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EFECTO DE LA MELATONINA Y ANÁLOGO, SOBRE LAS PROPIEDADES ELECTROFISIOLÓGICAS EN REBANADAS DE HIPOCAMPO DE RATA. Xóchitl .P. Vega-Acevedo, Jenny Reyes-Flores, Alfonso S. Lira-Rocha y Elia B. Naranjo-Rodríguez Departamento de Farmacia. Facultad de Química. UNAM. . Ciudad Universitaria, México, D. 04510. [email protected] RESUMEN La melatonina (MEL), es una hormona secretada por la glándula pineal (GP), durante el ciclo luz-oscuridad, produce diferentes efectos pero el mecanismo por el cual los produce, es desconocido. Para conocerlo, se realiza un estudio sobre las propiedades electrofisiológicas en rebanadas de cerebro de rata, en la región hipocampal CA1 la cual es importante en el aprendizaje y memoria, en el caso de la memoria el principal mediador de estos procesos es el neurotransmisor glutamato que participa en la plasticidad cerebral y esta relacionada con diversos trastornos clínicos. Se utilizan, ratas hembra o macho Wistar (40g). Las rebanadas de los cerebros se colocan en un sistema convencional “In vitro”; los datos se capturan en una PC, y se analizan con una t de Student. INTRODUCCIÓN La melatonina (MEL) fue originalmente descubierta como una molécula que se encontraba en los melanocitos de ranas y pescados. Posteriormente se encontró que estaba presente en todos los vertebrados, bacterias, protozoarios, plantas, hongos e invertebrados.(6) La MEL es la hormona primaria de la glándula pineal (GP) secretada rítmicamente, la cual actúa como un cronobiótico ya que está involucrada en la regulación del ciclo circadiano y en ocasiones en los ritmos de las estaciones (7). La MEL es una indolamina (N-Acetil-1-5-metoxitriptamina) que se obtiene a partir del aminoácido triptófano, convertido enzimáticamente a serotonina, La síntesis es principalmente nocturna y es controlada por la exposición a los ciclos de luz y oscuridad, independientemente del sueño Los niveles séricos de melatonina son bajos durante el día con picos altos de 2-4 am de la noche (3). Así la síntesis de melatonina es inhibida por la exposición a la luz y su producción es estimulada durante los períodos de oscuridad debido a las sinapsis neurales conectadas de la glándula pineal al medio ambiente vía retina.(6). A demás de la GP, la MEL también, es sintetizada en la retina, médula espinal y tracto gastrointestinal. El tracto gastrointestinal indica que produce de manera proporcional más MEL que la GP y su secreción de melatonina disminuye con la edad.(7) Figura 1. Fig. 1 Estructura de la MEL. Compuesto metoxiindólico, es la principal hormona producida por la GP su nombre químico es N-acetil-5-metoxitriptamina.(6) 1 La MEL cuyo nombre IUPAC es N-Acetil-5-metoxitriptamina, (fig 1) posee dos grupos funcionales que no solo son decisivos para la unión específica con su receptor si no que también, proporcionan afinidad permitiendo a la molécula entrar a la célula, compartimientos celulares o fluido corporales.(6) La MEL modula funciones endocrinológicas y fisiológicas en los invertebrados; además tiene propiedades antioxidantes (más fuertes que la vitamina E) y oncostáticas. Tres estudios recientes epidemiológicos muestran que las mujeres que trabajan exclusivamente en la noche por largos períodos tienen niveles significativos de riesgo de cáncer de seno.(8) Por otro lado, se sabe que el t1/2 de la MEL en plasma de rata es de 30-40min, con la finalidad de contar con una molécula que mejore su t1/2. se sintetizaron compuestos análogos a ella, como es el caso del compuesto M3C. Figura 2 NHCOCH3 H3CO N OCH3 Fig 2. Se muestra el Análogo de la melatonina M3C Así. durante los últimos años varios modelos moleculares del sitio de unión han sido propuestos. Todos ellos coinciden en que el enlace de hidrógeno del grupo 5-metoxi de la MEL actúa como grupo donador, el carbonilo como grupo aceptor y el átomo de nitrógeno del acetamida como grupo donador. La adición de un grupo voluminoso en la posición 2 ha sido considerado como un sitio farmacofórico adicional. La síntesis del análogo probado (M3C) se basa en la sustitución del átomo de nitrógeno en el anillo del indol con los siguientes argumentos. Primero, este átomo esta lejos de la zona de unión ligandoreceptor así la posible interacción estérica con los sustituyentes en este átomo es minimizada. Segundo el átomo de nitrógeno incrementa la densidad electrónica en la posición 3 del anillo indólico, por la deslocalización del par de electrones. Por lo tanto modificaciones en esta distribución electrónica pueden modificar las propiedades electrónicas de la molécula y como consecuencia su actividad biológica. (4) Todos estos antecedentes nos llevaron a plantear los siguientes objetivos. OBJETIVOS Caracterizar el efecto de ATP, MEL y sus análogo M3C en la región hipocampal del cerebro de rata. Demostrar la habilidad de la MEL de modular específicas formas de plasticidad en neuronas piramidales de hipocampo. METODOLOGÍA Las rebanadas de hipocampo son de 400 µm y fueron obtenidas a partir de ratas Wistar hembra o macho (Harlan, México, S. A. De C.V.I) de 21 a 22 días de edad, con un peso promedio de de 402g, mantenidas en condiciones constantes de temperatura, agua y alimento ad libitum. Los animales se sacrificaron por decapitación con una guillotina para ratas (World Precision Instruments, Inc. Sarasota, Fl. USA). Una vez extraído el cerebro se colocó en una caja Petri con Líquido Cefalorraquídeo Artificial (LCRA) a 4 C estabilizada con una mezcla de O2 y CO2 al 95% y 5% respectivamente (gas carbógeno). El cerebro se colocó ventralmente hacia arriba, en una caja Petri con LCRA, cortando la parte anterior del cerebro a la altura del quiasma óptico y por la parte posterior a la altura del cerebelo. Este bloque, se fijó con una capa delgada de cianoacrilato (QuickTite) a la base de la cámara del “Vibro Slice” (Vibratome 1000 Plus-Pelco,Ted Pella, Inc. Moutain Lakes Blvd. Redding, CA) (5). Se obtuvieron ocho rebanadas por cortes coronales por cada cerebro de rata, generalmente las dos primeras rebanadas del hipocampo se desechaban, para asegurar que la rebanada contenga el hipocampo anterior con la región CA1. La duración de todo este proceso desde que se sacrificó al animal hasta la obtención de las rebanadas fue de aproximadamente 5min. Las rebanadas se sumergieron en la solución de LCRA a temperatura ambiente (22 3ºC) y con burbujeo constante de gas carbógeno (95% de O 2 y 5% de CO2), mientras eran utilizadas para los registros, en esta solución se consideraron 30 min. de estabilización para la primera rebanada. 2 Posteriormente, se transfirió una rebanada a la cámara de registro y continuamente se perfundío con una solución de LCRA (36 1 ºC) y oxigenada con gas carbógeno. Para mantener el volumen constante de la perfusión, la cámara está conectada a una aguja de succión la cual a su vez esta conectada al vacío. La solución se mantuvo en un frasco Mariotte colocado a 50 cm de la cámara y equilibrada con gas carbógeno, para mantener el pH = 7.4 y a una temperatura de 36 1ºC, mediante un sistema de recirculación. La solución que se encontraba en contacto con la rebanada se mantuvo en un rango de temperatura de 36 1ºC, la cual se midió durante todo el registro. La velocidad de perfusión fue de 1.5 a 2mL/min. Figura 3 Fig. 3. Equipo para perfundir y visualizar las rebanadas hipocampales. Las rebanadas hipocampales fueron colocadas para registrar su actividad en una cámara de acrílico y perfusión constante con LCRA calentado a 361 C.G (1) Una vez realizado este procedimiento, a la rebanada se le colocaron los electrodos de registro y de estimulación, posteriormente se buscó la espiga poblacional y se registró. La espiga poblacional o potencial de campo poblacional que es el reflejo del número de neuronas piramidales activadas. Figura 4 Figura 5 Fig. 4. Se muestra la cámara de registro (1) Fig 5·.Elementos neuronales de la formación hipocampal. Las áreas marcadas incluyen el subinculum, parte de la corteza entorhinal, el gyrus dentate y las regiones CA1 a CA4. El hipocampo se divide en (1) estrato orines 2) estrato piramidale 3) estrato radiatum y 