA, OBTENER LA MUESTRA
COMO SI FUERA ORINA DE SEGUNDO CHORRO.
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Muestras Microbiológicas.
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a. Introducción.
El principal objetivo del estudio microbiológico es el aislamiento de los agentes
causales de una probable infección y la orientación en el uso adecuado de antimicrobianos
en el tratamiento del paciente.
Los agentes microbiológicos pierden rápidamente viabilidad al ser retirados del
hábitat específico del huésped, por lo que se hace indispensable optimizar la conservación
de la muestra y acortar al máximo el tiempo entre su recolección y la siembra que se
realiza en el laboratorio.
Toda la información diagnóstica que el laboratorio de microbiología puede
proporcionar, depende de la calidad de la muestra recibida. Por ello, una muestra sin la
técnica adecuada o mal transportada determinará un posible fallo en la recuperación de los
agentes patógenos, que puede inducir a errores diagnósticos, e incluso a un tratamiento
inadecuado del paciente.
Recomendaciones generales:
•
•
•
•
•
•
•
La toma de muestra debe realizarse en condiciones de máxima asepsia, evitando
contaminaciones ambientales, del personal y del propio enfermo.
Es muy importante realizar siempre un lavado de mano clínico adecuado antes y después
de tomar una muestra.
El personal que toma la muestra debe utilizar los elementos de protección personal
(guantes, mascarilla desechable y antiparra) cuando haya riesgo de contacto con fluidos.
La muestra debe transportarse en envases adecuados con cierres a prueba de derrames o
fugas.
La muestra debe etiquetarse con el nombre del paciente, el servicio solicitante, el tipo de
muestra, y la fecha y hora de la recolección.
Se debe tomar una cantidad de muestra adecuada a la petición y al número de exámenes
solicitados. En ocaciones una escasa cantidad de muestra puede ser la causa de falsos
negativos.
El material destinado a cultivo no debe estar en contacto con sustancias desinfectantes o
anestésicas, siempre que sea posible.
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La muestra se debe recoger, siempre que sea posible,antes de iniciar cualquier terapia
antimicrobiana.
Se debe evitarel contacto de la muestracon flora bacteriana normal del paciente, con el
objeto de asegurar que la muestra refleje lo mejor posible el agente causal de la infección.
El envío al laboratorio de microbiología debe ser lo más rápido posiblecon objeto de
asegurar la viabilidad de los microorganismos, evitar que proliferenlas bacteria que
componen la flora normal y acortar el tiempo de contacto con sustancias inhibitorias
utilizadas en la toma de muestra.
b. Procedimiento para realizar antisepsia de piel.
• Aplicación: La antisepsia de piel con alcohol y povidona yodada debe realizarse antes de
cualquier procedimiento de toma de muestra en que se rompa la barrera epidérmica
(aspiración con jeringa, punciones diagnósticas, etc.). Esto es de principal importancia en
la toma de muestras de hemocultivos, ya que la toma de muestras es el principal factor de
contaminación con flora cutánea.
• Material necesario:
Alcohol etílico o isopropílico al 70%
Povidona yodada
Compresas estériles
Guantes estériles
Guantes estériles y de procedimiento
• Técnica
Con guantes de procedimiento, limpiar la zona con compresas estériles
empapadas en alcohol, del centro hacia la periferia. Abarcar una zona de +/- 10 cm,
alrededor de la zona a puncionar.
Repetir la operación con povidona. Dejar secar por dos minutos para que la
povidona ejerza su acción antiséptica (en pacientes con hipersensibilidad al yodo, utilizar
alcohol dos veces consecutivas en lugar de povidona).
-
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Solamente tocar la zona con guantes estériles después de realizada la antisepsia.
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c. Cultivo corriente. Incluye las siguientes muestras:
1. Muestras del tracto respiratorio superior
I.
Faringo-Amigdalino.
Material Necesario.
*
Baja lengua
*
Tórula de algodón con medio de transporte (Stuart o Amies)
Técnica.
*
Bajo visión directa, con la ayuda del baja lengua, tocar con la tórula
en faringe posterior y criptas tonsilares, especialmente las áreas
con exudado, membranas o inflamación.
*
No tocar nunca la mucosa oral, lengua o úvula.
*
Introducir la tórula inmediatamente al medio de transporte.
-
Transporte y Conservación.
-
*
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.
*
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observaciones.
*
*
*
II.
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En sospecha de difteria enviar porciones de membrana, una tórula
faringea y una tórula nasofaringea.
Especificar en la orden si se solicita cultivo de gonococo.
Especificar si el paciente es portador de fibrosis quística.
Nasal
Material Necesario.
*
Tórula fina de algodón con medio de transporte (Stuart o Amies)
*
Suero fisiológico estéril.
Técnica.
*
Introducir suavemente una tórula fina +/-2cm en la nariz, en
dirección paralela al piso nasal.
*
Girar suavemente contra la mucosa de la superficie nasal, extraer
la tórula e introducirla inmediatamente al medio detransporte.
Página 19
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
*
III.
Transporte y Conservación.
-
*
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas
*
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observaciones.
Los cultivos de exudados nasales NO deben ser utilizados para el
diagnóstico etiológico de la sinusitis.
Aspirado Sinusal
-
-
Material Necesario.
*
Tubo estéril sin aditivo (tapa roja) o frasco estéril.
*
Frasco de anaerobiosis (Portagerm/Port F) si se solicita cultivo de
anaerobios.
Técnica.
*
Aspiración.
N° de muestras.
*
Volumen mínimo 1 ml.
*
-
*
-
En caso de solicitud de cultivo anaerobio transferir parte de la
muestra al medio de transporte anaerobio (ver punto “c” cultivo
de anaerobios).
Transporte y conservación.
*
Muestra en frasco sin medio de transporte: Transporte a
temperatur a ambiente inmediato (15 minutos)
Muestras en medio de transporte anaerobio: Transporte a
temperatura ambiente hasta dos horas
Observaciones.
*
LABPRO
Si se utiliza tórula de algodón, humedecer en suero fisiológico
estéril antes de introducir.
-
*
PAGINA 1 DE 00
Procedimiento médico.
Página 20
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
-
PAGINA 1 DE 00
Material Necesario.
*
*
-
*
*
-
Limpieza del oído externo con una tórula humedecida en suero
fisiológico estéril.
Obtener la muestra rotando la tórula en el conducto auditivo.
Introducir la tórula inmediatamente al medio de transporte.
Transporte y Conservación.
*
*
-
Tórula fina de algodón con medio de transporte Stuart o Amies.
Suero fisiologico estéril.
Técnica.
*
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observaciones.
*
Suele tratarse de muestras de mala calidad y en ningun caso
resultan representativas de los microorganismos existentes en
oído medio.
Secreción Otica (Timpanocentesis).
-
Material Necesario.
*
*
LABPRO
REVISION:
00/00/00
Secreción Otica (Conducto auditivo externo).
IV
V.
VERSION OO
Tubo estéril sin aditivo (tapa roja) o frasco estéril
Tórula fina de algodón con medio de trnsporte Stuart o Amies, en
caso que la membrana timpánica esté rota.
Página 21
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
PAGINA 1 DE 00
Técnica.
-
*
*
Aspiración con jeringa por punción timpánica.
Recolectar el fluido con la tórula en caso de membrana timpánica
rota.
Transporte y Conservación.
-
*
*
Muestra sin medio de transporte: Transporte a temperatura
ambiente inmediato ( 15 minutos).
Muestra en medio de transporte: Transporte a temperatura
ambiente hasta dos horas.
Observación.
-
*
Procedimiento médico.
2. Muestras del tracto respiratorio inferior.
I.
LABPRO
Expectoración.
-
Material Necesario.
*
Frasco estéril hermético de boca ancha.
*
Suero fisiológico estéril y nebulizador.
-
Técnica.
*
Enjuagar la boca con agua destilada estéril o solución salina (evitar
uso de pasta de dientes o enjuagues bucales comerciales).
*
Obtener el esputo tras una expectoración profunda,
preferentemente matinal.
*
Volumen: 2 a 10 ml.
*
De no producirse expectoración espontánea, puede inducirse el
esputo con nebulizaciones de suero fisiológico estéril (15 ml
Página 22
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
PAGINA 1 DE 00
durante 10 minutos). Drenaje postural o kinesioterapia
respiratoria.
-
Transporte y Conservación.
*
*
-
Observaciones.
*
*
II.
No útil para anaerobios.
El Laboratorio de Microbiología puede rechazar la muestra y
solicitar una nueva si la calidad no es la adecuada ( de acuerdo a la
evaluación por tinción de gram.)
Aspirado Traqueal cuantitativo
-
Material Necesario.
*
-
-
Según la norma de IIH.
Volumen.
*
-
Frasco hermético estéril.
Técnica.
*
Mínimo 2 ml.
Transporte y Conservación.
*
*
LABPRO
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.
Conservación a 4°C hasta 24 horas.
Transporte a temperatura ambiente hasta 2 horas.
Conservación a 4° C hasta 24 horas.
Página 23
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
-
III.
PAGINA 1 DE 00
Observaciones.
*
Sólo pacientes sometidos a ventilación mecánica (diagnóstico de
Neumonía Asociada a Ventilación Mecánica).
Lavado broncoalveolar/ Cepillado bronquial.
-
Material Necesario.
*
-
Frasco hermético estéril.
Técnica.
*
-
Broncoscopia.
Volumen.
*
*
-
Mínimo 2 ml
Mínimo 5 ml si además de cultivo corriente se solicitan otros
estudios (cultivo de hongos, Koch, estudio viral).
Transporte y Conservación.
*
*
-
Transporte a temperatura ambiente hasta 2 horas.
