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ATLAS DE PATOLOGÍA
DE LA INCUBACIÓN
DEL POLLO
Carlos Mario Plano - Ana María Di Matteo©
SIGUIENTE
AUTORES
Carlos Mario Plano: Médico veterinario
Master en Negocios con Orientación en
Agribusiness. Autor del libro “Aves comerciales y su medio ambiente”. Gerente de
producción de la división Buenos Aires de
la empresa: Granja Tres Arroyos S.A.
Comercial y Agropecuaria.
Ana María Di Matteo: Médica veterinaria.
Docente Autorizada de la U.B.A. Jefe de
Trabajos Prácticos de la Cátedra de
Histología y Embriología de la Facultad de
Ciencias Veterinarias de la U.B.A.
Investigadora de apoyo de la Secretaría de
Ciencia y Técnica.
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PROLOGO
Conscientes de la importancia de mejorar cada día más la productividad avícola, y con el ánimo de compartir la experiencia de los
autores en el terreno del desarrollo embrionario y del diagnóstico de la
patología de la incubación, es que se publica esta obra.
Se ha buscado mostrar en fotografías toda la información recogida en las prácticas de embriodiagnosis de los últimos diez años.
Los autores quieren agradecer a la empresa Granja Tres Arroyos
S.A., de Argentina y especialmente a su presidente el Dr. Joaquín De
Grazia por el apoyo y colaboración brindados para la publicación de
esta obra.
Además los autores dedican esta obra a sus padres e hijas.
Buenos Aires, abril de 2001.
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ÍNDICE
Página
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Introducción
Capítulo 1: Embriodiagnosis
Embriodiagnosis
Tabla N°1: Planilla
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Capítulo 2: Clasificación por categorías
Clasificación por categorías
Claves para la embriodiagnosis
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Capítulo 3: Fórmulas de cálculo
Método simple
Método ponderado
Tabla N° 2: Comparación de ambos índices
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Capítulo 4: Valores normales
Valores normales
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Capítulo 5: Causas de desvío de los valores normales
Huevos infértiles
Huevos cascados
Gravedad específica
Huevos contaminados
Mortalidad embrionaria en Fase I
Mortalidad embrionaria en Fase II
Mortalidad embrionaria en Fase III
Picados no nacidos (PNN)
Malformaciones
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Capítulo 6: Patología perinatal
Patología perinatal, pollitos de descarte
Pollitos con el ombligo congestivo
Pollitos con el ombligo mal cicatrizado
Pollitos con botones negros en el ombligo
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Pollitos con el ombligo sin cerrar
Pollitos con onfalitis
Pollitos pegajosos
Pollitos secos, con cascarones de huevo pegado
Pollitos muertos en las bandejas de las nacedoras,
deshidratados y de tamaño menor al normal
Pollitos que jadean y hay heces frescas
en las bandejas de la nacedora
Pollitos que nacen con defectos
Pollitos despatarrados
Pollitos con signos nerviosos
Pollitos con hernia cerebral
Pollitos que no se pueden parar
Pollitos deshidratados
Pollitos muy pequeños
Pollitos muy grandes con el abdomen
abultado y blando (fofos)
Pollitos débiles
Pollitos con plumón corto seco y ojos pegados
Pollitos con la parte superior del pico
sangrando y tarsos rojos
Nacimientos prematuros
Nacimientos atrasados
Cascarones de huevo manchados con
sangre en su interior
Aspergilosis
Pollitos con pericarditis, coagulación
del vitelo y congestión hepática
Capítulo 7: Desarrollo embrionario y nacimiento
Foto N° 1: Huevo infértil
Foto N° 2: Huevo fértil
Foto N° 3: Primeras horas de incubación
Foto N° 4: Primer día de incubación
Foto N° 5: Segundo día de incubación
Foto N° 6: Tercer día de incubación
Foto N° 7: Cuarto día de incubación
