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INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS BIOLÓGICAS MAESTRÍA EN CIENCIAS QUIMICOBIOLÓGICAS DEPARTAMENTO DE FISIOLOGÍA EFECTO DE LA ADMINISTRACIÓN SUBCRÓNICA DE LA APAMINA EN RATAS VIEJAS SOBRE LA MORFOLOGÍA NEURONAL DE LA CORTEZA PREFRONTAL, NÚCLEO ACCUMBENS E HIPOCAMPO VENTRAL Tesis PRESENTA ALEJANDRA ROMERO CURIEL DIRECTORES DE TESIS DR. SERGIO ROBERTO ZAMUDIO HERNÁNDEZ DR. GONZALO FLORES ÁLVAREZ -1- -2- ÍNDICE 1. Abreviaturas 4 2. Abstract 5 3. Resumen 6 4. Introducción 7 4.1 Apamina 7 4.2 Efectos sobre canales de K+ dependientes de Ca2+ 8 4.3 Corteza prefrontal 9 4.4 Núcleo Accumbens 10 4.5 Hipocampo 11 5. Justificación 13 6. Hipótesis 14 7. Objetivos 15 7.1 Objetivo general 15 7.2 Objetivos particulares 15 8. Diagrama de trabajo 16 9. Metodología 17 9.1 Modelo animal 17 9.2 Material químico 17 9.3 Actividad locomotora 17 9.4 Estudios morfológicos 18 9.5 10. 9.4.1 Protocolo de la tinción de Golgi-Cox 19 9.4.2 Protocolo de revelado de la tinción de Golgi-Cox 19 9.4.3 Observación y trazado de neuronas contrastadas con la tinción de Golgi-Cox 20 9.4.4 Análisis de las neuronas 21 Análisis estadístico 22 Resultados 23 -3- 10.1 Actividad motora 23 10.2 Resultados morfológicos de las neuronas espinosas medianas del NAcc 24 10.2.1 Resultados morfológicos de la longitud total de las neuronas espinosas medianas del NAcc 24 10.2.2 Resultados morfológicos de la arborización de las neuronas espinosas medianas del NAcc 26 10.2.3 Resultados de la densidad de espinas dendríticas de las neuronas espinosas medianas del NAcc 27 Resultados morfológicos de las neuronas piramidales de la región CA1 del HV 28 10.3.1 Resultados morfológicos de la longitud de las neuronas piramidales de la región CA1 del HV 28 10.3.2 Resultados morfológicos de la arborización de las neuronas piramidales de la región CA1 del HV 29 10.3.3 Resultados de la densidad de espinas dendríticas de las neuronas piramidales de la región CA1 del HV 31 10.3 10.4 Resultados morfológicos de las neuronas piramidales de la CPF 32 10.4.1 Resultados morfológicos de la longitud de las neuronas piramidales de la CPF 32 10.4.2 Resultados morfológicos de la arborización de las neuronas piramidales de la CPF 33 10.4.3 Resultados de la densidad de espinas dendríticas de las neuronas piramidales de la CPF 35 11. Discusión 36 12. Perspectivas 40 13. Conclusiones 41 14. Bibliografía 42 -4- 1. ABREVIATURAS AVT Área ventral tegmental AHP Posthiperpolarización (afterpolarization) BDNF Factor neurotrófico derivado del cerebro CA1 Cuerno de Amón 1 CA3 Cuerno de Amón 3 CPF Corteza prefrontal CREB Proteína de unión al elemento de respuesta del AMP cíclico EEM Error estándar de la media HV Hipocampo ventral LTP Potenciación a largo plazo MSSM Neuronas espinosas medianas NAcc Núcleo accumbens SK Canales de K+ dependientes de Ca2+ SNc Sustancia nigra compacta -5- 2. ABSTRACT Apamin is a neurotoxin extracted from honey bee venom and is a selective blocker of small conductance Ca2+ -activated K+ channels (SK). Several electrophysiological and behavioral studies indicate that apamin may enhance neuron excitability, synaptic plasticity, and long-term potentiation (LTP) in CA1 hippocampal region. However, the dendritic morphological alterations implied in SK apamin-blockade are unknown. In the present work, Golgi-Cox stain protocol and Sholl analysis were used to study the apamin effect on the dendritic morphology of pyramidal neurons from ventral hippocampus and the prefrontal cortex, as well as on the medium spiny neurons from nucleus accumbens. Sprague Dawley of 12 or 18 months of age were divided in three groups each: a control group and two others with different doses of apamin (2 g/kg and 4 /kg) for 2 months, the control groups received saline (NaCl 0.9%) in a similar volume to apamin groups. Motor activity was determined in closed field, and the neuronal morphological analysis was made by Golgi-Cox staining. We found that only pyramidal neurons from ventral hippocampus were altered in rats injected with apamin. Additionally, no changes in locomotor activity were found in these animals. Our research suggest that apamin may increase the dendritic morphology in hippocampus, which could be involved in the neuronal excitability and synaptic plasticity enhancement induced by apamin. -6- 3. RESUMEN La apamina es un péptido antagonista selectivo de los canales de K+ dependientes de Ca2+ (SK) que atraviesa la barrera hematoencefálica. Son canales activados por Ca2+ intracelular que participan en la generación de la posthiperpolarización (AHP) y se encuentran principalmente en estructuras límbicas. En estudios electrofisiológicos el bloqueo farmacológico de estos canales reduce la AHP e incrementa la re-excitabilidad neuronal. En cortes hipocampales de rata, el bloqueo de estos canales facilitan la inducción de la potenciación de largo plazo, por otro lado después de inducir la LTP en la región CA1 del hipocampo hay un incremento en el número de espinas dendríticas lo cual constituye la base estructural de la memoria. En ratón la administración aguda de apamina de 0.2 mg/kg provoca cambios cognitivos, mientras que en rata incrementa la actividad locomotora y mejora el aprendizaje. Sin embargo, no hay reportes que muestren las alteraciones que produciría una administración subcrónica de un bloqueador de canales SK como es la apamina sobre la morfología neuronal, siendo esta una técnica usada para evaluarla. Por lo anterior el objetivo del presente trabajo fue determinar los cambios morfológicos en neuronas piramidales de la corteza prefrontal y de la región CA1 del