Conservación a 4°C hasta 24 horas.
Observaciones.
*
Procedimiento médico
3. Muestras Oculares.
I.
Secreción o frotis conjuntival.
-
Material Necesario.
*
*
LABPRO
Tórulas con medio de transporte Stuart o Amies.
Suero salino estéril.
Página 24
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
-
Técnica.
*
*
*
-
*
Con una tórula humedecida en suero fisiológico estéril frotar
sobre la conjuntiva tarsal inferior y el fornix (angulo interno).
Introducir la torula inmediatamente en el medio de transporte
Transportar a temperatura ambiente hasta dos horas. No
refrigerar.
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Raspado corneal.Material Necesario.*
-
-
Inoculación directa de las placas de cultivo.
Transporte y Conservación.*
*
-
Placas de cultivo AS/ACH/ASab/koch/Caldo tioglicolato.
Portaobjetos (2 – 4)
Espátula estéril.
Técnica.*
LABPRO
Debe obtenerse la muestra antes de la instalación de los
analgésico locales , colirios o antibióticos.
Transporte y Conservación.
*
III.
PAGINA 1 DE 00
Transporte inmediato a temperatura ambiente.
Las placas sembradas deben trasladarse al laboratorio de
microbiología antes de 15 minutos.
Observaciones.-
Página 25
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
*
*
4.-
REVISION:
00/00/00
PAGINA 1 DE 00
Procedimiento médico.
Coordinación previa con laboratorio de microbiología.
Muestras de piel y Tejidos blandos.
I.-
Ulceras – Quemaduras y Heridas superficiales.
-
Material Necesario.*
*
-
*
*
-
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observaciones.*
*
II.-
Lavar cuidadosamente la superficie de la herida por arrastre
mecánico, eliminar detritus y secreción superficial.
Con la tórula frotar la parte más profunda, evitando el contacto
con la piel adyacente.
Introducir la tórula inmediatamente en el medio de transporte.
Transporte y Conservación.*
*
-
Tórula de algodón con medio de transporte Stuart o Amies.
Material para realizar aseo de la zona (suero fisiologico estéril o
agua bidestilada estéril, compresas).
Técnica.*
Muestra en tórula no es apta para cultivo de anaerobios.
En caso de solicitud de cultivo de anaerobios, la muestra debe ser
tomada por el médico solicitante mediante aspiración con jeringa
o por el envío de tejido en frasco estéril.
Vesículas – Estudio de celulitis o erisipela.-
LABPRO
VERSION OO
Material Necesario.Página 26
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
-
*
*
*
Jeringa y aguja estéril.
Tubo estérilsin aditivo (tapa roja) o frasco estéril.
Tórula con medio de transporte Stuart o Amies en caso de
vesículas ulceradas o costrosas.
*
*
*
Alcohol etílico o isopropilico al 70%
Compresas esteriles.
Guantes estériles y de procedimiento.
Técnica.*
*
*
*
-
-
Transporte a temperatura ambiente inmediato (15 minutos).
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observaciones.*
*
Procedimiento médico.
Si se solicita estudio viral de la lesión (IF/PCR/Cultivo para VZV o
HSV) transferir la muestra al medio de transporte viral y trasladar
en forma inmediata a 4°C.
Abscesos cerrados.-
Material Necesario.*
*
*
*
LABPRO
Realizar antisepsia de la piel con alcohol 70%; limpiar la zona con
compresas estériles empapadas en aalcohol, del centro hacia la
periferia. Abarcar una zona de +/-10 cm. Alrededor de la zona a
puncionar.
Aspirardirectamente con jeringa el contenido de las lesiones.
Cuando no sea suficiente, instilar una pequeña cantidad de suero
salino estéril y aspirarlo.
Transferir la muestra a un tubo o frasco estéril.
En caso de úlceras secundarias o costrosas, remover la secreción
superficial y raspar con tórula la base de la lesión.
Transporte y Conservación.*
*
III.-
PAGINA 1 DE 00
Jeringa de 5 o 10 ml y aguja estéril.
Tubo estéril sin aditivo (tapa roja) o frasco estéril.
Frascos de anaerobiosis (Portagerm/Port F) si se solicita cultivo
de anaerobios.
Material para realizar antisepsia de piel.
Página 27
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
-
-
Técnica.*
Realizar antisepsia de piel con alcohol 70% y povidona yodada.
*
*
*
Puncionar y aspirar directamente el material con jeringa.
Transferir la muestra a un tubo o frasco estéril.
En caso de solicitud de cultivo anaerobio transferir parte de la
muestra al medio de transporte anaerobio ( ver punto C; cultivo
de anaerobios.).
Transporte y Conservación.
*
*
*
-
PAGINA 1 DE 00
Muestra en frasco sin medio de transporte ; Transporte a
Temperatura ambiente inmediato (15 minutos).
Muestra en medio de transporte anaerobio: transporte a
temperatura ambiente hasta dos horas.
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observaciones.*
Procedimiento médico.
IV.- Quemaduras (Estudio cuantitativo).
-
Material Necesario.*
-
Técnica.*
-
Utilizar técnica aséptica para obtener un trozo de tejido
representativo e introducirlo inmediatamente al frasco estéril.
Transporte y Conservación.*
*
LABPRO
Tubo estéril sin aditivo (tapa roja) o frascp estéril.
Transporte aa temperatura ambiente inmediato ( 15 min).
Muestra en medio de transporte anaerobio : Transporte a
Página 28
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
*
-
REVISION:
00/00/00
PAGINA 1 DE 00
temperatura ambiente hasta dos horas.
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observación.
*
5.-
VERSION OO
Procedimiento médico.
Muestras de Líquidos estériles.I.-
Líquido Cefalorraquídeo.-
Material Necesario.
*
*
*
*
*
-
Técnica.*
*
*
*
*
-
realizar antisepsia de piel con alcohol 70% y
povidona yodada
Puncionar y aspirar directamente con jeringa
según el procedimiento de punción lumbar.
Transferir la muestra a un tubo estéril sin aditivo.
En caso de solicitud de estudio viral (PCR/Cultivo)
transferir parte de la muestra (mínimo 1ml) a un
tubo hermético estéril sin aditivos para su traslado.
En caso de solicitud de cultivo anaerobio transferir parte
de la muestra al medio de transporte anaerobio (ver
punto C: Cultivo de anaerobios.
Volumen.*
*
LABPRO
Jeringa y aguja estéril.
Tubo estéril sin aditivo (tapa roja).
Frasco de anaerobiosis (Portagerm/Port F) si se
solicita cultivo de anaerobios.
Material para realizar antisepsia de piel.
Guantes estériles.
Mínimo 1 ml.
Si se solicitan otros estudios (anaerobios, viral,
micobacterias, hongos), considerar 1 a2 ml por prueba.
Página 29
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
-
PAGINA 1 DE 00
*
Transporte a temperatura ambiente inmediato (15 min.)
no refrigerar.
*
El tubo para estudio viral debe transportarse a 4°C en
forma inmediata.
-
Observaciones.Procedimiento médico.
Líquido articular (sinovial) – Líquido Pleural – Líquido Ascitico
(peritoneal) Líquido Pericárdico.
-
Material Necesario.*
*
*
*
*
-
*
-
Jeringa y aguja estéril.
Tubo estéril sin aditivo (tapa roja) o frasco de
Hemocultivo pediátrico BACT ALERT (tapa amarilla).
Frasco de anaerobiosis (Portagerm/Port F) si se solicita
cultivo de anaerobios.
Material para realizar antisepsia de piel.
Guantes estériles.
Técnica.*
*
*
Realizar antisepsia de piel con povidona yodada y alcohol
Puncionar y aspirar directamente con jeringa.
Transferir la muestra a un tubo estéril o a un frasco de
hemocultivo (rotular el frasco, sacar la tapa plástica y
desinfectar el tapón de goma del frasco de hemocultivo
con alcohol 70% antes de realizar la antisepsia de piel).
En caso de solicitud de cultivo anaerobio transferir parte
de la muestra al medio de transporte anaerobio. (ver
punto C: Cultivo de anaerobios.).
Volumen.*
*
LABPRO
REVISION:
00/00/00
Transporte y Conservación.
*
II.-
VERSION OO
Mínimo 1 ml.
Frasco de hemocultivo pediatrico: 0.5 a 4 ml
Página 30
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
*
-
Si se solicitan otros estudios (anaerobios, viral,
micobacterias, hongos) considerar 1 a 2 ml por prueba.
Transporte y Conservación.*
*
*
-
PAGINA 1 DE 00
Transporte a temperatura ambiente inmediato (15 min.).
Muestra en frasco de hemocultivo o medio de transporte
anaerobio: Transporte a temperatura ambiente hasta 2 h
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observaciones.*
*
Procedimiento médico.
En líquido articular especificar si se solicita cultivo de
Neisseria gonorrhoeae (gonococo)
.
6.-
Muestras de Tejido.I.-
Tejidos.-
Material Necesario.*
-
Técnica.*
-
*
LABPRO
Basta con un trozo de tejido (+/- 0.5 x 0.5 cm)
para: Cultivo de anaerobios y cultivo de hongos.
Un trozo distinto de tejido (+/- 0.5 x 0.5 cm) si se solicita
estudio viral o estudio de micobacterias.
Transporte y Conservación.*
*
-
Procedimiento médico.
Volumen.*
-
Frasco estéril sin aditivos.
Transporte a temperatura ambiente inmediato (15 min.).
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observaciones.-
Página 31
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
*
7.-
Procedimiento médico.
Cultivo de Punta de Cateter Venoso Central.I.-
Punta de cateter.-
Material Necesario.*
*
-
*
-
Realizar antisepsia de piel con alcohol 70° y povidona.
