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SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO
OCCIDENTE
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT
Laboratorio
Clínico
Código: DOC – LAB 5
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Fecha: Junio 2010
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4. Responsabilidades:
Responsable
Médico
Oficial
Administrativo
Tecnólogo
Médico
Personal de
salud
encargado
Auxiliar
de
Servicio
Recepción
Lab. Clínico
E
I
I
I
I
I
E
I
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I
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I
E–C
I–C
I–E
I
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I–C
I–E
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I–C
E
I
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I–C
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I
I
I
I–C
I
I
E–C
I
I
I-C
I
I
E-C
Actividad
Indicación de
la muestra
Elaboración
orden de
examen
Ingreso orden
al SIL
Preparación
toma de
muestra
Toma de
muestras
Transporte de
muestras
Recepción de
muestras
Aceptación o
rechazo
C: Controla
E: Ejecuta
I: Informado
5. Definiciones:
5.1 Bioseguridad: Conjunto de medidas para proteger la salud humana y el ambiente
frente a diferentes riesgos.
5.2 Hemólisis: Liberación de la hemoglobina contenida en el glóbulo rojo o hematíe a
consecuencia de una alteración de la pared del glóbulo o cuando el glóbulo esta
distendido por la acción de una solución hipotónica.
5.3 Flebotomía: Insición de un vaso sanguíneo para la obtención de sangre.
5.4 Flebotomista: Personal de salud capacitado para la obtención de muestras
sanguíneas.
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6. Desarrollo:
6.1 Flujo de procesos:
6.1.1 Diagrama del procedimiento en la Unidad de Toma de Muestras (Ver Flujograma 1):
•
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•
•
•
La atención de los pacientes se realiza a través de la ventanilla de la Unidad de Toma
de Muestras, tanto como para dar hora como para recibir a los pacientes citados.
El paciente citado debe entregar su orden de examen en ventanilla y esperar su
llamado que se realizara desde la puerta de ingreso.
La orden debe ser ingresada al sistema informático del Laboratorio (SIL) donde se
generan etiquetas con la identificación del paciente, (Código de barras) las que se
colocan en los tubos o envases de las muestras.
Una vez llamado el paciente, se procede a explicarle el procedimiento.
Realizar toma la muestra, quedando registrado el nombre del operador que lo atendió.
Finalmente informar al usuario donde retirar el resultado del examen, se despide y se
le indica la ruta.
Las muestras obtenidas se clasifican según tipo de examen y se colocan en el carro
de transporte.
Estas muestras son transportadas según requisitos.
Se entregan en la recepción del Laboratorio donde queda registrada su aceptación en
una planilla de trabajo diaria.
6.1.2 Escala de preferencia en la atención a los pacientes ambulatorios:
Para poder optimizar los recursos y dar una respuesta oportuna se atienden los
pacientes de acuerdo a una prioridad, la cual se establece a continuación:
•
•
•
•
•
•
.
Pacientes Transplantados: que están en control post trasplante y que son atendidos el
mismo día.
Pacientes en TAC: con tratamiento anticoagulante y que serán atendidos el mismo día.
Pacientes pediátricos con exámenes de niveles plasmáticos de drogas.
Pacientes de Hemato-oncologia
Pacientes Insulinodependientes
Exámenes de cortisol y PTGO: Exámenes que deben tomarse la primera muestra a las
08:00 hrs.
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6.2 Bioseguridad:
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Disponer de los materiales necesarios en un área de trabajo limpia y adecuada
Lavado de las manos.
Usar mascarillas para toma de muestras de alto riesgo (Ej. Virus respiratorios) o en
caso de que el paciente tosa constantemente.
El personal debe estar vacunado contra virus Hepatitis B e Influenza.
Usar precauciones estándar mínimas con todo paciente. Toda muestra es
potencialmente patógenas
Si el paciente tose con frecuencia, el personal debe colocarse mascarilla
Tomar precauciones al manipular las agujas y lancetas. Después de su uso descartar
inmediatamente en contenedor para material cortopunzante. No recapsular agujas.
Si hay derrame de sangre en el mesón de toma de muestra, limpiar con Hipoclorito de
sodio al 0,1%
6.3 Factores pre-analíticos que afectan las pruebas:
Es importante tener presente que existen muchos factores que pueden afectar el
resultado de las pruebas de laboratorio, algunos de los cuales pueden ser evitados con
una adecuada orientación al paciente y una correcta técnica de extracción sanguínea. A
continuación enumeraremos algunos de estos factores y las recomendaciones al respecto.
6.3.1 Interferencias:
•
•
•
•
•
La ansiedad y la tensión mental o física puede afectar los niveles de muchos
componentes sanguíneos. Tal es el caso de las concentraciones de Prolactina,
Cortisol, Catecolamina, Aldosterona y Renina. También puede elevar el recuento de
leucocitos.
Los ejercicios físicos vigorosos 3 días previos a la toma de la muestra pueden alterar
los niveles de CK, LDH, AST, potasio, glucosa, lactato, prolactina y cortisol.
El ritmo diurno de algunos fluidos corporales muestran fluctuaciones durante el día,
por ejemplo, los niveles de cortisol son altos en la mañana, pero decrecen en la tarde.
Los niveles de hierro tienden a caer durante el día.
La situación dietética del paciente puede ser importante para ciertas pruebas. Tal es el
caso de las variaciones en la concentración de lípidos después de una comida
grasosa. El suero sanguíneo muestra una apariencia lechosa debido a la presencia de
triglicéridos y quilomicrones. Estos sueros hiperlipidémicos influyen en las mediciones,
por lo que se recomienda tomar la muestra después de un periodo de ayuno,
usualmente de toda la noche.
La ingestión de etanol induce cambios en la composición de los lípidos corporales. De
particular interés son las enzimas hepáticas, como la fosfatasa alcalina,
transaminasas, gama glutamil transferasa y otros componentes como la glucosa,
triglicéridos, uratos y lactato.
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El fumar puede producir variaciones en los resultados de algunos componentes como
la lipasa, amilasa, colesterol, glucosa e igualmente afecta la absorción gástrica en la
prueba de tolerancia a la glucosa.
La cirugía y la inyección intramuscular provoca un aumento en la concentración de
creatinquinasa.
La exploración rectal o la manipulación prostática, puede causar un aumento en la
concentración del antígeno prostático específico.
Los anticonceptivos orales afectan la actividad estrogénica y conducen al aumento de
muchas proteínas como la tiroxina, cortisol y las hormonas sexuales.
Medicamentos como barbitúrico y fenitoína, inducen enzimas hepáticas con valores
elevados.
Evitar extraer sangre de una zona previamente puncionada para administrar un
tratamiento intravenoso, ya que las concentraciones de muchos compuestos pueden
resultar erróneamente altos o bajos.
Evitar provocar hemólisis durante el proceso de extracción o llenado de los tubos, lo
cual afectará algunas pruebas relevantes. La hemólisis puede ocurrir también por
exceso de residuos del alcohol utilizado durante la desinfección del sitio a puncionar.
Evitar puncionar en un área con hematoma, fístulas, quemaduras, escoriaciones de la
piel, cicatrices.
Verificar las condiciones de ayuno para las pruebas que lo requieran.
Las pruebas seriadas como curvas de tolerancia, post-prandial, post-ejercicios, etc.
deben monitorearse en el tiempo adecuado.
Rotular los tubos con la hora de toma de la muestra en el caso de pruebas seriadas.
Es recomendable preguntar al paciente si existen restricciones para la flebotomía
(Mastectomía, etc.).
Los tubos con anticoagulante deben invertirse suavemente y colocarlos en posición
vertical, para evitar el contacto prolongado con la tapa del tubo.
Los separadores de suero se utilizan para separar el suero libre del coágulo de
sangre. Estos pueden ser de gel de silicón, poliéster o perlas de vidrio. En algunos
casos debido a problemas en la centrifugación y a altas temperaturas, pueden quedar
gotas de gel dentro del suero. Se ha demostrado que estas gotas de gel pueden
interferir con algunas mediciones. Es conocido que la progesterona se reduce
apreciablemente cuando se almacena sobre gel por varios días.
Igualmente ocurre con la lidocaína, fenobarbital, fenitoína y carbamazepina.
Algunas hormonas polipeptídicas de bajo peso molecular, como la ACTH, glucagón,
gastrina y otras hormonas intestinales, se destruyen rápidamente por enzimas
presentes en la sangre. Por lo que es necesario centrifugar la muestra a baja
temperatura, 10 minutos después de la toma y almacenar el suero o plasma
inmediatamente a –20 C.
Aquellos tubos con anticoagulantes deben ser llenados exactamente hasta la marca,
cualquiera sea el método que se utilice para extraer la sangre, para evitar que la
concentración del anticoagulante sea demasiada alta, tal que afecte el sistema de
medición.
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6.3.2 Datos en la orden de solicitud del examen:
Todas las muestras deben ir acompañadas de una solicitud debidamente formulada.
La solicitud debe contener la siguiente información:
• Identificación completa del paciente:
- Nombre completo (Dos nombre, dos apellidos).
- Sexo.
- Número de cédula de Identidad.
- Edad o fecha de nacimiento.
- Procedencia.
- Sala y número de cama en caso de pacientes hospitalizados.
• Datos del profesional solicitante (Nombre completo y/o código).
• Pruebas que se solicitan.
• Consentimiento informado cuando sea necesario (Ej. VIH).
• Incluir información clínica de utilidad (Diagnóstico, ingestión de fármacos, restricciones
especiales, etc.).
• Fecha de orden.