hipocampo ventral, así como en neuronas espinosas medianas del núcleo accumbens producidos por la administración de apamina por dos meses en ratas con 12 y 18 meses de edad. Se utilizaron ratas de la cepa Sprague Dawley de 12 y 18 meses de edad. Se dividieron en tres grupos, un grupo control y otros dos con diferentes dosis de apamina, (4 g/kg y 2 g/kg) durante 2 meses, al grupo control se les aplicó un volumen similar de solución salina de NaCl al 0.9%. Se determinó la actividad motora ante campo cerrado así como el análisis morfológico neuronal usando la tinción Golgi-Cox. Se determinó que la apamina (4 g/kg) provoca cambios morfológicos en la región del hipocampo incrementando la longitud de las neuronas piramidales así como la expresión de espinas dendríticas, en núcleo accumbens sólo aumento la densidad de espinas mientras que en la CPF no se encontró ninguna alteración morfológica. De acuerdo con los resultados obtenidos, se sugiere que el uso de esta toxina favorece la plasticidad sináptica esto al aumenta las conexiones neuronales principalmente en hipocampo, el cual a su vez se sabe que tiene un importante papel en la formación de la memoria. -7- 4. INTRODUCCIÓN 4.1 APAMINA La apamina es un péptido compuesto por 18 aminoácidos que se encuentra en el veneno de la abeja (Apis mellifera), Figura 1, es un potente antagonista altamente selectivo de los canales de K+ dependientes de Ca2+ (SK) (Hugues y cols., 1982) que atraviesa la barrera hematoencefálica (Habermann, 1984). Cuando se aplica apamina en ratón y rata a altas dosis (1.0 mg/kg), por vía intraperitoneal, puede producir signos de envenenamiento como ataxia, tremores e insuficiencia respiratoria. FJ Van der Staay en 1999, describe que las ratas viejas podrían ser más sensibles a dichos efectos adversos. Figura 1. Se muestra la estructura química de la apamina, péptido el cual está compuesto por 18 aminoácidos. En ratón la administración de apamina en 0.2 mg/kg provoca cambios cognitivos además de inducir la sobreexpresión de genes que se han relacionado con procesos de memoria en condiciones normales principalmente en las regiones CA1 y CA3 del hipocampo (Heurteaux y cols., 1993). En rata, una dosis mayor (0.4 mg/kg) provoca una facilitación en la habituación, lo cual es reconocido como una forma de aprendizaje. Por otro lado, esta neurotoxina provoca un incremento -8- en la actividad locomotora en rata y mejora el aprendizaje en la prueba de reconocimiento de objetos después de ser inyectada (Deschaux y Bizot, 1997). 4.2 EFECTO SOBRE LOS CANALES DE K+ DEPENDIENTES DE CA2+ Los canales SK son independientes de voltaje y se abren ante la concentración intracelular de calcio, están acoplados a la calmodulina (CAM) la cual le permite sensar el calcio intracelular, así uno de los posibles mecanismos que se proponen es que la entrada de calcio a través de los receptores NMDA activa a los canales SK (Luján y cols., 2009). Participan en la generación de la posthiperpolarización (AHP), es decir intervienen en la fase tardía de los potenciales de acción. (Hugues y cols., 1982, Romey, 1984). Existen tres tipos de canales SK, los SK1, SK2 y SK3, que se expresan en el cerebro de los mamíferos (Kohler y cols., 1996), como son la rata, el ratón, el cobayo, el conejo, el perro y el humano (Habermannn y Fischer, 1979). Estos canales se encuentran principalmente en la corteza y en estructuras límbicas, las cuales son áreas involucradas en procesos cognitivos y de humor (Janicki, 1989). En estudios electrofisiológicos, el bloqueo farmacológico de estos canales reduce la AHP e incrementa la re-excitabilidad neuronal (Stackman, 2002). En cortes hipocampales de rata, el bloqueo de estos canales aparentemente facilitan la inducción de la potenciación a largo plazo (LTP) (Behnisch y Reymann, 1998). Se ha propuesto que la inducción de LTP podría ser importante en el tratamiento de los desordenes psiquiátricos y la demencia ya que en estos padecimientos es evidente la disminución de la actividad neuronal (Van der Staay y cols., 1999). Por otro lado, se sabe que en ratas de 26 meses de edad (ratas viejas) los sitios de unión a la apamina (canales de tipo SK) disminuyen en un 55% con respecto a ratas jóvenes de 3 meses de edad, sin mostrar afinidad alterada. Por otro lado, se ha encontrado que existe un decremento en canales tipo SK de -9- alrededor del 30 al 40% en pacientes con Alzheimer (Ikeda y cols. 1991). Las pruebas de memoria y aprendizaje han sido propuestas como modelos animales para el envejecimiento cognitivo (Campbell y cols., 1980, Ingram, 1985). 4.3 CORTEZA PREFRONTAL Es una región asociativa y crucial para las funciones cerebrales complejas (Figura 2) como la memoria, el procesamiento de información externa sensorial y emocional, así como la organización del habla y el planeamiento de acciones (Fuster, 2001). Esta región está ampliamente interconectada con las regiones corticales, además de relacionarse con el tálamo mediante proyecciones aferentes y recibe información procedente de la vía mesocortical dopaminérgica del VTA. La CPF controla la salida de información hacia regiones límbicas como son la amígdala y el hipocampo. Figura 2. Corte coronal del cerebro donde se muestran la corteza prefrontal (en gris oscuro) que corresponde al área Cg1 y Cg3, lamina 7-9 del Paxinos y Watson (1986) y el núcleo accumbens (en gris claro). Las neuronas características de la corteza son de tipo piramidal cuyo soma tiene la forma de una pirámide o de un triángulo isósceles cuyo vértice superior se prolonga hacia la superficie del cerebro como dendrita apical o prolongación; del cuerpo de la célula surgen un número