Foto N° 8: Quinto día de incubación
Foto N° 9: Quinto día de incubación
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Foto N° 10:Sexto día de incubación
Foto N° 11:Séptimo día de incubación
Foto N° 12:Séptimo día de incubación
Foto N° 13-1:Octavo día de incubación
Foto N° 13-2:Octavo día de incubación
Foto N° 14-1:Noveno día de incubación
Foto N° 14-2:Noveno día de incubación
Foto N° 15:Décimo día de incubación
Foto N° 16:Undécimo día de incubación
Foto N° 17-1:Duodécimo día de incubación
Foto N° 17-2:Duodécimo día de incubación
Foto N° 18-1:Decimotercer día de incubación
Foto N° 18-2:Decimotercer día de incubación
Foto N° 19:Decimocuarto día de incubación
Foto N° 20-1:Decimocuarto día de incubación
Foto N° 20-2:Decimocuarto día de incubación
Foto N° 21-1:Decimoquinto día de incubación
Foto N° 21-2:Decimoquinto día de incubación
Foto N° 22:Decimosexto día de incubación
Foto N° 23:Decimoséptimo día de incubación
Foto N° 24-1:Decimoctavo día de incubación
Foto N° 24-2:Decimoctavo día de incubación
Foto N° 25-1:Decimonoveno día de incubación
Foto N° 25-2:Decimonoveno día de incubación
Foto N° 25-3:Decimonoveno día de incubación
Foto N° 26-1:Vigésimo día de incubación
Foto N° 26-2:Vigésimo día de incubación
Foto N° 27-1:Vigésimoprimer día de incubación
Foto N° 27-2:Vigésimoprimer día de incubación
Capítulo 8: Alteraciones de las estructuras del huevo y Patología
Embrionaria
Foto N° 28: Coagulo de sangre en el vitelo
Foto N° 29: Vitelo moteado o revuelto
Foto N° 30: Mancha blanca en el vitelo
Foto N° 31-1: Contaminación con hongos
Foto N° 31-2: Contaminación bacteriana
Foto N° 32: Colonia de Aspergillus spp.
Foto N° 33: Albúmina coagulada
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Foto N° 34: Traumatismo del embrión
Foto N° 35-1:Baja temperatura y/o alta humedad
Foto N° 35-2:Baja temperatura y/o alta humedad
Foto N° 36:Pollito PNN con edema en el cuello
Foto N° 37-1: Malformaciones. Triplopodia
Foto N° 37-2:Malformaciones. Duplicación
Foto N° 38: Malformaciones. Miembro inferior
Foto N° 39: Malformaciones. Encefalocele
Foto N° 40: Malformaciones. Embrión cíclope
Foto N° 41: Malformaciones. Anoftalmía
Foto N° 42: Malformaciones. Duplicidad
Foto N° 43: Malformaciones. Duplicidad
Foto N° 44: Malformaciones: Gemelos unidos
Capítulo 9: Patología perinatal
Foto N° 45: Problemas de patas al nacimiento
Foto N° 46: Signos nerviosos
Foto N° 47: Pollitos con el pico sangrando
Foto N° 48: Ombligo mal cicatrizado
Foto N° 49: Botones negros en el ombligo
Foto N° 50: Onfalitis
Foto N° 51: Aspergilosis
Foto N° 52: Deshidratación y gota
Foto N° 53: Pollitos pegajosos
Foto N° 54: Pollitos con plumón corto,
seco y ojos pegados
Foto N° 55: Pollitos con infección bacteriana
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INTRODUCCIÓN
La práctica de revisar los huevos, de veintiún días de incubación, que quedan sin eclosionar en las bandejas de las nacedoras
se denomina embriodiagnosis.
Es una herramienta muy útil, tanto para médicos veterinarios,
y gerentes de distintas áreas de producción avícola, ya que permite diagnosticar la posible causa de la falta de productividad en
las plantas de incubación.
Consiste en abrir los huevos que han quedado como remanentes en las bandejas de las nacedoras con pollitos sin nacer, para
determinar si éstos eran fértiles, o si bien se produjo una interrupción durante el proceso de la incubación.
Como se trata de una población, hay ciertos individuos que
normalmente no completan su desarrollo embrionario, muriendo
en alguna etapa del proceso, por ese motivo se definen estándares, que son comparados con los valores hallados.
Una vez conocido el momento en que se produce la muerte de
los embriones por encima de los valores normales, se pueden
tomar las medidas correctivas en las áreas que correspondan.
