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SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 1 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 2 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 4. Responsabilidades: Responsable Médico Oficial Administrativo Tecnólogo Médico Personal de salud encargado Auxiliar de Servicio Recepción Lab. Clínico E I I I I I E I I I I I I E–C I–C I–E I I I I–E I–C I–E I I I I I–C E I I I I I–C I E I I I I–C I I E–C I I I-C I I E-C Actividad Indicación de la muestra Elaboración orden de examen Ingreso orden al SIL Preparación toma de muestra Toma de muestras Transporte de muestras Recepción de muestras Aceptación o rechazo C: Controla E: Ejecuta I: Informado 5. Definiciones: 5.1 Bioseguridad: Conjunto de medidas para proteger la salud humana y el ambiente frente a diferentes riesgos. 5.2 Hemólisis: Liberación de la hemoglobina contenida en el glóbulo rojo o hematíe a consecuencia de una alteración de la pared del glóbulo o cuando el glóbulo esta distendido por la acción de una solución hipotónica. 5.3 Flebotomía: Insición de un vaso sanguíneo para la obtención de sangre. 5.4 Flebotomista: Personal de salud capacitado para la obtención de muestras sanguíneas. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 3 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 6. Desarrollo: 6.1 Flujo de procesos: 6.1.1 Diagrama del procedimiento en la Unidad de Toma de Muestras (Ver Flujograma 1): • • • • • • • • • La atención de los pacientes se realiza a través de la ventanilla de la Unidad de Toma de Muestras, tanto como para dar hora como para recibir a los pacientes citados. El paciente citado debe entregar su orden de examen en ventanilla y esperar su llamado que se realizara desde la puerta de ingreso. La orden debe ser ingresada al sistema informático del Laboratorio (SIL) donde se generan etiquetas con la identificación del paciente, (Código de barras) las que se colocan en los tubos o envases de las muestras. Una vez llamado el paciente, se procede a explicarle el procedimiento. Realizar toma la muestra, quedando registrado el nombre del operador que lo atendió. Finalmente informar al usuario donde retirar el resultado del examen, se despide y se le indica la ruta. Las muestras obtenidas se clasifican según tipo de examen y se colocan en el carro de transporte. Estas muestras son transportadas según requisitos. Se entregan en la recepción del Laboratorio donde queda registrada su aceptación en una planilla de trabajo diaria. 6.1.2 Escala de preferencia en la atención a los pacientes ambulatorios: Para poder optimizar los recursos y dar una respuesta oportuna se atienden los pacientes de acuerdo a una prioridad, la cual se establece a continuación: • • • • • • . Pacientes Transplantados: que están en control post trasplante y que son atendidos el mismo día. Pacientes en TAC: con tratamiento anticoagulante y que serán atendidos el mismo día. Pacientes pediátricos con exámenes de niveles plasmáticos de drogas. Pacientes de Hemato-oncologia Pacientes Insulinodependientes Exámenes de cortisol y PTGO: Exámenes que deben tomarse la primera muestra a las 08:00 hrs. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 4 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 6.2 Bioseguridad: • • • • • • • • Disponer de los materiales necesarios en un área de trabajo limpia y adecuada Lavado de las manos. Usar mascarillas para toma de muestras de alto riesgo (Ej. Virus respiratorios) o en caso de que el paciente tosa constantemente. El personal debe estar vacunado contra virus Hepatitis B e Influenza. Usar precauciones estándar mínimas con todo paciente. Toda muestra es potencialmente patógenas Si el paciente tose con frecuencia, el personal debe colocarse mascarilla Tomar precauciones al manipular las agujas y lancetas. Después de su uso descartar inmediatamente en contenedor para material cortopunzante. No recapsular agujas. Si hay derrame de sangre en el mesón de toma de muestra, limpiar con Hipoclorito de sodio al 0,1% 6.3 Factores pre-analíticos que afectan las pruebas: Es importante tener presente que existen muchos factores que pueden afectar el resultado de las pruebas de laboratorio, algunos de los cuales pueden ser evitados con una adecuada orientación al paciente y una correcta técnica de extracción sanguínea. A continuación enumeraremos algunos de estos factores y las recomendaciones al respecto. 6.3.1 Interferencias: • • • • • La ansiedad y la tensión mental o física puede afectar los niveles de muchos componentes sanguíneos. Tal es el caso de las concentraciones de Prolactina, Cortisol, Catecolamina, Aldosterona y Renina. También puede elevar el recuento de leucocitos. Los ejercicios físicos vigorosos 3 días previos a la toma de la muestra pueden alterar los niveles de CK, LDH, AST, potasio, glucosa, lactato, prolactina y cortisol. El ritmo diurno de algunos fluidos corporales muestran fluctuaciones durante el día, por ejemplo, los niveles de cortisol son altos en la mañana, pero decrecen en la tarde. Los niveles de hierro tienden a caer durante el día. La situación dietética del paciente puede ser importante para ciertas pruebas. Tal es el caso de las variaciones en la concentración de lípidos después de una comida grasosa. El suero sanguíneo muestra una apariencia lechosa debido a la presencia de triglicéridos y quilomicrones. Estos sueros hiperlipidémicos influyen en las mediciones, por lo que se recomienda tomar la muestra después de un periodo de ayuno, usualmente de toda la noche. La ingestión de etanol induce cambios en la composición de los lípidos corporales. De particular interés son las enzimas hepáticas, como la fosfatasa alcalina, transaminasas, gama glutamil transferasa y otros componentes como la glucosa, triglicéridos, uratos y lactato. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico • • • • • • • • • • • • • • • • • Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 5 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 El fumar puede producir variaciones en los resultados de algunos componentes como la lipasa, amilasa, colesterol, glucosa e igualmente afecta la absorción gástrica en la prueba de tolerancia a la glucosa. La cirugía y la inyección intramuscular provoca un aumento en la concentración de creatinquinasa. La exploración rectal o la manipulación prostática, puede causar un aumento en la concentración del antígeno prostático específico. Los anticonceptivos orales afectan la actividad estrogénica y conducen al aumento de muchas proteínas como la tiroxina, cortisol y las hormonas sexuales. Medicamentos como barbitúrico y fenitoína, inducen enzimas hepáticas con valores elevados. Evitar extraer sangre de una zona previamente puncionada para administrar un tratamiento intravenoso, ya que las concentraciones de muchos compuestos pueden resultar erróneamente altos o bajos. Evitar provocar hemólisis durante el proceso de extracción o llenado de los tubos, lo cual afectará algunas pruebas relevantes. La hemólisis puede ocurrir también por exceso de residuos del alcohol utilizado durante la desinfección del sitio a puncionar. Evitar puncionar en un área con hematoma, fístulas, quemaduras, escoriaciones de la piel, cicatrices. Verificar las condiciones de ayuno para las pruebas que lo requieran. Las pruebas seriadas como curvas de tolerancia, post-prandial, post-ejercicios, etc. deben monitorearse en el tiempo adecuado. Rotular los tubos con la hora de toma de la muestra en el caso de pruebas seriadas. Es recomendable preguntar al paciente si existen restricciones para la flebotomía (Mastectomía, etc.). Los tubos con anticoagulante deben invertirse suavemente y colocarlos en posición vertical, para evitar el contacto prolongado con la tapa del tubo. Los separadores de suero se utilizan para separar el suero libre del coágulo de sangre. Estos pueden ser de gel de silicón, poliéster o perlas de vidrio. En algunos casos debido a problemas en la centrifugación y a altas temperaturas, pueden quedar gotas de gel dentro del suero. Se ha demostrado que estas gotas de gel pueden interferir con algunas mediciones. Es conocido que la progesterona se reduce apreciablemente cuando se almacena sobre gel por varios días. Igualmente ocurre con la lidocaína, fenobarbital, fenitoína y carbamazepina. Algunas hormonas polipeptídicas de bajo peso molecular, como la ACTH, glucagón, gastrina y otras hormonas intestinales, se destruyen rápidamente por enzimas presentes en la sangre. Por lo que es necesario centrifugar la muestra a baja temperatura, 10 minutos después de la toma y almacenar el suero o plasma inmediatamente a –20 C. Aquellos tubos con anticoagulantes deben ser llenados exactamente hasta la marca, cualquiera sea el método que se utilice para extraer la sangre, para evitar que la concentración del anticoagulante sea demasiada alta, tal que afecte el sistema de medición. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 6 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 6.3.2 Datos en la orden de solicitud del examen: Todas las muestras deben ir acompañadas de una solicitud debidamente formulada. La solicitud debe contener la siguiente información: • Identificación completa del paciente: - Nombre completo (Dos nombre, dos apellidos). - Sexo. - Número de cédula de Identidad. - Edad o fecha de nacimiento. - Procedencia. - Sala y número de cama en caso de pacientes hospitalizados. • Datos del profesional solicitante (Nombre completo y/o código). • Pruebas que se solicitan. • Consentimiento informado cuando sea necesario (Ej. VIH). • Incluir información clínica de utilidad (Diagnóstico, ingestión de fármacos, restricciones especiales, etc.). • Fecha de orden. 6.3.3 Características del paciente: • • • • • • • La primera impresión y las observaciones inmediatas pueden ser útiles para el técnico o profesional que tome la muestra, permitiéndole establecer el tipo de paciente, el sitio de la punción y las precauciones necesarias a considerar durante el procedimiento. La comunicación afectiva es determinante en la relación con el paciente. Hablar con el paciente. Explicar el procedimiento a seguir. La identificación correcta del paciente es obligatoria. En caso de pacientes hospitalizados verificar la información con brazalete de identificación. En pacientes ambulatorios corroborar la identidad solicitando siempre la cedula de identidad. Observar si el paciente está sudoroso, agitado, sedado o es agresivo, arrogante, conflictivo. Evitar cualquier discusión con el paciente. De ser así, llamar al Jefe de Toma de Muestras o enfermera encargada del sector. Tratar de calmar y comprender al paciente, sin embargo, usted siempre tiene la opción de no atender un paciente agresivo que pueda causar lesión a usted o a sí mismo. Comunicar de ésta situación a la persona encargada de la Toma de Muestras o de la Unidad o Servicio clínico. En todo momento mantener la ética y confidencialidad del paciente y sus exámenes. Los Códigos de ética de los trabajadores de la salud, prohíben estrictamente que los aspectos de salud del paciente sean divulgados con propósitos no profesionales. En la Unidad de Toma de muestras no se debe dar preferencia a la atención de funcionarios, el horario destinado para la atención de funcionarios es de lunes a viernes de 07:30 a 08:00 hrs. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 7 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 6.4 Preparación del equipo: Antes de iniciar el procedimiento debe contar todos los implementos necesarios disponebles. 6.4.1 Tubos de colección: Los tubos están predeterminados para llenarse con un determinado volumen de sangre por vacío. La tapa de goma está codificada por color, de acuerdo a su uso y sus aditivos: Tubo tapa roja Uso: Química, inmunología, banco de sangre, derivados. Aditivo: Ninguno. Tubo tapa amarilla Uso: Hormonas, niveles plasmáticos, marcadores tumorales. Aditivo: Gel – Separador. Tubo tapa lila Uso: Hematología, biología molecular, líquidos biológicos, hemoglobina glicosilada. Aditivo: Anticoagulante EDTA. Tubo tapa celeste Uso: Pruebas de Coagulación. Aditivo: Anticoagulante Citrato de sodio 3.2%. Tubo tapa negra Uso: VHS. Aditivo: Anticoagulante Citrato de sodio 3.8%. Tubo tapa gris Uso: Glicemia. Aditivo: Anticoagulante Fluoruro de sódio. Tubos tapa verde Uso: Pruebas Bioquímicas, Electrolitos Plasmáticos, marcadores virales. Aditivo: Heparina de Litio. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 8 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 6.4.2 Insumos necesarios: • • • • • • • • • • • • • • • Agujas: Están numeradas dependiendo de su calibre. Para colección de sangre se utilizan agujas de diámetro 21G (0.8 mm) x 1”. Para lactantes y punciones de vías venosas difíciles se utilizan mariposas de distintos calibres. Jeringas de 3, 5, 10 y 20 cc Adaptador para tubos al vacío. Ligadura: Recomendable de 2 tamaños para adultos y niños. Alcohol al 70%. Algodón. Guantes de procedimientos Curita o venda adhesiva. Frascos para hemocultivos. Tubos de exámenes. Sondas. Frascos tapa rosca para muestras de orina. Cajas para baciloscopías. Frascos para exámenes parasicológicos y laminas para test de Graham. Tórulas con medio de transporte para muestras microbiológicas 6.5 Procedimiento de punción venosa: Las muestras deben tomarse correctamente y bajo las condiciones más favorables para evitar errores en sus resultados. Esto incluye la absoluta identificación del paciente, elección del sitio de punción y el volumen a colectar. El paciente debe estar en una posición cómoda. 6.5.1 Selección del sitio a punción: • • Evitar áreas con presencia de hematoma (s), fístulas, quemaduras, escoriaciones de la piel o cicatrices. Evitar tomar muestra del brazo del mismo lado donde se ha realizado una mastectomía reciente. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico • • • Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 9 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 Palpación Antes de proceder a puncionar, escoger la vena mas apropiada. Colocar la ligadura de 6 a 7 cm. por arriba del sitio seleccionado. Tener presente no mantener la ligadura por más de 3 minutos, para evitar la hemoconcentración. Las venas más utilizadas para la venopunción, están localizadas en el área antecubital. Entre éstas tenemos: a) Vena Cubital: Es la más larga y gruesa de todas y es la preferida por bordear la musculatura del brazo. b) Vena Cefálica: Tiene iguales características de la anterior, pero es un poco menos gruesa. c) Vena Basílica: Es más pequeña que las anteriores. Esta vena está cerca de la arteria braquial, por lo que su punción es riesgosa y su área es más sensible y dolorosa para el paciente. Palpar con la punta de los dedos, tratando de seguir el rastro de las venas. En ocasiones si no visualiza la vena, puede forzar la sangre dentro de la vena a través de un suave masaje de abajo hacia arriba. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 10 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 Asepsia del sitio de punción Una vez que se ha decidido por la vena a puncionar, realizar asepsia de la zona con alcohol al 70% utilizando algodón y con movimientos circulares del interior al exterior. Debe tener presente que una vez realizada la descontaminación, no debe volver a tocar el área de punción una vez realizada la asepsia de la zona a puncionar. 6.5.2 Procedimiento de punción venosa: • • • El brazo del paciente debe estar preferiblemente en posición cómoda horizontalmente. Con la ligadura en posición, haga que el paciente cierre y abra el puño de 3 a 5 veces para bombear mejor la sangre, y luego que indicar mantener el puño cerrado. Si se trata de un niño, es recomendable colocar 2 dedos de la mano, debajo del codo del paciente, para evitar que doble el brazo durante la extracción. Extracción con jeringa • • • • • • • Cuando vaya a proceder a realizar la extracción con jeringa, tener presente el calibre a utilizar y el tamaño de la jeringa según el volumen a extraer. Colocar la punta de la aguja en un ángulo de 15 a 30º sobre la superficie de la vena escogida y atravesar la piel con un movimiento firme y seguro, hasta el lumen de la vena. Apretar firmemente la jeringa, tirar el émbolo con un movimiento continuo y suave para extraer la sangre hasta el volumen requerido. Evite presionar fuertemente la aguja durante la extracción. Aflojar la ligadura para que la sangre fluya mejor y remueva la aguja del brazo con movimiento suave, cubrir con tórula sin apretar el área de la punción mientras se retira la aguja. Presionar el algodón sobre el sitio de punción aplicando una presión adecuada y no excesiva para evitar la formación de hematoma. Llenar los tubos en su orden. Desechar la aguja en caja para eliminar material cortopunzante. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 11 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 • Colocar un parche curita o un algodón con venda adhesiva en el sitio de la punción. Extracción con sistema de extracción al vacío • • • Colocar la punta de la aguja en un ángulo de 15 a 30º sobre la superficie de la vena escogida y atravesar la piel con un movimiento firme y seguro, hasta el lumen de la vena. Llenar los tubos en el orden correspondiente. Aflojar la ligadura y presione el algodón sobre el sitio de la punción aplicando una presión adecuada y no excesiva para evitar la formación de hematoma. 6.6 Problemas durante la extracción venosa: Diversos problemas pueden surgir durante la colección de sangre venosa esto pudiera conllevar a no obtenerse sangre o su colección sea incompleta. Colocación correcta de la aguja: Coloque la aguja con el bisel hacia arriba Cambio en la posición de la aguja. Movimiento de retroceso que la saca del lumen venoso. Movimiento hacia delante que atraviesa la vena. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 12 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 Movimiento de la aguja, tal que el bisel de la aguja quede contra la pared de la vena, afectando la entrada de la sangre. Colapso de la vena: En estos casos, afloje el torniquete para incrementar el flujo sanguíneo, remueva la aguja ligeramente y vuelva a redireccionarla. Formación de hematoma: Si se forma un hematoma bajo la piel adyacente al sitio de la punción, afloje la ligadura y retire la aguja. Aplique presión firmemente sobre el hematoma. Sangre arterial: Pudiera suceder que se atraviese una arteria, en estos casos la sangre se observa de un color rojo brillante. Retire la aguja y aplique presión por 5 minutos 6.7 Medidas de prevención de formación de hematomas y hemólisis: 6.7.1 Como prevenir los hematomas: • • • • Puncionar solamente la pared superior de la vena. Retirar la ligadura antes de remover la aguja. Escoger las venas superficiales mayores. Aplicar presión sobre el sitio de la punción. 6.7.2 Como prevenir la hemólisis: La hemólisis de una muestra sanguínea puede ocurrir por diversas razones entre las que se encuentran: • Trauma con una aguja de calibre muy pequeño. • Contaminación con agentes antisépticos. • Agitación violenta o excesiva de los tubos. • Tiempo de demora en ser analizadas las muestras o en ser separado el coágulo de sangre. • Presión excesiva para mejorar el flujo sanguíneo. • En tubos no llenados al vacío, puede ocurrir hemólisis al llenarlos haciendo una fuerte presión sobre el émbolo. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 13 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 Los componentes más afectados son aquellos cuya concentración es más alta intracelularmente que en el plasma, por ejemplo, ión potasio, fosfato, deshidrogenasa láctica, aspartato aminotransferasa, hierro sérico, etc. Además, la hemólisis afecta la medición instrumental de diferentes componentes sanguíneos. La hemólisis puede ser prevenida tomando en cuenta los siguientes elementos: • Mezcle los tubos con aditivos anticoagulantes lentamente por 5 a 10 veces, inmediatamente después de ser llenado el tubo. • Acerque el bisel de la aguja a la pared interna del tubo, para evitar el choque fuerte de la sangre contra el fondo del tubo. • Esté seguro que el sitio de la punción esté seco del antiséptico. • Evite una punción traumática. • Evite la agitación vigorosa de los tubos. • Evite el calentamiento de los tubos. 6.8 Causas de la Hemoconcentración: • Aplicación prolongada de la ligadura. La presión hidrostática causa que algo de agua y elementos filtrables escapen al espacio extracelular. Esto tiene efectos también sobre el empaque celular. • Masaje vigoroso del sitio a puncionar. • Esclerosis u obstrucción venosa. 6.9 La punción capilar: La sangre de la punción capilar es una mezcla de sangre arteriolar y venosa, más que de capilar. La obtención de sangre por punción capilar es particularmente útil en las siguientes circunstancias: • Punción venosa es peligrosa para el paciente. • No se puede acceder las venas recomendadas. • Las venas se están utilizando para administrar medicamentos. • El volumen de sangre requerido no justifica una extracción venosa. Estas circunstancias se aplican a: • Neonatos. • Lactantes. • Niños. • Adultos con quemaduras severas. • En pacientes muy obesos. • En caso de terapias intravenosas. La punción cutánea se puede llevar a cabo en: • La superficie más lateral o más medial de la planta del pie. • La superficie medial plantar del dedo gordo del pie. • La superficie lateral del dedo medio o anular, preferiblemente. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico • Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 14 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 El lóbulo de la oreja, evitando la mejilla. 6.9.1 Sitios para punción: Sitio recomendado para punción capilar. Punción capilar con porta-lanceta 6.9.2 Procedimiento de la punción capilar: • • • • • • • • • Una vez escogido el sitio de la punción, dar un ligero masaje al área para concentrar la sangre. Limpiar el sitio con de punción con alcohol al 70%. Con una mano sostener el dedo o área a puncionar y con la otra sostener la lanceta. Realizar la punción con la lanceta, realizando un movimiento rápido, firme y profundo. Después de puncionar, descartar la primera gota de sangre, que contiene líquido tisular, limpiándolo con el algodón. Presionar el dedo para hacer salir la sangre, procurando que sea de manera ininterrumpida. Una vez tomada la muestra, sellar los tubos capilares con sellador o los microtubos con su tapa. Los microtubos y capilares con anticoagulantes deben ser invertidos suavemente por lo menos 10 veces para evitar su coagulación. Colocar algodón sobre el sitio puncionado haciendo presión para detener el sangramiento. 6.9.3 Consideraciones adicionales de la punción capilar: • • La mala circulación causa modificaciones en la concentración de ciertos componentes sanguíneos, por ejemplo el ión potasio y del fosfato, debido a la contaminación con líquido tisular causada por la presión que se aplica para obtener la muestra. Al escoger el sitio de la punción, evite hacerlo en dedos con quemaduras, escoriaciones o cianóticos. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 15 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 6.9.4 Colección en Neonatos: • • • • • • • • • • El pie del neonato es el sitio apropiado para colectar la muestra sanguínea por punción capilar. Es recomendable realizar previa limpieza del pie con una gasa tibia para incrementar el flujo sanguíneo. En el siguiente diagrama se ilustra en la zona achurada los sitios de punción recomendados. Limpiar el área seleccionada con alcohol al 70%. Mantener firmemente el pie del neonato para evitar cualquier movimiento. Usando una lanceta estéril realizar la punción con movimiento rápido, firme y profundo. Limpiar con el algodón la primera gota obtenida. Utilizar una ligera presión para obtener las gotas de sangre requeridas. No haga presión excesiva o masajes, que puedan provocar que la sangre se diluya con líquido tisular. Llenar los microtubos requeridos. Al terminar mantener presión sobre el sitio de la punción con gasa o algodón para parar el sangramiento. Desechar la lanceta en la caja para material cortopunzante. 6.10 Orden de llenado de los tubos: La obtención de muestras debe mantener un orden de llenado de los tubos para evitar errores en la fase pre analítica. El orden recomendado es el siguiente: 1º Frasco de hemocultivo, si corresponde. 2º Tubos para pruebas de coagulación (Tapa celeste). 3º Tubos que contienen aditivos especiales para evitar la coagulación de la muestra: - Tubo con heparina (Tapa verde). - Tubo con EDTA (Tapa lila) - Tubo con Fluoruro de sodio (Tapa gris). 4º Por ultimo los tubos sin aditivos (Tubos de tapa roja para pruebas químicas y de serologia). Nota: Los tubos con aditivos deben ser rápida y completamente mezclados. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 16 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 6.11 Etiquetado o rotulación: 1.-Etiquetado de los tubos debe realizarse inmediatamente posterior a la extracción sanguínea pegando la etiqueta de código de barra correspondiente a cada tubo. Es incorrecto etiquetar los tubos previamente a la punción. Una muestra del etiquetado de los tubos puede ser el siguiente: 2.-Rotulación de los tubos debe realizarse previo a la punción del paciente indicando en el tubo el nombre completo y la procedencia 6.12 Cuidados del paciente posterior a la extracción: • • • Una vez realizada la extracción, asegurarse que el paciente se encuentra apto para levantarse de la silla y retirarse, ya que algunos pacientes pueden descompensarse. Para evitar caídas observar al paciente y preguntar si está bien antes de indicarle que se retire. Si un paciente presenta alguna descompensación hemodinámica o convulsión seguir el procedimiento de alerta y organización de la atención de emergencia (Ver protocolo institucional). 