6.3.3 Características del paciente:
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•
•
•
•
La primera impresión y las observaciones inmediatas pueden ser útiles para el técnico
o profesional que tome la muestra, permitiéndole establecer el tipo de paciente, el sitio
de la punción y las precauciones necesarias a considerar durante el procedimiento.
La comunicación afectiva es determinante en la relación con el paciente. Hablar con el
paciente. Explicar el procedimiento a seguir.
La identificación correcta del paciente es obligatoria. En caso de pacientes
hospitalizados verificar la información con brazalete de identificación. En pacientes
ambulatorios corroborar la identidad solicitando siempre la cedula de identidad.
Observar si el paciente está sudoroso, agitado, sedado o es agresivo, arrogante,
conflictivo.
Evitar cualquier discusión con el paciente. De ser así, llamar al Jefe de Toma de
Muestras o enfermera encargada del sector. Tratar de calmar y comprender al
paciente, sin embargo, usted siempre tiene la opción de no atender un paciente
agresivo que pueda causar lesión a usted o a sí mismo. Comunicar de ésta situación a
la persona encargada de la Toma de Muestras o de la Unidad o Servicio clínico.
En todo momento mantener la ética y confidencialidad del paciente y sus exámenes.
Los Códigos de ética de los trabajadores de la salud, prohíben estrictamente que los
aspectos de salud del paciente sean divulgados con propósitos no profesionales.
En la Unidad de Toma de muestras no se debe dar preferencia a la atención de
funcionarios, el horario destinado para la atención de funcionarios es de lunes a
viernes de 07:30 a 08:00 hrs.
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6.4 Preparación del equipo:
Antes de iniciar el procedimiento debe contar todos
los implementos necesarios disponebles.
6.4.1 Tubos de colección:
Los tubos están predeterminados para llenarse con un determinado volumen de
sangre por vacío. La tapa de goma está codificada por color, de acuerdo a su uso y sus
aditivos:
Tubo tapa roja
Uso: Química, inmunología, banco de sangre, derivados.
Aditivo: Ninguno.
Tubo tapa amarilla
Uso: Hormonas, niveles plasmáticos, marcadores tumorales.
Aditivo: Gel – Separador.
Tubo tapa lila
Uso: Hematología, biología molecular, líquidos biológicos, hemoglobina glicosilada.
Aditivo: Anticoagulante EDTA.
Tubo tapa celeste
Uso: Pruebas de Coagulación.
Aditivo: Anticoagulante Citrato de sodio 3.2%.
Tubo tapa negra
Uso: VHS.
Aditivo: Anticoagulante Citrato de sodio 3.8%.
Tubo tapa gris
Uso: Glicemia.
Aditivo: Anticoagulante Fluoruro de sódio.
Tubos tapa verde
Uso: Pruebas Bioquímicas, Electrolitos Plasmáticos, marcadores virales.
Aditivo: Heparina de Litio.
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6.4.2 Insumos necesarios:
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•
Agujas: Están numeradas dependiendo de su calibre. Para colección de sangre se
utilizan agujas de diámetro 21G (0.8 mm) x 1”. Para lactantes y punciones de vías
venosas difíciles se utilizan mariposas de distintos calibres.
Jeringas de 3, 5, 10 y 20 cc
Adaptador para tubos al vacío.
Ligadura: Recomendable de 2 tamaños para adultos y niños.
Alcohol al 70%.
Algodón.
Guantes de procedimientos
Curita o venda adhesiva.
Frascos para hemocultivos.
Tubos de exámenes.
Sondas.
Frascos tapa rosca para muestras de orina.
Cajas para baciloscopías.
Frascos para exámenes parasicológicos y laminas para test de Graham.
Tórulas con medio de transporte para muestras microbiológicas
6.5 Procedimiento de punción venosa:
Las muestras deben tomarse correctamente y bajo las condiciones más favorables
para evitar errores en sus resultados. Esto incluye la absoluta identificación del paciente,
elección del sitio de punción y el volumen a colectar. El paciente debe estar en una
posición cómoda.
6.5.1 Selección del sitio a punción:
•
•
Evitar áreas con presencia de hematoma (s), fístulas, quemaduras, escoriaciones de la
piel o cicatrices.
Evitar tomar muestra del brazo del mismo lado donde se ha realizado una
mastectomía reciente.
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Palpación
Antes de proceder a puncionar, escoger la vena mas apropiada.
Colocar la ligadura de 6 a 7 cm. por arriba del sitio seleccionado. Tener presente no mantener
la ligadura por más de 3 minutos, para evitar la hemoconcentración.
Las venas más utilizadas para la venopunción, están localizadas en el área antecubital. Entre
éstas tenemos:
a) Vena Cubital: Es la más larga y gruesa de todas y es la
preferida por bordear la musculatura del brazo.
b) Vena Cefálica: Tiene iguales características de la anterior, pero
es un poco menos gruesa.
c) Vena Basílica: Es más pequeña que las anteriores. Esta vena
está cerca de la arteria braquial, por lo que su punción es
riesgosa y su área es más sensible y dolorosa para el paciente.
Palpar con la punta de los dedos, tratando de seguir el
rastro de las venas. En ocasiones si no visualiza la
vena, puede forzar la sangre dentro de la vena a
través de un suave masaje de abajo hacia arriba.
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Asepsia del sitio de punción
Una vez que se ha decidido por la vena a puncionar,
realizar asepsia de la zona con alcohol al 70% utilizando
algodón y con movimientos circulares del interior al
exterior. Debe tener presente que una vez realizada la
descontaminación, no debe volver a tocar el área de
punción una vez realizada la asepsia de la zona a
puncionar.
6.5.2 Procedimiento de punción venosa:
•
•
•
El brazo del paciente debe estar preferiblemente en posición cómoda horizontalmente.
Con la ligadura en posición, haga que el paciente cierre y abra el puño de 3 a 5 veces
para bombear mejor la sangre, y luego que indicar mantener el puño cerrado.
Si se trata de un niño, es recomendable colocar 2 dedos de la mano, debajo del codo
del paciente, para evitar que doble el brazo durante la extracción.
Extracción con jeringa
•
•
•
•
•
•
•
Cuando vaya a proceder a realizar la extracción con jeringa,
tener presente el calibre a utilizar y el tamaño de la jeringa
según el volumen a extraer.
Colocar la punta de la aguja en un ángulo de 15 a 30º sobre
la superficie de la vena escogida y atravesar la piel con un
movimiento firme y seguro, hasta el lumen de la vena.
Apretar firmemente la jeringa, tirar el émbolo con un
movimiento continuo y suave para extraer la sangre hasta el
volumen requerido.
Evite presionar fuertemente la aguja
durante la extracción.
Aflojar la ligadura para que la sangre fluya mejor y remueva
la aguja del brazo con movimiento suave, cubrir con tórula
sin apretar el área de la punción mientras se retira la aguja.
Presionar el algodón sobre el sitio de punción aplicando una
presión adecuada y no excesiva para evitar la formación de
hematoma.
Llenar los tubos en su orden.
Desechar la aguja en caja para eliminar material
cortopunzante.
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•
Colocar un parche curita o un algodón con venda adhesiva en
el sitio de la punción.
Extracción con sistema de extracción al vacío
•
•
•
Colocar la punta de la aguja en un ángulo de 15 a 30º
sobre la superficie de la vena escogida y atravesar la piel
con un movimiento firme y seguro, hasta el lumen de la
vena.
Llenar los tubos en el orden correspondiente.
Aflojar la ligadura y presione el algodón sobre el sitio de la
punción aplicando una presión adecuada y no excesiva
para evitar la formación de hematoma.
6.6 Problemas durante la extracción venosa:
Diversos problemas pueden surgir durante la colección de sangre venosa esto
pudiera conllevar a no obtenerse sangre o su colección sea incompleta.
Colocación correcta de la aguja: Coloque la aguja con el bisel hacia arriba
Cambio en la posición de la aguja. Movimiento de retroceso que la saca del
lumen venoso.
Movimiento hacia delante que atraviesa la vena.
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Movimiento de la aguja, tal que el bisel de la aguja quede contra la pared de la
vena, afectando la entrada de la sangre.
Colapso de la vena: En estos casos, afloje el torniquete para incrementar el flujo
sanguíneo, remueva la aguja ligeramente y vuelva a redireccionarla.
Formación de hematoma: Si se forma un hematoma bajo la piel adyacente al sitio
de la punción, afloje la ligadura y retire la aguja. Aplique presión
firmemente
sobre el hematoma.
Sangre arterial: Pudiera suceder que se atraviese una arteria, en estos casos la
sangre se observa de un color rojo brillante. Retire la aguja y aplique presión por 5
minutos
6.7 Medidas de prevención de formación de hematomas y hemólisis:
6.7.1 Como prevenir los hematomas:
•
•
•
•
Puncionar solamente la pared superior de la vena.
Retirar la ligadura antes de remover la aguja.
Escoger las venas superficiales mayores.
Aplicar presión sobre el sitio de la punción.
6.7.2 Como prevenir la hemólisis:
La hemólisis de una muestra sanguínea puede ocurrir por diversas razones entre las
que se encuentran:
• Trauma con una aguja de calibre muy pequeño.
• Contaminación con agentes antisépticos.
• Agitación violenta o excesiva de los tubos.
• Tiempo de demora en ser analizadas las muestras o en ser separado el coágulo de
sangre.
• Presión excesiva para mejorar el flujo sanguíneo.
• En tubos no llenados al vacío, puede ocurrir hemólisis al llenarlos haciendo una fuerte
presión sobre el émbolo.