Tanto en las granjas de los reproductores, en el transporte de los
huevos a la planta, en la planta de incubación, en la fábrica de
raciones, o bien medidas sanitarias, o nutricionales.
Luego de veintiún días, en que los huevos han estado expuestos al proceso de la incubación, se producen alteraciones, que
hace muy difícil determinar la edad exacta a la que se murió el
embrión, motivo por el cual se dan claves para ubicarlos por
períodos, que se corresponden a las posibles causas de muerte o
falta de productividad.
El examen de los pollitos nacidos, también es una práctica que
permite tomar acciones correctivas en las distintas áreas, pronosticar la productividad del futuro lote de pollitos en la granja
de producción. De allí, la importancia del diagnóstico de las
patologías perinatales.
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1
Capítulo
EMBRIODIAGNOSIS
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Embriodiagnosis
Una vez finalizado el nacimiento, en la planta de incubación, se
eligen cuatro bandejas, una de la parte superior de la nacedora,
dos de la parte media y una de la inferior. De ellas se toman
todos los huevos que han quedado sin eclosionar, y se los pone
en una bandeja, para un posterior análisis, en un lugar apropiado
(alejado y aislado de las salas de incubación, nacedoras y otros
pollitos), y con buena iluminación. Como se trata de un diagnóstico de la mortalidad embrionaria, se puede denominar: embriodiagnosis. Este procedimiento permite efectuar al mismo tiempo
un diagnóstico de fertilidad.
Se puede establecer como rutina de la planta de incubación, por
ejemplo una vez por semana o por cada nacimiento, o bien cada
vez que se presente un problema. Es conveniente contar con una
mesa, para apoyar los maples con los huevos no eclosionados.
Un recipiente de veinte litros de capacidad, para arrojar los residuos, que ya fueron analizados. Debe haber una persona, que
asista a quien está haciendo la embriodiagnosis. Su función será
la de ir anotando lo que el operador observa en una planilla.
Puede ser como la que se muestra en la Tabla Nº 1.
Los datos para dicha tabla deben ser lo más completos posibles,
deben figurar:
• Fecha del nacimiento del lote de pollitos analizados.
• Datos del plantel:
Número que lo identifica.
Línea genética.
Edad que tenía en el momento de postura de los huevos
analizados
• Fecha de puesta de los huevos.
• Fecha de carga de los huevos a la incubadora.
Y además, todos los datos que creamos convenientes. Por ejemplo en observaciones, los tratamientos efectuados al lote, temperatura ambiente, eventuales problemas en el transporte de huevos etc.
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• Cantidad total de pollitos nacidos del lote, y cantidad total
de huevos no eclosionados, que quedaron como remanentes
en las bandejas de ese nacimiento.
• Porcentaje de nacimiento real del lote. Índice de nacimiento
estándar para este lote.
Como resultado de ir abriendo los huevos no eclosionados, el
asistente anota en la planilla, lo observado por categoría.
Recordando la ubicación de las bandejas: una de la parte de
arriba de la nacedora, dos de la parte media y una de la parte
inferior.
Del total de huevos analizados por categoría, se los divide por el
total de huevos puestos a incubar en las bandejas, y se lo multiplica por cien y se obtiene el índice por categoría, que luego se
discutirá más adelante, cuando se lo compare con el índice ponderado.
La práctica de embriodiagnosis se puede hacer, abriendo los
huevos en su parte media, con los dedos pulgares de ambas
manos, o bien abriéndolos por el polo superior, donde está la
cámara de aire. Éste último procedimiento es el mejor, se retira
con tijeras la periferia de la misma, esto permitirá observar el
interior del huevo minuciosamente (Foto N° 3).
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Tabla N° 1: Planilla para anotar los datos
obtenidos en la embriodiagnosis.
Fecha de Postura:.../..../....
Plantel N°:.................
Fecha de carga:..../..../....
Línea:..............
Edad:.........
Índice de nacimiento:
Índice estándar:
Total de pollitos nacidos:
Huevos remanentes:
Cantidad de huevos cargados por bandeja de nacedora:
Bandejas Infértiles Fase I Fase II
Fase III PNN Contaminados Malformación Cascados
Arriba
Medio
Medio
Abajo
Total
Índice
Observaciones:.........................................................................