6.13 Conservación y transporte de la muestra: Una vez que se haya colectado la muestra sanguínea, ésta debe ser llevada pronto al laboratorio para su procesamiento. Algunas pruebas exigen que el suero sea separado cuanto antes del coágulo sanguíneo, para evitar alteraciones en la composición o niveles de algunos metabolitos. Al momento de entregar la muestra en recepción esta debe ser acompañada por su correspondiente orden de solicitud de examen. Los requisitos de conservación y transporte de cada muestra se detallan en Anexo N° 1 SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 17 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 6.14 Instrucciones al paciente con exámenes que requieren preparación especial: Espermiograma Recomendaciones previas al examen: • La abstinencia sexual previa deberá ser de 3 días (No menos de 2 días ni más de 5 días). La muestra debe ser obtenida por masturbación. • La fecha de la última relación sexual DEBE SER………………………… • Usted deberá concurrir a la toma de muestras, el día…………… a las…………hrs. • Presentar la orden en la ventanilla y esperar a que lo llamen. Instrucciones día del examen: La toma de muestra se realiza en el baño privado de la toma de muestra, donde le entregarán un frasco a 37 ºC identificado con su nombre, donde usted deberá depositar el semen obtenido. Se debe recolectar toda la muestra sin eliminar ninguna gota y avisar de inmediato al técnico que lo atendió, una vez terminado el procedimiento. • • • Urocultivo y orina completa en hombres Tipo de muestra: Orina Idealmente utilizar la primera orina de la mañana. Antes de tomar la muestra, realizar aseo de la zona genital: - Lávese las manos con agua y jabón. Retraiga la piel del prepucio, y limpie con una mota de algodón empapado en agua con jabón la cabeza del pene. - Enjuague directamente con agua, o con motas de algodón empapadas en agua eliminando todo el jabón. Después del aseo, tomar inmediatamente la muestra de orina. Procedimiento: • Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado sin tocar los bordes. • Mantenga el prepucio retraído durante todo el procedimiento. • Comience a orinar y elimine el primer chorro de orina en el baño. • Recolecte el segundo chorro de orina en el frasco, llenando hasta la mitad del frasco. • Elimine la última parte del chorro de orina en el baño. • El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa. • Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior. • Tape cuidadosamente el frasco y compruebe que quede bien cerrado. Colóquele su nombre. • Trasladar la muestra al Laboratorio dentro de una bolsa plástica con hielo, antes de dos horas de su obtención. IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. • • • Urocultivo y orina completa en mujeres Tipo de muestra: Orina Idealmente utilizar la primera orina de la mañana. Antes de tomar la muestra, realizar aseo de la zona genital: - Lávese las manos con agua y jabón. - Separando los labios genitales, lavar la vulva con una mota de algodón empapada en agua con jabón, arrastrando siempre de delante hacia atrás. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 18 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 - Enjuagar cuidadosamente con bastante agua para eliminar los restos de jabón. - Después del aseo, tomar inmediatamente la muestra de orina. Procedimiento: • Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes. • Comience a orinar y elimine el primer chorro de orina en el baño. • Recolecte el segundo chorro de orina en el frasco, llenando hasta la mitad del frasco. Elimine la última parte del chorro de orina en el baño. • El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa. • Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior. • Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado. Colóquele su nombre. • Trasladar la muestra al Laboratorio dentro de una bolsa plástica con hielo, antes de dos horas de su obtención. IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. • • • • • • Coprocultivo Tipo de muestra: Deposición En medio de transporte - gelatina (Cary-Blair) El tubo con el medio de transporte deberá permanecer refrigerado (4ºC) hasta el momento de la obtención de la muestra. Recolectar la deposición en un recipiente limpio. Si no es posible obtener deposición al momento de obtener la muestra, introducir cuidadosamente la tórula estéril +/- 2 cms. a través del esfínter anal, girar suavemente la tórula y retírela. Puede utilizarse deposición desde el pañal, siempre que sea recién emitida. Introduzca la tórula con la deposición en el tubo con el medio de transporte, cuidando que el algodón quede dentro del gel y cierre herméticamente el tubo con la tapa. Llevar lo antes posible al Laboratorio, puede permanecer a temperatura ambiente en el medio de transporte hasta 24 horas. IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. • • Leucocitos fecales Tipo de muestra: Deposición fresca. Procedimiento: - Obtener la muestra por eliminación espontánea. - Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio; debe ser trasladada al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención. - Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té. Recolección de muestra de deposición de pañal: (para niños o ancianos): Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico - - Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 19 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 contenga el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal. Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo. La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención. IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. • • Esteatocrito Tipo de muestra: Deposición fresca. Procedimiento: - Obtener la muestra por eliminación espontánea. - Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio. Debe ser trasladada al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención. - Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té. Recolección de muestra de deposición de pañal: (para niños o ancianos) - Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga el pañal, ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal. - Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo. - La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención. IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. • • Rotavirus Tipo de muestra: Deposición fresca. Procedimiento: - Obtener la muestra por eliminación espontánea. - Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio, debe ser trasladada al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención. - Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té. Recolección de muestra de deposición de pañal: (para niños o ancianos): - Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal. - Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo. - La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención. IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico • • Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 20 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 Hemorragia oculta Tipo de muestra: Deposición fresca. Procedimiento: - Obtener la muestra por eliminación espontánea. - Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio; debe ser trasladada al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención. - Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té. Recolección de muestra de deposición de pañal: (para niños o ancianos): - Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal. - Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por el laboratorio. - Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo. La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención. IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. Orina de 24 horas Usted debe juntar toda la orina emitida durante 24 horas. Procedimiento: • El día previo al examen, a las 7:00 hrs., debe vaciar la vejiga orinando a fondo y botar esa orina. • De ahí en adelante debe juntar toda la orina de cada micción en el envase, durante las 24 horas hasta las 7:00 de la mañana siguiente. NO ELIMINAR NINGUNA ORINA DEL DIA DE RECOLECCION. • Toda la orina recolectada durante el período completo debe guardarse refrigerada y llevarla antes de 2 horas al laboratorio. Durante el período de recolección de la orina, usted debe ingerir 1 y 1/2 litros de agua (agua de la llave), salvo que su médico tratante disponga lo contrario. Le solicitamos no mezclar la orina con papel higiénico, deposiciones o flujo menstrual. Si hay presencia de este último, la recolección de orina debe realizarse una vez finalizado el período menstrual. Si necesita obrar debe orinar primero y luego obrar. COLOCAR SU NOMBRE EN EL ENVASE. IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. Prueba de tolerancia a la glucosa Preparación del paciente: • El día del examen debe estar en ayunas (última comida a las 20:00 del día anterior) • Debe traer el jugo exprimido de dos limones en un frasco. • El examen se demora dos horas, por lo tanto debe presentar su orden en ventanilla antes de la 9.00 hrs. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico • Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 21 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 Debe venir acompañado de un familiar Procedimiento: • Se le tomará una muestra de sangre basal en ayunas. • Luego deberá ingerir en 5 minutos, una solución de glucosa con limón disuelta en agua. • A continuación deberá esperar, en reposo, dos horas para tomar la segunda muestra de sangre. Al término del proceso debe avisar si se siente mal por la sobrecarga de glucosa ingerida. Parasitológico Tipo de Muestra: Deposición Procedimiento: • El paciente debe defecar en un recipiente limpio y seco, sin mezclar con orina. Si es lactante, tomar del pañal la muestra recién emitida. • Coloque una porción del tamaño de una nuez dentro del frasco y mezcle con el líquido que contiene, hasta obtener una emulsión homogénea utilizando una paleta de madera. Las muestras deben obtenerse día por medio hasta completar las tres. En caso de no poder obtener las muestras día por medio, puede traerlas cuando complete la última muestra. • Si observa algún gusano, debe colocarlo en un frasco limpio con agua de la llave. Dejar las muestras a temperatura ambiente en un lugar fresco o en refrigerador a 4ºC. IMPORTANTE: Identificar las muestras y NO DEJAR LOS FRASCOS AL ALCANCE DE LOS NIÑOS PUES EL LÍQUIDO ES TOXICO. Test de Graham Instrucciones previas al procedimiento: La aplicación de esta técnica debe ser efectuada por una persona que no sea el paciente. No se deben aplicar pomadas o polvos-talco en la región anal durante la noche anterior. La toma de muestra se debe efectuar a primera hora de la mañana SIN ASEO PREVIO. NO ES DEPOSICION. Procedimiento. Desprenda de la placa de vidrio la tira de papel celofán (scotch transparente). Aplique varias veces la tira de papel celofán, por el lado engomado, en todos los alrededores del ano. Pegue el scotch bien estirado en la placa de vidrio. No poner el nombre en el scotch. Si detecta "pidulle", colóquelo entre el scotch y la placa de vidrio. Cada día, envuelva en un papel aparte la placa de vidrio usada, y guárdela en el sobre correspondiente, hasta completar los cinco. Escriba el nombre, los dos apellidos y la edad del paciente. Y entréguela finalmente en la recepción de la toma de muestra. IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 22 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 Test de sudor Preparación del paciente: • El día citado debe traer lo siguiente: - Una mamadera - Leche, te o café (dependiendo de la edad) - Carné de identidad - Orden de examen timbrada en recaudación - Una muda de ropa • El examen se realiza en el brazo del paciente, (no se pincha), primero se estimula la producción del Sudor, luego se recolecta este sudor en un capilar, para finalmente leer la concentración de sal que existe en la muestra. Se demora de 30 – 60 minutos según la condición del paciente. Se puede solicitar repetir este examen de acuerdo al criterio médico. Baciloscopía. Procedimiento: • Enjuagar la boca con agua. • Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal. • Depositar la muestra en frasco boca ancha limpio entregado por la Unida de Toma de Muestra. • Rotular el frasco con el nombre del paciente. • Transportar la muestra a temperatura ambiente a la Unidad de Toma de Muestra. • Se debe repetir el procedimiento en días consecutivos hasta completar tres muestras, enviándolas cada día a la Unidad de Toma de Muestra. Nota: Entregar la muestra en ventanilla antes de las 10:00 AM. Expectoración Procedimiento: • Enjuagar la boca con agua. • Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal. • Depositar la muestra en frasco boca ancha estéril entregado por la Unida de Toma de Muestra. • Rotular el frasco con el nombre del paciente. • Transportar la muestra a temperatura ambiente a la Unidad de Toma de Muestra antes de dos horas de emitida. Nota: Entregar la muestra en ventanilla antes de las 10:00 AM. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 23 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 Urocultivo y orina completa en niños. Debe presentarse el día _______________ a las 08:00 hrs. en la Unidad de Toma de Muestras y traer lo siguiente: • 2 pañales de tela o toallas. • Una mamadera con agua azucarada o jugo. El día que se tomará el examen no colocar talco ni pomadas en la zona genital. 6.15 Criterios de rechazo: 6.15.1 Muestras mal identificadas: • • • • • • Falta de identificación del paciente. Discrepancia entre identificación de orden médica y rotulación de la muestra. Falta de identificación del tipo de muestra. Falta de identificación en la orden médica del tipo de estudio solicitado. Falta de la orden de examen. Examen no se realiza en este Laboratorio 6.15.2 Muestras no adecuadas para procesamiento: • • • • • • • • • Muestra en tubo erróneo. Muestra mal colectada. Muestra a una temperatura inadecuada. Muestra enviada en medio de transporte no adecuado. Muestra que requiere medio de transporte enviada sin el medio de transporte necesario. Muestra enviada en envase no adecuado. Muestras derramadas. Muestras inadecuadas para el tipo de estudio solicitado. Muestras contaminadas o en descomposición visible. 6.16 Características generales del traslado de las muestras: Las muestras deben ser transportadas en contenedores especiales con tapa y en gradillas que impidan su derrame según tipo de muestra. Aquellos que requieren cadena de frío deben transportarse con unidades refrigerantes en cooler. El personal encargado debe estar capacitado en el transporte de material biológico y debe utilizar guantes. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2. Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Página 24 de 35 Clínico Vigencia: Abril 2014 7. Flujograma: Procesos de Toma de Muestras. Procesos operativos Gestión de Personal Indicadores No conformidades Acciones correctivas Acciones Preventivas Auditorias L A P B A Paciente ambulatorio C I E RECEPCIÓN de ÓRDENES de EXAMEN N Generación de etiquetas Traslado y entrega a Recepción del Laboratorio Llamado del paciente Paciente hospitalizado O R A T Toma de muestra O T Clasificación de Muestras R E I Recurso Humano Abastecimiento Mantención de equipos Planta física Sistemas informáticos Aseo y lavado Procesos de Apoyo * Se entregara a cada paciente ambulatorio comprobante de toma de muestra que incluye fecha de entrega del resultado. Bioseguridad Control de documentos O SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2 Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Página 25 de 35 Vigencia: Abril 2014 8. Indicadores y método de evaluación: Indicador Porcentaje de muestras rechazadas según registro Formula Umbral de cumplimiento Evaluación Nº de muestras rechazadas X 100 Nº total de muestras recibidas Excelente : 0 – 4 % Aceptable: 5 – 8 % Critico : 9 – 100 % Trimestral Revisión de planilla de registro de rechazo de muestras de la recepción de Laboratorio. Indicador Porcentaje de gases arteriales y venosos transportados según instructivo institucional Formula Nº de gases arteriales y venosos transportados en cadena de frío / Nº total de gases arteriales y venosos recibidos X 100. Umbral de cumplimiento Excelente : 100 – 98% Aceptable: 97 – 90% Critico : 89 – 0% Trimestral Revisión de planilla de registros de gases arteriales y venosos que se reciben en Laboratorio de Urgencia con cadena de frío. Evaluación 9. Distribución del documento: 8.1 Unidad de Calidad y Seguridad del paciente. 8.2 Laboratorio Clínico. 8.3 Policlínicos de toma de muestra. 8.4 Unidades y Servicios clínicos. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2 Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Página 26 de 35 Vigencia: Abril 2014 10. Referencias bibliográficas: • • • • • • • • • • • • • América Latina. Editores: M.L.Castillo de Sánchez y M.E.Fonseca Yerena en colaboración con COLABIOCLI. Editorial Médica Panamericana. California Phlebotomy Training. http://www.parsons.umaryland.edu/~vguy/phleb.htm Center for Phlebotomy Education. http://www.scpt.com/PhlebotomyViews.html Garza D and Becan-McBride K. Phlebotomy Handbook, 2nd Ed. Norwalk, Connecticut: Appleton and Lange: 1989. Medstat Utah http://www.medstat.med.utah.edu/webpath/tutorial/PHLEB/PHLEB.html Mejoría Continua de la Calidad. Guía para los laboratorios clínicos de National Committee for Clinical Laboratory Standards. Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by Skin Puncture. Document H4-A3. Vol. 11 No. 11, 1991. National Committee for Clinical Laboratory Standards; Procedures for the Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture, 3rd Ed. Document H3A3. Vol. 11 No. 10, 1991. Phelan, S. Phlebotomy Techniques: A Laboratory Workbook. Chicago, Ill.: American Society of Clinical Pathologists: 1993. University of Iowa Hospital and Clinics, Pediatric Phlebotomy Training Manual. 1994. University of Iowa Hospital and Clinics, Phlebotomy Training Manual. 1994. Virtual Hospital: CLIA . Pre-Analytical Factors Affecting Laboratory, http://www.vh.org/Providers/CME/CLIA/Phlebotomy/Phlebotomy.html Virtual Phlebotomy: A Computer Aided Course of Instruction. http://www.phlebotomy.com W.G Guder, S. Narayanan, H. Wisser, B. Zawta, “simples from the patient to the laboratory”, 3rd Ed. Wiley-VCH, 2003 11. Anexos: 11.1 Conservación y transporte de muestras. 