Download Estrés y envejecimiento: Enfoque de la Micro-Inmunoterapia

Document related concepts

Apoptosis wikipedia , lookup

Linfocito T regulador wikipedia , lookup

Antígeno menor de histocompatibilidad wikipedia , lookup

Citocina wikipedia , lookup

Complejo mayor de histocompatibilidad wikipedia , lookup

Transcript
A S O C I A C I Ó N
AEMI
E S P A Ñ O L A
Estrés y envejecimiento: Enfoque de la
Micro-Inmunoterapia
Dra. Lourdes Reig
I.Introducción
Por su composición y modelo secuencial, la fórmula de
Micro-Inmunoterapia MISEN podría jugar un papel
­importante en la regulación y estabilización de los parámetros alterados por el estrés y el proceso de envejecimiento.
El estrés tiene un impacto esencial sobre la función
­inmune. La evidencia actual sugiere que el ­envejecimiento
del sistema inmunológico (inmunosenescencia) está
­estrechamente relacionado con factores de distress
­psicológico y hormonas del estrés. El estrés crónico
conduce a un envejecimiento prematuro de sistemas alostáticos clave, involucrados en la adaptación de los organismos a los cambios ambientales.1
Mecanismo potencial:
La fórmula MISEN alterna secuencias orientadas
a estimular la regeneración, la proliferación y el
correcto funcionamiento de las diversas líneas
celulares, con secuencias orientadas a estimular
la apoptosis, la inhibición del ciclo celular y la
expresión de genes supresores de tumores.
En la juventud, el efecto del estrés puede ser compensado
por la presencia de una respuesta inmune óptima, pero
con el avance de la edad, aparecen alteraciones de la respuesta inmune inducidas tanto por el envejecimiento de
los componentes del sistema inmune, como por un cambio a un estado pro-inflamatorio crónico denominado
‘inflammaging’.2
El objetivo es favorecer el rejuvenecimiento
­celular sin riesgo de proliferación neoplásica.
Entre las características de la senescencia (ya sea natural o
inducida por estrés) se incluyen:
•
•
•
•
•
A su vez, la fórmula MISEN busca equilibrar
factores que inducen el envejecimiento celular
como los glucocorticoides, así como compensar
déficits propios del proceso de la senescencia.
Alto estrés oxidativo (ROS)
Inflamación crónica persistente
Reducción de la longitud de los telómeros e inactivación de la telomerasa
Exposición crónica a glucocorticoides endógenos
Reducción de la inmunidad mediada por células
1
A S O C I A C I Ó N
AEMI
E S P A Ñ O L A
como las HLA-DR es constitutiva en células profesionales presentadoras de antígeno (CPAs profesionales),
como los macrófagos, células dendríticas y células B. Sin
embargo, en condiciones inflamatorias5 como las que
se producen en la senescencia, la expresión de las HLADR puede ser inducida en células que originalmente no
son presentadoras de antígeno (CPAs no profesionales),
como las células epiteliales, queratinocitos y otras.6,7,8
II. Modo de acción de la fórmula MISEN
1. Composición
Ácido nucleico específico SNA®-HLA II
Interleucina 2 (IL-2)
Ácido ribonucleico (RNA)
Ácido nucleico específico SNA®-MISEN
Una de las causas de agotamiento de las células T en un
entorno de inflamación crónica, manifestado por una
pérdida de expresión del marcador CD28 en células T
(T CD28-), es la presentación antigénica a estas células
por CPAs no profesionales.9,10
Factor de Crecimiento Epidérmico (EGF)
Dimetilsulfóxido (DMSO)
Ácido nucleico específico SNA®-HLA I
SNA®-HLA II
Dehidroepiandrosterona (DHEA)
ÆÆ Objetivo:
Frenar la sobreexpresión del MHC de clase II en
CPAs no profesionales derivadas del e­ ntorno
inflamatorio, para reducir el agotamiento
­
inmune de las células T CD8, así como sus
­
consecuencias.