..................................................................................................
...................................................................................................
Fecha de la embriodiagnosis: ..../..../....
Confeccionado por:
Revisado por:
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2
Capítulo
CLASIFICACIÓN
POR CATEGORÍAS
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Clasificación por categorías
A medida que el operador observa los huevos, que va abriendo,
hace el diagnóstico del momento en que se interrumpió el proceso de incubación, o bien si se trata de un huevo infértil, contaminado o cascado. El ayudante irá anotando, estos datos en una
planilla (Tabla N° 1), para luego hacer los cálculos y así conocer los desvíos de los valores normales.
Se definen las siguientes categorías en la falla de la eclosión:
• Huevos infértiles: Son los que no han sido fertilizados, y que
por lo tanto no tienen desarrollo embrionario, se observa el
blastodisco, que es una formación blanquecina con un diámetro entre 3 y 4 mm. En la Foto N° 1 se observan más detalles.
• Huevos fértiles: Foto N° 2. El óvulo ha sido fecundado, en el
momento de la postura es un embrión con alrededor de
50.000 células. Se forma el blastodermo, con un área interna
o pelúcida (embrión ppte. dicho), y un área externa u opaca.
Este diagnóstico diferencial entre huevo fértil e infértil es relativamente fácil en huevos frescos. En el momento de efectuar
la embriodiagnosis a los 21 días de incubación, se producen
cambios, y por este motivo, se tienen en cuenta otras características (además del la observación del blastodermo), que
ayudan a su identificación, por ejemplo la yema es menos brillante y no se encuentra ubicada en posición central como en
el huevo fértil.
La mortalidad del embrión en este período se encuadra en la
Fase I, que a continuación se detalla.
• Fase I, Mortalidad embrionaria temprana: Desde la Foto N°
3 hasta la Foto N° 7. Este período comprende la primera fase
de la incubación, desde el primer día hasta el cuarto día inclusive. Tal como se explica en la diferenciación entre huevo fér14
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SIGUIENTE
til e infértil, es difícil, por lo que hay que guiarse por lo explicado en el ítem anterior*. Un signo muy notable en este período, es la formación de las estructuras anexas del embrión, tal
como se observa en la Foto N° 4.
Durante la embriodiagnosis pueden observarse formaciones
que pueden confundir el diagnóstico de mortalidad embrionaria en este período:
- Coágulos de sangre o restos de tejidos ovulatorios en el
vitelo, Foto N°28, que se diferencia de la formación temprana de un embrión
- Vitelo moteado o revuelto, Foto N° 29.
- Manchas blancas en el vitelo: Foto N° 30. Se debe diferenciar de la formación temprana de las estructuras anexas del embrión. Foto N° 4.
• Fase II, o mortalidad embrionaria media: Desde la Foto N°
8 hasta la foto N° 23. Este período comprende a los embriones muertos desde el quinto día, hasta el decimoséptimo día
de incubación. Lo más importante en esta fase, comienza con
la formación del ojo (Foto N° 8) y finaliza cuando el pollito
se prepara para la eclosión. En esta etapa, la mortalidad
embrionaria va acompañada de procesos naturales de degradación de la sangre, que produce un color que puede confundirse con huevos contaminados por bacterias. Estos últimos
además presentan un olor fétido que los caracteriza.
Foto N° 31-2.
• Fase III o mortalidad embrionaria tardía: Fotos N° 24, 25 y
26. Abarca desde el decimoctavo día hasta la preparación para
la eclosión picando la cámara de aire. Esta etapa se caracteriza por la absorción del saco vitelino y el pasaje a una respiración pulmonar.
• Picados no nacidos o PNN: Foto N° 35. Se trata de pollitos
que picaron el cascarón pero que no eclosionaron totalmente.
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• Pollitos con Malformaciones: Desde la Foto N° 37 hasta la
Foto N° 55. Responden a etiologías muy variadas, y las anomalías son muy diversas, se discuten las más comunes en el
desarrollo del capítulo “Causas del desvío de los valores normales”.