de dendritas basales que se arborizan en la vecindad de la célula las cuales reciben estímulos equitadores tanto de la misma área como de áreas adyacentes. Tanto las dendritas apicales como las basales - 10 - tienen espinas dendríticas y constituyen el sitio de sinapsis glutamatérgica, siendo el número de espinas el número mínimo de contactos sinápticos de la neurona (Spruston 2008) (Figura 3). Figura 3. Fotografía que muestra una neurona piramidal de la capa III de la CPF impregnada con la tinción de Golgi-Cox Las neuronas piramidales de la tercera capa, las cuales se estudiaron en el presente trabajo, reciben proyecciones corticales e información de los axones de las neuronas del tálamo mediodorsal (Giguere y cols., 1988) de modo que pueden modificar el flujo de la transmisión excitadora provenientes de los circuitos talamocortical y corticortical (Lewis y cols., 2003). 4.4 NÚCLEO ACCUMBENS El núcleo accumbens (NAcc) pertenece al estriado ventral (Voorn y cols., 2005), donde participa en la integración de la motivación y la acción motora conocida como interfase límbico-motora (Fernández Espejo, 2000). Lo anterior sugiere que el papel neurobiológico principal del NAcc es transferir información motivacional relevante para que se realicen actos motores. Está formado por dos áreas diferentes tanto en sus conexiones como neuroquímicamente: el core (centro) y la shell (corteza) (Meredith y cols., 1995) (Figura 2). La corteza recibe aferencias glutamatérgicas provenientes del hipocampo y la amígdala, así como aferencias dopaminérgicas del área ventral tegmental (AVT) (Voorn y cols., 2005), mientras - 11 - que el centro recibe aferencias glutamatérgicas de la CMPF (Heidbreder, 2003) y dopaminérgicas de la SNc. Alrededor del 95 % de la población neuronal del NAcc son neuronas espinosas medianas (O´Donnell and Grace, 1993) las cuales son neuronas de proyección que, como su nombre lo indica son de tamaño mediano (MSSN: medium size spiny neurons) (Figura 4). Figura 4. Microfotografía que muestra una neurona espinosa mediana del NAcc teñida con la tinción de Golgi-Cox. 4.5 HIPOCAMPO La formación hipocampal se encuentra en el lóbulo temporal, incluye el complejo cunicular, el hipocampo propiamente dicho y la circunvolución dentada (Figura 5). Figura 5. Corte coronal del cerebro, se muestran el hipocampo ventral (en oscuro), tomadas del atlas de Paxinos y Watson (1986). - 12 - Se puede dividir en 3 regiones separadas (CA1, CA2, CA3) basándose en el tamaño y las conexiones de las células piramidales que residen en ellas (Kandel, 2000) (Figura 6). Las principales aferencias y eferencias neocorticales se conducen a través de la corteza entorrinal las cuales transmiten información hacia las células granulosas de la circunvolución dentada mediante la vía perforante (formada por un haz de axones), los axones de estas neuronas hacen contacto con las espinas de las neuronas piramidales de la región CA3 conocida como la vía de las fibras musgosas, y por medio de la vía colateral de Schaffer, las células de CA3 contactan con las neuronas de la región CA1. Estas neuronas proyectan fuera de la formación hipocampal a través del subículo. Figura 6. Fotografía de neurona piramidal del hipocampo con tinción Golgi-Cox. El hipocampo está relacionado con la adquisición, retención y recuperación del conocimiento. La estimulación de alta frecuencia en la vía perforante produce incrementos estables y duraderos en la magnitud de la respuesta postsináptica, lo cual se conoce como potenciación a largo plazo (LTP). La potenciación a largo plazo es un mecanismo de plasticidad sináptica, lo cual permite que las sinapsis se modifiquen de tal forma que la memoria a corto plazo se vuelva memoria de largo plazo. Con todo esto se puede considerar a la LTP como un mecanismo celular del aprendizaje y la memoria. - 13 - 5. JUSTIFICACIÓN Durante los potenciales postsinápticos excitadores, el incremento en la concentración de Ca2+ activa los canales SK en la espina dendrítica, y la remoción del Mg2+ en los receptores de tipo NMDA, lo cual incrementa el flujo de Ca2+, favoreciendo la LTP. Así, se considera que los SK participan en la regulación de la plasticidad sináptica y el bloqueo de los canales en este caso por la apamina produce un decremento en el tiempo de posthiperpolarización favoreciendo la plasticidad sináptica en cortes de hipocampo (Stackman, 2002). El hipocampo es asociado con la memoria a largo plazo y la CPF se asocia con la memoria cognitiva, ambos procesos son afectados durante el curso del envejecimiento (Peterson y cols., 2001). La LTP incrementa la eficacia sináptica en el hipocampo, lo cual es un modelo importante para el estudio de los mecanismos de la plasticidad neuronal, la reorganización de los circuitos neuronales, el aprendizaje y la memoria. Congruente con esto, se ha encontrado que después de inducir la LTP en la región CA1 del hipocampo hay un incremento en el número de espinas dendríticas (Engert and Bonhoeffer, 1999), lo cual constituye la base estructural de la memoria. Por otro lado, se sabe que la mayoría de las sinapsis excitadoras en el cerebro se localizan en las espinas dendríticas llevándose a cabo reacciones bioquímicas que favorecen la activación de la sinapsis. Por lo anterior, si los canales SK son bloqueados favoreciendo la LTP, se podría esperar un cambio en la población de espinas dendríticas sobretodo en estructuras relacionadas con el aprendizaje como es el hipocampo. Sin embargo, no hay reportes que muestren los posibles cambios morfológicos que produciría la administración subcrónica de apamina sobre esta región así como otras regiones cerebrales relacionadas. - 14 - 6. HIPÓTESIS La administración subcrónica de apamina en ratas de 12 y 18 meses de edad produce cambios morfológicos en las neuronas de algunas regiones cerebrales relacionadas con los procesos de memoria. - 15 - 7. OBJETIVOS 7.1 OBJETIVO GENERAL Determinar los cambios morfológicos producidos por la administración subcrónica de apamina en neuronas piramidales de la corteza prefrontal y de la región CA1 del hipocampo ventral, así como en neuronas espinosas medianas del núcleo accumbens de ratas. 