Diluciones: Estimuladoras – Moduladoras – Frenadoras
2. Descripción de los componentes, objetivos y cascada
secuencial
(ver esquema de la página 6)
2.1.Ácido nucleico específico SNA®-HLA II
2.2.Interleucina 2 (IL-2)
La senescencia es un proceso celular que se produce en
general como una respuesta al estrés y al daño. Definida
como el estado irreversible de detención del ciclo celular,
la senescencia contribuye al envejecimiento del tejido,
pero a su vez, protege a los organismos contra el cáncer.3
La acumulación de células T CD28-, en particular en el
subconjunto T CD8+, es uno de los cambios más prominentes asociados con el envejecimiento. CD28 es un
receptor co-estimulador básico, responsable de la activación, proliferación y supervivencia de estas células.11
Igualmente, para una activación eficiente de las células T
CD4+, se precisa de la coestimulación de CD28, siendo
esencial en las funciones efectoras de estas células.12 La
coestimulación que proporciona el CD28 promueve la
expansión y las respuestas inmunes de las células T, al estimular la expresión y secreción de IL-2.13,14
La respuesta del organismo al daño en el ADN, tiene
un papel central en la senescencia celular, ya que al ser
una respuesta supresora tumoral, implica un ­importante
­aumento de factores proinflamatorios y ROS. En el
transcurso de la senescencia, a la inflamación derivada
del proceso celular mismo se le va a sumar una inflamación secundaria, derivada de la activación progresiva de
las células inmunes relacionada con la edad.4 Todo esto
va a condicionar la presencia de una inflamación crónica
persistente y sus consecuencias.
La inmunosenescencia se caracteriza por una remodelación especial del sistema inmune inducida por la exposición al antígeno y el estrés oxidativo. En el envejecimiento
del sistema inmune la inmunidad adaptativa se ­deteriora
debido a una disminución progresiva de células T y B
­ingenuas, así como la disminución del número absoluto
de linfocitos T y B. Los telómeros juegan un papel importante en este proceso.
La iniciación, propagación y regulación de la respuesta
inmune adaptativa dependen de una regulación precisa
de las moléculas del complejo mayor de histocompatibilidad (MHC) de clase II. A diferencia de las moléculas
MHC de clase I, ampliamente expresadas en diferentes
células, la expresión de las moléculas MHC de clase II
Los telómeros son estructuras especializadas situadas en
el extremo de los cromosomas que se acortan durante las
2
Estrés y envejecimiento: Enfoque de la Micro-Inmunoterapia
progresivas divisiones celulares, y este acortamiento se
correlaciona inversamente con la edad.15 Su función consiste en proteger a los extremos de los cromosomas de las
actividades de degradación y reparación del ADN. La
reparación del telómero requiere de la telomerasa.16
El IFN-α inhibe la actividad de la telomerasa, ­acelerando
la diferenciación de las células T CD8+22. Además de en
las células T23, esta citoquina puede inhibir la actividad
de la telomerasa en otras líneas celulares como las hematopoyéticas24,25 por diversos mecanismos.
Una longitud de los telómeros críticamente acortada,
provoca una detención del ciclo celular o senescencia.
El sistema inmune es muy sensible al acortamiento de
los telómeros, ya que su eficacia depende estrictamente
de la renovación celular y de la expansión de los linfocitos T y B. Cabe mencionar que las células del sistema inmune (células T CD4+, T CD8+, linfocitos B, granulocitos, monocitos y células NK) son únicas en su capacidad
de regular el incremento de la telomerasa, la enzima que
extiende los telómeros, limitando su desgaste en células
activadas.17
La secreción de IFN de tipo I se induce mediante la estimulación de los receptores de tipo toll (TLRs) y sus vías
de señalización. Los receptores TLR7, TLR8 y TLR9 en
plasmocitos (pDCs) inducen IFN-α en respuesta a los
­virus y a los ligandos para estos receptores.26,27,28,29
Los ARN virales y sintéticos de cadena simple son ligandos para los receptores de tipo toll TLR7 y TLR8.30,31,32
ARN
ÆÆ Objetivo:
Modular la secreción de IFN de tipo I y sus efectos negativos sobre el CD28 y la actividad de la
telomerasa, sin perder la capacidad defensiva
que proporciona el IFN de tipo I.
La IL-2 es una citoquina inmunorreguladora esencial,
ya que estimula la actividad de la telomerasa en células
inmunes como los linfocitos y las células NK.18,19
IL-2
2.4.Ácido nucleico específico SNA®-MISEN
ÆÆ Objetivo:
Modular las consecuencias del descenso permanente de CD28 en linfocitos T, así como facilitar la activación de la telomerasa en células
inmunes.