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Los componentes más afectados son aquellos cuya concentración es más alta
intracelularmente que en el plasma, por ejemplo, ión potasio, fosfato, deshidrogenasa
láctica, aspartato aminotransferasa, hierro sérico, etc. Además, la hemólisis afecta la
medición instrumental de diferentes componentes sanguíneos.
La hemólisis puede ser prevenida tomando en cuenta los siguientes elementos:
• Mezcle los tubos con aditivos anticoagulantes lentamente por 5 a 10 veces,
inmediatamente después de ser llenado el tubo.
• Acerque el bisel de la aguja a la pared interna del tubo, para evitar el choque fuerte de
la sangre contra el fondo del tubo.
• Esté seguro que el sitio de la punción esté seco del antiséptico.
• Evite una punción traumática.
• Evite la agitación vigorosa de los tubos.
• Evite el calentamiento de los tubos.
6.8 Causas de la Hemoconcentración:
•
Aplicación prolongada de la ligadura. La presión hidrostática causa que algo de agua y
elementos filtrables escapen al espacio extracelular. Esto tiene efectos también sobre
el empaque celular.
• Masaje vigoroso del sitio a puncionar.
• Esclerosis u obstrucción venosa.
6.9 La punción capilar:
La sangre de la punción capilar es una mezcla de sangre arteriolar y venosa, más
que de capilar. La obtención de sangre por punción capilar es particularmente útil en las
siguientes circunstancias:
• Punción venosa es peligrosa para el paciente.
• No se puede acceder las venas recomendadas.
• Las venas se están utilizando para administrar medicamentos.
• El volumen de sangre requerido no justifica una extracción venosa.
Estas circunstancias se aplican a:
• Neonatos.
• Lactantes.
• Niños.
• Adultos con quemaduras severas.
• En pacientes muy obesos.
• En caso de terapias intravenosas.
La punción cutánea se puede llevar a cabo en:
• La superficie más lateral o más medial de la planta del pie.
• La superficie medial plantar del dedo gordo del pie.
• La superficie lateral del dedo medio o anular, preferiblemente.
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El lóbulo de la oreja, evitando la mejilla.
6.9.1 Sitios para punción:
Sitio recomendado para punción capilar.
Punción capilar con porta-lanceta
6.9.2 Procedimiento de la punción capilar:
•
•
•
•
•
•
•
•
•
Una vez escogido el sitio de la punción, dar un ligero masaje al área para concentrar la
sangre.
Limpiar el sitio con de punción con alcohol al 70%.
Con una mano sostener el dedo o área a puncionar y con la otra sostener la lanceta.
Realizar la punción con la lanceta, realizando un movimiento rápido, firme y profundo.
Después de puncionar, descartar la primera gota de sangre, que contiene líquido
tisular, limpiándolo con el algodón.
Presionar el dedo para hacer salir la sangre, procurando que sea de manera
ininterrumpida.
Una vez tomada la muestra, sellar los tubos capilares con sellador o los microtubos
con su tapa.
Los microtubos y capilares con anticoagulantes deben ser invertidos suavemente por
lo menos 10 veces para evitar su coagulación.
Colocar algodón sobre el sitio puncionado haciendo presión para detener el
sangramiento.
6.9.3 Consideraciones adicionales de la punción capilar:
•
•
La mala circulación causa modificaciones en la concentración de ciertos componentes
sanguíneos, por ejemplo el ión potasio y del fosfato, debido a la contaminación con
líquido tisular causada por la presión que se aplica para obtener la muestra.
Al escoger el sitio de la punción, evite hacerlo en dedos con quemaduras,
escoriaciones o cianóticos.
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6.9.4 Colección en Neonatos:
•
•
•
•
•
•
•
•
•
•
El pie del neonato es el sitio apropiado para colectar la muestra sanguínea por punción
capilar.
Es recomendable realizar previa limpieza del pie con una gasa tibia para incrementar
el flujo sanguíneo.
En el siguiente diagrama se ilustra en la zona achurada los sitios de punción
recomendados.
Limpiar el área seleccionada con alcohol al 70%.
Mantener firmemente el pie del neonato para evitar cualquier movimiento.
Usando una lanceta estéril realizar la punción con movimiento rápido, firme y profundo.
Limpiar con el algodón la primera gota obtenida. Utilizar una ligera presión para
obtener las gotas de sangre requeridas. No haga presión excesiva o masajes, que
puedan provocar que la sangre se diluya con líquido tisular.
Llenar los microtubos requeridos.
Al terminar mantener presión sobre el sitio de la punción con gasa o algodón para
parar el sangramiento.
Desechar la lanceta en la caja para material cortopunzante.
6.10 Orden de llenado de los tubos:
La obtención de muestras debe mantener un orden de llenado de los tubos para
evitar errores en la fase pre analítica. El orden recomendado es el siguiente:
1º Frasco de hemocultivo, si corresponde.
2º Tubos para pruebas de coagulación (Tapa celeste).
3º Tubos que contienen aditivos especiales para evitar la coagulación de la muestra:
- Tubo con heparina (Tapa verde).
- Tubo con EDTA (Tapa lila)
- Tubo con Fluoruro de sodio (Tapa gris).
4º Por ultimo los tubos sin aditivos (Tubos de tapa roja para pruebas químicas y de
serologia).
Nota: Los tubos con aditivos deben ser rápida y completamente mezclados.
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6.11 Etiquetado o rotulación:
1.-Etiquetado de los tubos debe realizarse inmediatamente posterior a la extracción
sanguínea pegando la etiqueta de código de barra correspondiente a cada tubo. Es
incorrecto etiquetar los tubos previamente a la punción. Una muestra del etiquetado de
los tubos puede ser el siguiente:
2.-Rotulación de los tubos debe realizarse previo a la punción del paciente indicando en el
tubo el nombre completo y la procedencia
6.12 Cuidados del paciente posterior a la extracción:
•
•
•
Una vez realizada la extracción, asegurarse que el paciente se encuentra apto para
levantarse de la silla y retirarse, ya que algunos pacientes pueden descompensarse.
Para evitar caídas observar al paciente y preguntar si está bien antes de indicarle que
se retire.
Si un paciente presenta alguna descompensación hemodinámica o convulsión seguir
el procedimiento de alerta y organización de la atención de emergencia (Ver protocolo
institucional).
6.13 Conservación y transporte de la muestra:
Una vez que se haya colectado la muestra sanguínea, ésta debe ser llevada pronto al
laboratorio para su procesamiento. Algunas pruebas exigen que el suero sea separado
cuanto antes del coágulo sanguíneo, para evitar alteraciones en la composición o niveles
de algunos metabolitos.
Al momento de entregar la muestra en recepción esta debe ser acompañada por su
correspondiente orden de solicitud de examen. Los requisitos de conservación y
transporte de cada muestra se detallan en Anexo N° 1
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6.14 Instrucciones al paciente con exámenes que requieren preparación especial:
Espermiograma
Recomendaciones previas al examen:
• La abstinencia sexual previa deberá ser de 3 días (No menos de 2 días ni más de 5 días). La
muestra debe ser obtenida por masturbación.
• La fecha de la última relación sexual DEBE SER…………………………
• Usted deberá concurrir a la toma de muestras, el día…………… a las…………hrs.
• Presentar la orden en la ventanilla y esperar a que lo llamen.
Instrucciones día del examen:
La toma de muestra se realiza en el baño privado de la toma de muestra, donde le
entregarán un frasco a 37 ºC identificado con su nombre, donde usted deberá depositar el semen
obtenido. Se debe recolectar toda la muestra sin eliminar ninguna gota y avisar de inmediato al
técnico que lo atendió, una vez terminado el procedimiento.
•
•
•
Urocultivo y orina completa en hombres
Tipo de muestra: Orina
Idealmente utilizar la primera orina de la mañana.
Antes de tomar la muestra, realizar aseo de la zona genital:
- Lávese las manos con agua y jabón. Retraiga la piel del prepucio, y limpie con una mota de
algodón empapado en agua con jabón la cabeza del pene.
- Enjuague directamente con agua, o con motas de algodón empapadas en agua eliminando
todo el jabón. Después del aseo, tomar inmediatamente la muestra de orina.
Procedimiento:
• Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado sin tocar los bordes.
• Mantenga el prepucio retraído durante todo el procedimiento.
• Comience a orinar y elimine el primer chorro de orina en el baño.
• Recolecte el segundo chorro de orina en el frasco, llenando hasta la mitad del frasco.
• Elimine la última parte del chorro de orina en el baño.
• El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa.
• Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior.
• Tape cuidadosamente el frasco y compruebe que quede bien cerrado. Colóquele su nombre.
• Trasladar la muestra al Laboratorio dentro de una bolsa plástica con hielo, antes de dos horas
de su obtención.
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs.
•
•
•
Urocultivo y orina completa en mujeres
Tipo de muestra: Orina
Idealmente utilizar la primera orina de la mañana.
Antes de tomar la muestra, realizar aseo de la zona genital:
- Lávese las manos con agua y jabón.
- Separando los labios genitales, lavar la vulva con una mota de algodón empapada en agua
con jabón, arrastrando siempre de delante hacia atrás.
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- Enjuagar cuidadosamente con bastante agua para eliminar los restos de jabón.
- Después del aseo, tomar inmediatamente la muestra de orina.
Procedimiento:
• Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes.
• Comience a orinar y elimine el primer chorro de orina en el baño.
• Recolecte el segundo chorro de orina en el frasco, llenando hasta la mitad del frasco. Elimine
la última parte del chorro de orina en el baño.
• El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa.
• Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior.
• Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado. Colóquele su nombre.
• Trasladar la muestra al Laboratorio dentro de una bolsa plástica con hielo, antes de dos horas
de su obtención.
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs.
•
•
•
•
•
•
Coprocultivo
Tipo de muestra: Deposición
En medio de transporte - gelatina (Cary-Blair)
El tubo con el medio de transporte deberá permanecer refrigerado (4ºC) hasta el momento de
la obtención de la muestra.
Recolectar la deposición en un recipiente limpio. Si no es posible obtener deposición al
momento de obtener la muestra, introducir cuidadosamente la tórula estéril +/- 2 cms. a través
del esfínter anal, girar suavemente la tórula y retírela. Puede utilizarse deposición desde el
pañal, siempre que sea recién emitida.
Introduzca la tórula con la deposición en el tubo con el medio de transporte, cuidando que el
algodón quede dentro del gel y cierre herméticamente el tubo con la tapa.
Llevar lo antes posible al Laboratorio, puede permanecer a temperatura ambiente en el medio
de transporte hasta 24 horas.
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs.
•
•
Leucocitos fecales
Tipo de muestra: Deposición fresca.
Procedimiento:
- Obtener la muestra por eliminación espontánea.
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio; debe ser trasladada
al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención.
- Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té.
Recolección de muestra de deposición de pañal: (para niños o ancianos):
Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que
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contenga el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal.
Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha
entregado por el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de
hielo.
La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención.
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs.
•
•
Esteatocrito
Tipo de muestra: Deposición fresca.
Procedimiento:
- Obtener la muestra por eliminación espontánea.
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio. Debe ser trasladada
al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención.
- Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té.
Recolección de muestra de deposición de pañal: (para niños o ancianos)
- Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga
el pañal, ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal.
- Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por
el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo.
- La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención.
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs.
•
•
Rotavirus
Tipo de muestra: Deposición fresca.
Procedimiento:
- Obtener la muestra por eliminación espontánea.
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio, debe ser trasladada
al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención.
- Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té.
Recolección de muestra de deposición de pañal: (para niños o ancianos):
- Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga
el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal.
- Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por
el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo.
- La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención.
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs.
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Hemorragia oculta
Tipo de muestra: Deposición fresca.
Procedimiento:
- Obtener la muestra por eliminación espontánea.
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio; debe ser trasladada
al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención.
- Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té.
Recolección de muestra de deposición de pañal: (para niños o ancianos):
- Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga
el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal.
- Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por
el laboratorio.
- Taparlo
y
meterlo
en
una
bolsa
plástica,
con
cubos
de
hielo.
La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención.
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs.
Orina de 24 horas
Usted debe juntar toda la orina emitida durante 24 horas.
Procedimiento:
• El día previo al examen, a las 7:00 hrs., debe vaciar la vejiga orinando a fondo y botar esa
orina.
• De ahí en adelante debe juntar toda la orina de cada micción en el envase, durante las 24
horas hasta las 7:00 de la mañana siguiente. NO ELIMINAR NINGUNA ORINA DEL DIA DE
RECOLECCION.
• Toda la orina recolectada durante el período completo debe guardarse refrigerada y llevarla
antes de 2 horas al laboratorio. Durante el período de recolección de la orina, usted debe
ingerir 1 y 1/2 litros de agua (agua de la llave), salvo que su médico tratante disponga lo
contrario. Le solicitamos no mezclar la orina con papel higiénico, deposiciones o flujo
menstrual. Si hay presencia de este último, la recolección de orina debe realizarse una vez
finalizado el período menstrual. Si necesita obrar debe orinar primero y luego obrar.
COLOCAR SU NOMBRE EN EL ENVASE.
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs.
Prueba de tolerancia a la glucosa
Preparación del paciente:
• El día del examen debe estar en ayunas (última comida a las 20:00 del día anterior)
• Debe traer el jugo exprimido de dos limones en un frasco.
• El examen se demora dos horas, por lo tanto debe presentar su orden en ventanilla antes de
la 9.00 hrs.
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Debe venir acompañado de un familiar
Procedimiento:
• Se le tomará una muestra de sangre basal en ayunas.
• Luego deberá ingerir en 5 minutos, una solución de glucosa con limón disuelta en agua.
• A continuación deberá esperar, en reposo, dos horas para tomar la segunda muestra de
sangre. Al término del proceso debe avisar si se siente mal por la sobrecarga de glucosa
ingerida.
Parasitológico
Tipo de Muestra: Deposición
Procedimiento:
• El paciente debe defecar en un recipiente limpio y seco, sin mezclar con orina. Si es lactante,
tomar del pañal la muestra recién emitida.
• Coloque una porción del tamaño de una nuez dentro del frasco y mezcle con el líquido que
contiene, hasta obtener una emulsión homogénea utilizando una paleta de madera. Las
muestras deben obtenerse día por medio hasta completar las tres. En caso de no poder
obtener las muestras día por medio, puede traerlas cuando complete la última muestra.
• Si observa algún gusano, debe colocarlo en un frasco limpio con agua de la llave. Dejar las
muestras a temperatura ambiente en un lugar fresco o en refrigerador a 4ºC.
IMPORTANTE: Identificar las muestras y NO DEJAR LOS FRASCOS AL ALCANCE DE LOS
NIÑOS PUES EL LÍQUIDO ES TOXICO.
Test de Graham
Instrucciones previas al procedimiento:
La aplicación de esta técnica debe ser efectuada por una persona que no sea el paciente. No se
deben aplicar pomadas o polvos-talco en la región anal durante la noche anterior.
La toma de muestra se debe efectuar a primera hora de la mañana SIN ASEO PREVIO. NO ES
DEPOSICION.
Procedimiento.
Desprenda de la placa de vidrio la tira de papel celofán (scotch transparente).
Aplique varias veces la tira de papel celofán, por el lado engomado, en todos los alrededores
del ano.
Pegue el scotch bien estirado en la placa de vidrio. No poner el nombre en el scotch.
Si detecta "pidulle", colóquelo entre el scotch y la placa de vidrio.
Cada día, envuelva en un papel aparte la placa de vidrio usada, y guárdela en el sobre
correspondiente, hasta completar los cinco.
Escriba el nombre, los dos apellidos y la edad del paciente. Y entréguela finalmente en la
recepción de la toma de muestra.
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs.
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Test de sudor
Preparación del paciente:
• El día citado debe traer lo siguiente:
- Una mamadera
- Leche, te o café (dependiendo de la edad)
- Carné de identidad
- Orden de examen timbrada en recaudación
- Una muda de ropa
• El examen se realiza en el brazo del paciente, (no se pincha), primero se estimula la
producción del Sudor, luego se recolecta este sudor en un capilar, para finalmente leer la
concentración de sal que existe en la muestra. Se demora de 30 – 60 minutos según la
condición del paciente.
Se puede solicitar repetir este examen de acuerdo al criterio médico.
Baciloscopía.
Procedimiento:
• Enjuagar la boca con agua.
• Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal.
• Depositar la muestra en frasco boca ancha limpio entregado por la Unida de Toma de
Muestra.
• Rotular el frasco con el nombre del paciente.
• Transportar la muestra a temperatura ambiente a la Unidad de Toma de Muestra.
• Se debe repetir el procedimiento en días consecutivos hasta completar tres muestras,
enviándolas cada día a la Unidad de Toma de Muestra.
Nota: Entregar la muestra en ventanilla antes de las 10:00 AM.
Expectoración
Procedimiento:
• Enjuagar la boca con agua.
• Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal.
• Depositar la muestra en frasco boca ancha estéril entregado por la Unida de Toma de
Muestra.
• Rotular el frasco con el nombre del paciente.
• Transportar la muestra a temperatura ambiente a la Unidad de Toma de Muestra antes de dos
horas de emitida.
Nota: Entregar la muestra en ventanilla antes de las 10:00 AM.
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Urocultivo y orina completa en niños.
Debe presentarse el día _______________ a las 08:00 hrs. en la Unidad de Toma de Muestras y
traer lo siguiente:
• 2 pañales de tela o toallas.
• Una mamadera con agua azucarada o jugo.
El día que se tomará el examen no colocar talco ni pomadas en la zona genital.
6.15 Criterios de rechazo:
6.15.1 Muestras mal identificadas:
•
•
•
•
•
•
Falta de identificación del paciente.
Discrepancia entre identificación de orden médica y rotulación de la muestra.
Falta de identificación del tipo de muestra.
Falta de identificación en la orden médica del tipo de estudio solicitado.
Falta de la orden de examen.
Examen no se realiza en este Laboratorio
6.15.2 Muestras no adecuadas para procesamiento:
•
•
•
•
•
•
•
•
•
Muestra en tubo erróneo.
Muestra mal colectada.
Muestra a una temperatura inadecuada.
Muestra enviada en medio de transporte no adecuado.
Muestra que requiere medio de transporte enviada sin el medio de transporte
necesario.
Muestra enviada en envase no adecuado.
Muestras derramadas.
Muestras inadecuadas para el tipo de estudio solicitado.
Muestras contaminadas o en descomposición visible.
6.16 Características generales del traslado de las muestras:
Las muestras deben ser transportadas en contenedores especiales con tapa y en gradillas
que impidan su derrame según tipo de muestra.
Aquellos que requieren cadena de frío deben transportarse con unidades refrigerantes en
cooler.
El personal encargado debe estar capacitado en el transporte de material biológico y debe
utilizar guantes.
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7. Flujograma: Procesos de Toma de Muestras.