• Huevos Cascados: Son huevos que al abrirlos se los encuentra deshidratados, o vacíos de contenido, por fisuras de la cáscara durante la manipulación con la consiguiente pérdida
excesiva de humedad.
• Huevos contaminados: Fotos N° 31-1 y 31-2. La aparición de
estos huevos y su incidencia varía en función del manejo de
las granjas de reproductores. La contaminación puede ser
debida a hongos o bacterias. La contaminación fúngica se
caracteriza por el color verde azulino del interior del huevo,
Foto N° 31-1, en algunos casos se puede observar una colonia
(Foto N° 32) La contaminación por bacterias produce un olor
fétido característico, y cambios de coloración (Foto N° 31-2).
• Pollitos de descarte: Fotos N° 39,45,46, 49 y 50. Se los trata
en el capítulo Patología Perinatal.
* Nota de los autores: El Dr. Alejandro Mc Cormack, mediante una comunicación personal, recomienda para situaciones de dificultades de diagnóstico hacer una ovoscopía a los 8
días de incubación, para abrir los huevos sin desarrollo embrionario, y de esa manera hacer
un diagnóstico diferencial entre mortalidad embrionaria muy temprana y huevo infértil.
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Claves para la embriodiagnosis
Infértil: El vitelo es más consistente, la albúmina es más fluida. Si se puede observar el blastodisco es la principal característica, Foto N° 1.
Fase I: Comprende la mortalidad en el desarrollo inicial del
embrión. Es un huevo, que al abrirlo, se observan desde las primeras fases del desarrollo embrionario y sus estructuras anexas,
hasta el desarrollo de los vasos sanguíneos o los restos que quedan de ellos luego de la incubación de 21 días. Fotos N° 3 a 7.
Fase II: En esta fase se encuentran embriones a los que se les
nota bien la formación del ojo y todas las etapas intermedias de
crecimiento, hasta los que están completamente desarrollados,
con la cabeza bajo el ala (sin haber picado, aún, la cámara de
aire). Fotos N° 8 a 23.
Fase III: La clave de esta fase es la de encontrar un pollito
completamente desarrollado. La cabeza se dirige hacia el polo
superior del huevo. El saco vitelino está en proceso de ser reabsorbido hacia la cavidad abdominal. Fotos N° 24 a 26.
PNN: El pollito ha picado la cáscara del huevo, se nota claramente la perforación. Fotos N° 26 y 35.
Contaminados: Se los identifica por el color y olor que los
caracteriza, al momento de abrir el huevo. Fotos N° 31 y 32.
Cascados: Por la quebradora de la cáscara, que no siempre es
fácil de observar. El interior del huevo tiene un contenido deshidratado.
Malformaciones: Se los identifica por las anomalías de los
embriones formados. Fotos N° 37 a 55.
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3
Capítulo
FÓRMULAS
DE CÁLCULO
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SIGUIENTE
Fórmulas para el cálculo del índice de
falla por atributo.
Los datos obtenidos se pueden calcular sobre el universo de las
cuatro bandejas de la nacedora y así proyectar esa información a
todo el nacimiento de ese día y de ese plantel, o bien ponderar la
información obtenida de estas cuatro bandejas sobre el universo
del nacimiento de ese plantel analizado. Con el primer método
se cometen muchos errores, motivo por el cual es mejor trabajar
con el método de cálculo ponderado. Se discuten ambos métodos a continuación.
!"Universo de cuatro bandejas. Método simple.
Un plantel de reproductoras pesadas venía con un índice de eclosión de 85%, un día determinado baja a 82,07%.
Se analizan los huevos remanentes (de los que no hubo eclosión)
de cuatro bandejas de las nacedoras, la capacidad total de todos
los huevos puestos en estas bandejas es de 162 huevos, cada una
de ellas, por lo tanto las cuatro suman un universo total de 648
huevos puestos a incubar. Se eligen según la técnica, una bandeja de la parte superior de la nacedora, dos del medio, y una de la
parte inferior.
Se realiza la embriodiagnosis, y se obtienen los siguientes datos:
Fase I: 63 embriones muertos, sobre un universo de 648 huevos
el índice es 9,72%.
Fase II: 7 embriones muertos, el índice es 1,08%.