La longevidad de los animales está influenciada por los
genes, el medio ambiente y factores aleatorios.33 Todos
los cambios genéticos que afecten a la señalización endocrina, a las respuestas al estrés, al metabolismo, y a la longitud de los telómeros, pueden influir en la longevidad de
los organismos.34
2.3.Ácido ribonucleico (ARN)
Los interferones de tipo I (IFN-α y IFN-β) son una familia de citoquinas proinflamatorias esenciales para la inmunidad antiviral20, pero cuya sobreexpresión se asocia
con varios trastornos autoinmunes.21 El IFN-α es secretado durante las infecciones virales en respuesta a los ARN
virales.
Diversos factores reguladores de la expresión génica,
pueden modificar el proceso de envejecimiento modulando el deterioro de los tejidos o la senescencia celular.35
SNA®-MISEN
La actividad de los IFN de tipo I asociada a un bajo grado de inflamación y/o a la presencia de un ambiente
pro-inflamatorio vinculado también a la senescencia2, favorece la inducción del CD28-. Es por ello que durante
el envejecimiento, las infecciones virales persistentes, los
episodios de reactivación viral o las infecciones repetidas
que provocan la continua activación del TCR (receptor
antigénico de las células T) y la consecuente promoción de
la secreción de IFN-α, contribuyen a la acumulación del
fenotipo senescente T CD8+ CD28-.22
ÆÆ Objetivo:
Frenar genes específicos del estrés y/o envejecimiento
2.5.Factor de Crecimiento Epidérmico (EGF)
La senescencia celular es una respuesta de seguridad
que protege las células de la transformación tumoral.36
La senescencia se produce, cuando las células tienen
3
A S O C I A C I Ó N
AEMI
E S P A Ñ O L A
los ­
telómeros críticamente acortados como consecuencia de los mecanismos de replicación del ADN. Un
­acortamiento gradual de los telómeros, en ausencia de
telomerasa, no afecta el ciclo celular; sin embargo, el
acortamiento “crítico” de los telómeros juega un p
­ apel
esencial en la senescencia.37 El acortamiento de los
­telómeros es el único mecanismo de envejecimiento y
de limitación del tiempo de vida.
la disfunción de los telómeros como la actividad de la
telomerasa se consideran dos factores implicados en el
desarrollo de cáncer.49 Por una parte, el acortamiento
progresivo de los telómeros limita la viabilidad celular y
favorece la senescencia50, pero por otra parte, la inestabilidad genómica causada por la disfunción de los telómeros
conlleva un alto riesgo de acumulación de mutaciones,
favoreciendo el desarrollo tumoral.51 De la misma forma,
la actividad de la telomerasa retrasa el ­envejecimiento
celular favoreciendo la regeneración de los tejidos, pero
a su vez, contribuye a la inmortalización de las células
transformadas.52,53
La telomerasa es una enzima altamente regulada y su
a­ ctividad está estrechamente asociada con la proliferación celular. Si los telómeros no se acortan, como es el
caso en las células transformadas en el que la telomerasa
está activa, el envejecimiento va a frenarse y las células
transformadas no expresarán la senescencia.38
Es por ello que para una eficaz intervención anti-aging,
será fundamental el equilibrio entre estas dos condiciones relacionadas con la edad: envejecimiento y desarrollo tumoral. Diferentes estudios destacan el potencial que
tiene la sobreexpresión de TERT junto con genes supresores de tumor como p53 y p16 entre otros, al estimular
la actividad antienvejecimiento a la vez que se reduce
considerablemente la aparición de cáncer.54,55
El factor de crecimiento epidérmico (EGF) ­
activa
la ­telomerasa a través de la activación directa de la
­telomerasa transcriptasa inversa (TERT).39,40
En la senescencia se observan niveles reducidos del EGF,
que además de activar la telomerasa, favorece la neurogénesis41 y juega un papel importante en la cicatrización
de heridas y regeneración de tejidos como piel, córnea y
tracto gastrointestinal.42
El gen supresor tumoral p53, denominado “guardián
del genoma”56 es un factor de transcripción implicado
en el control del ciclo celular, la reparación del ADN, la
apoptosis y la respuesta celular frente al estrés. El p53
induce la detención del crecimiento celular a través de
la activación directa del inhibidor del ciclo celular p21
(inhibidor de la quinasa dependiente de ciclina – CDK).57
La prevalencia de mutaciones que inactivan el gen supresor de tumores p53 en la mayoría de los cánceres humanos, revela la importancia de este gen en la prevención de
esta enfermedad.58 Sin embargo, al inducir la detención
del crecimiento celular y la apoptosis, el p53 implica la
activación de la senescencia celular y el envejecimiento
del organismo.59,60
En resumen, la activación del receptor de EGF se asocia
con un aumento de la esperanza de vida máxima, por el
contrario, la reducción de la actividad de la vía del EGF
se asocia con el envejecimiento acelerado43 y la degeneración.44
EGF
ÆÆ Objetivo:
Modular la reducción de la actividad de la telomerasa para prevenir el acortamiento crítico de
los telómeros, favoreciendo el rejuvenecimiento.