Procesos operativos
Gestión de
Personal
Indicadores
No conformidades
Acciones
correctivas
Acciones
Preventivas
Auditorias
L
A
P
B
A
Paciente
ambulatorio
C
I
E
RECEPCIÓN de
ÓRDENES de
EXAMEN
N
Generación de etiquetas
Traslado y
entrega a
Recepción del
Laboratorio
Llamado del paciente
Paciente
hospitalizado
O
R
A
T
Toma de muestra
O
T
Clasificación de Muestras
R
E
I
Recurso
Humano
Abastecimiento
Mantención
de equipos
Planta física
Sistemas
informáticos
Aseo y
lavado
Procesos de Apoyo
* Se entregara a cada paciente ambulatorio comprobante de toma de muestra que incluye fecha de entrega del resultado.
Bioseguridad
Control de
documentos
O
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8. Indicadores y método de evaluación:
Indicador
Porcentaje de muestras rechazadas según registro
Formula
Umbral de
cumplimiento
Evaluación
Nº de muestras rechazadas X 100
Nº total de muestras recibidas
Excelente : 0 – 4 %
Aceptable: 5 – 8 %
Critico
: 9 – 100 %
Trimestral
Revisión de planilla de registro de rechazo de muestras de la recepción de
Laboratorio.
Indicador
Porcentaje de gases arteriales y venosos transportados según instructivo
institucional
Formula
Nº de gases arteriales y venosos transportados en cadena de frío / Nº total de
gases arteriales y venosos recibidos X 100.
Umbral de
cumplimiento
Excelente : 100 – 98%
Aceptable: 97 – 90%
Critico
: 89 – 0%
Trimestral
Revisión de planilla de registros de gases arteriales y venosos que se reciben en
Laboratorio de Urgencia con cadena de frío.
Evaluación
9. Distribución del documento:
8.1 Unidad de Calidad y Seguridad del paciente.
8.2 Laboratorio Clínico.
8.3 Policlínicos de toma de muestra.
8.4 Unidades y Servicios clínicos.
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10. Referencias bibliográficas:
•
•
•
•
•
•
•
•
•
•
•
•
•
América Latina. Editores: M.L.Castillo de Sánchez y M.E.Fonseca Yerena en
colaboración con COLABIOCLI. Editorial Médica Panamericana.
California Phlebotomy Training.
http://www.parsons.umaryland.edu/~vguy/phleb.htm
Center for Phlebotomy Education. http://www.scpt.com/PhlebotomyViews.html
Garza D and Becan-McBride K. Phlebotomy Handbook, 2nd Ed.
Norwalk,
Connecticut: Appleton and Lange: 1989.
Medstat Utah http://www.medstat.med.utah.edu/webpath/tutorial/PHLEB/PHLEB.html
Mejoría Continua de la Calidad. Guía para los laboratorios clínicos de National
Committee for Clinical Laboratory Standards. Procedures for
the Collection of
Diagnostic Blood Specimens by Skin Puncture.
Document H4-A3. Vol. 11 No. 11,
1991.
National Committee for Clinical Laboratory Standards; Procedures for
the
Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture, 3rd Ed. Document H3A3. Vol. 11 No. 10, 1991.
Phelan, S. Phlebotomy Techniques: A Laboratory Workbook. Chicago,
Ill.:
American Society of Clinical Pathologists: 1993.
University of Iowa Hospital and Clinics, Pediatric Phlebotomy Training Manual.
1994.
University of Iowa Hospital and Clinics, Phlebotomy Training Manual. 1994.
Virtual
Hospital:
CLIA
.
Pre-Analytical
Factors
Affecting
Laboratory,
http://www.vh.org/Providers/CME/CLIA/Phlebotomy/Phlebotomy.html
Virtual
Phlebotomy:
A
Computer
Aided
Course
of
Instruction.
http://www.phlebotomy.com
W.G Guder, S. Narayanan, H. Wisser, B. Zawta, “simples from the patient to the
laboratory”, 3rd Ed. Wiley-VCH, 2003
11. Anexos:
11.1 Conservación y transporte de muestras.
11.2 Orden de examen.
11.3 Registro planilla de flebotomista.
11.4 Registro de rechazo de muestras.
11.5 Registro recepción de muestras de laboratorio clínico.
11.6 Registro de actividades diarias de toma de muestras.
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Anexo 1: Conservación y transporte de muestras.
INSTRUCTIVO TOMA DE MUESTRAS EXAMENES LABORATORIO CLINICO HSJD
EXAMENES
MUESTRA
ADA (Adenosindeaminasa)
Liquidos
ACIDO LACTICO
Sangre Venosa
ACIDO URICO (Uricemia)
Sangre Venosa
ACIDO URICO (Uricosuria)
Muestra Orina
ACIDO VALPROICO
Sangre Venosa
ADENOCORTICOTROFINA (ACTH)
Sangre Venosa
ALDOSTERONA
Sangre Venosa
ALBUMINA
Sangre Venosa
ALFAFETOPROTEINA
Sangre Venosa
AMILASA (sangre)
Sangre Venosa
AMILASURIA (orina)
Orina
AMONIO (sangre)
Sangre Venosa
ANDROSTENIDIONA
Sangre Venosa
ANTIGENEMIA CMV (Citomegalovirus)
Sangre Venosa
APE Total (PSA Total)
Sangre Venosa
Ac.ANCA (anti PR3 - anti MPO)
Sangre Venosa
Ac. ANTICITRULINA (CCP)
Sangre Venosa
Ac.ANTI - DNA
Sangre Venosa
AC.ANTIENDOMISIO
Sangre Venosa
AC.ANTIMITOCONDRIALES
Sangre Venosa
AC.ANTIMUSCULO LISO
Sangre Venosa
AC. ANTINUCL. SCREEN, ANA
Sangre Venosa
AC.ANTINUCL. IFI
Sangre Venosa
AC.ANTICENTROMERO
Sangre Venosa
AC.ANTICARDIOLIPINA
Sangre Venosa
AC.ANTIPEROXIDASA (TPO)
Sangre Venosa
AC.ANTITRANSGLUTAMINASA
Sangre Venosa
AC.ANTITIROGLOBULINA
Sangre Venosa
AC.ANTITIROIDEOS
Sangre Venosa
AC.ANTI ENA Screen(Ro-La-Scl-Sm-Jo1) Sangre Venosa
AC.ANTI ENA Perfil(Ro-La-Scl-Sm-Jo1)
Sangre Venosa
BANDAS OLIGOCLONALES (Lectroforésis)
LCR
BHCG CUALITATIVA
Sangre Venosa
BHCG CUANTITATIVA
Sangre Venosa
BETA 2 MICROGLOBULINA
Sangre Venosa
BILIRRUBINA (total, directa e indirecta)
Sangre Venosa
BICARBONATO EN SANGRE
Sangre Venosa
CALCIO (Calcemia, Ca)
Sangre Venosa
CALCIO IONICO (sangre)
Sangre Venosa
CALCIURIA (calcio en orina)
Orina
CARBAMAZEPINA
Sangre Venosa
CARIOGRAMA (Sangre)
Sangre Venosa
CARIOGRAMA EN LÍQ. AMNIÓTICO
L.Amniótico
CEA
Sangre Venosa
Ca 125
Sangre Venosa
CELULAS INCLUSION CMV
Muestra Orina
CETONEMIA (cetonas en sangre)
Sangre Venosa
CETONURIA (cetonas en orina)
Muestra Orina
CICLOSPORINA Basal (Co)
Sangre Venosa
CICLOSPORINA Post carga ( Co 2 )
Sangre Venosa
REQUISITOS
Sin ayuno
Sin ayuno
Ayuno 8 hrs
Aislada o de 24 hrs
Sin Ayuno, Sin dosis matinal
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Ayuno 8 hrs
Sin Ayuno
Ayuno 8 hrs
Orina aislada o 24 hrs.
Sin ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Ayuno 8 hrs
Sin Ayuno
Ayuno 8 hrs
Sin Ayuno
Aislada o de 24 hrs
Sin Ayuno, Sin dosis matinal
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Orina aislada
Sin dosis matinal
2 hrs post Dosis
ENVASE
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo Lila, 5 ml sin ligadura
Tubo tapa Verde, 5 ml
Frasco / Bidón
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa verde, 5 ml
Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 2ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Jeringa con heparina de litio
Tubo tapa Verde, 5 ml
Jeringa o tubo hep. de litio
Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Jeringa con heparina de litio, 5 mL
2 jeringas s/anticoagulante 10 mL c/u
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Frasco
Tubo tapa Verde
Frasco Esteril o Bidón
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
TRASLADO Y CONSERVACIÓN LUGAR PROCESO
Envio rápido T°.amb
Química
Envio rápido, cadena frio
Química
T. amb
Química
T. amb
Química
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
Química
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
Química
T. amb
Química
Envío rápido, cadena de frio
Química
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
J.J. AGUIRRE
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
Química
Envío rápido, cadena de frio
Química
T. amb
Química
Envío rápido, cadena de frio
Química
T. amb
Química
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
U.CATOLICA
T. amb
U.CATOLICA
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
En cadena frio
Orina
T. amb
Quimica
T. amb
Orina
En cadena frio
Química
En cadena frio
Química
FONO
242003
242003
242003
242003
281580
281580
281580
242003
281580
242003
242003
242003
281580
9788522
281580
242332
242332
242332
242332
242332
242332
242332
242332
242332
242332
242332
242332
242332
242332
242332
242332
242332
281580
281580
281580
242003
242003
242003
242003
242003
244550
3543000
3543000
281580
281580
242042
242003
242042
242003
242003
OBSERV.