Fase III: 20 embriones muertos, el índice es 3,09%
PNN: 6 embriones, también sobre el universo de las cuatro bandejas el índice es 0,92%.
Infértiles: 44 huevos, el índice es 6,79%.
Contaminados: 3 huevos, el índice es 0,46%
Cascados: 9 huevos, el índice sobre este universo es 1,39%.
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SIGUIENTE
Malformaciones: 4 embriones, el índice es 0,62%.
Si se suman todos los valores, la cifra total es de 156 huevos que
han quedado como remanentes, en estas cuatro bandejas, que
comparado con el universo de 648 huevos, el índice de huevos
no eclosionados es de 24,07% (156 huevos sin nacimiento sobre
un total de 648 huevos puestos a incubar en esas cuatro bandejas).
Si del 100%, no eclosionó el 24,07% el nacimiento de estas bandejas por lo tanto del 75,93% (100%-24,07%), y no del 82,07%
como realmente fue el del plantel.
Solo se obtiene una realidad de las cuatro bandejas, pero no la
del plantel.
!"Fórmula ponderada:
Se toman exactamente las mismas cuatro bandejas, y los mismos
valores, pero se los pondera sobre el universo total del plantel
del nacimiento analizado ese día.
Un dato adicional a tener en cuenta es el número total de los huevos no eclosionados ese día y de ese plantel, para multiplicarlo
por cada valor hallado de cada fase durante la embriodiagnosis
de las cuatro bandejas. Al resultado se lo divide por el otro dato
adicional, que es el universo total de huevos puestos a incubar
pertenecientes al plantel analizado. Posteriormente se divide este
resultado por los huevos remanentes analizados (sin eclosión),
que se encuentran en las cuatro bandejas, en este ejemplo es 156.
La fórmula es la siguiente:
(A x B) / C = N
(N / H) x 100 = índice por ítem o fase analizada.
Donde:
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SIGUIENTE
A : Es el número de huevos de un ítem o fase analizada. Por
ejemplo, como se muestra el caso que se está explicando se
encontraron 63 huevos con embriones muertos en la Fase I.
B : Es el número total de huevos, de todo el plantel analizado,
de los que no hubo eclosión de pollitos. Por ejemplo, en este
plantel que se está analizando, se cargaron en las incubadoras
67.554 huevos, de los que nacieron 55.444 pollitos (nacimiento
del 82,07%), esto significa, que en las bandejas de todas las
nacedoras en las que estaba cargado este plantel, quedaron sin
eclosionar 12.110 huevos.
C : Es el universo total de huevos puestos a incubar del plantel
analizado, para este ejemplo 67.554 huevos.
N : Media ponderada, resultante de la operación anterior. En
este ejemplo (63 X 12.110) / 67.554 = 11,29.
H : Es la cantidad real de huevos remanentes (sin eclosionar),
analizados de las cuatro bandejas de la nacedora. Para este ejemplo son los 156 huevos que han quedado sin eclosionar en las
cuatro bandejas elegidas,
Índice : Para este ejemplo
( N=11,29 / H= 156) x 100 = 7,24%, que es el índice ponderado
para la Fase I, para el nacimiento de 82,07%. Valor muy distinto, de 9,72% que se encontró en la misma fase, con la fórmula
que toma el universo de las cuatro bandejas explicada al inicio
de este capítulo.
A continuación se calculan todos los (índices ponderados):
Fase I: (63x12.110)/67.554= 11,29. (11,29/156)x100= 7,24%.
Fase II:(7x12.110)/67.554=1,25. (1,25/156)x100= 0,80%
Fase III:(20x12.110)/67.554)=3,58. (3,58/156)x100=2,30%
PNN: (6x12.110)/67.554=1.07. (1,07/156)x100=0,69%
Infértil (44x12.110)/67.554=7,88. (7.88/156)x100=5,05%
Contaminado:(3x12.110)/67.554=0,54.(0,54/156)x100=0,35%
Cascado: (9x12.110)/67.554=1,61. (1,61x156)x100=1,03%
Malformaciones:(4x12.110)/67.554=0,72. (0,72x156)x100=0.46%
21
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SIGUIENTE
La sumatoria total de todas las categorías es de 19,72% de huevos no eclosionasdos, lo que proyecta una nacimiento de 82,08%
(100%-19,72%). Valor mas cercano al 82,07% del índice de
nacimiento real del plantel que el 75,93% que se proyecta cuando no se ponderan los valores y se utiliza como universo las cuatro bandejas analizadas.