Remover el cateter en forma aséptica.
Cortar 3 a 5 cm del extremo distal del catéter en forma
aséptica, pinzando el extremo distal para proceder.
Colocar la punta en el frasco estéril y cerrar inmediato.
Transporte y Conservación.*
-
Frasco estéril.
Material para realizar antisepsia de piel.
Técnica.*
*
*
Transporte a temperatura ambiente inmediato (15 min.).
Observaciones.*
LABPRO
PAGINA 1 DE 00
No envíar a cultivo de rutina, sólo en sospecha de
Infección asociada a CVC.
Página 32
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
d.-
PAGINA 1 DE 00
Cultivo Anaeróbico.1.-
Líquidos o fluidos.I.-
Líquidos o fluidos.-
Material Necesario.*
*
*
*
-
Jeringa y ajuga estéril.
Frasco de anaerobiosis (Portagerm/Port F)
Alcohol 70° y algodón para desinfección del frasco.
Material para realizar antisepsia de piel.
Técnica.*
Las muetras a las que se le solita cultivo anaerobico
deben ser recolectadas por aspiración con aguja y jeringa
estéril.
Las muestras deben transferirse directamente al medio
de transporte para anaerobios (Portagerm/Port F)
Inmediatamente después de tomadas.
Para esto, desinfectar el tapón del frasco con alcohol,
puncionar el tapón con la aguja (No abrir el frasco) y
depositar la muestra en el frasco.
*
*
-
Volumen.*
-
Mínimo 1 ml.
Transporte y Conservación.*
*
LABPRO
El Transporte de muestras en medio de transporte
anaeróbico debe realizarse dentro de dos horas, a
temperatura ambiente, protegido de la luz
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Página 33
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
-
REVISION:
00/00/00
PAGINA 1 DE 00
Observaciones.*
*
*
2.-
VERSION OO
Procedimiento médico.
El medio de transporte (Portagerm/Port F) debe almacenarse a temperatura ambiente, protegido de la luz.
No deben utilizarse los frascos que presenten coloración
azul-lavanda del agar (medio).
Tejidos.I.-
Tejidos.-
Material Necesario.*
-
Técnica.*
-
Basta con un trozo de tejido (+/- 0.5 x 0.5 cm).
Transporte y Conservación.*
*
-
Las muestras de tejido o biopsiaspueden ser enviadas en
frasco estéril hermético sin aditivos, ya que el tejido proteje la anaerobiosis.
Volumen.*
-
Frasco estéril hermético.
Transporte inmediato a temperatura ambiente (máx 2hr)
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observaciones.*
Procedimiento médico.
NO son útiles para el cultivo de anaeróbios: muestras tomadas en tórula,
muestras de orina (excepto la punción suprapúbica), muestras de deposición
(excepto búsqueda de C. difficile), secreción faríngea o nasofaringea, secreción
uretral, secreción vaginal o endocervical, loquios, exudados superficiales.
LABPRO
Página 34
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
e.-
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
PAGINA 1 DE 00
Urocultivo
1.-
Orina de segundo chorro.I.-
Orina de segundo chorro.-
Material Necesario.*
*
-
Técnica.*
Explicar al paciente el procedimiento y entregar instructivo correspondiente.
*
Realizar el aseo genital según lo descrito en el Capítulo
“Obtención de Muestras de orina”.
-
Volumen.*
-
*
-
2 a 5 ml.
Transporte y Conservación.*
Debe trasladarse en forma inmediata al laboratorio (antes de dos horas) a temperatura ambiente o a 4°C.
Puede mantenerse refrigerada (4°C) hasta 24 horas.
Observaciones.
*
*
LABPRO
Frasco estéril de boca ancha.
Material para aseo genital: Tórulas o gasas estériles,riñon
estéril, agua, jabón neutro, guantes de procedimiento.
Idealmente usar primera micción de la mañana.
Si esto no es posible, realizar la toma de muestra despue
s de tres horas de retención.
Página 35
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
2.-
PAGINA 1 DE 00
Orina por recolector.I.-
Orina por recolector.-
Material Necesario.*
*
*
-
Recolector.Frasco estéril de boca ancha.Material para aseo genital: Tórulas o gasas estériles,
riñon estéril, agua, jabón neutro, guantes de proced.
Técnica.*
*
*
-
Volumen.*
-
Registrar el tipo de muestra (orina por recolector).
Orina por cateterismo vesical.-
Material Necesario.*
*
*
LABPRO
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.
Conservación a 4°C hasta 24 horas.
Observaciones.*
II.-
1 a 5 ml.
Transporte y Conservación.*
*
-
Realizar el aseo genital, según lo descrito en el capítulo
“Obtención de Muestras de orina.
No mantener el recolector más de 30 minutos.
Traspasar al frasco estéril y cerrar inmediatamente.
Frasco estéril de boca ancha.
Sonda Nelaton estéril.
Guantes estériles.
Página 36
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
*
-
Material para aseo genital: tórulas o gasas estériles, riñón
estéril, agua, jabón neutro, guantes de procedimiento.
Técnica.*
*
*
-
-
*
Transporte a temperatura ambiente hasta 2 horas.
*
Conservaciön a 4°C hasta 24 horas.
Observaciones.Registrar el tipo de muestra. (orina por cateterismo
vesical.)
Orina por punción de catéter urinario permanente.-
Material Necesario.*
*
*
LABPRO
2 a 5 ml.
Transporte y Conservación.-
*
III.-
Realizar aseo genital según lo descrito en el capítulo
“Obtención de Muestras de orina”.
Con guantes estériles, separando labios menores en la
mujer con una gasa estéril, introducir la sonda en forma
aseptica hasta que comienze a fluir la orina.
Recolectar la orina en frasco estéril.
Volumen.*
-
PAGINA 1 DE 00
Frasco estéril de boca ancha.
Jeringa y aguja estéril.
Alcohol 70°.
Página 37
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
-
Volumen.*
*
Registrar el tipo de muestra (orina por punción de CUP).
En pacientes portadores de CUP, idealmente cambiar la
sonda para tomar urocultivo, sólo puncionar cuando esto
no sea posible.
No debe tomarse cultivos de rutina en pacientes
portadores de CUP (sólo ante sospecha de infección del
tracto urinario).
Orina por punción suprapúbica.-
Material Necesario.*
*
*
-
Frasco estéril de boca ancha.
Jeringa y aguja estéril.
Material para realizar antisepsia de piel: alcohol etílico o
isopropílico al 70%, povidona yodada, compresas estériles.
Técnica.*
LABPRO
Transporte a temperatura aambiente hasta dos horas.
Conservación a 4°C hasta 24 horas.
Observaciones.*
*
IV.-
2 a 5 ml.
Transporte y Conservación.*
*
-
PAGINA 1 DE 00
Desinfectar el sitio de punción del segmento proximal del
cateter con alcohol 70°
Aspirar con jeringa estéril entre 2 a 5 ml de orina, vaciar
inmediatamente al frasco estéril.
*
-
REVISION:
00/00/00
Técnica.*
-
VERSION OO
Punción y aspiración con técnica aséptica
Página 38
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
-
Volumen.*
-
2 a 5 ml
Transporte y Conservación.*
*
-
PAGINA 1 DE 00
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.
Puede mantenerse refrigerada (4°C) hasta 24 horas.
Observaciones.*
*
*
Procedimiento médico.
Registrar el tipo de muestra (orina por punción vesical).
Técnica de elección si se solicita cultivo anaeróbico de
orina.
DETERMINACION DE VOLUMEN NECESARIO
Urocultivo.
- Transporte en frasco estéril hermético a 4°C
- Almacenar máximo 24 horas a 4°C
Cultivo de anaerobios 2 a 5 ml
- Sólo por punción suprapúbica.
- Transportar en medio de transporte anaeróbico
a temperatura ambiente.
Cultivo de hongos
Mínimo 20 ml - Primera micción de la mañana (no enviar orina
de 24 horas.
- Transporte de inmediato al laboratorio.- Almacenar a 4°C máximo 4 horas.Cultivo de
40 ml
- Primera micción de la mañana por tres días
Micobacterias
(mínimo 20 ml) consecutivos (no orina de 24 horas).
- Transportar en frasco estéril oscuro o protegido
de la luz.
- Transporte de inmediato al laboratorio.
- Almacenar a 4°C máximo 2 horas.
LABPRO
2 a 5 ml
Página 39
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
f.-
PAGINA 1 DE 00
Coprocultivo.1.-
Coprocultivo.I.-
Coprocultivo.-
Material Necesario.*
-
Tórula de algodón con medio de transporte Cary-Blair
Técnica.*
-
Obtener deposición recién emitida con la tórula, seleccionando la zona más alterada de la deposición (mucus, pus,
sangre) e introducirla inmediatamente al medio de
transporte.
Volumen.*
-
Una tórula por paciente.-
Transporte y Conservación.*
*
-
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.
Conservación a 4°C hasta 48 horas.-
Observaciones.*
II.-
No enviar muestras en medio de transporte Stuart o
Amies.
Torulado rectal.-
Material Necesario.*
-
Tórula de algodón con medio de transporte Cary-Blair.
Técnica.*
Introducir la tórula por el esfinter anal alrededor de tres
cm. rotar suavemente y retirar.
LABPRO
Página 40
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
*
-
Transporte a temperatura ambiente hasta 2 horas.
Conservación a 4°C hasta 48 horas.
Observaciones.*
2.-
No enviar muestra en medio de transp. Stuart o Amies.
Detección de Toxina de Clostridium difficile.
I.-
Detección de Toxina AB de Clostridium difficile.
-
Material Necesario.*
-
Frasco estéril de boca ancha.