Última dosis (hora), peso, talla
Carta Resg. SDA
Última dosis (hora), peso, talla
Resguardo SDA
Resguardo SDA
RESULTADOS
7 días
En el día
En el día
En el día
2 días
3 a 4 días
3 a 4 días
En el día
2 días
En el día
En el día
En el día
3 a 4 días
24 a 72 horas
2 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
1 a 7 días
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
2 días
1 a 2 semanas
1 a 2 semanas
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
24 horas
48 horas
SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO
OCCIDENTE
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT
Laboratorio
Clínico
Manual de Toma de muestra de
Laboratorio Clínico
Código: DOC – LAB 5
APL 1.2
Edición: 2
Fecha: Junio 2010
Página 28 de 35
Vigencia: Abril 2014
INSTRUCTIVO TOMA DE MUESTRAS EXAMENES LABORATORIO CLINICO HSJD
EXAMENES
MUESTRA
REQUISITOS
ENVASE
TRASLADO Y CONSERVACIÓN LUGAR PROCESO
CITOLÓGICO DE LAVADO BRONCOALV.
LBA
Sin Ayuno
Tubo tapa Lila , 5 ml
T. amb
Hematología
CISTICERCOSIS
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Roja, 5 ml
T. amb
ISP
CD 4
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Lila , 5 ml
T. amb
J.J. AGUIRRE
CARGA VIRAL VIH
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Lila, 6 ml
Cadena de frio
J.J. AGUIRRE
CHAGAS
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Roja, 5 ml
T. amb
ISP
CHAGAS PCR
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Lila , 5 ml
Cadena de frio
ISP
CITOMEGALOVIRUS (IgG-IgM)
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Roja, 5 ml
T. amb
Química
CK TOTAL
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Verde, 5 ml
T. amb
Química
CK MB
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Verde, 5 ml
T. amb
Química
CLEARENCE CREATININA
MEDICION SIMULTANEA DE CREATININA EN SANGRE Y EN ORINA. Debe consignarse el PESO y TALLA del paciente
Orina
CREATININA(sangre)
Sangre Venosa
Ayuno de 8 hrs
Tubo tapa Verde, 5 ml
T. amb
Química
CREATININA (orina)
Muestra Orina
Orina aislada o de 24 hrs.
Frasco o Bidón
T. amb
Química
COLESTEROL
Sangre Venosa
Ayuno Estricto 12 hrs
Tubo tapa Verde, 5 ml
T. amb
Química
COLESTEROL HDL- LDL
Sangre Venosa
Ayuno Estricto 12 hrs
Tubo tapa Verde, 5 ml
T. amb
Química
COMPLEMENTO C3 - C4
Sangre Venosa
Ayuno de 8 hrs
Tubo tapa Roja, 5 ml
T. amb
Química
COLINESTERASA
Sangre Venosa
Ayuno de 8 hrs
Tubo tapa verde, 5 ml
Envío rápido, T. amb
Química
CORTISOL PLASMATICO AM - PM
Sangre Venosa
Sin Ayuno a las 8 y 16 hrs
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
T. amb
H.F.BULNES
CORTISOL LIBRE URINARIO
Orina
Orina de 24 hrs
Bidón
T. amb
H.F.BULNES
DHEA (Dehidroepiandrosterona)
Sangre Venosa
Sin ayuno
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
T. amb
H.F.BULNES
DIMERO D
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Celeste
Cadena de frio
Coagulación
ELISA TP (Treponema)
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Roja, 5 ml
T. amb
Serologia
EOSINOFILOS URINARIOS
Orina
Sin Ayuno
Frasco
T. amb
Hematología
ESPERMIOGRAMA
Semen
3 Días abstinencia sexual
Frasco Estéril
Envío rápido, 37 °C
Lab. Koch
ESTEATOCRITO
Deposición
Régimen sin grasas
Frasco pesado en lab.
T. amb
Química
ESTRADIOL (17-Beta Estradiol)
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
T. amb
H.F.BULNES
ELECTROLITOS, Na,K,Cl (sangre)
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Verde, 5 ml
T. amb
Química
ELECTROLITOS (orina)
Orina
Aislada o de 24 hrs.
Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio
T. amb
Química
EFP(electroforesis proteínas) SANGRE
Sangre Venosa
Sin ayuno
Tubo tapa Roja, 5 ml
T. amb
Inmunología
EFP(electroforesis proteínas) ORINA
Muestra Orina
Orina de24 hrs
Bidón
T. amb
Inmunología
EFP(electroforesis proteínas) LCR
LCR
Sin ayuno
Tubo tapa Roja, 2ml
T. amb
Inmunología
FACTOR REUMATOIDEO
Sangre Venosa
Sin ayuno
Tubo tapa Roja, 5 ml
T. amb
Inmunología
FERRITINA
Sangre Venosa
Ayuno de 8 hrs
Tubo tapa Roja, 5 ml
T. amb
Química
FENITOINA
Sangre Venosa
Sin Ayuno, Sin dosis matinal
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
T. amb
H.F.BULNES
FENOBARBITAL
Sangre Venosa
Sin Ayuno, Sin dosis matinal
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
T. amb
H.F.BULNES
FIBRINOGENO
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Celeste
Cadena de frio
Coagulación
FIERRO
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs.
Tubo tapa Roja, 5 ml
T. amb
Química
FOSFATASA ALCALINA
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs.
Tubo tapa Verde, 5 ml
T. amb
Química
FOSFORO (plasma)
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs.
Tubo tapa Verde, 5 ml
T. amb
Química
FOSFORO (orina)
Muestra Orina
Aislada o de 24 hrs.
Frasco estéril/Bidónsolic. Lab
T. amb
Quimica
FSH (Hormona foliculo estimulante)
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
T. amb
H.F.BULNES
FTA-ABS / MHA TP
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tubo tapa Roja, 5 ml
T. amb
ISP
GASES ARTERIALES
Sangre Arterial
Sin Ayuno
Jeringa con heparina de litio
Envío rápido, cadena frío
Quimica
GASES VENOSOS
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Jeringa con heparina de litio
Envío rápido, cadena frío
Quimica
GENOTIPO VIH -1
Sangre Venosa
Sin Ayuno
Tupo tapa Lila,5 ml
T. amb., Envío antes 2 hrs.
J.J. AGUIRRE
GGT
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs.
Tubo tapa Verde, 5 ml
T. amb
Quimica
GLUCOSA (plasma)
Sangre Venosa
Ayuno estricto 8 hrs.
Tubo tapa Gris, 5 ml
T. amb
Quimica
GLUCOSA (orina)
Muestra Orina
Aislada o de 24 hrs.
Frasco o Bidón
T. amb
Orina
GLUCOSA POST PRANDIAL
Sangre Venosa
2 hrs post Desayuno liviano
Tubo tapa Gris, 5 ml
T. amb
Quimica
GLOBULINA
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs.
Tubo tapa Verde, 5 ml
T. amb
Quimica
GOT
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs.
Tubo tapa Verde, 5 ml
T. amb
Quimica
FONO
OBSERV.
RESULTADOS
241999
En el día
3507244
Formulario Especial ISP
8 a 15 días
9788522 Martes y Jueves hasta 10:30 hrs
10 días
9788522 Martes y Jueves hasta 10:30 hrs
10 días
3507244
Formulario Especial ISP
8 a 15 días
3507244
Formulario Especial ISP
8 a 15 días
242003
7 días
242003
En el día
242003
En el día
202003
En el día
242003
En el día
242003
En el día
242003
En el día
242003
En el día
242003
7 dias
242003
En el día
281580
En el día
281580
Diuresis medida
3 a 4 días
281580
En el día
242003
Previo aviso a Lab. Coagulación
En el día
242332
24 horas
241999
En el día
242122
Previo aviso a Laborato rio
24 horas
242003
24 horas
281580
En el día
242003
En el día
242003
En el día
242332
1 a 7 dias
242332
Diuresis medida
1 a 7 dias
242332
1 a 7 días
242332
1 a 7 dias
202003
En el día
281580
Última dosis (hora), peso, talla
2 días
281580
Última dosis (hora), peso, talla
2 días
242003
En el día
242003
En el día
242003
En el día
242003
En el día
242003
En el día
281580
En el día
3507244
Formulario Especial ISP
7 a 30 días
242003
En el día
242003
En el día
9788522Formulario especial, Carta Resg. SDA
1 mes
242003
En el día
242003
En el día
242003
En el día
242003
En el día
242003
En el día
242003
En el día
SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO
OCCIDENTE
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT
Laboratorio
Clínico
Manual de Toma de muestra de
Laboratorio Clínico
Código: DOC – LAB 5
APL 1.2
Edición: 2
Fecha: Junio 2010
Página 29 de 35
Vigencia: Abril 2014
INSTRUCTIVO TOMA DE MUESTRAS EXAMENES LABORATORIO CLINICO HSJD
EXAMENES
MUESTRA
REQUISITOS
GPT
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs.