Tabla N° 2: Comparación de los distintos métodos de
cálculo de los valores encontrados en la embriodiagnosis.
Según el ejemplo mostrado.
Atributos
Cantidad
Método
simple
Método
ponderado
63
7
20
6
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3
9
4
156
9,72%
1,08%
3,09%
0,92%
6,79%
0,46%
1,39%
0,62%
24,07%
7,24%
0,80%
2,30%
0,69%
5,05%
0,35%
1,03%
0,46%
17,92%
Nacimiento proyectado
75,93%
Nacimiento real del plantel: 82,07%.
82,08%
Fase I
Fase II
Fase III
PNN
Infértiles
Contaminados
Cascados
Malformaciones
Totales
22
ANTERIOR
SIGUIENTE
4
Capítulo
VALORES
NORMALES
23
ANTERIOR
SIGUIENTE
Valores normales
Los datos obtenidos durante la embriodiagnosis, que han sido
volcados en la planilla correspondiente, como la que se muestra
en la Tabla N° 1, sirven para fines diagnósticos si se los compara con valores normales o estándares.
Los estándares son distintos para cada empresa, debido a que
pueden variar según el equipamiento de incubadoras, la línea
genética, la edad del plantel, el aprovechamiento de huevos
incubables, el tiempo de permanencia de los huevos en el depósito, etc.
Es conveniente que cada empresa cuente con sus propios estándares, mediante la acumulación de datos de la rutina de la
embriodiagnosis, realizada en la planta de incubación.
Las empresas proveedoras de la línea genética, le pueden proveer los valores normales, para cada edad de los lotes que se están
considerando.
Solamente como guía se dan los siguientes valores estándares:
Infertilidad:
3,0 a 10,0 %
Mortalidad:
Fase I:
Fase II:
Fase III:
PNN:
Contaminados:
Cascados:
Malformaciones:
Pollitos de descarte:
2,0 a
0,5 a
2,0 a
0,7 a
4,0%
0,7%
4,0%
0,9%
0,5%
0,3%
0,3%
0,3%
Los valores estándares, sirven tanto para diagnóstico de situación de una operación determinada, o bien para fijar objetivos de
24
ANTERIOR
SIGUIENTE
mejoramiento del personal involucrado.
Una vez que se conoce en qué período del proceso de incubación
hay desvíos, se pueden buscar las posibles causas. Para ello en el
capítulo “Causas del desvío de los valores normales” se dan
algunos ejemplos.
25
ANTERIOR
SIGUIENTE
5
Capítulo
CAUSAS
DE DESVÍO
DE LOS VALORES
NORMALES
26
ANTERIOR
SIGUIENTE
Huevos infértiles:
Si como resultado de la embriodiagnosis se determina que hay
un problema de fertilidad, se debe analizar el lote de reproductores en la granja de producción.
Posibles causas:
• Contaminación de la ración con nicarbazina: Se caracteriza por producir huevos de cáscara blanca, yema manchada, o
yema y albúmina mezclados (huevo batido) tal como se puede
observar en la Foto N° 29. La nicarbazina es una droga usada
en la ración de los pollos de engorde para el control de la coccidiosis. En aquellas fábricas de raciones, que producen alimento tanto para pollos como para reproductores, se pueden
producir contaminaciones, que incorporaran accidentalmente
esta droga a la ración de los reproductores, ya que se adhiere
fácilmente a las paredes por donde circula.
La intensidad del cuadro tóxico depende de la dosis recibida y
del tiempo que los animales estuvieron consumiendo, puede
afectar tanto la fertilidad como la producción diaria de huevos.
Lo primero en afectarse es la fertilidad, puesto que a 10 ppm y
durante siete días de ingestión, ésta baja drásticamente. Si se
retira la ración contaminada, el índice de fertilidad se recupera
luego de consumir un alimento libre de esta droga, en una a tres
semanas.