Técnica.*
-
Recolectar deposición recién emitida en el frasco estéril.
Volumen.*
-
5 a 10 ml de deposición.-
Transporte y Conservación.*
-
Debe trasladarse en forma inmediata al laboratorio
(antes de dos horas) a temperatura ambiente.
Observaciones.*
*
LABPRO
Introducir la tórula inmediatamente en el medio de
transporte Cary-Blair.
Transporte y Conservación.*
*
-
PAGINA 1 DE 00
Enviar muestra fresca, sin medio de transporte.
Si además se solicita coprocultivo, tomar otra muestra
para enviar en medio transporte Cary-Blair.
Página 41
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
3.-
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
PAGINA 1 DE 00
Detección de Rotavirus.Seguir la misma técnica que para la detección de Toxina de Clostridium difficile.
4.-
Detección de Leucocitos fecales.Seguir la misma técnica que para la detección de Toxina de Clostridium difficile.
g.-
Hemocultivo.1.-
Antisepsia de piel.I.-
Procedimiento para realizar antisepsia de piel.-
Material necesario.*
*
*
*
-
Alcohol etílico o isopropílico al 70%
Povidona yodada.
Compresas estériles.
Guantes estériles y de procedimiento.
Técnica.*
*
*
*
LABPRO
Con guantes de procedimiento, limpiar la zona con
alcohol, del centro hacia la periferia. Abarcar una zona
de +/- 10 cm, alrededor de la zona a puncionar.
Repetir la operación con povidona yodada. En pacientes
con hipersensibilidad al yodo, utilizar alcohol dos veces
consecutivas en lugar de povidona.
Dejar secar por dos minutos para que la povidona ejerza
su acción antiséptica.
Solamente tocar la zona con guantes estériles después de
realizada la antisepsia.
Página 42
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
II.-
REVISION:
00/00/00
PAGINA 1 DE 00
Hemocultivos peiféricos.-
Objetivo.*
-
Diagnóstico etiológico de bacteriemias.-
Material Necesario.*
*
Jeringa y aguja estéril.
Frasco de hemocultivo BACT ALERT: Adulto con resina
(tapa verde). Pediátrico con resina (tapa amarilla).
Material para antsepsia de piel.
Algodón para la desinfección del tapón de los frascos.
*
*
-
Técnica.*
*
*
*
*
*
*
-
Rotular los frascos con el nombre del paciente, N° de
petición, fecha y hora de la toma del hemocultivo.
Retirar la tapa plástica y desinfectar el tapón de goma del
frasco con un algodón impregnado en alcohol 70°.
Realizar la antisepsia de la piel.
Con guantes estériles, puncionar la vena con jeringa en
forma aséptica y extraer el volumen de sangre deseado.
Inocular la botella de hemocultivo sin cambiar la aguja.
Marcar si corresponde al primer, segundo o tercer frasco
(I – II –III).
No debe utilizarse la misma punción para inocular más de
una botella. Cada hemocultivo debe realizarse en un
sitio de punción diferente, idealmente separados por 30
a 90 minutos.
Volumen.*
*
LABPRO
VERSION OO
Adultos: 10 ml de sangre por frasco.
Niños 2 a 5 ml de sangre por frasco. Mínimo 0.5 ml por
frasco (neonatos).
Página 43
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
-
Transporte y Conservación.*
-
*
*
Se recomienda un mínimo de dos botellas por paciente.
Se recomienda tres botellas (de tres sitios de punción
diferente) en caso de sospecha de endocarditis y repetir la
serie si los hemocultivos son negativos a las 24 horas.
Cada botella debe ser tomada de una punción venosa
diferente (no inocular más de una botella con la misma
aguja ni punción). Cada punción debe estar distanciada de
la siguiente por 30 a 90 minutos (en caso de pacientes
graves, pueden obtenese las muestras en forma
simultánea, siempre que se realicen las punciones de sitios
diferentes).
No escribir sobre el código de barra de la botella.
Hemocultivos con tiempo diferencial.-
Material Necesario.*
*
*
*
-
jeringa y aguja estéril.
Frasco de hemocultivo BACT ALERT : Adulto con resina
(tapa verde). Pediátrico con resina (tapa amarilla).
Material para antisepsia de piel.
Algodón para la desinfección del tapón de los frascos.
Técnica.*
*
*
LABPRO
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.
Observaciones.*
*
III.-
PAGINA 1 DE 00
Lavado clínico de manos.
Realizar antisepsia de piel alrededor del catéter.
Con guantes estériles, extraer un ml de sangre por el
catéter central y eliminar. Luego extraer 10 ml (adulto) o
1 a 5 ml (niños) a través del catéter e inocular una botella
de hemocultivo (adulto o pediátrico según corresponda).
Página 44
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
*
*
-
Realizar antisepsia de piel para hemocultivo peiferico.
Obtener dos hemocultivos periféricos de sitios de punción
diferentes.
Transporte y Conservación.*
-
Transporte a temperatura ambiente hasta 2 horas
Observación.*
*
*
*
h.-
Desinfectar el tapón de los frascos con alcohol 70° antes
de inocular.
Rotular los frascos con el nombre del paciente, fecha y
hora de la toma del hemocultivo. Marcar en la botella si
corresponde al hemocultivo central (si se toma mas de
un cultivo central, especificar que cateter) o periférico (I
o II).
Cada botella debe ser tomada de una punción venosa
diferente (no inocular mas de una botella con la misma
aguja ni punción)
No escribir sobre el código de barra de la botella.
Detección de virus respiratorios o BORDETELLA PERTUSSIS.
-
Aspirado Nasofaringeo.-
Material Necesario.*
*
*
*
*
*
LABPRO
PAGINA 1 DE 00
Red de aspiración central.
Sonda de aspiración estéril
Tubo para aspiración de secreciones.
Medio de transporte viral (mantener refrigerado).
Guantes estériles.
Mascarilla desechable y antiparras.
Página 45
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
-
*
*
Lavado clínico de manos.
Con guantes estériles, introducir cuidadosamente la onda
de aspiración por una fosa nasal hacia la nasofaringe.
Sólo al llegar a la nasofaringe aspirar las secreciones.
Retirar la sonda.
Transferir la muestra al medio de transporte viral. Rotular
el tubo de transporte.
Transporte a 4°C hasta 2 horas.
Conservación a 4°C hasta 24 horas.
Observaciones.
*
*
*
*
*
LABPRO
PAGINA 1 DE 00
Transporte y Conservación.*
*
-
REVISION:
00/00/00
Técnica.*
*
-
VERSION OO
El procedimiento debe ser realizado por enfermera (o) y
debe contar con un ayudante.
Explicar al paciente o su familiar el procedimiento para
obtener cooperación.
La introducción de la sonda provoca tos en forma refleja.
Se requiere ayuno para obtener una buena toma de
muestra.
Evitar enviar muestras de saliva o muestras
sanguinolentas, para obtener un adecuado número de
células epiteliales.
Página 46
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
-
Torulado o hisopado retrofaríngeo.-
Material Necesario.*
*
*
*
-
*
*
*
*
-
Lavado clínico de manos.
Colocar la cabeza del paciente inclinada hacia atrás en un
angulo de 70°.Con guantes de procedimiento, introducir el hisopo en la
fosa nasal. Deslizar el hisopo por la mucosa del piso de la
fosa nasal (nunca con dirección hacia arriba) hasta tocar la
pared posterior de la faringe.
Frotar y girar el hisopo en la faringe, para obtener células
epiteliales.
Retirar el hisopo y repetir el procedimiento en la otra fosa
nasal.
Introducir el hisopo en medio de transporte. Rotular el
tubo de transporte.
Transporte y Conservación.*
*
-
Hisopo de dracón o rayón con base plástica o de alambre
flexible (no madera) con medio de transporte viral.
Medio de transporte viral (mantener refrigerado)
Guantes de procedimiento.
Mascarilla desechable.
Técnica.*
*
Transporte a 4°C hasta 2 horas.
Conservación a 4°C hasta 24 horas.
Observaciones.*
*
LABPRO
PAGINA 1 DE 00
Método de elección en pacientes adultos.
Explicar al paciente el procedimiento para obtener
cooperación
Página 47
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
*
i.-
REVISION:
00/00/00
PAGINA 1 DE 00
Evitar tórulas de algodón y de alginato.
Tracto Genital Femenino.-
Flujo Vaginal.-
Material Necesario.*
*
*
*
*
*
-
*
*
*
*
-
Camilla ginecológica.
Espéculo estéril.
Tórula estéril de alginato cálcico o dracón con medio de
transporte Stuart o Amies (cultivo corriente).
Dos tórulas sin medio de transporte para realizar
extendido y examen directo.
Tubo con dos ml de suero fisiológico estéril (examen
directo).
Lámina portaobjeto.
Técnica.*
Con la paciente en posición ginecológica introducir el
espéculo sin lubricante (si es necesario para lubricar
utilizar agua tibia).
Recoger bajo visión directa la muestra con una tórula, de la
zona con mayor exudado, o en su defecto, del fondo del
saco vaginal posterior.
Introducir la tórula en el medio de transporte (cultivo).
Repetir la operación con una segunda tórula para realizar
el extendido en portaobjeto (examen microscópico).
Utilizar una tercera tórula para introducir en suero
fisiológico (examen directo).
N° de muestras.*
*
LABPRO
VERSION OO
Solicitud de cultivo corriente: obtener dos tórulas, una
destinada al estudio microscópico y otra al cultivo.
Solicitud de estudio de flujo vaginal: obtener las tres
tórulas descritas.
Página 48
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
-
*
*
Transporte inmediato a temperatura ambiente o conservar
hasta dos horas a 37°C (tórula en suero fisiológico). No
refrigerar.