7.2 OBJETIVOS PARTICULARES Se administró apamina durante dos meses a ratas de 12 y 18 meses de edad para determinar: Cambios en la actividad motora. Alteraciones en la arborización de las neuronas piramidales de la tercera capa de la corteza prefrontal y de la región CA1 del hipocampo ventral, y en neuronas espinosas medianas del núcleo accumbens. Cambios en la densidad de espinas dendríticas de las neuronas piramidales de la tercera capa de la corteza prefrontal, de la región CA1 del hipocampo ventral y de las espinosas medianas del núcleo accumbens. - 16 - 8. DIAGRAMA DE TRABAJO Ratas macho Sprague-Dawley 12 meses de edad Grupo Control Administración subcutánea de solución salina (NaCl) 0.9 % durante 2 meses Ratas macho Sprague-Dawley 18 meses de edad Grupos Experimentales Administración subcutánea de apamina 2 g/kg/día durante 2 meses Administración subcutánea de apamina 4 g/kg/día durante 2 meses Actividad locomotora a los 14 y 20 meses respectivamente Sacrificio de animales Obtención cerebros control Obtención cerebros experimentales Tinción de Golgi-Cox Cortes de 200 m Análisis morfológico Análisis estadístico - 17 - 9. METODOLOGÍA 9.1 MODELO ANIMAL Se utilizaron ratas de la cepa Sprague-Dawley de 12 y 18 meses de edad y con un peso de entre 450-500 gramos, del bioterio central de la BUAP “Claude Bernard”, bajo condiciones ambientales de temperatura y humedad controladas (18-23 ºC y 50-60 % respectivamente), con ciclo de luz oscuridad de 12 horas, encendiendo las luces a las 8:00 horas. Mantenidas en cajas de acrílico transparente de 50x35x18 cm. Con libre acceso a alimento y agua. Se utilizaron ratas de 12 y 18 meses de edad. El grupo de ratas de 12 meses de edad se dividió en tres: uno con administración diaria de apamina (2 g/kg de peso), otro con una dosis superior de la neurotóxina (4 g/kg de peso) y el grupo control (con un volumen similar de vehículo (solución salina de NaCl al 0.9 %)); se hizo lo mismo con los animales de 18 meses, quedando seis grupos con una n=5 cada uno de ellos. 9.2 MATERIAL QUÍMICO Apamina de veneno de abeja, marca Sigma-Aldrich, pureza 99.7 %, disuelto en solución de NaCl al 0.9 %. 9.3 ACTIVIDAD LOCOMOTORA Al finalizar el tratamiento con apamina (2 g/kg ó 4 g/kg) a los 14 ó 20 meses de edad junto con sus controles se les evaluó su actividad motora por un lapso de dos horas, se utilizaron cajas de acrílico de 44 cm de largo por 22 cm ancho y 22 cm de altura, estas cajas tienen acoplados ocho fotodiodos a lo largo de su eje - 18 - longitudinal de modo que cuando la rata tiene movimiento, el haz de luz infrarroja se corta, activando un contador, de esta forma se obtuvieron el número de movimientos por unidad de tiempo. La actividad motora de los animales se determinó bajo control de luz y temperatura (21 a 24 º C) a las 10:00 am. 9.4 ESTUDIOS MORFOLÓGICOS Al término de las pruebas de actividad locomotora, las ratas se sacrificaron y el cerebro se utilizó para el análisis morfológico de las neuronas. Para lo cual los cerebros fueron sometidos a la tinción de Golgi-Cox. 9.4.1 Protocolo de la tinción de Golgi-Cox. o Se anestesió al animal con Pentobarbital sódico a una dosis de 65 mg/kg, realizando después una incisión toráxica para exponer el corazón (Figura 7A). o Se perfundió el corazón por el ventrículo izquierdo con solución salina de NaCl al 0.9%, previo corte de la aurícula derecha, con la finalidad de eliminar los eritrocitos del tejido cerebral (Figura 7B). A B Figura 7. A) Se anestesió la rata con pentobarbital sódico. B) Perfusión intraventricular de la rata con solución salina. - 19 - o Se removieron los cerebros y se colocaron en 20 ml de la solución de Golgi-Cox almacenándolos durante 20 días en obscuridad. Después de este tiempo se reemplazó la solución de Golgi-Cox por una solución de sacarosa al 30%, siendo almacenados en oscuridad por 2 días antes de cortar. o Se montó el cerebro en la platina del vibrotomo y fue sumergido en solución de sacarosa al 6%, una vez colocado en la cámara del vibrotomo, con suficiente solución de sacarosa para cubrir el tejido y la navaja. o Se cortó el tejido haciendo rebanadas de 200 µm de grosor. o Éstas fueron montadas en laminillas gelatinizadas al 2 %, presionándolas uniformemente con papel filtro (Figura 8). o Se conservaron las laminillas en una cámara húmeda por toda la noche. o Se procedió al día siguiente a revelar la tinción. Figura 8. Montaje de los cortes en las laminillas gelatinizadas. 9.4.2 Protocolo de revelado de la tinción de Golgi-Cox. Todo el procedimiento se realizó en total oscuridad. o Inicialmente se realizó un lavado en agua destilada durante un minuto. o Se mantuvo durante 30 minutos sumergidas las laminillas en hidróxido de amonio o Se realizó un lavado con agua destilada durante un minuto. o Después se sumergieron durante 30 minutos en fijador rápido de Kodak para película fotográfica. Se utilizó una dilución 1:2 con agua destilada. o Se volvieron a lavar con agua destilada durante un minuto. - 20 - o Se deshidrató con concentraciones crecientes de etanol: 1 minuto con alcohol al 75 % 1 minuto con alcohol al 95 % 10 minutos con alcohol al 100 % 15 minutos con xileno. o Se montaron los cubreobjetos con resina sintética en los cortes ya revelados. o Los cortes fueron conservados en oscuridad para su secado y posterior observación. 