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Actuaciones ecológicas posibles para complementar el control natural de las poblaciones de los
artrópodos más comunes de los cítricos en el litoral mediterráneo.
ARTRÓPODO
Piojo rojo de California o Poll roig de
Califòrnia
Aonidiella aurantii Maskell
Piojo gris o Poll gris
Parlatoria pergandii Comstock
Piojo blanco o Poll blanc
Aspidiotus nerii Bouche
METODOLOGÍA DE
SEGUIMIENTO
Observación de frutos
ocupados en el año anterior
y muestreos de población.
Trampas cromotrópicas y
sexuales
Observación de frutos
ocupados en el año anterior
y muestreos de población
Observación de frutos
ocupados en el año anterior
y muestreos de población
Serpetas gruesa y fina
Cornuaspis (Lepidosaphes) beckii
Newman
Cornuaspis (Insulaspis) gloverii (Pack)
Cotonet
Planococcus citri Risso
Observación de frutos
ocupados en el año anterior
y muestreos de población
Caparreta negra
Saissetia oleae (Olivier)
Observación de presencia
en hojas y ramillas
Cochinilla o Cotxinilla acanalada
Icerya purchasi Maskell
Piojo rojo o Poll roig
Anecdótico
Chrysomphalus dictyospermi (Morgan)
Pulgones o "pugons"
Aphis spiraecola Patch
Myzus persicae (Sulzer)
Toxoptera aurantii (B. de F.)
Aphys gossypii Glover
Moscas blancas
Aleurothrixus floccosus Maskell
Dialeurodes citri Ash.
Parabemisia myricae (Kuw.)
Polilla del limonero o Prays
Prays citri Mill
Barreneta
Ectomyelois ceratoniae Zeller
Minador
Phyllocnistis citrella Stainton
Mosca de la fruta
Ceratitis capitata Wied
Ácaro rojo
Panonychus citri (Mc Gregor)
Ácaro
Tetranychus urticae Koch
Ácaro de las maravillas
Aceria sheldoni (Erwing)
Caracoles y babosas
Mosquito verde
Empòasca decipiens Paoli
Chinche verde
Calocoris trivalis Costa
Observación de presencia
en frutos
UMBRAL DE INTERVENCIÓN
Presencia en fruta de cosecha previa,
tratar en 1ª generación al máximo de
formas sensibles, en 2ª o posteriores o a
la salida del invierno
> 2% de fruta afectada en cosecha
previa, tratar en 1ª generación al máximo
de formas sensibles
> 5% de fruta afectada en cosecha
previa, tratar en 1ª generación al 50% de
hembras con huevos y larvas, o al
máximo de formas sensibles, antes del
cierre del cáliz
> 2% de fruta afectada en cosecha
previa, tratar en 1ª generación al máximo
de formas sensibles. Si es < 2%, tratar
en 2ª generación si es necesario
Utilizar control biológico de mayo-junio.
Tratar si sobrepasa el 20% de frutos
dañados.
Tratar la 1ª generación (hasta L3),
cuando superen 3 L / hoja
En 2ª gen., cuando se alcance el 100%
de huevos avivados (al mismo umbral
anterior)
No tratar
ALTERNATIVAS
ECOLÓGICAS
Mantenimiento y mejora de las
cubiertas vegetales y otros hábitats
de los entomófagos útiles,
repelentes o antagonistas.
Aceite mineral (1-2%)
Aceite parafínico (1,5-2%)
Silicato de sodio (0,3-5%)
Jabón potásico (1-3%, poca
eficacia)
Polisulfuro de calcio (hasta el 8%
en invierno, poca eficacia)
Trampas con feromonas
Sueltas de fauna auxiliar
(Criptolaemus para cotonet en
abril-junio, Aphytis para piojos a
partir de primavera)
Desplazado por Aonidiella y
Parlatoria
Trampas cromotrópicas.