HEMATOCRITO
Sangre Venosa
Sin Ayuno
HEMOGLOBINA GLICOSILADA
Sangre Venosa
Sin Ayuno
HEMOGLOBINA
Sangre Venosa
Sin Ayuno
HEMOGRAMA
Sangre Venosa
Sin Ayuno
HEMOSIDERINA
Médula Osea
Sin Ayuno
HEPATITIS B
Sangre Venosa
Sin Ayuno
HEPATITIS C
Sangre Venosa
Sin Ayuno
HIDATIDOSIS
Sangre Venosa
Sin Ayuno
HLA-B 27
Sangre Venosa
Sin Ayuno
HLA-B 5701 (Protocolo)
Sangre Venosa
Sin Ayuno
HTLV 1
Sangre Venosa
Sin Ayuno
HORMONA CRECIMIENTO (HGH,GH,HC) Sangre Venosa
Sin Ayuno
INMUNOGLOBULINAS (A,G,M,E)
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs
INDICE PROTEINURIA/CREATININURIA
Muestra Orina
Orina aislada
INDICE MICROALBUMINURIA/CREATININU. Muestra Orina
Orina aislada
INDICE ALBUMINA/GLOBULINA
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs
IGF 1 (Somatomedina)
Sangre Venosa
Sin Ayuno
IGFBP 3
Sangre Venosa
Sin Ayuno
INMUNOFIJACIÓN (IFIX)sangre
Sangre Venosa
Sin ayuno
INMUNOFIJACIÓN (IFIX)orina
Orina
Orina de 24 hrs
INSULINA
Sangre Venosa
Ayuno 12 hrs
INSULINA, Curva de
Sangre Venosa
Post ingesta glucosa
LAMOTRIGINAS
Sangre Venosa
Sin Ayuno, Sin dosis matinal
LDH
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs
LH (Hormona Luteinizante)
Sangre Venosa
Sin Ayuno
LIPASA
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs
LIQ CEFALO RAQ. quimico
LCR
Sin Ayuno
LIQ CEFALO RAQ. citológico
LCR
Sin Ayuno
LIQ. AMNIOTICO quimico
Liq.Amniótico
Sin Ayuno
LIQ. AMNIOTICO citológico
Liq.Amniótico
Sin Ayuno
LIQ. ASCITICO quimico
Liq.Ascitico
Sin Ayuno
LIQ. ASCITICO citológico
Liq.Ascitico
Sin Ayuno
LIQUIEO PLEURAL químico
Liq.Pleural
Sin Ayuno
LIQ.PLEURAL citológico
Liq.Pleural
Sin Ayuno
LIQ. PERICARDICO quimico
Liq.Pericardico
Sin Ayuno
LIQ. PERICARDICO citológico
Liq.Pericardico
Sin Ayuno
LIQ.PERITONEAL quimico
Liq.Peritoneal
Sin Ayuno
LIQ.PERITONEAL citológico
Liq.Peritoneal
Sin Ayuno
Liq.Articular(sinovial)
Sin Ayuno
LIQ. ARTICULAR (Sinovial)
LIQ. ARTICULAR (Sinovial) Citologico
Liq.Articular(sinovial)
Sin Ayuno
LITIO
Sangre venosa
Sin Ayuno
MAGNESIO (sangre)
Sangre Venosa
Ayuno 8 hrs
MAGNESIO (orina)
Muestra Orina
Aislada o de 24 hrs
MICROALBUMINURIA
Muestra Orina
Aislada o de 24 hrs
MIELOGRAMA
Médula Osea
Sin Ayuno
NITROGENO UREICO (sangre)
Sangre Venosa
Sin Ayuno
NITROGENO UREICO (orina)
Muestra Orina
Aislada o de 24 hrs
OXCARBAMAZEPINA
Sangre Venosa
Sin Ayuno, Sin dosis matinal
ORINA COMPLETA
Muestra Orina
Sin Ayuno
ENVASE
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
Laminas identificadas
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Lila, 12 ml
Tubo tapa Lila, 5 ml
Tubo tapa Lila,5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Frasco
Frasco
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Bidón
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Roja, 1 ml
Tubo tapa Lila , 1 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Lila,5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Lila,5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Lila,5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Lila,5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Lila,5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Lila,5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Frasco estéril/Bidónsolic. Lab
Frasco / Bidón
Láminas identicadas
Tubo tapa Verde, 5 ml
Frasco/Bidón
Tubo tapa Roja, 5 ml
Frasco
TRASLADO Y CONSERVACIÓN LUGAR PROCESO
T. amb
Quimica
T. amb
Hematología
cadena de frio
Hematología
T. amb
Hematología
T. amb
Hematología
T. amb
Hematología
T. amb
Serología
T. amb
Serología
T. amb
ISP
T. amb
ISP
T. amb
U.CATOLICA
T. amb
ISP
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
Química
T. amb
Orina
T. amb
Orina
T. amb
Quimica
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
Inmunología
T. amb
Inmunología
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
I.NEUROCIR
T. amb
Química
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
Quimica
T. amb
Quimica
T. amb
Hematología
T. amb
Quimica
T. amb
Hematología
T. amb
Quimica
T. amb
Hematología
T. amb
Quimica
T. amb
Hematología
T. amb
Quimica
T. amb
Hematología
T. amb
Quimica
T. amb
Hematología
T. amb
Química
T. amb
Hematología
T. amb
CRS
T. amb
Quimica
T. amb
Quimica
T. amb
Orina
T. amb
Hemato-Onco
T. amb
Quimica
T. amb
Quimica
T. amb
I.NEUROCIR
cadena de frio
Orina
FONO
242003
241999
241999
241999
241999
241999
242332
242332
3507244
3507244
3543000
3507244
281580
242003
242003
242042
242003
281580
281580
242332
242332
281580
281580
5754827
242003
281580
242003
242003
241999
242003
241999
242003
241999
242003
241999
242003
241999
242003
241999
202003
241999
242676
242003
242003
202042
241999
242003
242003
5754827
242042
OBSERV.
Formulario Especial ISP
Formulario Especial ISP
Formulario Especial
Formulario Especial ISP
Identif. 1 y 2° muestra
Última dosis (hora), peso, talla
Sólo glucosa
Última dosis (hora), peso, talla
RESULTADOS
En el día
En el día
1 a 4 días
En el día
En el día
7 dias
1 día
1 día
8 a 15 días
10 días
10 días
10 días
3 a 4 dias
1 a 7 dias
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
1 a 7 dias
1 a 7 dias
En el día
En el día
24 a 72 horas
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
En el día
7 días
En el día
En el día
24 a 72 horas
En el día
SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO
OCCIDENTE
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT
Laboratorio
Clínico
Manual de Toma de muestra de
Laboratorio Clínico
Código: DOC – LAB 5
APL 1.2
Edición: 2
Fecha: Junio 2010
Página 30 de 35
Vigencia: Abril 2014
INSTRUCTIVO TOMA DE MUESTRAS EXAMENES LABORATORIO CLINICO HSJD
EXAMENES
OSMOLALIDAD (plasma)
OSMOLALIDAD (orina)
PAUL BUNELL, MONOTEST
PCR COXIELA
PCR H1N1
PCR HPV (Virus Papiloma Humano)
PCR HERPES 1 y 2 (LCR)
PCR HERPER 1 y 2 (Sangre)
PCR TRASLOCACIÓN 15:17 (LPM)
PCR TRASLOCACIÓN 9:22 (LMC)
PCR VIRUS EPSTEIN BARR
PERFIL HEMATOLOGICO
PH en LIQUIDOS
PH URINARIO
PIRIMIDONA
PREALBUMINA
PROGRAF (TACROLIMUS)
PROLACTINA
PROGESTERONA
17-OH-PROGESTERONA
PROTEINA C REACTIVA (PCR)
PROTEINURIA
PROTEINAS TOTALES
PTGO (prueba tolerancia)
PARATOHORMONA (PTH)
PSA total (Antígeno Prostático)
PSA libre
RAPAMUNE
RETICULOCITOS
RUBEOLA
SCREENING HEMOLISIS
SUBPOBLACIÓN LINFOCITARIA NO VIH
TEOFILINA
TEST DEL SUDOR
TIEMPO DE PROTROMBINA
TIEMPO PARCIAL TROMBOPLASTINA
TIOPETAL
TRIGLICERIDOS
TOXOCARIOSIS
TOXOPLASMOSIS (IgG - IgM)
TRANSFERRINA
T4
T4 LIBRE
TEST DE BORRELIA
TESTOSTERONA
TSH
TIROGLOBULINA
VANCOMICINA
VHS
VIH
VDRL sangre
VDRL LCR
Viscosidad sanguinea
MUESTRA
Sangre Venosa
Orina
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sec.nasofaringea
M. Endocervical
LCR
Sangre Venosa
Med. Osea o S.V.
Med. Osea o S.V.
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Líquido
Muestra Orina
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Muestra Orina
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sudor
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
Sangre Venosa
LCR
Sangre Venosa
REQUISITOS
Sin Ayuno
Orina Aislada
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno, Sin dosis matinal
Sin Ayuno
Sin Ayuno, Sin dosis matinal
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Aislada o de 24 hrs.
Ayuno 8 hrs
Ayuno 8 hrs
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno, Sin dosis matinal
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno, Sin dosis matinal
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin ayuno
Sin Ayuno, Sin dosis matinal
Ayuno 12 hrs
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Ayuno 8 hrs.
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Ayuno 8 hrs
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
Sin Ayuno
ENVASE
Tubo tapa Verde, 5 ml
Frasco
Tubo tapa Roja , 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo con PBS
Tubo con PBS
Tubo tapa Lila , 1 ml
Tubo tapa lila, 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
Jeringa con heparina de litio
Frasco
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Lila, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Verde , 5 ml
Frasco / Bidón
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Gris
Tubo tapa Lila, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Lila, 5 ml
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo Lila,Verde,Rojo
Tubo tapa Lila , 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Capilar especial
Tubo tapa Celeste, 5 ml
Tubo tapa Celeste, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Verde, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Amarilla, 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Negra, 5 ml
Tubo tapa Verde , 5 ml
Tubo tapa Roja, 5 ml
Tubo tapa Roja, 2 ml
Tubo tapa Roja, 2 ml
TRASLADO Y CONSERVACIÓN LUGAR PROCESO
T. amb
Quimica
T. amb
Quimica
T. amb
Hematología
cadena de frio
ISP
cadena de frio
Biol. Molecular
cadena de frio
Biol. Molecular
cadena de frio
Biol. Molecular
cadena de frio
Biol. Molecular
cadena de frio
Biol. Molecular
cadena de frio
Biol. Molecular
cadena de frio
J.J. AGUIRRE
T. amb
Hematología
Cadena frío
Quimica
Cadena frio
Quimica
T. amb
I.NEUROCIR
T. amb
Quimica
cadena frio, protegido luz.