9.4.3 Observación y trazado de neuronas teñidas contrastadas mediante la tinción de Golgi-Cox. Una vez localizadas las áreas de interés, en este caso la CPF, NAcc y HV, se procedió a identificar las neuronas piramidales de la capa III para la CPF, las neuronas espinosas medianas para el NAcc y las neuronas piramidales de la región CA1 del HV, se dibujaron mediante su observación a 40X utilizando un microscopio óptico marca Leica modelo DMSL acoplado a una cámara lúcida marca Leica. Las espinas dendríticas de estas neuronas se dibujaron en el mismo equipo con un objetivo de 100X y aceite de inmersión (Figura 9). Figura 9. Cámara lucida acoplada a un microscopio de luz blanca, mediante el cual se dibujan las neuronas de la región de interés (40X) y las espinas dendríticas en la porción distal, usando una amplificación de 100X (modificado de Kolb, 1998). - 21 - 9.4.4 Análisis de las neuronas De cada rata se dibujaron con ayuda de una cámara lúcida (1x) y un objetivo de 40X, 5 neuronas de cada hemisferio y región, obteniendo 10 neuronas de cada una de las zonas de interés por cerebro, para el análisis de las espinas se eligió una dendrita distal de la neurona que previamente había sido dibujada, utilizando el objetivo de 100X. Una vez realizado el dibujo se analizaron por medio de la técnica de análisis de Sholl, que consiste en lo siguiente: (Sholl, 1953) se pintaron de diferentes colores las dendritas de acuerdo con su grado de ramificación, iniciando a partir del soma siendo estas de primer orden hasta que se ramifica, estas serán de segundo orden y así sucesivamente hasta n orden. Después de esto se colocó una plantilla transparente que cuenta con una serie de círculos concéntricos en los cuales el círculo del centro debe coincidir con el soma y de esta manera determinar el número de dendritas que interceptan cada uno de los círculos, esto nos permite evaluar el número total de ramificaciones dendríticas el cual será contado a partir de órdenes de bifurcación comenzado del cuerpo celular hacia la punta de las dendritas (Coleman and Riesen, 1968), y la longitud dendrítica la cual fue estimada contando el número de intersecciones de las dendritas en anillos concéntricos que representan 10 m (Figura 10). Figura 10. Muestra el dibujo de una neurona piramidal concéntricos para realizar el análisis de Sholl. - 22 - acoplado a la laminilla de círculos Para obtener la densidad de las espinas dendríticas, se buscó la dendrita más distal de la neurona antes dibujada. Con el calcado de la dendrita con sus respectivas espinas, se marca la prolongación de la dendrita cada 1.6 cm que equivalen a 10 m, para la cámara lucida utilizada (Leica). Se contaron las espinas que hay en cada 1.6 cm. 9.5 ANÁLISIS ESTADÍSTICO Todas las pruebas estadísticas se realizaron usando el programa GraphPad Prism 4.0. Los datos de longitud total dendrítica, orden mayor de ramificación, arborización y densidad de espinas dendríticas se analizaron por medio de una análisis de varianza (ANOVA) de dos vías, cuando fue pertinente, se aplicó una prueba Post-hoc de Bonferroni para las comparaciones múltiples. Se consideró significativa la diferencia cuando p<0.05. - 23 - 10. RESULTADOS 10.1 ACTIVIDAD LOCOMOTORA La actividad motora se realizó después de dos meses de administración de la apamina a los 14 y 20 meses de edad de cada grupo de acuerdo con el protocolo antes mencionado, obteniéndose la suma acumulada de la actividad de cada grupo; donde los animales de 14 meses tratados con apamina no mostraron cambios motores con respecto a su grupo control (Figura 11). Figura 11. Gráfica de actividad motora acumulada en campo cerrado de ratas con 14 meses de edad. Se muestra la suma acumulada de los movimientos que realizaron el grupo control y los grupos tratados con apamina (2 y 4 µg/kg) durante 120 minutos en registros de 10 min. De igual manera la actividad motora en animales de 20 meses no muestra cambios entre los tres grupos estudiados (Figura 12), sugiriéndose que la apamina no altera la actividad motriz independientemente de la dosis y la edad a la que sea administrada, al menos bajo las condiciones establecidas en este trabajo. - 24 - Figura 12. Gráfica de actividad motora acumulada en campo cerrado de ratas de 20 meses. Se muestra la suma acumulada de los movimientos que realizaron el grupo control y los grupos tratados con apamina (2 y 4 µg/kg) durante 120 minutos. Sin mostrar cambios motores. 10.2 RESULTADOS MORFOLÓGICOS DE LAS NEURONAS ESPINOSAS MEDIANAS DEL NAcc 10.2.1 Resultados morfológicos de la longitud total de las neuronas espinosas medianas del NAcc Los datos obtenidos (n=5) muestran que la longitud dendrítica total de las neuronas espinosas medianas del NAcc tanto en los animales de 14 como de 20 meses de edad (Figura 13), no fue alterada por la administración de apamina (Figura 14). - 25 - A) B) C) Figura 13. Fotografías de neuronas del NAcc. A) Fotografía de neurona espinosa mediana de NAcc con tinción Golgi tomada con microscopio óptico acoplada a cámara lúcida con objetivo de 20X del grupo de animales tratados con dosis baja de apamina. B) Imagen de las espinas dendríticas de cerebro control con objetivo de 100X. C) Fotografía de espina dendrítica de cerebro tratado con dosis alta de apamina (4 µg/kg). Figura 14. Gráfico que muestra la longitud dendrítica total (media ± EEM) de las neuronas espinosas medianas del NAcc de los animales de 14 y 20 meses de edad con sus respectivos