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas
(tórula en medio de transporte y frotis en portaobjeto). No
refrigerar.
Ante sospecha de infección por Chlamydia trachomatis,
Mycoplasma hominis o Ureaplasma urealtycum, enviar
muestra endocervical.
No deben utilizarse en los días previos a la toma de
muestra, soluciones antisépticas vaginales, óvulos ni
pomadas. En paciente embarazadas la toma de muestra
es un procedimiento médico.
Secreción Endocervical.-
Material Necesario.*
*
*
*
*
*
LABPRO
PAGINA 1 DE 00
Observaciones.*
-
REVISION:
00/00/00
Transporte y Conservación.*
-
VERSION OO
Camilla ginecológica.
Espéculo estéril.
Tórulas sin medio de transporte para limpieza de
exocérvix.
Tórula estéril de alginato cálcico o dracón con medio de
transporte Stuart o Amies (cultivo corriente).
Lámina portaobjeto y tórula sin medio de transporte para
realizar extendido.
Para estudio de Mycoplasma/Ureaplasma se requiere de
tórula y medio de transporte especifico (frasco de tapa
rosca blanca rotulado como R1).
Página 49
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
*
-
*
*
*
*
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.
Conservación hasta 24 horas a temperatura ambiente.
Observaciones.*
*
LABPRO
Solicitud de cultivo corriente: obtener dos tórulas, una
destinada al estudio microscópico y otra al cultivo.
Solicitud de Mycoplasma: obtener una tórula adicional e
inocular en el medio de transporte específico.
Solicitud de Chlamydia: obtener una tórula de alginato
cálcico adicional y enviar sin medio de transporte.
Transporte y Conservación.*
*
-
Con la paciente en posición ginecológica introducir el
espéculo sin lubricante (si es necesario para lubricar
utilizar agua tibia).
Bajo visión directa, limpiar el exocervix de secreciones
vaginales con una tórula seca.
Introducir una tórula en el canal endocervical con un suave
movimiento de rotación. Repetir la operación para obtener
el número de muestras adecuado según los exámenes
solicitados.
N° de muestras.*
-
Para estudio de Chlamydia se requiere tórula de Alginato
cálcico sin medio de transporte.
Técnica.*
-
PAGINA 1 DE 00
Debe evitarse el uso de tórulas de algodón.
No deben utilizarse en los días previos a la toma de
muestras, soluciones antisépticas vaginales, óvulos ni
pomadas.
Página 50
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
-
PAGINA 1 DE 00
Material Necesario.*
*
-
-
Amniocentesis.
Transporte y Conservación.*
*
*
-
Tubo estéril sin aditivo o frasco hermético estéril.
Frasco de anaerobiosis (Portagerm/Port F) si se solicita
cultivo anaeróbico.
Técnica.*
Transporte a temperatura ambiente inmediato (15
minutos)
Muestra en medio de transporte anaerobio: Transporte a
temperatura ambiente hasta dos horas.
Conservación a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observaciones.*
Procedimiento médico. Sólo indicación por especialidad.
Tracto Genital Masculino.-
Secreción uretral.-
LABPRO
REVISION:
00/00/00
Líquido amniótico.
-
j.-
VERSION OO
Material Necesario.-
Página 51
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
*
*
*
-
*
*
*
*
LABPRO
Tórula fina estéril de alginato cálcico o dracon con medio
de transporte Stuart o Amies (cultivo corriente).
Para estudio de Mycoplasma/Ureaplasma se requiere de
tórula y medio de transporte especifico (frasco de tapa
rosca blanca rotulado como R1).
Para estudio ed Chlamydia se requiere tórula de Alginato
cálcico sin medio de transporte.
En caso de exudado franco, recoger el exudado con la(s)
tórulas (s) correspondiente según los exámenes
solicitados.
El exudado puede estimularse exprimiendo la uretra.
Si no se observa exudado introducir suavemente una
tórula con movimiento rotatorio +/- 2 cm dentro de la
uretra (3 a 5 cm para busqueda de Chlamydia). Repetir la
operación para obtener el número de muestras adecuado
según los examenes solicitados.
Solicitud de cultico corriente: obtener dos tórulas, una
destinada al estudio microscópico y otra al cultivo.
Solicitud de Mycoplasma: obtener una tórula adicional e
inocular en el medio de transporte específico.
Solicitu de Chlamydias: obtener una tórula de alginato
cálcico adicional y enviar sin medio de transporte.
Transporte y Conservación.*
*
-
PAGINA 1 DE 00
N° de muestras.*
-
REVISION:
00/00/00
Técnica.*
-
VERSION OO
Transporte a temperatura ambiente hasta dos horas.
Conservación hasta 24 horas a temperatura ambiente.
Observaciones.Página 52
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
*
*
k.-
Debe evitarse el uso de tórulas de algodón.
Obtener la muestra preferentemente antes de la primera
micción de la mañana. Si esto no es posible, esperar por lo
menos una hora desde la última micción.
Baciloscopia y Cultivo de Koch.-
Expectoración.-
Material Necesario.*
-
*
*
*
-
Enjuagar la boca con agua destilada estéril o solución
salina (evitar el uso de pasta de dientes o enjuagues
bucales comerciales).
Obtener el esputotras una espectoración profunda,
preferentemente matinal.
Volumen : 2 a 10 ml.
De no producirse expectoración espontánea, puede
inducirse el esputo con nebulizaciones de suero fisiológico
estéril (15 ml durante 10 minutos). Drenaje postural o
kinesioterapia respiratoria.
Volumen.*
-
Frasco hermético estéril oscuro
Técnica.*
2 a 5 ml en frasco o tubo estéril protegido de la luz.
Transporte y Conservación.*
LABPRO
PAGINA 1 DE 00
Debe trasladarse a temperatura ambiente, protegido de la
luz, en forma inmediata al laboratorio, para su adecuado
procesamiento.
Página 53
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
*
-
*
La recolección de muestra debe realizarse a primera hora
de la mañana, antes que el paciente ingiera alimentos.Evitar muestras de salivas.
Muestras gastricas.-
Material Necesario.*
*
*
-
*
*
-
Introducir la sonda nasogástricaoralmente hasta el
estómago.
Lavarvcon 25 – 50 ml de suero fisiológico.
Aspirar la muestra y transferir a un frasco estéril.
Volumen.*
*
-
Sonda nasogástrica.
Suero fisiológico estéril.
Frasco hermético estéril.
Técnica.*
3 a 5 ml
Si se solicita baciloscopía, enviar 5 ml en frasco o tubo
estéril protegido de la luz.
Transporte y Conservación.*
*
LABPRO
Refrigerar a 4°C hasta 4 horas.
Observaciones.*
-
PAGINA 1 DE 00
Debe trasladarse a temperatura ambiente, protegido de la
luz, en forma inmediata al laboratorio, idealmente en
menos de 15 minutos, para su adecuado procesamiento.
Refrigerar a 4°C hasta 4 horas.
Página 54
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
-
Observaciones.*
*
l.-
Procedimiento médico.La recolección de muestras debe realizarse a primera hora
de la mañana antes que el paciente ingiera alimentos.
Muestras de Vigilancia.-
Detección de Enterococo resistente a Vancomicina (ERV).-
Material Necesario.*
-
*
-
Una tórula por paciente.-
Transporte y Conservación.*
-
Introducir la tórula en el esfínter anal, rotar suavemente y
retirar.
Introducir la tórula inmediatamente en el medio de
transporte.
Volumen.*
-
Tórula en medio de transporte Stuart.-
Técnica.*
LABPRO
PAGINA 1 DE 00
Mantener a temperatura ambiente hasta 4 horas.-
Observaciones.-
Página 55
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
*
*
-
La busqueda de ERV se realiza con la periocidad que
determina el comité de IIH.
El transporte se realiza en medio Stuart ( a diferencia del
coprocultivo).
Detección de portación nasal de Staphylococcus aureus.
-
Material Necesario.*
-
*
*
-
Basta con una tórula.
Transporte y Conservación.*
-
Introducir suavemente una tórula fina +/- 2 cm en la nariz,
en dirección paralela al piso nasal.Girar suavemente contra la mucosa de la superficie nasal y
extraer.
Si se utiliza tórula de algodón, humedecer en suero
fisiológico estéril antes de introducir
N° de muestras.*
-
Tórula fina de algodón con medio de transporte (Stuart o
Amies).
Técnica.*
Mantener a temperatura ambiente hasta 4 horas.-
Observaciones.*
LABPRO
PAGINA 1 DE 00
Los cultivos de exudados nasales NO deben ser utilizados
para el diagnóstico etiológico de la sinusitis.
Página 56
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
m.-
Cultivo de Hongos.-
Micosis Superficiales Cutáneas.-
Material Necesario.*
*
*
-
-
Transporte a temperatura ambiente hasta 24 horas.-
Observaciones.*
*
*
*
-
Desinfección de la zona con alcohol 70°
Raspar suavemente la lesión con bisturí o cucharilla
esterilizada y depositar la muestra en una placa petri
estéril, o entre dos portaobjetos limpios.
Transporte y Conservación.*
-
Bisturí o cucharilla estéril.Portaobjeto o placa petri estéril.
Alcohol 70° y algodón para desinfección de piel.
Técnica.*
*
Muestra debe ser tomada por personal entrenado.
Evitar sangramiento durante el raspado.
Evitar perdida de la muestra durante el transporte (sellar
las placas o envolver los portaobjetos en papel.).
Pacientes que utilicen cremas antifúngicas tópicas debe
esperar 3 a 5 días antes de tomar la muestra.