Observación del % brotes
dañados
Umbrales:
T. aurantii: > 10% brotes atacados
A. gossypii y M. persicae: > 50%
Normalmente sólo se requiere en
Clemenules, injertadas y plantones
Cubiertas vegetales (hasta
brotación) y setos (floración
invernal y pulgones)
Jabón potásico (1-3%)
Aceite parafínico y mineral (1%)
Lithothamne, polvo de roca, cola de
caballo, ajo
Azadiractina, nim, rotenona,
piretrina
Cubiertas vegetales y setos
Jabón potásico o aceite
Nim
Observar en brotes su
población y nivel de
parasitismo
Intervenir únicamente si se sobrepasa el
20% de los brotes atacados y hay una
tasa de parasitismo baja
Seguimiento de vuelo con
feromonas sexuales;
observación de fenología y
grado de ataque de las flores
y frutos
> 5% de las flores + frutos dañados.
Tratar cuando haya > 50% de la flor
abierta (> 4 elementos florales / brote)
Trampas feromonas
Bacillus thuringiensis
No se recomienda tratar
Evitar cotonet, polilleros
B. thuringiensis
Cubiertas vegetales permanentes
Azadiractina, nim, aceite parafínico,
extracto de ajo, B. thuringiensis
Mosqueros y trampas atrayentes
Parcheo con azadiractina, rotenona
o piretrina (Spinosad)
Cubiertas vegetales y setos
Aceite parafínico, extracto de ajo,
nim
Azufres
Liberación de fitoseidos
Observación de brotes
atacados
Medir nivel de población con
trampas. Observación de
primeros frutos picados
Observación de formas
móviles y fitoseidos en hojas
Observación de formas
móviles en hojas y frutos
Observación de brotes
dañados en la última
brotación
Observación de su presencia
Trampas cromotrópicas
amarillas
Golpeo de ramas y
observación de brotes
tiernos
No tratar en adultos.
En plantones e injertos: presencia a
partir de 2ª brotación, y brotes de < 5 cm.
Inmediatamente antes del envero, si >
0,5 moscas/mosquero y día en trampas
alimenticias, en tempranas y tardías
Si hay > 30% de hojas con fitoseidos no
se trata. Si hay más, tratar cuando:
> 20% hojas ocupadas (agosto-octubre)
> 80% de hojas el resto del año
10% hojas con formas móviles ó 2% de
frutos con formas móviles en envero
20% de brotes afectados, antes de la
movida de primavera (brote < 5 cm);
verano antes de la movida
Inicio de su presencia en brotes de
plantones e injertadas
Presencia en trampas
Primeros daños en brotes tiernos;
plantones
Aplicaciones al suelo de sulfato de
hierro
Insecticida vegetal (rotenona,
piretrina, …)
Lithothamne, polvo de roca, cola de
caballo, ajo
Tabla : Factores del control biológico de las poblaciones de artrópodos más comunes en
territorio valenciano (elaboración a partir de García Marí et al., 1992, Garrido, 1999, Jacas y
Garrido, 1999).
ARTRÓPODO
Piojo rojo de California o Poll
roig de Califòrnia
Aonidiella aurantii Maskell
Piojo rojo o Poll roig
Chrysomphalus dictyospermi
(Morgan)
Piojo gris o Poll gris
Parlatoria pergandii Comstock
Piojo blanco o Poll blanc
Aspidiotus nerii Bouche
Serpeta gruesa
Lepidosaphes beckii Newman
Serpeta fina
Insulaspis gloverii (Pack)
Cotonet
Planococcus citri Risso
Caparreta negra
Saissetia oleae (Olivier)
Cochinilla o Cotxinilla
acanalada
Icerya purchasi Maskell
Pulgón verde de los cítricos
Aphis spiraecola Patch
Pulgón verde del
melocotonero
Myzus persicae (Sulzer)
Pulgón negro de los cítricos
Toxoptera aurantii (B. de F.)