grupos controles, donde el uso de apamina no modificó la longitud dendrítica total de dichas neuronas. - 26 - 10.2.2 Resultados morfológicos de la arborización de las neuronas espinosas medianas del NAcc De la misma manera usando el análisis de Sholl se mostró que el tratamiento con apamina no alteró la arborización de las neuronas espinosas medianas así como la longitud dendrítica con respecto al orden de ramificación tanto a los 14 como a los 20 meses (Figura 15). A C B D Figura 15. A) Gráfica que muestra la arborización de las neuronas espinosas medianas del NAcc a los 14 meses. B) Gráfica de análisis de Sholl en animales con 20 meses de edad, cada punto representa la media ± EEM. C) Gráfica que muestra la longitud de las dendritas del NAcc con respecto al número de orden (n=5 por grupo) de animales de 14 meses. D) Gráfica que muestra la longitud de las neuronas espinosas medianas con respecto al orden de ramificación de animales con 20 meses de edad. - 27 - 10.2.3 Resultados morfológicos de la densidad de espinas dendríticas de las neuronas espinosas medianas del NAcc El análisis de la densidad de espinas dendríticas de NAcc mostró que la administración subcrónica de la dosis alta de la toxina (4 µg/kg) aumentó la expresión de espinas en animales de 14 meses de edad (*p<0.05 ANOVA) con respecto a su grupo control, no así en animales de 20 meses de edad (Figura 16). Figura 16. Gráfica que muestra la densidad de espinas dendríticas distales de las neuronas espinosas medianas del NAcc de animales de 14 meses de edad (n=5 por grupo). Donde la administración de 4 µg/kg de peso de apamina incrementa el número de espinas con respecto a su grupo control (*p<0.05, ANOVA de dos vías). Mientras que en animales más viejos este efecto no se observa. - 28 - 10.3 RESULTADOS MORFOLÓGICOS DE LAS NEURONAS PIRAMIDALES DEL HV 10.3.1 Resultados morfológicos de la longitud dendrítica de las neuronas piramidales de la región CA1 del HV Los resultados obtenidos a través del análisis de Sholl, nos muestran que la longitud total de las dendritas de las neuronas piramidales de la región CA1 (Figura 17) del hipocampo ventral de los grupos tratados con apamina a los 14 meses es mayor con respecto a su grupo control *p<0.05 (ANOVA de dos vías prueba Post-hoc de Bonferroni) (Figura 18). Sin embargo, esto no se observa cuando se evaluaron los animales de 20 meses de edad. A B C Figura 17. Fotografías de HV. A) Fotografía de neurona piramidal de la región CA1 del hipocampo ventral con tinción Golgi con objetivo de 20X del grupo de animales tratados con dosis alta (4 µg/kg) de apamina de rata de 14 meses. B) Imagen de las espinas dendríticas de cerebro control con objetivo de 100X. C) Fotografía de las espinas dendríticas de cerebro tratado con dosis alta de apamina - 29 - Figura 18. Gráfica que muestra la longitud dendrítica total de las neuronas piramidales de la región CA1 del hipocampo ventral en animales de 14 y 20 meses por separado (n=5 por grupo), donde la administración de apamina (2 y 4 µg/kg) en animales de 14 meses “middle aged” incrementa la longitud dendrítica total con respecto al control *p<0.05 (ANOVA de dos vías, prueba Post-hoc de Bonferroni) mientras que ésta no es alterada en animales más viejos. 10.3.2 Resultados morfológicos de la arborización de las neuronas piramidales de la región CA1 del hipocampo ventral Usando el análisis de Sholl se mostró que el tratamiento con apamina no alteró la arborización de las neuronas piramidales de la región CA1 del hipocampo ventral (Figura 19). Por otro lado al determinar la longitud dendrítica con respecto al orden de ramificación se encontró que hay una tendencia de incremento en los animales de 14 meses, sin embargo estos cambios no son significativos (Figura 20). - 30 - A B Figura 19. Grafico del análisis de Sholl. A) Arborización de neuronas piramidales de la región CA1 del hipocampo ventral (n=5 por grupo) sin algún cambio provocado por el uso de apamina. B) Arborización neuronal del HV en animales de 20 meses de edad. A B Figura 20 A) Muestra la longitud de las neuronas piramidales de la región CA1 del hipocampo ventral con respecto al número de orden, cada punto representa la media ± EEM de animales con 14 meses. B) Gráfica de longitud de neuronas piramidales del HV con respecto al número de orden en ratas de 20 meses (n = 5 por grupo). - 31 - 10.3.3 Resultados morfológicos de la densidad de espinas dendríticas de las neuronas piramidales de la región CA1 del hipocampo ventral La densidad de espinas dendríticas distales se obtuvo de acuerdo al protocolo antes mencionado mostrando un claro efecto de la apamina sobre la expresión de espinas, la administración subcrónica de la toxina (4 µg/kg) aumentó la expresión de espinas en ratas de 14 meses (**p<0.01 ANOVA de dos vías Post-hoc de Bonferroni) con respecto al grupo control pero este efecto no se observó en animales de 20 meses de edad (Figura 21). Figura 21. Gráfica que muestra la densidad de espinas dendríticas distales de las neuronas piramidales del HV de animales de 14 meses de edad (n=5 por grupo), donde la administración de apamina altera la expresión de espinas de manera dosis dependiente, siendo el grupo tratado con 4 µg/kg de apamina el que presenta mayor densidad con un valor de **p<0.01 con respecto al control. - 32 - 10.4 RESULTADOS MORFOLÓGICOS DE LAS NEURONAS PIRAMIDALES DE LA CPF 10.4.1 Resultados morfológicos de la longitud dendrítica de las neuronas piramidales de la CPF Usando el análisis de Sholl se determinó que la longitud dendrítica total de las neuronas piramidales de la tercera capa de la CPF no fue alterada por la administración de apamina