Hay que destacar que el NF-kappa B es un antagonista
directo del gen p53, y al mismo tiempo induce supervivencia celular, proliferación, migración e invasión.61 En el
envejecimiento, el aumento de expresión del NF-kappa
B62 se asocia con la enfermedad cardiovascular63 y ­podría
ser el resultado del estrés oxidativo64 o de un estado
­inflamatorio persistente, ya que los estímulos inflamatorios pueden inducir NF-kappa B.65,66
2.6.Dimetilsulfóxido (DMSO)
La expresión de TERT45 reconstituye la actividad de la
telomerasa y alarga la longevidad de las células humanas normales, reduciendo su senescencia.46,47 Como se ha
mencionado antes, la telomerasa puede revertir la degeneración de los tejidos derivada de la edad en diversos
órganos, incluyendo el tejido neural.48
Pero al mismo tiempo hay que tener en cuenta que t­ anto
El Dimetilsulfóxido (DMSO), posee propiedades
­antioxidantes67, citoprotectoras68 y anti-inflamatorias.69
Entre las funciones del DMSO, hay que subrayar especialmente su función anti-tumoral: el DMSO induce
4
Estrés y envejecimiento: Enfoque de la Micro-Inmunoterapia
2.8.Dehidroepiandrosterona (DHEA)
la expresión del gen supresor tumoral p5370,71, a la vez
que disminuye los niveles del protooncogén c-myc72,
protooncogén desregulado en la mayoría de los tumores
humanos y que contribuye a la transformación maligna al inducir una proliferación celular incontrolada y la
inestabilidad genómica.73
La DHEA es secretada por las glándulas suprarrenales, y
es uno de los esteroides más abundantes que circulan por
el organismo humano. Los niveles de DHEA disminuyen progresivamente con la edad, sugiriendo un papel
en el proceso de envejecimiento. De hecho, la hipótesis
neuroendocrina de la inmunosenescencia considera
que como consecuencia del envejecimiento y del estrés
crónico, se instaura un desequilibrio en la relación cortisol/DHEA, siendo este el principal determinante de
los cambios inmunológicos observados durante la edad
avanzada.79 Una secreción de DHEA reducida junto
con un aumento de la secreción de cortisol implica una
mayor exposición de las células linfoides a las acciones
­deletéreas de los glucocorticoides.1
DMSO
ÆÆ Objetivo:
Activar genes supresores de tumor como el p53
y disminuir la expresión de protooncogenes
como c-myc.
2.7.Ácido nucleico específico SNA®-HLA I
Las células NK son capaces de diferenciar entre las células normales y las células que han perdido la expresión
de moléculas del MHC de clase I como resultado de
­infecciones virales o de transformación tumoral.74
La DHEA posee acciones inmunoestimulantes, favorece
el aumento de la densidad mineral ósea, y tiene efectos de
protección cardiovascular y neurológica.80
Además juega un papel importante en el control del ciclo
celular. La DHEA suprime la progresión tumoral induciendo senescencia celular, inhibiendo la proliferación
celular e incrementando la muerte celular por apoptosis. Los efectos celulares inducidos por DHEA se asocian entre otros, con un aumento de la expresión de los
genes inhibidores del ciclo celular p16 y p21.81 El p21
(inhibidor de la CDK, también conocido como p21WAF1
/ Cip1) promueve la detención del ciclo celular en respuesta a muchos estímulos.82 El p16 también es un
­importante gen supresor de tumores. La alta frecuencia
de deleciones de p16 en líneas celulares tumorales primitivas sugiere un papel importante para p16 en la carcinogénesis, considerándose la pérdida de p16 como un
acontecimiento temprano y frecuentemente crítico en
la progresión tumoral.83
El gen supresor tumoral p53 activa la senescencia celular y suprime la tumorogénesis, pero posteriormente, las
­células NK tienen que eliminar estos tumores senescentes. El p53 induce la secreción de quimiocinas por
las células tumorales, señales para favorecer el reclutamiento de células NK en el entorno tumoral75, pero la
restauración del p53 no aumenta la sensibilidad a la lisis
por las células NK.76 La lisis celular mediada por las células NK, es más eficaz en ausencia de antígenos MHC
de c­ lase I. Los antígenos HLA-I dificultan el reconocimiento por las células NK de las células transformadas
susceptibles de lisis e interfieren con las diferentes moléculas implicadas en la lisis mediada por estas células.77
Hay que destacar que en condiciones de estrés, la actividad de las células NK está deprimida por la acción de los
glucocorticoides, que regulan negativamente la actividad
de estas células. Tanto la lisis como la unión a las células susceptibles de lisis se encuentran afectadas por los
­glucocorticoides.78
DHEA
ÆÆ Objetivo:
Equilibrar niveles de glucocorticoides (relación
cortisol/DHEA alterada) y estimular genes inhibidores del ciclo celular como p21 y p16 para
evitar una proliferación celular protumoral.