11.2 Orden de examen. 11.3 Registro planilla de flebotomista. 11.4 Registro de rechazo de muestras. 11.5 Registro recepción de muestras de laboratorio clínico. 11.6 Registro de actividades diarias de toma de muestras. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2 Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Página 27 de 35 Vigencia: Abril 2014 Anexo 1: Conservación y transporte de muestras. INSTRUCTIVO TOMA DE MUESTRAS EXAMENES LABORATORIO CLINICO HSJD EXAMENES MUESTRA ADA (Adenosindeaminasa) Liquidos ACIDO LACTICO Sangre Venosa ACIDO URICO (Uricemia) Sangre Venosa ACIDO URICO (Uricosuria) Muestra Orina ACIDO VALPROICO Sangre Venosa ADENOCORTICOTROFINA (ACTH) Sangre Venosa ALDOSTERONA Sangre Venosa ALBUMINA Sangre Venosa ALFAFETOPROTEINA Sangre Venosa AMILASA (sangre) Sangre Venosa AMILASURIA (orina) Orina AMONIO (sangre) Sangre Venosa ANDROSTENIDIONA Sangre Venosa ANTIGENEMIA CMV (Citomegalovirus) Sangre Venosa APE Total (PSA Total) Sangre Venosa Ac.ANCA (anti PR3 - anti MPO) Sangre Venosa Ac. ANTICITRULINA (CCP) Sangre Venosa Ac.ANTI - DNA Sangre Venosa AC.ANTIENDOMISIO Sangre Venosa AC.ANTIMITOCONDRIALES Sangre Venosa AC.ANTIMUSCULO LISO Sangre Venosa AC. ANTINUCL. SCREEN, ANA Sangre Venosa AC.ANTINUCL. IFI Sangre Venosa AC.ANTICENTROMERO Sangre Venosa AC.ANTICARDIOLIPINA Sangre Venosa AC.ANTIPEROXIDASA (TPO) Sangre Venosa AC.ANTITRANSGLUTAMINASA Sangre Venosa AC.ANTITIROGLOBULINA Sangre Venosa AC.ANTITIROIDEOS Sangre Venosa AC.ANTI ENA Screen(Ro-La-Scl-Sm-Jo1) Sangre Venosa AC.ANTI ENA Perfil(Ro-La-Scl-Sm-Jo1) Sangre Venosa BANDAS OLIGOCLONALES (Lectroforésis) LCR BHCG CUALITATIVA Sangre Venosa BHCG CUANTITATIVA Sangre Venosa BETA 2 MICROGLOBULINA Sangre Venosa BILIRRUBINA (total, directa e indirecta) Sangre Venosa BICARBONATO EN SANGRE Sangre Venosa CALCIO (Calcemia, Ca) Sangre Venosa CALCIO IONICO (sangre) Sangre Venosa CALCIURIA (calcio en orina) Orina CARBAMAZEPINA Sangre Venosa CARIOGRAMA (Sangre) Sangre Venosa CARIOGRAMA EN LÍQ. AMNIÓTICO L.Amniótico CEA Sangre Venosa Ca 125 Sangre Venosa CELULAS INCLUSION CMV Muestra Orina CETONEMIA (cetonas en sangre) Sangre Venosa CETONURIA (cetonas en orina) Muestra Orina CICLOSPORINA Basal (Co) Sangre Venosa CICLOSPORINA Post carga ( Co 2 ) Sangre Venosa REQUISITOS Sin ayuno Sin ayuno Ayuno 8 hrs Aislada o de 24 hrs Sin Ayuno, Sin dosis matinal Sin Ayuno Sin Ayuno Ayuno 8 hrs Sin Ayuno Ayuno 8 hrs Orina aislada o 24 hrs. Sin ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Ayuno 8 hrs Sin Ayuno Ayuno 8 hrs Sin Ayuno Aislada o de 24 hrs Sin Ayuno, Sin dosis matinal Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Orina aislada Sin dosis matinal 2 hrs post Dosis ENVASE Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo Lila, 5 ml sin ligadura Tubo tapa Verde, 5 ml Frasco / Bidón Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa verde, 5 ml Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 2ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Jeringa con heparina de litio Tubo tapa Verde, 5 ml Jeringa o tubo hep. de litio Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio Tubo tapa Amarilla, 5 ml Jeringa con heparina de litio, 5 mL 2 jeringas s/anticoagulante 10 mL c/u Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Frasco Tubo tapa Verde Frasco Esteril o Bidón Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml TRASLADO Y CONSERVACIÓN LUGAR PROCESO Envio rápido T°.amb Química Envio rápido, cadena frio Química T. amb Química T. amb Química T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T. amb Química T. amb H.F.BULNES T. amb Química T. amb Química Envío rápido, cadena de frio Química T. amb H.F.BULNES T. amb J.J. AGUIRRE T. amb H.F.BULNES T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T. amb Química Envío rápido, cadena de frio Química T. amb Química Envío rápido, cadena de frio Química T. amb Química T. amb H.F.BULNES T. amb U.CATOLICA T. amb U.CATOLICA T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES En cadena frio Orina T. amb Quimica T. amb Orina En cadena frio Química En cadena frio Química FONO 242003 242003 242003 242003 281580 281580 281580 242003 281580 242003 242003 242003 281580 9788522 281580 242332 242332 242332 242332 242332 242332 242332 242332 242332 242332 242332 242332 242332 242332 242332 242332 242332 281580 281580 281580 242003 242003 242003 242003 242003 244550 3543000 3543000 281580 281580 242042 242003 242042 242003 242003 OBSERV. Última dosis (hora), peso, talla Carta Resg. SDA Última dosis (hora), peso, talla Resguardo SDA Resguardo SDA RESULTADOS 7 días En el día En el día En el día 2 días 3 a 4 días 3 a 4 días En el día 2 días En el día En el día En el día 3 a 4 días 24 a 72 horas 2 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días 1 a 7 días En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día 2 días 1 a 2 semanas 1 a 2 semanas En el día En el día En el día En el día En el día 24 horas 48 horas SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2 Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Página 28 de 35 Vigencia: Abril 2014 INSTRUCTIVO TOMA DE MUESTRAS EXAMENES LABORATORIO CLINICO HSJD EXAMENES MUESTRA REQUISITOS ENVASE TRASLADO Y CONSERVACIÓN LUGAR PROCESO CITOLÓGICO DE LAVADO BRONCOALV. LBA Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb Hematología CISTICERCOSIS Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb ISP CD 4 Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb J.J. AGUIRRE CARGA VIRAL VIH Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila, 6 ml Cadena de frio J.J. AGUIRRE CHAGAS Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb ISP CHAGAS PCR Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml Cadena de frio ISP CITOMEGALOVIRUS (IgG-IgM) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química CK TOTAL Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química CK MB Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química CLEARENCE CREATININA MEDICION SIMULTANEA DE CREATININA EN SANGRE Y EN ORINA. Debe consignarse el PESO y TALLA del paciente Orina CREATININA(sangre) Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química CREATININA (orina) Muestra Orina Orina aislada o de 24 hrs. Frasco o Bidón T. amb Química COLESTEROL Sangre Venosa Ayuno Estricto 12 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química COLESTEROL HDL- LDL Sangre Venosa Ayuno Estricto 12 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química COMPLEMENTO C3 - C4 Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química COLINESTERASA Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa verde, 5 ml Envío rápido, T. amb Química CORTISOL PLASMATICO AM - PM Sangre Venosa Sin Ayuno a las 8 y 16 hrs Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES CORTISOL LIBRE URINARIO Orina Orina de 24 hrs Bidón T. amb H.F.BULNES DHEA (Dehidroepiandrosterona) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES DIMERO D Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Celeste Cadena de frio Coagulación ELISA TP (Treponema) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Serologia EOSINOFILOS URINARIOS Orina Sin Ayuno Frasco T. amb Hematología ESPERMIOGRAMA Semen 3 Días abstinencia sexual Frasco Estéril Envío rápido, 37 °C Lab. Koch ESTEATOCRITO Deposición Régimen sin grasas Frasco pesado en lab. T. amb Química ESTRADIOL (17-Beta Estradiol) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES ELECTROLITOS, Na,K,Cl (sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química ELECTROLITOS (orina) Orina Aislada o de 24 hrs. Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio T. amb Química EFP(electroforesis proteínas) SANGRE Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología EFP(electroforesis proteínas) ORINA Muestra Orina Orina de24 hrs Bidón T. amb Inmunología EFP(electroforesis proteínas) LCR LCR Sin ayuno Tubo tapa Roja, 2ml T. amb Inmunología FACTOR REUMATOIDEO Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología FERRITINA Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química FENITOINA Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES FENOBARBITAL Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES FIBRINOGENO Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Celeste Cadena de frio Coagulación FIERRO Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química FOSFATASA ALCALINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química FOSFORO (plasma) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química FOSFORO (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs. Frasco estéril/Bidónsolic. Lab T. amb Quimica FSH (Hormona foliculo estimulante) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES FTA-ABS / MHA TP Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb ISP GASES ARTERIALES Sangre Arterial Sin Ayuno Jeringa con heparina de litio Envío rápido, cadena frío Quimica GASES VENOSOS Sangre Venosa Sin Ayuno Jeringa con heparina de litio Envío rápido, cadena frío Quimica GENOTIPO VIH -1 Sangre Venosa Sin Ayuno Tupo tapa Lila,5 ml T. amb., Envío antes 2 hrs. J.J. AGUIRRE GGT Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica GLUCOSA (plasma) Sangre Venosa Ayuno estricto 8 hrs. Tubo tapa Gris, 5 ml T. amb Quimica GLUCOSA (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs. Frasco o Bidón T. amb Orina GLUCOSA POST PRANDIAL Sangre Venosa 2 hrs post Desayuno liviano Tubo tapa Gris, 5 ml T. amb Quimica GLOBULINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica GOT Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica FONO OBSERV. RESULTADOS 241999 En el día 3507244 Formulario Especial ISP 8 a 15 días 9788522 Martes y Jueves hasta 10:30 hrs 10 días 9788522 Martes y Jueves hasta 10:30 hrs 10 días 3507244 Formulario Especial ISP 8 a 15 días 3507244 Formulario Especial ISP 8 a 15 días 242003 7 días 242003 En el día 242003 En el día 202003 En el día 242003 En el día 242003 En el día 242003 En el día 242003 En el día 242003 7 dias 242003 En el día 281580 En el día 281580 Diuresis medida 3 a 4 días 281580 En el día 242003 Previo aviso a Lab. Coagulación En el día 242332 24 horas 241999 En el día 242122 Previo aviso a Laborato rio 24 horas 242003 24 horas 281580 En el día 242003 En el día 242003 En el día 242332 1 a 7 dias 242332 Diuresis medida 1 a 7 dias 242332 1 a 7 días 242332 1 a 7 dias 202003 En el día 281580 Última dosis (hora), peso, talla 2 días 281580 Última dosis (hora), peso, talla 2 días 242003 En el día 242003 En el día 242003 En el día 242003 En el día 242003 En el día 281580 En el día 3507244 Formulario Especial ISP 7 a 30 días 242003 En el día 242003 En el día 9788522Formulario especial, Carta Resg. SDA 1 mes 242003 En el día 242003 En el día 242003 En el día 242003 En el día 242003 En el día 242003 En el día SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2 Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Página 29 de 35 Vigencia: Abril 2014 INSTRUCTIVO TOMA DE MUESTRAS EXAMENES LABORATORIO CLINICO HSJD EXAMENES MUESTRA REQUISITOS GPT Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. HEMATOCRITO Sangre Venosa Sin Ayuno HEMOGLOBINA GLICOSILADA Sangre Venosa Sin Ayuno HEMOGLOBINA Sangre Venosa Sin Ayuno HEMOGRAMA Sangre Venosa Sin Ayuno HEMOSIDERINA Médula Osea Sin Ayuno HEPATITIS B Sangre Venosa Sin Ayuno HEPATITIS C Sangre Venosa Sin Ayuno HIDATIDOSIS Sangre Venosa Sin Ayuno HLA-B 27 Sangre Venosa Sin Ayuno HLA-B 5701 (Protocolo) Sangre Venosa Sin Ayuno HTLV 1 Sangre Venosa Sin Ayuno HORMONA CRECIMIENTO (HGH,GH,HC) Sangre Venosa Sin Ayuno INMUNOGLOBULINAS (A,G,M,E) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs INDICE PROTEINURIA/CREATININURIA Muestra Orina Orina aislada INDICE MICROALBUMINURIA/CREATININU. Muestra Orina Orina aislada INDICE ALBUMINA/GLOBULINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs IGF 1 (Somatomedina) Sangre Venosa Sin Ayuno IGFBP 3 Sangre Venosa Sin Ayuno INMUNOFIJACIÓN (IFIX)sangre Sangre Venosa Sin ayuno INMUNOFIJACIÓN (IFIX)orina Orina Orina de 24 hrs INSULINA Sangre Venosa Ayuno 12 hrs INSULINA, Curva de Sangre Venosa Post ingesta glucosa LAMOTRIGINAS Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal LDH Sangre Venosa Ayuno 8 hrs LH (Hormona Luteinizante) Sangre Venosa Sin Ayuno LIPASA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs LIQ CEFALO RAQ. quimico LCR Sin Ayuno LIQ CEFALO RAQ. citológico LCR Sin Ayuno LIQ. AMNIOTICO quimico Liq.Amniótico Sin Ayuno LIQ. AMNIOTICO citológico Liq.Amniótico Sin Ayuno LIQ. ASCITICO quimico Liq.Ascitico Sin Ayuno LIQ. ASCITICO citológico Liq.Ascitico Sin Ayuno LIQUIEO PLEURAL químico Liq.Pleural Sin Ayuno LIQ.PLEURAL citológico Liq.Pleural Sin Ayuno LIQ. PERICARDICO quimico Liq.Pericardico Sin Ayuno LIQ. PERICARDICO citológico Liq.Pericardico Sin Ayuno LIQ.PERITONEAL quimico Liq.Peritoneal Sin Ayuno LIQ.PERITONEAL citológico Liq.Peritoneal Sin Ayuno Liq.Articular(sinovial) Sin Ayuno LIQ. ARTICULAR (Sinovial) LIQ. ARTICULAR (Sinovial) Citologico Liq.Articular(sinovial) Sin Ayuno LITIO Sangre venosa Sin Ayuno MAGNESIO (sangre) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs MAGNESIO (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs MICROALBUMINURIA Muestra Orina Aislada o de 24 hrs MIELOGRAMA Médula Osea Sin Ayuno NITROGENO UREICO (sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno NITROGENO UREICO (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs OXCARBAMAZEPINA Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal ORINA COMPLETA Muestra Orina Sin Ayuno ENVASE Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml Laminas identificadas Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Lila, 12 ml Tubo tapa Lila, 5 ml Tubo tapa Lila,5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Frasco Frasco Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Bidón Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Roja, 1 ml Tubo tapa Lila , 1 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Lila,5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Lila,5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Lila,5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Lila,5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Lila,5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Lila,5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Frasco estéril/Bidónsolic. Lab Frasco / Bidón Láminas identicadas Tubo tapa Verde, 5 ml Frasco/Bidón Tubo tapa Roja, 5 ml Frasco TRASLADO Y CONSERVACIÓN LUGAR PROCESO T. amb Quimica T. amb Hematología cadena de frio Hematología T. amb Hematología T. amb Hematología T. amb Hematología T. amb Serología T. amb Serología T. amb ISP T. amb ISP T. amb U.CATOLICA T. amb ISP T. amb H.F.BULNES T. amb Química T. amb Orina T. amb Orina T. amb Quimica T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T. amb Inmunología T. amb Inmunología T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T. amb I.NEUROCIR T. amb Química T. amb H.F.BULNES T. amb Quimica T. amb Quimica T. amb Hematología T. amb Quimica T. amb Hematología T. amb Quimica T. amb Hematología T. amb Quimica T. amb Hematología T. amb Quimica T. amb Hematología T. amb Quimica T. amb Hematología T. amb Química T. amb Hematología T. amb CRS T. amb Quimica T. amb Quimica T. amb Orina T. amb Hemato-Onco T. amb Quimica T. amb Quimica T. amb I.NEUROCIR cadena de frio Orina FONO 242003 241999 241999 241999 241999 241999 242332 242332 3507244 3507244 3543000 3507244 281580 242003 242003 242042 242003 281580 281580 242332 242332 281580 281580 5754827 242003 281580 242003 242003 241999 242003 241999 242003 241999 242003 241999 242003 241999 242003 241999 202003 241999 242676 242003 242003 202042 241999 242003 242003 5754827 242042 OBSERV. Formulario Especial ISP Formulario Especial ISP Formulario Especial Formulario Especial ISP Identif. 1 y 2° muestra Última dosis (hora), peso, talla Sólo glucosa Última dosis (hora), peso, talla RESULTADOS En el día En el día 1 a 4 días En el día En el día 7 dias 1 día 1 día 8 a 15 días 10 días 10 días 10 días 3 a 4 dias 1 a 7 dias En el día En el día En el día En el día En el día 1 a 7 dias 1 a 7 dias En el día En el día 24 a 72 horas En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día En el día 7 días En el día En el día 24 a 72 horas En el día SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2 Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Página 30 de 35 Vigencia: Abril 2014 INSTRUCTIVO TOMA DE MUESTRAS EXAMENES LABORATORIO CLINICO HSJD EXAMENES OSMOLALIDAD (plasma) OSMOLALIDAD (orina) PAUL BUNELL, MONOTEST PCR COXIELA PCR H1N1 PCR HPV (Virus Papiloma Humano) PCR HERPES 1 y 2 (LCR) PCR HERPER 1 y 2 (Sangre) PCR TRASLOCACIÓN 15:17 (LPM) PCR TRASLOCACIÓN 9:22 (LMC) PCR VIRUS EPSTEIN BARR PERFIL HEMATOLOGICO PH en LIQUIDOS PH URINARIO PIRIMIDONA PREALBUMINA PROGRAF (TACROLIMUS) PROLACTINA PROGESTERONA 17-OH-PROGESTERONA PROTEINA C REACTIVA (PCR) PROTEINURIA PROTEINAS TOTALES PTGO (prueba tolerancia) PARATOHORMONA (PTH) PSA total (Antígeno Prostático) PSA libre RAPAMUNE RETICULOCITOS RUBEOLA SCREENING HEMOLISIS SUBPOBLACIÓN LINFOCITARIA NO VIH TEOFILINA TEST DEL SUDOR TIEMPO DE PROTROMBINA TIEMPO PARCIAL TROMBOPLASTINA TIOPETAL TRIGLICERIDOS TOXOCARIOSIS TOXOPLASMOSIS (IgG - IgM) TRANSFERRINA T4 T4 LIBRE TEST DE BORRELIA TESTOSTERONA TSH TIROGLOBULINA VANCOMICINA VHS VIH VDRL sangre VDRL LCR Viscosidad sanguinea MUESTRA Sangre Venosa Orina Sangre Venosa Sangre Venosa Sec.nasofaringea M. Endocervical LCR Sangre Venosa Med. Osea o S.V. Med. Osea o S.V. Sangre Venosa Sangre Venosa Líquido Muestra Orina Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Muestra Orina Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sudor Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa Sangre Venosa LCR Sangre Venosa REQUISITOS Sin Ayuno Orina Aislada Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno, Sin dosis matinal Sin Ayuno Sin Ayuno, Sin dosis matinal Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Aislada o de 24 hrs. Ayuno 8 hrs Ayuno 8 hrs Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno, Sin dosis matinal Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno, Sin dosis matinal Sin ayuno Sin ayuno Sin ayuno Sin Ayuno, Sin dosis matinal Ayuno 12 hrs Sin Ayuno Sin Ayuno Ayuno 8 hrs. Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Ayuno 8 hrs Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno Sin Ayuno ENVASE Tubo tapa Verde, 5 ml Frasco Tubo tapa Roja , 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo con PBS Tubo con PBS Tubo tapa Lila , 1 ml Tubo tapa lila, 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml Jeringa con heparina de litio Frasco Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Lila, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Verde , 5 ml Frasco / Bidón Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Gris Tubo tapa Lila, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Lila, 5 ml Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo Lila,Verde,Rojo Tubo tapa Lila , 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Capilar especial Tubo tapa Celeste, 5 ml Tubo tapa Celeste, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Verde, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Amarilla, 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Negra, 5 ml Tubo tapa Verde , 5 ml Tubo tapa Roja, 5 ml Tubo tapa Roja, 2 ml Tubo tapa Roja, 2 ml TRASLADO Y CONSERVACIÓN LUGAR PROCESO T. amb Quimica T. amb Quimica T. amb Hematología cadena de frio ISP cadena de frio Biol. Molecular cadena de frio Biol. Molecular cadena de frio Biol. Molecular cadena de frio Biol. Molecular cadena de frio Biol. Molecular cadena de frio Biol. Molecular cadena de frio J.J. AGUIRRE T. amb Hematología Cadena frío Quimica Cadena frio Quimica T. amb I.NEUROCIR T. amb Quimica cadena frio, protegido luz. H. C. MACK. T.amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T.amb Quimica T.amb Orina T. amb Quimica T. amb Quimica T.amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES cadena frio, protegido luz. U.CATOLICA T. amb Hematología T.amb ISP T.amb Hemato-Onco T. amb ISP T. amb I.NEUROCIR T.amb Serologia cadena de frio Coagulación cadena de frio Coagulación T. amb I.NEUROCIR T. amb Quimica T.amb ISP T. amb Quimica T. amb Quimica T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T.amb ISP T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T. amb H.F.BULNES T. amb H. C. MACK. T. amb Hematología T.amb Serologia T. amb Serologia T. amb Serologia T. amb Hematología FONO OBSERV. RESULTADOS 242003 En el día 242003 En el día 241999 En el día 3507244 Formulario Especial ISP 7 a 30 días 242332 1 día 242332 Autorización Doctor Ginecología 1 a 7 días 242332 1 a 4 días 242004 1 a 7 días 242332 2 semanas 242332 2 semanas 9788522 Carta Resg. SDA, Form. Especial 24 a 48 hrs. 241999 En el día 242003 En el día 242003 En el día 5754827 Última dosis (hora), peso, talla 24 a 72 hrs. 242003 En el día 5755958 Última dosis (hora), peso, talla 24 horas 281580 En el día 281580 En el día 281580 En el día 242003 En el día 242042 En el día 242003 En el día 242003 Identificar 1 y 2° muestra En el día 281580 Se procesan jueves 1 a 7 días 281580 En el día 281580 En el día 3543000 Tarjeta solicitud Especial 1 día 241999 En el día 3507244 Formulario Especial ISP 12 días 241999 3 días 3507244 Formulario Especial ISP 12 días 5754827 Última dosis (hora), peso, talla 24 a 72 hrs. 242332 Lunes a Jueves En el día 242003 En el día 242003 En el día 5754827 Última dosis (hora), peso, talla 24 a 72 hrs. 242003 En el día 3507244 Formulario Especial ISP 7 a 30 días 242003 1 a 7 días 242003 24 horas 281580 En el día 281580 En el día 3507244 Formulario Especial ISP 7 a 30 días 281580 En el día 281580 En el día 281580 En el día 5755958 Orden Especial 24 horas 241999 En el día 242332 Consentimiento informado 24 horas 242332 24 horas 242332 1 a 4 días 241999 En el día SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2 Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Página 31 de 35 Vigencia: Abril 2014 * Todo examen solicitado para envío al Instituto de Salud Publica debe enviarse con el formulario correspondiente, emitido por dicha entidad y con todos los datos requeridos por este, los cuales deben ser llenados por el profesional solicitante. Anexo 2: Orden de examen. SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2 Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Página 32 de 35 Vigencia: Abril 2014 Anexo 3: Registro planilla de flebotomista. Hr Nombre N° de Tubos por Paciente TV TL TC TR TN TG Rut TV: Tubo verde, TL: T.lila, TC: T.celeste, TR: T.rojo, TN: T.VHS, TG: T.gris Teléfono SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2 Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Página 33 de 35 Vigencia: Abril 2014 Anexo 4: Registro de rechazo de muestras. Fecha/n° ingreso Paciente/ RUT Procedencia Motivo de Rechazo Responsable SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Código: DOC – LAB 5 APL 1.2 Edición: 2 Fecha: Junio 2010 Página 34 de 35 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clínico Vigencia: Abril 2014 Anexo 5: Registro recepción de muestras de laboratorio clínico. EXÁMENES DE BIOQUÍMICA 1 16 31 46 61 76 91 106 121 136 151 166 181 196 211 226 241 256 271 286 301 316 331 346 361 376 391 406 421 436 451 466 481 496 511 526 541 556 571 586 601 616 631 646 661 2 17 32 47 62 77 92 107 122 137 152 167 182 197 212 227 242 257 272 287 302 317 332 347 362 377 392 407 422 437 452 467 482 497 512 527 542 557 572 587 602 617 632 647 662 3 18 33 48 63 78 93 108 123 138 153 168 183 198 213 228 243 258 273 288 303 318 333 348 363 378 393 408 423 438 453 468 483 498 513 528 543 558 573 588 603 618 633 648 663 4 19 34 49 64 79 94 109 124 139 154 169 184 199 214 229 244 259 274 289 304 319 334 349 364 379 394 409 424 439 454 469 484 499 514 529 544 559 574 589 604 619 634 649 664 5 20 35 50 65 80 95 110 125 140 155 170 185 200 215 230 245 260 275 290 305 320 335 350 365 380 395 410 425 440 455 470 485 500 515 530 545 560 575 590 605 620 635 650 665 6 21 36 51 66 81 96 111 126 141 156 171 186 201 216 231 246 261 276 291 306 321 336 351 366 381 396 411 426 441 456 471 486 501 516 531 546 561 576 591 606 621 636 651 666 7 22 37 52 67 82 97 112 127 142 157 172 187 202 217 232 247 262 277 292 307 322 337 352 367 382 397 412 427 442 457 472 487 502 517 532 547 562 577 592 607 622 637 652 667 8 23 38 53 68 83 98 113 128 143 158 173 188 203 218 233 248 263 278 293 308 323 338 353 368 383 398 413 428 443 458 473 488 503 518 533 548 563 578 593 608 623 638 653 668 9 24 39 54 69 84 99 114 129 144 159 174 189 204 219 234 249 264 279 294 309 324 339 354 369 384 399 414 429 444 459 474 489 504 519 534 549 564 579 594 609 624 639 654 669 10 25 40 58 70 85 100 115 130 145 160 175 190 205 220 235 250 265 280 295 310 325 340 355 370 385 400 415 430 445 460 475 490 505 520 535 550 565 580 595 610 625 640 655 670 Microb. Hemogr. Orinas 11 26 41 56 71 86 101 116 131 146 161 176 191 206 221 236 251 266 281 296 311 326 341 356 371 386 401 416 431 446 461 476 491 506 521 536 551 566 581 596 611 626 641 656 671 12 27 42 57 72 87 102 117 132 147 162 177 192 207 222 237 252 267 282 297 312 327 342 357 372 387 402 417 432 447 462 477 492 507 522 537 552 567 582 597 612 627 642 657 672 13 28 43 58 73 88 103 118 133 148 163 178 193 208 223 238 253 268 283 298 313 328 343 358 373 388 403 418 433 448 463 478 493 508 523 538 553 568 583 598 613 628 643 658 673 14 29 44 59 74 89 104 119 134 149 164 179 194 209 224 239 254 269 284 299 314 329 344 359 374 389 404 419 434 449 464 479 494 509 524 539 554 569 584 599 614 629 644 659 674 15 30 45 60 75 90 105 120 135 150 165 180 195 210 225 240 255 270 285 300 315 330 345 360 375 390 405 420 435 450 465 480 495 510 525 540 555 570 585 600 615 630 645 660 675 TAC Tx Hb glic. Gases Código: DOC – LAB 5 APL 1.2 Edición: 2 SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO OCCIDENTE HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT Laboratorio Clínico Fecha: Junio 2010 Página 35 de 35 Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clínico Vigencia: Abril 2014 Anexo 6: Registro de actividades diarias de toma de muestras. PERSO NAL N° de N° de Pctes TAC TX GSV TPM 1 TPM 2 TPM 3 TPM 4 TPM 5 TPM Urgenci TPM Apoyo 1 A TPM Apoyo 2 TPM Apoyo 3 Total Material Entregado GSA Material Utilizado TV TL TC TR TN TG 30 30 30 30 30 15 30 30 30 20 20 15 15 15 15 15 15 15 30 30 30 30 30 15 10 10 10 10 10 8 0 0 0 0 0 0 10 10 10 10 5 0 10 10 10 10 5 0 10 10 10 10 5 0 TV TL TC TR TN Material excedente TG TV TL TC TR TN TG