tanto para los animales de 14 como para los de 20 meses de edad (Figura 22). Figura 22. Gráfica que muestra la longitud dendrítica (n=5 por grupo) de neuronas piramidales de CPF de ratas de 14 y 20 meses de edad, donde la administración de la toxina no modificó la longitud dendrítica total. - 33 - 10.4.2 Resultados morfológicos de la arborización de las neuronas piramidales de la CPF Los datos obtenidos muestran que la arborización dendrítica de las neuronas piramidales de la CPF no fue alterada por la administración de apamina independiente de la edad de los sujetos de estudio (Figura 23), de igual manera la longitud dendrítica con respecto al orden de ramificación no presentan cambios con respecto a sus respectivos grupos controles (Figura 24). A B C Figura 23. A) Fotografía de neurona piramidal de la CPF de rata de 14 meses de edad con tinción de Golgi. B) Fotografía de espinas dendrítica de CPF con tinción de Golgi del grupo control. C. Fotografía de espinas dendríticas de CPF del grupo administrado con 4 µg/kg de apamina. - 34 - A B C D Figura 24. A) Gráfica que muestra la arborización de neuronas piramidales de la CPF de ratas de 14 meses sin presentar alteraciones por la administración durante dos meses con apamina. B) Arborización de neuronas de la tercera capa de la CPF de ratas de 20 meses de edad (n=5 por grupo). C) Imagen de la longitud dendrítica con respecto al orden de ramificación sin cambios entre los tres grupos analizados. Cada punto representa la media ± EEM. D) Gráfica de la longitud dendrítica con respecto al orden mayor de ramificación sin mostrar alteraciones entre los grupos analizados por el efecto de la toxina. - 35 - 10.4.3 Resultados morfológicos de la densidad de espinas dendríticas de las neuronas piramidales de la CPF La densidad de espinas dendríticas de las neuronas piramidales de la CPF usando en análisis de Sholl mostró que la administración subcrónica de la toxina no alteró la expresión de espinas tanto en animales de 14 meses como en animales de 20 meses de edad (Figura 25). Figura 25. Gráfica de densidad de espinas dendríticas de la CPF de ratas de 14 y 20 meses sin presentar cambios por la administración subcrónica de la toxina (n=5 por grupo). - 36 - 11. DISCUSIÓN El objetivo principal del presente trabajo fue determinar si el uso de una toxina que altera la excitabilidad neuronal a través de acortar la posthiperpolarización como es la apamina, podría alterar la morfología de algunas regiones cerebrales en animales viejos, donde se sugiere que dicho proceso podría ser importante en el deterioro de las funciones cognitivas propias del proceso de envejecimiento. De acuerdo con los datos obtenidos, la administración de la apamina produjo cambios morfológicos sólo en las neuronas del hipocampo ventral, donde el incremento en la longitud dendrítica total fue estadísticamente significativo con las dosis de 2 y 4 µg/kg de peso, evaluándose en animales de 14 meses de edad; sin embargo, este comportamiento no se mantuvo cuando se evaluó en animales de 20 meses de edad, sugiriéndose que a esa edad la acción de la apamina sobre el bloqueo de los canales SK puede no afectar la morfología neuronal del hipocampo ventral. Este efecto no se observa en la arborización dendrítica la cual no sufrió alteraciones por la acción de la apamina independientemente de la dosis usada y de la edad de los animales. No obstante la expresión de espinas dendríticas si fue estimulada por la acción de la toxina siendo la dosis de 4 µg/kg la que provocó cambios evidentes con respecto al grupo control. El incremento de longitud total dendrítica en neuronas piramidales del hipocampo ventral acompañado de una mayor expresión de espinas dendríticas nos sugiere que el bloqueo subcrónico de canales SK favorece la plasticidad sináptica, es decir, es probable que estos animales tengan una mejor comunicación neuronal en el hipocampo. Nuestros datos apoyan reportes previos donde la administración aguda de apamina revierte el déficit de navegación en ratas con lesión en el hipocampo en la prueba de Morris (Van der Stay, 1999; Stackman, 2002), así como mejorar el aprendizaje en la prueba de caja de Skinner (Messier, 1991). - 37 - Por otro lado sólo la dosis alta de apamina provocó un cambio en la densidad de espinas dendríticas de NAcc con respecto al grupo control en animales de 14 meses, pero estos cambios no se observaron en los animales de 20 meses. La longitud dendrítica no presenta alteración entre los grupos estudiados, así como la arborización neuronal independientemente de la edad y la dosis empleada. Es probable que el poco efecto observado en las neuronas del núcleo accumbens sea porque estos presentan una mayor expresión de canales SK3 los cuales son menos sensibles a la apamina que los canales SK2 (IC50: 2 nmol/L para SK3 (Ishii y cols., 1997) y 63 pmol/L para SK2 (Köhler y cols., 1996)), siendo estos últimos los predominantes en el hipocampo. La CPF no presentó ningún cambio morfológico, en este momento es difícil saber por qué esta región parece ser insensible al bloqueo de canales SK, pero no se descarta que la acción de la apamina se vea reflejada en cambios morfológicos en otras regiones del cerebro. El deterioro de la transmisión y la plasticidad sináptica han sido reportadas en varias regiones cerebrales, siendo el hipocampo una de las regiones más estudiadas por ser altamente susceptible al envejecimiento y por estar relacionada con la memoria. Así, Foster en 1997 describe que la pérdida de la memoria se ve afectada por el decline de las sinapsis hipocampales básicamente por alteraciones en la procesos de plasticidad sináptica