SNA®-HLA I
ÆÆ Objetivo:
Frenar la aparición de moléculas HLA-I para
­favorecer la respuesta lítica de las células NK.
5
A S O C I A C I Ó N
AEMI
E S P A Ñ O L A
2.9. Esquema Fórmula MISEN - Una acción a diferentes niveles
Equilibrio hormonal y defensa inmune
DHEA
Regeneración celular y rejuvenecimiento
Capacidad anti-tumoral
Equilibrar
niveles de
glucocorticoides
DHEA
SNA-HLA I
Estimular
inhibidores
del ciclo celular
(p21, p16)
Evitar
agotamiento
inmune
SNA-HLA II
Modular
descenso del
marcador CD28
en linfocitos T
Activar células NK
Activar
genes supresores
de tumor (p53) /
disminuir
protooncogenes
(c-myc)
Modular
la actividad
de la telomerasa
DMSO
SNA-MISEN
IL-2
ARN
EGF
III.Conclusión
3. Favorecer la regeneración celular y el rejuvenecimiento, evitando la reducción de la actividad de la
telomerasa y otros factores asociados.
4. Aumentar paralelamente la capacidad antitumoral
y antiproliferativa del organismo.
La fórmula MISEN proyecta una acción sobre diferentes
mecanismos fisiopatológicos relacionados con el estrés
crónico y el envejecimiento, teniendo por objetivo:
1. Prevenir el agotamiento inmunitario propio de la
senescencia (ya sea natural o inducido por estrés
crónico) aumentando a su vez la capacidad de defensa inmune.
2. Contrarrestar los efectos proinflamatorios inducidos por diversas causas.
En resumen, su objetivo es proporcionar una mejor respuesta del sistema inmune y un equilibrio entre los procesos de senescencia y proliferación celular.
6
Estrés y envejecimiento: Enfoque de la Micro-Inmunoterapia
Bibliografia
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
9.
10.
11.
12.
13.
14.
15.
16.
17.
18.
19.
20.
21.
22.
23.
24.
25.
26.
Bauer ME, Jeckel CM, Luz C. The role of stress factors during aging of the
immune system. Ann N Y Acad Sci. 2009; 1153:139-52.
Butcher SK, Lord JM. Stress responses and innate immunity: aging as a contributory factor. Aging Cell. 2004; 3(4):151-60.
Correia-Melo C, Hewitt G, Passos JF.Telomeres, oxidative stress and inflammatory factors: partners in cellular senescence? Longev Healthspan. 2014;
3(1):1.
Freund A et al. Inflammatory networks during cellular senescence: causes and
consequences. Trends Mol Med. 2010; 16(5):238-46.
Muntasell A et al. HLA-DR4 molecules in neuroendocrine epithelial cells associate to a heterogeneous repertoire of cytoplasmic and surface self peptides.
J Immunol. 2002; 169(9):5052-60.
Cresswell P. Assembly, transport, and function of MHC class II molecules.
Annu Rev Immunol. 1994; 12:259-93.
Viret C, Janeway Jr CA. MHC and T cell development. Rev Immunogenet.
1999; 1:91-104.
Ting JP, Trowsdale J. Genetic control of MHC class II expression. Cell. 2002;
109:S21-33.
Jin HT et al. Mechanism of T cell exhaustion in a chronic environment. BMB
Rep. 2011; 44(4):217-31.