Micosis Superficiales Ungueales.-
Material Necesario.*
*
*
LABPRO
PAGINA 1 DE 00
Bisturí o cucharilla estéril.
Portaobjeto o placa de petri estéril.
Alcohol 70° y alcohol para desinfección de la piel.
Página 57
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
-
Técnica.*
*
*
-
*
Material Necesario.*
*
Pinzas.
Portaobjeto o placa de petri estéril.
Técnica.*
*
LABPRO
Muestra debe seer tomada por personal entrenado.
Remover esmalte antes de la toma de muestra.
Evitar sangramiento durante el raspado
Evitar pedida de la muestradurante el transporte (sellar las
placas o envolver los portaobjetos en papel).
Pacientes que utilicen cremas antifúngicas tópicas debe
esperar 3 a 5 días antes de tomar la muestra.
Micosis Superficial de Pelo.-
-
Transporte a temperatura ambiente hasta 24 horas.-
Observaciones.*
*
*
*
-
Desinfección de la zona con alcohol de 70°
Cortar con tijera estéril un trozo de uña comprometida.
Raspar profundamente con cicharilla estéril el lecho
ungueal (debajo de la uña) y depositar la muestra en una
placa de petri estéril, entre dos portaobjetos limpios.
Transporte y Conservación.*
-
PAGINA 1 DE 00
Tomar con las pinzas 10 a 12 pelos afectados, con raíces y
puntas intactas.
Depositar la muestra en tubo o frasco estéril.
Página 58
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
-
Transporte y Conservación.*
-
Muestra debe ser tomada por personal entrenado.
Evitar perdida de la muestra durante el transporte.
Paciente que utilice cremas antifúngicas tópicas debe
esperar 3 a 5 días antes de tomar la muestra.
Screening Streptococcus Grupo B
-
Isopado Perineo-rectal.
-
Material Necesario.
-
*
Tórula sin medio de cultivo
*
Tubo con medio LIM
Técnica.
*
*
-
-
Realizar un isopado desde el inicio del perineo hasta el
inicio del recto.
Depositar la muestra en tubo con LIM
Transporte y Conservación.
*
Transporte a temperatura ambiente hasta 4 horas.
Observaciones.
*
LABPRO
Transporte a temperatura ambiente hasta 24 horas.
Observaciones.*
*
*
n.-
PAGINA 1 DE 00
Muestra debe ser tomada por personal entrenado.
Página 59
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
IV.-
EXAMENES DE HEMATOLOGIA Y COAGULACION.-
A.-
EOSINOFILOS BRONQUIALES.-
PAGINA 1 DE 00
Para la toma de esta muestra, se solicitará al paciente tener al menos 4 horas de ayuno. Proceder
de la misma forma como se toma muestra para Baciloscopía y enviar muestra al laboratorio.
B:_
EOSINOFILOS NASALES.-
Esta muestra se debe obtener de preferencia en la mañana y cuando la secreción nasal es mas
abundante.
El paciente debe estar sentado en posición cómoda.
Hacer que el paciente se suene, eliminando la secreción más superficial.
Indicar al paciente que se apriete una fosa nasal y pedirle que soplepor la fosa nasal libre lo más
fuerte que le sea posible.
Dejar que la mucosidad eliminada toque el portaobjeto y con la tórula de madera extenderlo
suavemente, girando la tórula.
En caso de que la secreción sea más abundante y espesa, usar otro portaobjeto para extenderla.
Marcar el portaobjeto con marcador indeleble y enviar muestra al laboratorio.
C.-
HEMOGRAMA – VHS
Tomar tubo lila (EDTA) y realizar frotis sanguíneo. Si incluye recuento de plaquetas agregar tubo
celeste.
D.-
TIEMPO DE SANGRIA (IVY)
Exponer el antebrazo del paciente y escoger una zona libre de vénulas, hematomas,heridas y
otros. Limpie la zona escogida. Coloque el esfingomanómetro en el brazo del paciente y regúlelo a
40 mm hg. Se extrae el aparato de Ivy de su reservorio estéril y se quita el seguro. Se presiona el
disparador al mismo tiempo que el cronómetro, un segundo después, retire el dispositivo. Cada 30
segundos secar con papel filtro, no tocar los bordes de la incisión para no interferir con el tapón
plaquetario. Se anota el tiempo que tarda en cesar la hemorragia
LABPRO
Página 60
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
E.-
PAGINA 1 DE 00
TIEMPO DE COAGULACION.
Se observa la formación del coágulo, en condiciones estandarizadas; esta prueba mide el
mecanismo intrínsico de la coagulación.
Active el cronometro al momento de obtener la muestra. Coloque la muestra (tubo tapa roja) en
un baño termoregulado a 37°C. Realice la revisión visual del tubo cada 30 segundos hasta que se
aprecie la formación de un coagulo. En ese momento, detenga el cronometro y registre el tiempo
obtenido.
LABPRO
Página 61
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
V.-
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
PAGINA 1 DE 00
EXAMENES BIOQUIMICA Y HORMONAS.
Examen
Acido úrico
Albúmina
Bilirrubina total
Bilirrubina conjugada
Calcio
Calcio iónico
Creatinina
Colesterol total
Colesterol HDL
CK total
CK MB
Fosfatasa alcalina
Fósforo
GGT
GPT
GOT
LDH
Nitrógeno ureico
Proteína C reactiva
RPR
VDRL
Triglicéridos
Grupo ABO-Rh
LABPRO
Preparación
del paciente
Ayuno
En caso de
estudio de
lipidos, se
requiere un
ayuno min.
12 horas.
Tubo
Tubo tapa
roja
Volumen
mínimo
3 ml (para
todos o cada
uno)
Observaciones
Evitar la
hemólisis
En caso de
bilirrubinas
proteger la
muestra de
la luz
Página 62
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
PAGINA 1 DE 00
Glicemia
Test de tolerancia
a glucosa
Ayuno 8 hrs
mínimo.
Tubo tapa
gris
Según marca del
tubo
Identificación
clara del
orden de las
muestras.
Hemoglobina
glicosilada (A1C)
No requiere
ayuno.
Tapa lila con
EDTA
Según marca del
tubo
Mezcla suave
con el antico
agulante.
Proteinuria
Gluosuria
Microalbuminuria
NU urinario
Calciuria
Catecolaminas
urinarias.-
Evitar ejercicio
brusco durante
la recolección
de la muestra.
Injesta normal
Parasitologico seriado de líquidos.
de deposiciones.
LABPRO
Botellas de 1
ó 2 lt.
Frasco tapa
boca ancha
Toda la orina
recolectada.
Usar botellas
muy limpias
y secas. Reco
Lectar TODA
las miccione
30 ml
Si apareciera
gusano,
transportar
en frasco
con agua de
de llave.
Página 63
MANUAL DE
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
TOMA MUESTRAS
Hemorragia
Oculta
Troponina I
Regimen 3 días
Frasco boca
Tamaño de
previos, sin carnes ancha (sin
una nuez
rojas ni colorantes preservantes)
rojos.
Tubo tapa
PAGINA 1 DE 00
Inmunológico no
requiere dieta
Urgente
verde
Carboxihemoglobina
Metahemoglobina
Gases en sangre
LABPRO
Jeringa hepa
rina
Cadena de frío
Página 64
MANUAL DE
TOMA MUESTRAS
VI.-
VERSION OO
REVISION:
00/00/00
PAGINA 1 DE 00
DETECCION DROGAS DE ABUSO
A. Drogas de abuso en orina.
La muestra se obtendra en presencia de un veedor del laboratorio, quién verificará que la
muestra sea proporcionada por el paciente, salvaguardando la confidencialidad del
proceso y evitando importunar al paciente, pero manteniendo en todo momento la
supervisión de la toma de muestra.
El paciente debe llenar el consentimiento informado y la mustra es cerrada en su
presencia y enviada al laboratorio para su análisis.
La obtención de la muestra se realiza de la misma manera que para el examen de orina
completa.
Se puede detectar cocaína, marihuana, anfetaminas, opiáceos, fenilciclidina, antidresivos
triciclicos, metadona y barbitúricos. Frente a otros analitos consultar directamente al
laboratorio. La busqueda de drogas de abuso en orina es un examen de screening, no
confirmatorio.
B. Drogas de abuso en pelo.
La muestra se obtiene de preferencia de la zona occipital, en una cantidad no inferior a
los 200 mcg, (esto corresponde aproximadamente al ancho de un lápiz grafito). La muestra
debe ser almacenada en el set entregado para este efecto por el Laboratorio Central. Se
determina preferentemente cocaína, pero eventualmente frente a requerimientos
específicos, se puede detectar marihuana y anfetaminas. Es un examen confirmatorio.
C. Papanicolau.
Se le pide al paciente acostarse sobre la espalda con los pies en los estribos de la camilla
ginecológica. Se introduce un espéculo (instrumento utilizado para dilatar las paredes del
canal vaginal con el fin de examinar el interior) en la vagina y se abre suavemente.
Se toma una muetra de células del exterior y del canal del cuello uterino frotando
suavemente el exterior del cérvix con la espátula e insertando posteriormente el cepillo.
Ambos utensilios viene incluidos en el kit. La muestra se coloca sobre el portaobjeto
incluido y se rocía con el citofijador.
Transporte a temperatura ambiente.
Puede haber un poco de molestia y una sensación de presión durante el examen; además,
puede presentarse una pequeña cantidad de sangrado después de éste.
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Cuadro resumen de contenedores de exámenes.-
TUBO TAPA
ROJA
SIN ADITIVO
TUBO TAPA
AMARILLA
DETERMINACIONES SERICAS DEBE AGREGARSE TUBO
- Perfil Bioquímico
Gris para glicemia si la
- Perfil Hepático
muestra no se procesará
- Perfil Lipídico
antes de dos horas en el
- Creatinina
laboratorio.