H. C. MACK.
T.amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T.amb
Quimica
T.amb
Orina
T. amb
Quimica
T. amb
Quimica
T.amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
cadena frio, protegido luz.
U.CATOLICA
T. amb
Hematología
T.amb
ISP
T.amb
Hemato-Onco
T. amb
ISP
T. amb
I.NEUROCIR
T.amb
Serologia
cadena de frio
Coagulación
cadena de frio
Coagulación
T. amb
I.NEUROCIR
T. amb
Quimica
T.amb
ISP
T. amb
Quimica
T. amb
Quimica
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T.amb
ISP
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H.F.BULNES
T. amb
H. C. MACK.
T. amb
Hematología
T.amb
Serologia
T. amb
Serologia
T. amb
Serologia
T. amb
Hematología
FONO
OBSERV.
RESULTADOS
242003
En el día
242003
En el día
241999
En el día
3507244
Formulario Especial ISP
7 a 30 días
242332
1 día
242332
Autorización Doctor Ginecología
1 a 7 días
242332
1 a 4 días
242004
1 a 7 días
242332
2 semanas
242332
2 semanas
9788522 Carta Resg. SDA, Form. Especial 24 a 48 hrs.
241999
En el día
242003
En el día
242003
En el día
5754827
Última dosis (hora), peso, talla
24 a 72 hrs.
242003
En el día
5755958
Última dosis (hora), peso, talla
24 horas
281580
En el día
281580
En el día
281580
En el día
242003
En el día
242042
En el día
242003
En el día
242003
Identificar 1 y 2° muestra
En el día
281580
Se procesan jueves
1 a 7 días
281580
En el día
281580
En el día
3543000
Tarjeta solicitud Especial
1 día
241999
En el día
3507244
Formulario Especial ISP
12 días
241999
3 días
3507244
Formulario Especial ISP
12 días
5754827
Última dosis (hora), peso, talla
24 a 72 hrs.
242332
Lunes a Jueves
En el día
242003
En el día
242003
En el día
5754827
Última dosis (hora), peso, talla
24 a 72 hrs.
242003
En el día
3507244
Formulario Especial ISP
7 a 30 días
242003
1 a 7 días
242003
24 horas
281580
En el día
281580
En el día
3507244
Formulario Especial ISP
7 a 30 días
281580
En el día
281580
En el día
281580
En el día
5755958
Orden Especial
24 horas
241999
En el día
242332
Consentimiento informado
24 horas
242332
24 horas
242332
1 a 4 días
241999
En el día
SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO
OCCIDENTE
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT
Laboratorio
Clínico
Manual de Toma de muestra de
Laboratorio Clínico
Código: DOC – LAB 5
APL 1.2
Edición: 2
Fecha: Junio 2010
Página 31 de 35
Vigencia: Abril 2014
* Todo examen solicitado para envío al Instituto de Salud Publica debe enviarse con el formulario
correspondiente, emitido por dicha entidad y con todos los datos requeridos por este, los cuales
deben ser llenados por el profesional solicitante.
Anexo 2: Orden de examen.
SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO
OCCIDENTE
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT
Laboratorio
Clínico
Manual de Toma de muestra de
Laboratorio Clínico
Código: DOC – LAB 5
APL 1.2
Edición: 2
Fecha: Junio 2010
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Vigencia: Abril 2014
Anexo 3: Registro planilla de flebotomista.
Hr
Nombre
N° de Tubos por Paciente
TV TL TC
TR
TN
TG
Rut
TV: Tubo verde, TL: T.lila, TC: T.celeste, TR: T.rojo, TN: T.VHS, TG: T.gris
Teléfono
SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO
OCCIDENTE
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT
Laboratorio
Clínico
Manual de Toma de muestra de
Laboratorio Clínico
Código: DOC – LAB 5
APL 1.2
Edición: 2
Fecha: Junio 2010
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Vigencia: Abril 2014
Anexo 4: Registro de rechazo de muestras.
Fecha/n°
ingreso
Paciente/ RUT
Procedencia
Motivo de Rechazo
Responsable
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OCCIDENTE
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Laboratorio
Clínico
Código: DOC – LAB 5
APL 1.2
Edición: 2
Fecha: Junio 2010
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Manual de Toma de muestra de
Laboratorio Clínico
Vigencia: Abril 2014
Anexo 5: Registro recepción de muestras de laboratorio clínico.
EXÁMENES DE BIOQUÍMICA
1
16
31
46
61
76
91
106
121
136
151
166
181
196
211
226
241
256
271
286
301
316
331
346
361
376
391
406
421
436
451
466
481
496
511
526
541
556
571
586
601
616
631
646
661
2
17
32
47
62
77
92
107
122
137
152
167
182
197
212
227
242
257
272
287
302
317
332
347
362
377
392
407
422
437
452
467
482
497
512
527
542
557
572
587
602
617
632
647
662
3
18
33
48
63
78
93
108
123
138
153
168
183
198
213
228
243
258
273
288
303
318
333
348
363
378
393
408
423
438
453
468
483
498
513
528
543
558
573
588
603
618
633
648
663
4
19
34
49
64
79
94
109
124
139
154
169
184
199
214
229
244
259
274
289
304
319
334
349
364
379
394
409
424
439
454
469
484
499
514
529
544
559
574
589
604
619
634
649
664
5
20
35
50
65
80
95
110
125
140
155
170
185
200
215
230
245
260
275
290
305
320
335
350
365
380
395
410
425
440
455
470
485
500
515
530
545
560
575
590
605
620
635
650
665
6
21
36
51
66
81
96
111
126
141
156
171
186
201
216
231
246
261
276
291
306
321
336
351
366
381
396
411
426
441
456
471
486
501
516
531
546
561
576
591
606
621
636
651
666
7
22
37
52
67
82
97
112
127
142
157
172
187
202
217
232
247
262
277
292
307
322
337
352
367
382
397
412
427
442
457
472
487
502
517
532
547
562
577
592
607
622
637
652
667
8
23
38
53
68
83
98
113
128
143
158
173
188
203
218
233
248
263
278
293
308
323
338
353
368
383
398
413
428
443
458
473
488
503
518
533
548
563
578
593
608
623
638
653
668
9
24
39
54
69
84
99
114
129
144
159
174
189
204
219
234
249
264
279
294
309
324
339
354
369
384
399
414
429
444
459
474
489
504
519
534
549
564
579
594
609
624
639
654
669
10
25
40
58
70
85
100
115
130
145
160
175
190
205
220
235
250
265
280
295
310
325
340
355
370
385
400
415
430
445
460
475
490
505
520
535
550
565
580
595
610
625
640
655
670
Microb. Hemogr. Orinas
11
26
41
56
71
86
101
116
131
146
161
176
191
206
221
236
251
266
281
296
311
326
341
356
371
386
401
416
431
446
461
476
491
506
521
536
551
566
581
596
611
626
641
656
671
12
27
42
57
72
87
102
117
132
147
162
177
192
207
222
237
252
267
282
297
312
327
342
357
372
387
402
417
432
447
462
477
492
507
522
537
552
567
582
597
612
627
642
657
672
13
28
43
58
73
88
103
118
133
148
163
178
193
208
223
238
253
268
283
298
313
328
343
358
373
388
403
418
433
448
463
478
493
508
523
538
553
568
583
598
613
628
643
658
673
14
29
44
59
74
89
104
119
134
149
164
179
194
209
224
239
254
269
284
299
314
329
344
359
374
389
404
419
434
449
464
479
494
509
524
539
554
569
584
599
614
629
644
659
674
15
30
45
60
75
90
105
120
135
150
165
180
195
210
225
240
255
270
285
300
315
330
345
360
375
390
405
420
435
450
465
480
495
510
525
540
555
570
585
600
615
630
645
660
675
TAC
Tx
Hb glic.
Gases
Código: DOC – LAB 5
APL 1.2
Edición: 2
SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO
OCCIDENTE
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT
Laboratorio
Clínico
Fecha: Junio 2010
Página 35 de 35
Manual de Toma de muestra de
Laboratorio Clínico
Vigencia: Abril 2014
Anexo 6: Registro de actividades diarias de toma de muestras.
PERSO
NAL
N° de N° de
Pctes TAC
TX
GSV
TPM 1
TPM 2
TPM 3
TPM 4
TPM 5
TPM
Urgenci
TPM
Apoyo
1
A TPM
Apoyo
2
TPM
Apoyo
3
Total
Material Entregado
GSA
Material Utilizado
TV
TL
TC
TR
TN
TG
30
30
30
30
30
15
30
30
30
20
20
15
15
15
15
15
15
15
30
30
30
30
30
15
10
10
10
10
10
8
0
0
0
0
0
0
10
10
10
10
5
0
10
10
10
10
5
0
10
10
10
10
5
0
TV
TL
TC
TR
TN
Material excedente
TG
TV
TL
TC
TR
TN
TG