Parish ST, Wu JE, Effros RB. Sustained CD28 expression delays multiple features of replicative senescence in human CD8 T lymphocytes. J Clin Immunol.
2010; 30(6):798-805.
Weng NP, Akbar AN, Goronzy J. CD28(-) T cells: their role in the age-associated decline of immune function. Trends Immunol. 2009; 30(7):306-12.
Martínez-Llordella M et al. CD28-inducible transcription factor DEC1 is
required for efficient autoreactive CD4+ T cell response. J Exp Med. 2013;
210(8):1603-19.
Appleman LJ et al. CD28 costimulation mediates T cell expansion via IL-2-independent and IL-2-dependent regulation of cell cycle progression. J Immunol.
2000; 164(1):144-51.
Thompson CB et al. CD28 activation pathway regulates the production of
multiple T-cell-derived lymphokines/cytokines. Proc. Natl. Acad. Sci. USA.
1989; 86(4): 1333–1337.
Mariani E et al. Different rates of telomere shortening and telomerase activity
reduction in CD8 T and CD16 NK lymphocytes with ageing. Exp Gerontol.
2003; 38(6):653-9.
Hug N, Lingner J. Telomere length homeostasis. Chromosoma. 2006;
115(6):413-25.
Kaszubowska L. Telomere shortening and ageing of the immune system. J
Physiol Pharmacol. 2008; 59 Suppl 9:169-86.
Xu W et al. Ref-1 protein enhances the IL-2-stimulated telomerase activity. J
Cell Biochem. 2003; 88(6):1120-8.
Kawauchi K, Ihjima K, Yamada O. IL-2 increases human telomerase reverse
transcriptase activity transcriptionally and posttranslationally through phosphatidylinositol 3’-kinase/Akt, heat shock protein 90, and mammalian target
of rapamycin in transformed NK cells. J Immunol. 2005; 174(9):5261-9.
Bazhan SI, Belova OE. Molecular genetic aspects of interferon induction and
antiviral action. Vestn Ross Akad Med Nauk. 1998; (3):18-24.
Srivastava S, Koch LK, Campbell DJ. IFNαR Signaling in Effector but Not
Regulatory T Cells Is Required for Immune Dysregulation during Type I IFNDependent Inflammatory Disease. J Immunol. 2014; 193(6):2733-42.
Lanna A et al. IFN-α inhibits telomerase in human CD8⁺ T cells by both
hTERT downregulation and induction of p38 MAPK signaling. J Immunol.
2013; 191(7):3744-52.
Reed JR et al. Telomere erosion in memory T cells induced by telomerase inhibition at the site of antigenic challenge in vivo. J Exp Med. 2004;
199(10):1433-43.
Lindkvist A et al. Interferon-induced sensitization to apoptosis is associated
with repressed transcriptional activity of the hTERT promoter in multiple
myeloma. Biochem Biophys Res Commun. 2006; 341:1141–1148.
Xu D et al. Interferon alpha down-regulates telomerase reverse transcriptase
and telomerase activity in human malignant and nonmalignant hematopoietic cells. Blood. 2000; 96:4313–4318.
Hornung V et al. Replication-dependent potent IFN-alpha induction in human plasmacytoid dendritic cells by a single-stranded RNA virus. J Immunol.
2004; 173(10):5935-43.
27. Lan T et al. Stabilized immune modulatory RNA compounds as agonists of
Toll-like receptors 7 and 8. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007; 104(34):13750-5.
28. Dai J et al. Regulation of IFN regulatory factor-7 and IFN-alpha production
by enveloped virus and lipopolysaccharide in human plasmacytoid dendritic
cells. J Immunol. 2004; 173(3):1535-48.
29. Seya T, Shingai M, Matsumoto M. Toll-like receptors that sense viral infection.
Uirusu 2004; 54(1):1-8.
30. Heil F et al. Species-specific recognition of single-stranded RNA via toll-like
receptor 7 and 8. Science. 2004; 303(5663):1526-9.
31. Diebold SS et al. Innate antiviral responses by means of TLR7-mediated recognition of single-stranded RNA. Science. 2004; 303(5663):1529-31.
32. Lund JM et al. Recognition of single-stranded RNA viruses by Toll-like receptor 7. Proc Natl Acad Sci U S A. 2004; 101(15):5598-603.
33. Kenyon C. The plasticity of aging: insights from long-lived mutants. Cell.
2005; 120(4):449-60.
34. Antebi A. Genetics of aging in Caenorhabditis elegans. PLoS Genet. 2007;
3(9):1565-71.