4) estrato lacunosum-moleculare. Se esquematizan también la forma más comúnmente usada para inducir un potencial sináptico: que es aplicando un estímulo en las fibras colaterales de Schaffer y registrar la actividad eléctrica en una neurona de CA1 a través de un microelectrodo (Modificado ) 2. Registros de la actividad eléctrica de las neuronas piramidales. Los registros extracelulares se realizaron utilizando microelectrodos llenos de solución de NaCl 2M, con una resistencia de 2-6 M. El potencial de membrana de un conjunto de neuronas se midió con un preamplificador Axopatch (Axon Instruments Inc., USA). Los parámetros medidos a cada conjunto de células fueron: la duración de la espiga, la amplitud y el número de espigas por pulso así como el potencial de membrana en reposo. Una vez obtenida la espiga poblacional se adicionaron MEL y M3C a rebanadas independientes y se observaron los efectos respectivamente. Figuras 6,7,8 y 9. 1. 3 RESULTADOS ANÁLISIS Figura 6 Fig. 6. Se muestra la respuesta (promedio del porcentaje de amplitud) cuando se administra M3C a las rebanadas Figura 7 Fig. 7. Se observa que la MEL a las concentraciones de 15, 30 y 45M, aumenta la transmisión sináptica sobre la región CA1 hipocampal. La curva de color amarillo representa la respuesta a ATP. Se muestra la amplitud de la espiga (% control) en función del tiempo. La MEL y ATP aplicada por 5 min. está indicada por la barra horizontal. La tetanización por LTP estimula la transmisión sináptica. A los 10 min. de iniciado el registro se adicionaron los compuestos. 4 Figura 8 Figura 9 Fig 9.En esta figura se observa que el ATP a la concentración de 30M, no presenta cambios en esta gráfica. Pero con M3C se observa una disminución de la respuesta (actividad eléctrica de las neuronas del hipocampo). A los 5 min. de iniciado el registro se adicionaron los compuesto Fig 8.En esta figura se observa que la MEL a la concentración de 45 M, no presenta cambios en esta gráfica. Con M3C 30M se observa una disminución de la respuesta (actividad eléctrica de las neuronas del hipocampo.). A los 3 min. de iniciado el registro se adicionaron los compuestos. CONCLUSIONES 1. 2. 3. La MEL produce excitación de los potenciales evocados (espiga poblacional), en la región CA1 hipocampal a las concentraciones de 15, 30 y 45 M, con mayor duración que con ATP a 30M. El ATP produce depresión de los potenciales evocados (espiga poblacional), en la región CA1 hipocampal, a 30M. El M3C produce depresión significativa de los potenciales evocados (espiga poblacional), en la región CA1 hipocampal, a 30M comparados con ATP y MEL a 30M BIBLIOGRAFÍA 1. 2. 3. 4. 5. 6. 7. 8. Barajas-López C, Surprenant A. and North R. A., “Adenosine A1 and A2 receptors mediate presynaptic inhibition and postsynaptic excitation in guinea pig submucosal neurons”, The J. of Pharmacol and Exp. Therap., Vol. 258,2, 1991, pp. 490-494. Cajal S. Ramón, “Histologie du Systéme Nerveux de I’Homme et des Vertébre “. Paris Maloine.1911. Lee CO., “Complementary and alternative medicines patients are talking about: melatonin“, Clin. J. Oncol. Nurs.,Vol. 10,1, 2006, pp.105-107. Lira-Rocha A, Espejo-González O, Naranjo-Rodríguez EB., “Receptor-binding studies of 1-Nsubstituted melatonin analogues”, Eur. J. Med. Chem., Vol. 37,12, 2002, pp. 945-51. Mendoza-Fernandez V, Andrew RD, Barajas-Lopez C., “ATP Inhibits Glutamate Synaptic Release by Acting at P2Y Receptors in Pyramidal Neurons of Hippocampal Slices”, J. Pharmacol. Exp. Ther., Vol.293,1, pp.172-179. Rüdiger Hardeland, S.R. Pandi-Perumal , Daniel P. Cardinali, “Melatonin”, Int. J. Biochemistry & Cell Biology, Vol 38, 3, 2006, pp. 313-316. Sin autor, “Melatonin. Monograph.”, Alternative medicine review: a journal of clinical therapeutic, Vol.10, 4, 2005, pp. 326-332 . Touitou Y., “Melatonin: what for?”, Bull. Acad. Natl. Med., Vol. 189,5, 2005, pp. 879-891. AGRADECIMIENTOS Al Proyecto apoyado por PAPIIT-DGAPA-UNAM. Clave No. IN205905 para el desarrollo de este trabajo. Al Ing. E. Jorge Zamorano-Velasco, por su asesoría en el manejo del software. 5