dependientes de calcio, de ahí la importancia del estudio de procesos que son afectados por la presencia de Ca 2+ intracelular como es la posthiperpolarización. Por otro lado, en estudios previos se ha determinado que los factores neurotróficos podrían controlar la plasticidad cortical en procesos de aprendizaje y memoria así como en la regulación de circuitos neuronales durante el desarrollo; sin embargo, la participación de estos factores podrían continuar a lo largo de la vida, así se ha reportado que el BDNF disminuye considerablemente durante el proceso de envejecimiento (Shetty y cols.,2004), esto altera la actividad de otros - 38 - elementos como es la PKA, la expresión del neuropéptido Y y la p-CREB (Hattiangady y cols., 2005). Cuando se administra BDNF en cortes de hipocampo se inhibe la AHP mediada por canales SK (Kramar y cols., 2004), sugiriéndose que sea a través de la protein kinasa A (Gallo y cols., 2002), además ante la inducción de LTP los canales SK2 son interiorizados siendo un proceso dependiente de PKA esto en espinas de neuronas de hipocampo de la región CA1 (Lin y cols., 2008). Con lo anterior se sugiere que el BDNF podría facilitar la inducción de LTP inhibiendo indirectamente a los SK. Así, podría esperarse que en el proceso de envejecimiento donde la cantidad de BDNF disminuye al igual que los efectos que ejerce sobre las neuronas se podría esperar una mayor actividad de los canales SK principalmente alterando la posthiperpolarización la cual esta aumentada en mamíferos viejos (Moyer 1992) ver en articulo de Foster 1998, siendo estos un buen modelo para estudiar el efecto del bloqueo de estos canales. Se ha descrito que la neurogénesis en el giro dentado de rata disminuye al iniciar la segunda etapa de la vida de este organismo “middle-aged” (Kuhn y cols. 1996), lo cual podría al menos en parte ser por el temprano declive en la concentración de BDNF en hipocampo, además, se ha demostrado que este estimula la neurogénesis en el dentado (Lee y cols., 2002), el aprendizaje y la memoria (Falkenberg y cols., 1992). Un dato interesante dado por Kuhn y cols. (1996) es que existe una marcada disminución de la neurogénesis en el giro dentado en animales de “middle age” con respecto a animales jóvenes, sin embargo este comportamiento no es continuo ya que no hay cambios entre animales viejos con respecto a los “middle-aged” sugiriendo que las alteraciones en el cerebro podrían darse desde una “edad temprana” y que las alteraciones que se llegan a observar en cerebros viejos podrían estar dadas por alteraciones previas. De ahí la importancia de evaluar la morfología en animales de 12 meses, en donde después de 2 meses de administración de apamina el uso de la toxina en estos animales de “middle aged” provocó una mayor expresión de espinas en neuronas espinosas medianas del NAcc y en las neuronas piramidales de la - 39 - región CA1 del hipocampo ventral, así como incrementó la longitud dendrítica de estas últimas, sugiriendo que se favoreció la comunicación neuronal, no así en animales de 20 meses de edad, donde a pesar de la administración de la toxina no se alteró algún parámetro morfológico proponiéndose que el efecto de la apamina no se observa si el cerebro sobre el que actúa es de mayor edad. - 40 - 12. PERSPECTIVAS A pesar de que el uso de la apamina no alteró morfológicamente todas las regiones estudiadas en el presente trabajo, no se descarta que pueda modificar otras regiones cerebrales, debido a que la mayoría de los antecedentes plantean un efecto sobre memoria, uno de los pasos a seguir podría ser un mayor estudio sobre otras regiones del hipocampo como es el giro dentado. Además debido a que en este proyecto es novedoso en el uso subrcrónico de la apamina, no se descarta que si se administra en animales menos viejos o por un periodo más largo pueda modificar la morfología neuronal de otras áreas como es la CPF y el NAcc. El objetivo fue determinar las alteraciones morfológicas, pero usando este protocolo se pueden realizar estudios electrofisiológicos para determinar la funcionalidad de las neuronas hipocampales como evaluar si el uso subcrónico de la apamina acorta el periodo de posthiperpolarización, así como si aumenta la excitabilidad neuronal ya que como se determinó, fueron las células más sensibles a la apamina. Por otro lado se pueden realizar pruebas de aprendizaje y memoria como las prueba de la caja de Skinner o la prueba de aprendizaje espacial en el laberinto acuático de Morris para verificar si los cambios aquí observados son acompañados de una optimización de funciones cognitivas. - 41 - 13. CONCLUSIONES El uso de la apamina (2 ó 4 µg/kg de peso) durante dos meses de edad en animales de 14 y 20 meses de edad no altera la actividad motora. La administración subcrónica de apamina modifica la morfología neuronal de las neuronas piramidales de la región CA1 del hipocampo ventral aumentando la longitud dendrítica neuronal y la densidad de espinas dendríticas. El uso de la apamina durante dos meses en ratas de 14 y 20 meses no modifica ni la morfología neuronal ni la expresión de espinas dendríticas de las neuronas piramidales de la tercera capa de la CPF. La administración de apamina incrementa la expresión de espinas dendríticas de las neuronas espinosas medianas del NAcc. - 42 - 14. BIBLIOGRAFÍA Behnisch T and Reymann KG. Inhibition of apamin-sensitive calcium dependent potassium channels facilitate the induction of long-term potentiation in the CA1 region of the rat hippocampus in vitro. Neurosci Lett 1998, 253:91-94 Coleman and Riesen, 1968 Deschaux O, Bizot JC. 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