- Marcadores virales
- Marcadores tumorales
Incluir tubo tapa celeste
- Estudio anticuerpos
para protrombina.
- Grupo Sanguíneo
TUBO TAPA Fluoruro Na
GRIS
(agente anti
glicolítico)
- Indicado especialmente
para tomar glicemias
aisladas o como parte de
perfil bioquímico.
Minimiza variaciones en la
glucosa sérica inhibiendo
el consumo de glucosa
Por parte de glóbulos
rojos contenidos en la
muestra.
TUBO TAPA
LILA
- Hemograma completo o
recuentos celulares par
ciales.
- Hemoglobina glicosilada
- Recuento de reticulocitos
- Amonio.
La muestra debe tomarse
sólo hasta el nivel
indicado en el tubo.
TUBO TAPA
VERDE
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EDTA
Heparina Li
- Troponina I
- Células de Lupus
- Colinesterasa
- Zinc
- Estudio citológico o cito
químico de líquidos.
- Puede realizarse en el otros
parámetros bioquímicos.
Para determinaciones en
en sangre total o plasma
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TUBO TAPA
CELESTE
Citrato Na
- Protrombina
- TTPK
- Fibrinógeno
- Fact. de coag. aislados
- Antitrombina III
- Proteína C y S
- Anticoagulante lúpico
La muestra debe tomarse
sólo hasta el nivel
indicado en el tubo
TUBO TAPA
AZUL
Libre de
trazas
- Búsqueda de elementos
trazas, Arsénico, etc.
El tubo debe solicitarse
anticipadamente al
Laboratorio.
FRASCO
TAPA
ROJA
- Utilizado para envío de
muestras (líquidas o sólidas)
para cultivo corriente, uro
cultivo, líquidos estériles,
Espermiograma.
FRASCO
PARASITOLO
- Muestra parasitológicos
seriados.
FRASCO
BACILOSCO
- Baciloscopia
- Cultivo de Koch
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Observar conservación
de esterilidad previo a
toma de muestra y ma
nipulación adecuada.
Verificar correcto
cierre.
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Instrucciones transporte de muestras.
El centro del quehacer técnico de todos los Laboratorios Clínicos es realizar determinaciones con
el menor sesgo analítico y por lo tanto lo más cercano a lo esperado tanto por la clínica en
exámenes paciente o a la condición de salud de personas supuestas normales. Aún cuando el
proceso analítico se realiza al interior del Laboratorio, la calidad del mismo, en cuanto a la
correlación esperada, depende siempre de la calidad de la muestra que entra a proceso.
*
Todas las muestras serán dispuestas en un contenedor primario (tubo, frasco o tórula con
medio de transporte, etc.)
*
El contenedor primario se dispondrá de manera vertical, en gradillas (contenedor
secundario) que garanticen esta posición durante su envío al Laboratorio, el contenedor
secundario quedará envuelto por el material aislante (bolsa plástica).
*
Este contenedor secundario se coloca dentro de un contenedor terciario cerrado, de
plástico lavable (tipo Coleman) en el que se envía hacia la sala de recepción del
Laboratorio.
*
En el fondo del contenedor terciario deberá colocarse una unidad refrigerante
proporcionada por el Laboratorio. Será responsabilidad de los transportitas su recambio
para asegurar que siempre haya unidades congeladas disponibles.
*
Idealmente, las muestras para análisis en suero o plasma debieran centrifugarse dentro de
los 30 minutos siguientes a su obtención y enviarse centrifugadas para su proceso.
*
Las muestras obtenidas para análisis en sangre total (tubo lila) no deben centrifugarse.
*
La determinación de glucosa en una muestra tomada con más de 30 minutos previos al
análisis, siempre debe obtenerse en un tubo tapa gris.
*
En general, las muestras no deben ser expuestas a temperaturas extremas, bajo 4°C o
sobre 30°C.
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*
Todas las muestras de orina, para cualquier determinación deben conservarse refrigeradas
hasta su envío al Laboratorio
13.
Instrucciones recepción de las muestras.
1.Las muestras serán recepcionadas por orden de llegada, en ese momento el encargado de
recibir el envío verificará la integridad de las muestras y que se cumplan los requisitos de acuerdo
al instructivo de Aceptación y Rechazo de muestras.
2.-
Cualquier incumplimiento será registrado en el formulario único de registro.
3.-
Las muestras conformes a los requisitos de aceptación serán recepcionadas en el sistema
informático del laboratorio.
4.-
Las muestras serán centrifugadas y distribuidas a las secciones respectivas para su
procesamiento.
5.-
Se dejará los contenedores listos para volver a su respectiva toma de muestras.
14.El Laboratorio procesa muestras de pacientes atendidos en los diferentes Centros Medicos
en convenio con este Laboratorio, como también a todo paciente que llega por indicaciones de
terceros. Dandole carácter de urgente a las siguientes prestaciones:
*
Solicitud del médico tratante.
*
CKMB
*
Troponina
*
Virus respiratorios por inmunocromatografia.
Adicionalmente, y debido a condiciones propias de los pacientes, se podrá otorgar
el carácter de urgente a:
*
Terapia anticoagulante oral
*
Orina completa en caso de sospecha de infección urinaria.
*
Glicemia en pacientes descompensados.
*
Sub-unidad Beta HCG.
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Estas muestras deberán enviarse al laboratorio como urgencias y sus etiquetas
deben venir marcadas con destacador para que el personal de recepción pueda
identificarlas rápidamente. Antes de ofrecer las urgencias a los pacientes, debe
consultar al laboratorio la disponibilidad de dar carácter urgente a esta prestación.
15.-
Instrucciones solicitud de exámenes adicionales
Laboratorio Providencia mantendrá las muestras ya procesadas , si se requiere realizar una
determinación adicional, esta solo se llevará acabo dentro de los dos días siguientes al
procesamiento de la muestra, con el fin de que los resultados emitidos sean representativos de la
condición propia del paciente.
16.-
Nómina de exámenes subcontratados.
En el Anexo 16 se muestra una tabla con todos los exámenes de que dispone nuestro laboratorio
incluyendo el laboratorio de proceso, con la respectiva información de los días y horas de proceso.
Se debe tener muy presente esta información para transmitírsela a los pacientes y agregar un día
más al tiempo de entrega señalado, debido al tiempo de transporte que se debe agregar, por lo
que es frecuente que algunos exámenes no entren a proceso en el mismo día que se obtiene la
muestra.
Será responsabilidad de los encargados de la toma de muestra manejar la información necesaria,
contenida en este manual, para tomar una decisión correcta en cuanto a la toma de muestras. En
caso de dudas, deberán consultar directamente con el personal de laboratorio antes de proceder a
entregar información.
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ANEXO 1
TEST DE HEMORRAGIAS OCULTAS
El estudio de hemorragias ocultas consiste en la detección de sangrado microscópico en el aparato digestivo, por medio del estudio de
la existencia de sangre oculta en las heces, como una forma no invasiva de detectar enfermedades del tubo digestivo. Su colaboración
siguiendo las instrucciones entregadas es de vital importancia.
INDICACIONES PARA REALIZAR EL EXAMEN
Dieta recomendada por 5 días (régimen blanco)
1. Comenzar un régimen blanco 2 días antes de iniciar la toma de muestras del examen,
consiste en NO comer alimentos que puedan colorear la deposición.
2. Al tercer día se empieza a realizar el examen (continuando el régimen).
3. Unte con la paleta de helado una pequeña cantidad de excremento, tiñendo dentro de los
dos orificios (A y B) cuidando de no derramar fuera de ellos. La tarjeta cuenta con 3
partes, cada una de ellas corresponde a un día de examen. Anote su nombre y fecha de la
muestra en el espacio destinado para ello en la tarjeta.
4. Cierre la ventana de la tarjeta que ocupó, al completar los tres días de examen, ponga la
tarjeta cerrada en la bolsa plástica entregada, ciérrela y póngala dentro del sobre. Haga
llegar el sobre al laboratorio para su análisis.
Alimentos que no puede consumir durante el régimen:
Carnes rojas, tomate, betarraga, zanahoria, jaleas de color, salsa de tomate, bebida de colores,
fármacos para la anemia (fierro), aspirina y otros, salvo que su médico lo autorice.
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ANEXO 2
INDICACIONES PARA LA RECOLECCION DE ORINA DE 24 HORAS
1. Deberá proveerse de uno más envases bien adecuados (botellas desechables de 2 lts.)
bien enjuagados con abundante agua.
2. Dejar secar boca abajo.
3. A las 8.00 horas de la mañana del primer día, vaciar la vejiga, eliminando la totalidad
de la orina en el baño.
4. A partir de ese momento, recolecte TODA la orina de cada una de las micciones
siguientes, incluyendo la de las 8.00 horas del otro dia (24 horas).
5. Es importante que no elimine ninguna micción del período de recolección pues altera
el resultado del examen.
HORARIO DE ENTREGA DE MUESTRAS
8.30 a 10.00 Hrs.
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ANEXO 3
EXAMEN PARASITOLOGICO SERIADO
1.-
Las deposiciones pueden ser emitidas a cualquier hora del día y no deben
mezclarse con orina.
2.-
Inmediatamente después de obrar, saque una cantidad de deposición del tamaño
de una aceituna y deposítelo en el frasco mezclándolo con el líquido hasta formar
una pasta homogénea.
3.-
Tape herméticamente el frasco.
4.-
De la misma forma, recoja las dos muestras restantes día por medio, cuidando de
mezclar bien el contenido cada vez.