35. Smith-Vikos T, Slack FJ. MicroRNAs and their roles in aging. J Cell Sci. 2012;
125(Pt 1):7-17.
36. Campisi J. Cancer, aging and cellular senescence. In Vivo 2000; 14(1):183-8.
37. Buchkovich KJ. Telomeres, telomerase, and the cell cycle. Prog Cell Cycle Res.
1996; 2:187-95.
38. Mikhelson VM, Gamaley IA. Telomere shortening is a sole mechanism of
aging in mammals. Curr Aging Sci. 2012; 5(3):203-8.
39. Maida Y et al. Direct activation of telomerase by EGF through Ets-mediated
transactivation of TERT via MAP kinase signaling pathway. Oncogene 2002;
21(26):4071-9.
40. Salehinejad P et al. Effect of EGF and FGF on the expansion properties of
human umbilical cord mesenchymal cells. In Vitro Cell Dev Biol Anim. 2013;
49(7):515-235.
41. Enwere E et al. Aging results in reduced epidermal growth factor receptor
signaling, diminished olfactory neurogenesis, and deficits in fine olfactory discrimination. J Neurosci. 2004; 24(38):8354-65.
42. Schultz G, Rotatori DS, Clark W. EGF and TGF-alpha in wound healing and
repair. J Cell Biochem. 1991; 45(4):346-52.
43. Yu S, Driscoll M. EGF signaling comes of age: promotion of healthy aging in C.
elegans. Exp Gerontol. 2011; 46(2-3):129-34.
44. Siddiqui S et al. Central role of the EGF receptor in neurometabolic aging. Int
J Endocrinol. 2012; 2012:739428.
45. Zhou J et al. Telomerase reverse transcriptase in the regulation of gene expression. BMB Rep. 2014; 47(1):8-14.
46. Bodnar AG et al. Extension of life-span by introduction of telomerase into
normal human cells. Science. 1998; 279:349–352.
47. Vaziri H, Benchimol S. Reconstitution of telomerase activity in normal human cells leads to elongation of telomeres and extended replicative life span.
Curr Biol. 1998; 8:279–282.
48. Jaskelioff M et al. Telomerase reactivation reverses tissue degeneration in aged
telomerase-deficient mice. Nature. 2011; 469:102–106.
49. Hanahan D, Weinberg RA. Hallmarks of cancer: the next generation. Cell.
2011; 144:646–674.
50. Flores I, Benetti R, Blasco MA. Telomerase regulation and stem cell behaviour.
Curr Opin Cell Biol. 2006; 18:254–260.
51. Feldser DM, Hackett JA, Greider CW. Telomere dysfunction and the initiation
of genome instability. Nat Rev Cancer. 2003; 3:623–627.
52. Shay JW, Bacchetti S. A survey of telomerase activity in human cancer. Eur J
Cancer. 1997; 33:787–791.
53. Belair CD et al. Telomerase activity: a biomarker of cell proliferation, not
malignant transformation. Proc Natl Acad Sci U S A. 1997; 94:13677–13682.
54. Hartwig FP et al. Up-regulating telomerase and tumor suppressors: focusing
on anti-aging interventions at the population level. Aging Dis. 2013; 5(1):1726.
55. Tomás-Loba A et al. Telomerase reverse transcriptase delays aging in cancerresistant mice. Cell 2008; 135(4):609-22.
56. Sigal A, Rotter V. Oncogenic mutations of the p53 tumor suppressor: the
demons of the guardian of the genome. Cancer Res. 2000; 60(24):6788-93.
57. Eckner R. p53-dependent growth arrest and induction of p21: a critical role
for PCAF-mediated histone acetylation. Cell Cycle. 2012; 11(14):2591-2.
7
58. Mendrysa SM, Perry ME. Tumor suppression by p53 without accelerated
aging: just enough of a good thing? Cell Cycle 2006; 5(7):714-7.
59. Rufini A et al. Senescence and aging: the critical roles of p53. Oncogene 2013;
32(43):5129-43.
60. Hasty P, Christy BA. p53 as an intervention target for cancer and aging. Pathobiol Aging Age Relat Dis. 2013; 3.
61. Pal S et al. Chronic inflammation and cancer: potential chemoprevention
through nuclear factor kappa B and p53 mutual antagonism. J Inflamm
(Lond). 2014; 11:23.