Pulgón del algodonero
Aphys gossypii Glover
Mosca blanca algodonosa
Aleurothrixus floccosus Maskell
Moscas blanca de los cítricos
Dialeurodes citri Ash.
Moscas blanca japonesa
Parabemisia myricae (Kuw.)
Bemisia de los cítricos
Bemisia citricola
Prays
Prays citri
Barreneta
Ectomyelois ceratoniae Zeller
Minador
Phyllocnistis citrella Stainton
CONTROL BIOLÓGICO
Aphytis chrysomphali, A. melinus, A.
lignanensis (en estudio), Comperiella
bifasciatta (posible), Prospaltella perniciosi
(en estudio)
Aphytis chrysomphali, A. melinus, A.
chilensis, A. hispanicus, A. lignanensis (en
estudio), A. proclia, Encarsia citrina,
Prospaltella perniciosi, Aspidiotiphagus
lounsbouryi
Aphytis hispanicus, A. maculicormis
(posible), Encarsia inquirenda,
Hemisarcoptes coccophagus
Aphytis melinus, A. chilensis, A.
longiclavae, Encarsia citrina
Aphytis lepidosaphes, A. proclia, A.
mytilaspides, A. maculicornis, A.
chrysomphali, Prospaltella singularis,
Encarsia citrina, Exochomus
quadripustulatus, Chilocorus bipustulatus
Encarsia (Prospaltella) elongata
Leptomastix dactilopii, Anagyrus
pseudococci, Leptomastidea abnormis,
Leucopis griseola, Criptolaemus
montrouzieri
Metaphycus lounsburyi, M. luteolus, M.
helvolus, Scutellista cyanea, Coccophagus
scutellaris
Rodolia cardinalis, otros comunes a los
anteriores (Chilocorus bipustulatus,
Lindorus lophantae, Exochomus
quadripustulatus, Hemisarcoptes spp.,
Cheletogenes spp., Lestodiplosis spp.,
Chrisoperla carnea, ácaros fitoseidos)
Afelinus sp., Lysiphlebus testaceipes,
Trioxis angelicae, Praon sp., Aphidius
matricariae,
Coccinella septempunctata, Scymnus
subvillosus, Adalia sp., y otros
coccinélidos
Chrysoperla carnea, Syrphus sp.,
Aphidoletes sp.,
Verticillium lecanii
Cales noacki
Amitus spinifer
Otros entomófagos
Encarsia lahorensis
Encarsia tricolor
Encarsia spp.
Eretmocerus mundus
EFICACIA
OBSERVACIONES
MC
Los dos primeros no son
suficientes para controlarlo.
BC
Fundamentalmente los dos
primeros.
MC
CR
MC
BC
C
C
Ciptolaemus y Leptomastix
son claves, pero el primero
falla en periodos fríos.
Precisa reintroducción anual.
Si sólo existe Scutellista, el
control es malo; el factor
climático es importante.
BC
El factor clave es la Rodolia.
Deberemos actuar con
conservación y mejora.
C
Si tienen refugio cercano, su
actuación es más rápida.
BC
En primavera y otoño. A.
spinifer solo está en Alicante.
C
C
BC
Ageniaspis fuscicollis, Trichograma
evanescens, aves insectívoras, arañas
Aves insectívoras, arañas
Pnigalio mediterraneus, Pn. pectinicornis,
Cirrospilus pictus, C. vittatus, Ageniaspis
citricola, Galeusomyia fausta, Sympiesis
gregori
Crisopas, mariquitas
MC
Cada vez es mayor el control
por parásitos autóctonos. A.
citricola en donde se ha
aclimatado realiza un buen
trabajo.