5.-
Mantenga las muestras en un lugar fresco y llévelas al laboratorio una vez que
haya recolectado las tres.
NO DEJE LOS FRASCOS AL ALCANZE DE LOS NIÑOS, EL CONTENIDO PUEDE
RESULTAR DAÑINO PARA SU SALUD SI ES INGERIDO.
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20.-
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ANEXO 4
TEST DE GRAHAM
Solicitar en el laboratorio las placas de vidrio necesarias para este examen. En la mañana, antes
del aseo y antes de obrar, tomar una de las placas, desprender del vidrio la tira de papel
transparente engomado (scotch) y aplicarla varias veces en los contornos del ano; adherir
nuevamente esta tira, bien estirada, a la placa de vidrio. Repetir el procedimiento al día siguiente
con la segunda cinta de scotch y posteriormente con la tercera, y así hasta completar las 5 ó 3
muestras.
Nota: Serán rechazadas y se debe repetir el examen en muestras mal tomadas; contaminadas con
cremas, talcos, deposición, cinta muy arrugada, vidrios quebrados. No debe usarse papel
engomado letreros sobre la lámina.
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21.-
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ANEXO 5
INDICACIONES DETERMINACION DE HIDROXIPROLINA
Dieta previa a la recolección de orina de 24 hrs.
Para la determinación de Hidroxiprolina en orina de 24 horas, durante los tres (3) días previos y el
día de la recolección (4), se debe mantener una dieta libre de:
*
Carnes (vacuno, pescado, ave).
*
Mariscos.
*
Dulces.
*
Legumbres.
*
Helados.
INDICACIONES PARA LA RECOLECCION DE ORINA DE 24 HORAS.
1.-
Deberá proveerse de uno o más envases bien adecuados (botellas desechables de
2 lts.) bien enjuagadas con abundante agua.
2.-
Dejar secar boca abajo.
3.-
A las 8:00 de la mañana del primer día, vaciar la vejiga, eliminando toda la oria en
el baño.
4.-
A partir de ese momento, recolecte TODA la orina de cada una de la micciones
siguientes, incluyendo la de las 8:00 hrs. del otro día (24 horas).
5.-
Es importante que no elimine ninguna micción del período de recolección pues
altera el resultado del examen.
HORARIO DE ENTREGA DE MUESTRAS
8:30 a 10:00 horas.
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22.-
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ANEXO 6
INTRUCCIONES PARA EL EXAMEN ESPERMIOGRAMA.-
Es de vital importancia que la muestra sea procesada a la brevedad, por lo que la toma de muestra
se efectúa solamente el día sábado de 8:30 a 12:00 horas, en nuestro laboratorio central, ubicado
en Av Salesianos 1178 San Miguel.
Este requisito es para dar cumplimiento a los requerimientos de calidad sugeridos por la O.M.S. y
ud. debe solicitar su hora de atención al 252 260 87.
1.-
La muestra debe ser recolectada con una abstinencia sexual mínima de 3 días y no mayor a
7 días.
2.-
La muestra es obtenida mediante masturbación. El eyaculado se recoge en un frasco
limpio y estéril proporcionado por el laboratorio.
3.-
La recolección de la muestra debe ser completa, se debe considerar que la primera
porción del eyaculado contiene cerca del 75% del total de espermatozoides, por lo que se
hace hincapié en está etapa y la necesidad de recolectar el total de lo eyaculado.
4.-
Una vez obtenida la muestra, diríjase a toma de muestras para que en su presencia se
rotule el frascocon la muestra y la hora de emisión de la misma.
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23. ANEXO 7
CATECOLAMINAS URINARIAS Y PLASMATICAS
Preparación del paciente.Evitar ingerir alcohol, café, té y ejercicio extremo, a lo menos 24 horas antes de comenzar a
recolectar la orina y en el caso de muestras de plasma, 24 horas antes de ir al laboratorio.
En el caso de tener terapias medicamentosas prolongadas, solicitamos informarnos en la hoja de
solicitud de exámenes; dichos medicamentos.
INDICACIONES PARA LA RECOLECCION DE
ORINA DE 24 HORAS.
*
*
*
*
*
Deberá proveerse de uno o más envases bien adecuados (botellas desechables de 2 lts.)
bien enjuagados con abundante agua.
Dejar secar boca abajo.
A las 8:00 horas de la mañana del primer día, vaciar la vejiga, eliminando toda la orina en
el baño.
A partir de ese momento, recolecte TODA la orina de cada una de las micciones siguientes,
incluyendo la de las 8:00 horas del otro día (24 horas).
Es importante que no elimine ninguna micción del período de recolección, pues altera el
resultado del examen.
HORARIO DE ENTREGA DE MUESTRAS
8:00 a 10:00 horas.
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24 ANEXO 8.CONSENTIMIENTO INFORMADO VIH
CONSENTIMIENTO PERA REALIZACION EXAMEN VIH – SIDA
Yo, ________________________________________________________________________
RUT:_________________ - ____ Fecha de Nacimiento: _____/___________/____________
Domicilio:___________________________________________________________________
Comuna:___________________________ Ciudad:__________________________________
I-Mail:______________________@_____________
Telefono fijo:_______________________ Telefono móvil:____________________________
AUTORIZO A LABORATORIO CLINICO PROVIDENCIA LTDA, para que me efectúe el examen de
detección de anticuerpos contra el virus de la inmunodeficiencia humana (VIH), solicitado por mi
médico tratante.
Dr(a):_______________________________________________________________________
…………………………………………………………………………………………………………………………………………
Así también declaro que he sido debidamente informado por parte de mi médico sobre el
significado de este examen, y me ha dado la posibilidad de efectuarlas preguntas respectivas
para aclarar mis dudas, por lo que estoy en conocimiento de que este examen, está destinado a
determinar si soy o no portador del virus del SIDA.
Comprendo que si mi examen es reactivo, debe ser enviado al Instituto de Salud Pública para su
confirmación, organismo que emitirá el resultado definitivo en el plazo aproximado de un mes.
Me comprometo a asistir cuando sea citado por el Laboratorio Clínico Providencia Ltda. para
realizar la confirmación de identidad y dar así cumplimiento a la ley vigente.
Por ser el resultado del examen absolutamente confidencial, me comprometo a entregar el
nombre, dirección y teléfono de mi médico tratante para que le sea enviado el resultado en caso
de necesitar la consejería post-test. Así mismo, comprendo que este resultado debo retirarlo
personalmente, no pudiendo delegar esta función en otra persona.
Fecha:_____/_______/______
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Firma paciente:______________________________________
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25 ANEXO 9.INSTRUCCIONES PRUEBAS QUE REQUIEREN CARGA DE GLUCOSA
1.- Realizar determinaciones de glucosa basal desde el tubo con sangre venosa obtenido del
paciente utilizando equipo de hemoglucotest.
2.- Si el resultado es mayor a 135 mg/dl, suspender la carga de glucosa y explicar al paciente que
no se puede continuar con el examen.
3.- Si se trata de niños o pacientes embarazadas, suspender la carga si el resultado excede los
125 mg/dl
4.- Registrar el valor obtenido en el sistema informático.
5.- Este resultado no debe ser entregado al paciente, ya que se trata de un método de screening
rápido, utilizado para evitar ocasionar descompensaciones en pacientes.
6.- Si corresponde, administrar la carga de glucosa y explicar al paciente que no debe realizar
ninguna actividad mientras se realiza el examen, ya que esto puede ocacionar variaciones en los
resultados. Explicar que debe permanecer en la sala de espera.
7.- La carga habitual es de 75 mg de glucosa, salvo indicación médica, lo que debe estar
consignado tanto en la solicitud de examen como en observaciones del sistema informático.
8.- Si el paciente es menor de 12 añoso pesa menos de 45 kilos, se debe administrar 1.75 gr de
glucosa por kilo de peso.
9.- Para calcular la cantidad de ml que debe administrar al paciente, realizar el siguiente calculo:
Multiplique el peso del paciente por 1.75.Este valor, multiplíquelo por el volumen en cc del frasco de glucosa (generalmente corresponde a
200 ml) y divídalo por 75, que es la concentración de glucosa en el frasco. El resultado
corresponde a la cantidad de ml de la solución que debe administrar al paciente.
Si necesita ayuda con el calculo, consulte al laboratorio, sección bioquímica.
10.- Registrar en observaciones la hora de cada una de las muestras, partiendo por la basal.
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26 ANEXO 10.INTRUCCIONES TOMA DE MUESTRA ORINA SEGUNDO CHORRO
PACIENTES SEXO FEMENINO
*
*
*
*
*
*
*
*
Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes.
Elimine la primera parte de la micción (primer chorro).
Recolecte la orina restante (2° chorro), llenando hasta la mitad del frasco. El frasco debe
sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa.
Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior.
Utilice papel absorbente del dispensador para secar el frasco por fuera, en caso de que se
haya mojado con orina.
Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado, entréguelo a la
persona que lo atendió.
Lave sus manos después de este procedimiento.
Si requiere ayuda, solicite asistencia al personal de toma de muestras.
27 ANEXO 11.INSTRUCCIONES TOMA DE MUESTRA ORINA SEGUNDO CHORRO
PACIENTE SEXO MASCULINO
*
*
*
*
*
*
*
*
Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes.
Mantenga el prepucio retraído durante todo el procedimiento.
Comience a orinar y elimine el primer chorro (+/- 10 ml)
Recolecte la orina restante (2° chorro), llenando hasta la mitad del frasco. El frasco debe
sujetarse para que no tome contacto con su pierna o su ropa.
Utilice papel absorbente del dispensador para secar el frasco por fuera, en caso de que se
haya mojado con orina.
Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior.
Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado.
Lave sus manos después de este procedimiento.
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