62. Hajra L et al. The NF-kappa B signal transduction pathway in aortic endothelial cells is primed for activation in regions predisposed to atherosclerotic
lesion formation. Proc Natl Acad Sci U S A. 2000; 97:9052–9057.
63. Bourcier T, Sukhova G, Libby P. The nuclear factor kappa-B signaling pathway
participates in dysregulation of vascular smooth muscle cells in vitro and in
human atherosclerosis. J Biol Chem. 1997; 272: 15817–15824.
64. Donato AJ et al. Direct evidence of endothelial oxidative stress with aging in
humans: relation to impaired endothelium-dependent dilation and upregulation of nuclear factor-kappaB. Circ Res. 2007; 100:1659–1666.
65. Liu H et al. Redox-dependent transcriptional regulation. Circ Res. 2005;
97:967–974.
66. Ungvari Z, Csiszar A, Kaley G. Vascular inflammation in aging. Herz 2004;
29:733–740.
67. Sanmartín-Suárez C et al. Antioxidant properties of dimethyl sulfoxide and
its viability as a solvent in the evaluation of neuroprotective antioxidants. J
Pharmacol Toxicol Methods. 2011; 63(2):209-15.
68. Man W et al. Dimethyl sulfoxide attenuates hydrogen peroxide-induced
injury in cardiomyocytes via heme oxygenase-1. J Cell Biochem. 2014;
115(6):1159-65.
69. Jacob SW, Herschler R. Pharmacology of DMSO. Cryobiology. 1986; 23(1):1427.
70. Koiri RK, Trigun SK. Dimethyl sulfoxide activates tumor necrosis factorα-p53
mediated apoptosis and down regulates D-fructose-6-phosphate-2-kinase
and lactate dehydrogenase-5 in Dalton’s lymphoma in vivo. Leuk Res. 2011;
35(7):950-6.
71. Menendez D et al. Diverse stresses dramatically alter genome-wide p53 binding and transactivation landscape in human cancer cells. Nucleic Acids Res.
2013; 41(15):7286-301.
72. Darling D et al. DMSO induced modulation of c-myc steady-state RNA levels
in a variety of different cell lines. Oncogene. 1989; 4(2):175-9.
73. Wahlström T, Arsenian Henriksson M. Impact of MYC in regulation of tumor
cell metabolism. Biochim Biophys Acta. 2014; pii: S1874-9399(14)00192-8.
74. Le Maux Chansac B et al. NK cells infiltrating a MHC class I-deficient lung
adenocarcinoma display impaired cytotoxic activity toward autologous tumor
cells associated with altered NK cell-triggering receptors. J Immunol. 2005;
175(9):5790-8.
75. Iannello A et al. p53-dependent chemokine production by senescent tumor
cells supports NKG2D-dependent tumor elimination by natural killer cells. J
Exp Med. 2013; 210(10):2057-69.
76. Xue W et al. Senescence and tumour clearance is triggered by p53 restoration
in murine liver carcinomas. Nature. 2007; 445(7128):656-60.
77. Peña J, Solana R. Histocompatibility antigens and natural killer susceptibility.
Immunol Res. 1992; 11(2):133-40.
78. Matera L et al. Effect of cortisol on the native and in vitro induced non-MHC
restricted cytotoxicity of large granular lymphocytes. J Clin Lab Immunol.
1988; 27(2):77-81.
79. Bauer ME. Stress, glucocorticoids and ageing of the immune system. Stress.
2005; 8(1):69-83.
80. Barrou Z, Charru P, Lidy C. Actions of dehydroepiandrosterone: possible links
with aging. Presse Med. 1996; 25(38):1885-9.
81. Shilkaitis A et al. Dehydroepiandrosterone inhibits the progression phase of
mammary carcinogenesis by inducing cellular senescence via a p16-dependent
but p53-independent mechanism. Breast Cancer Res. 2005; 7(6):R1132-40.
82. Abbas T, Dutta A. p21 in cancer: intricate networks and multiple activities.
Nat Rev Cancer. 2009; 9(6):400-14.
83. Rocco JW, Sidransky D. p16(MTS-1/CDKN2/INK4a) in cancer progression.
Exp Cell Res. 2001; 264(1):42-55.
A S O C I A C I Ó N
AEMI
E S P A Ñ O L A
AEMI©2014
Asociación Española de Micro-Inmunoterapia
Av. Portal de l’Àngel, 36
08002 Barcelona,
España
Tel : 902 365 879
Email : [email protected]
www.3idi.org