Mosca de la fruta
Ceratitis capitata Wied
Ácaro rojo o pardo
Panonychus citri (Mc Gregor)
Araña roja
Tetranychus urticae Koch
Ácaro de las maravillas
Aceria sheldoni (Erwing)
BC = Buen control
C = Controlada
CR = Control regular
MC = Mal controlada
Crisopas y fauna del suelo
Euseius stipulatus, Thryphlodromus
phialatus, Amblyseius californicus
Conwetzia psociformis y crisopas,
Stethorus punctillum
Fitoseidos
Crisopas y mariquitas
Fitoseidos
Crisopas y mariquitas
MC
BC
MC
MC
Dependerá de las
condiciones climáticas y de
los fitosanitarios usados para
que tengan un control
suficiente
Tabla : Influencia de algunos tratamientos fitosanitarios empleados en
citricultura ecológica sobre la fauna auxiliar (a partir de Jacas y Garrido, 1999).
Tabla : Periodo de mayor actividad de la fauna auxiliar que actúa en el control
natural de las poblaciones de los artrópodos más frecuentes en el litoral
meditrráneo (Garrido, 1999).
NOMBRE
MANEJO ECOLÓGICO
Nemátodos (Tylenchulus sp.)
Negrilla (Capnodium citri Berk.
& Desm.)
Gomosis (Phytophtora sp) y
otros
hongos
del
suelo
(pudrición de raíces con
Armillaria sp., Dematophora
sp., Clitocybe sp.)
Antracnosis o seca de ramas
(Colletotrichum sp., Phomopsis
sp., Phoma sp.)
Pudrición
de
frutos
(Phytohptora sp. y Penicillium
sp.)
Bacteriosis
spp.)
Virus
(Pseudomonas
- Rotación con hortalizas y frutales (7-10 años).
- Patrones tolerantes: Poncirus y Citrange.
- Potenciación de micorrizas y hongos saprófitos y
antagonistas del suelo (con materia orgánica y abonos
verdes).
- Asociación con plantas nematicidas (Brassica sp., Sinapis
sp.).
- Uso de estiércoles frescos enterrados en superficie.
- Solarización.
- Hongo saprofito que se desarrolla sobre la melaza
excretada por mosca blanca, pulgones, cotonet, etc.
Tratamiento al insecto que produce la melaza.
- Lavado con jabón potásico (hasta el 3%), neutralizado con
acético o similar.
- Potenciación de micorrizas y hongos, saprófitos del suelo.
- Evitar encharcamientos y riego en el cuello: cultivo en
meseta o con ruedos aireados, vigilar el riego localizado.
- Solarización y biofumigación..
- Control biológico gomosis: Mirotezium sp., Penicillium sp.
- Limpieza y desinfección de heridas con propóleo, cal,
silicato de sodio (0,5%-2%), compuestos cúpricos,
permanganato potásico.
- Cuidar las replantaciones (pudrición), quitando restos de
raíces, ramas viejas, tocones, etc. Recomendable
rotación.
- Los más vigorosos son más sensibles (Citrange). El naranjo
amargo tolera bien.
- Vigilar, tratar sólo ante presencia.
- Evitar estrés hídrico o nutricional.
- Desinfección con propóleo, silicato de sodio, permanganato
potásico o cobre. Puede mezclarse jabón.
- En campo: mantener la cubierta vegetal en época de lluvias
- Evitar excesos de nitrógeno.
- Tratar con permanganato o cobre en faldas.
- En almacén: evitar heridas o golpeos, realizar un buen
destrío.
- Evitar heridas, sobre todo en época de lluvias o humedades
altas.
- Desinfectar con propóleo, permanganato o compuestos de
cobre.
- Utilizar variedades tolerantes y libres (de viveros
controlados): Cleopatra, Poncirus, Citrange, etc.
- Evitar contactos con materiales viróticos (injertos, ...).
- Limpiar bien los instrumentos de poda después de cada
árbol.
- Eliminar adventicias sobre las que pueda transmitirse (p.ej.,
psoriasis sobre Chenopodium chinoa).