La yema moteada, (Foto N° 29), se produce con una concentración de nicarbazina de 15 ppm y con un tiempo de consumo de
una a tres semanas. El cuadro se revierte luego de un retiro de
siete a diez días.
El color marrón de la cáscara se vuelve blanco con la ingesta de
una ración con una concentración de nicarbazina de 20 ppm, y
un tiempo de exposición de tres días. El cuadro revierte en un
poco más de tres días luego de consumir un alimento libre de la
droga.
27
ANTERIOR
SIGUIENTE
• Iatrogenia: Hay muchos fármacos que afectan la fertilidad de
los lotes, debido a ello, todos los tratamientos hay que hacerlos con la supervisión de un Médico Veterinario. Se deben
anotar en las planillas diarias de la granja, todo tipo de tratamiento efectuado, para poder luego tener información precisa
al momento de presentarse un cuadro de infertilidad en la
planta de incubación.
• Manejo de los machos: La infertilidad atribuida al manejo de
los machos puede deberse a:
# Exceso o falta de la cantidad en proporción a la hembra.
# Manejos individuales, por ejemplo tratamientos contra el
piojillo.
# Estado general: Poco o excesivo peso. Malformaciones de
los miembros inferiores o columna (por ejemplo lordosis).
Pérdida de peso. Traumatismos, pododermatitis, artritis
etc. Enfermedades, tales como cólera, parasitosis, etc. Los
machos pueden ser demasiado jóvenes o viejos para un
determinado plantel.
# La falta de agua, o la temperatura de la misma, que nunca
debe estar a menos de siete grados, ni a más de treinta grados centígrados.
# Temperatura ambiente: Los extremos de temperatura afectan los animales, puesto que con frío intenso las aves se
amontonan, para conservar el calor y los machos no trabajan, y el calor produce una postración por descompensación.
# El cambio de machos: Cuando se hace la práctica del cambio de machos hay que tener en cuenta un tiempo determinado para la formación del harén dentro del lote.
# Alimentación inadecuada: en calidad y cantidad.
# Desbalance nutricional y/o deficiencias: la deficiencia de
Niacina puede ocasionar un falta total de nacimiento. La
deficiencia de Vitamina E, afecta la fertilidad significativamente.
#Alta densidad animal.
#Gallinas excedidas de peso por gordura.
28
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SIGUIENTE
Huevos cascados:
Son aquellos huevos que han sufrido una pequeña fisura o fractura en la cáscara, no siempre fáciles de observar. Durante el proceso de incubación perderán humedad, y al momento de la
embriodiagnosis se los observa prácticamente vacíos de contenido, o con la albúmina más concentrada.
La causa de un alto índice de huevos cascados puede deberse a:
⇒ Manejo brusco de los huevos en la granja, inadecuado
transporte, o mal manejo en la sala de huevos de la planta
de incubación, o bien durante la carga en las incubadoras.
⇒ Hay huevos que se cascan al momento de la transferencia,
en los que se encuentra un embrión desarrollado, a veces
injuriado y con las membranas secas (Foto N°34).
Mala calidad de la cáscara, que predispone a roturas y va acompañado de un alto índice de huevos contaminados (por la permeabilidad de la cáscara a la penetración bacteriana). La mala
calidad de la cáscara puede deberse a varias etiologías, a saber:
• Nutrición: Deficiencia de vitaminas o minerales, por ejemplo
Vitamina D, Calcio etc.
• Enfermedades: Bronquitis infecciosa, Síndrome de baja de
postura.
• Temperatura ambiente: los días de excesivo calor afectan la
calidad de la cáscara,
• Tamaño del huevo: a mayor tamaño menor es la calidad de la
cáscara.
• Edad de las gallinas: a mayor edad mayor tamaño del huevo.
29
ANTERIOR
SIGUIENTE
Gravedad específica:
Es una manera de medir la calidad de la cáscara del huevo.
Consiste en medir la densidad de los huevos a distintos gradientes de concentración de sal en agua.
Procedimiento: En recipientes de veinte litros de capacidad,
cada uno, se coloca agua, a la misma temperatura de los huevos
que se analizarán. Se va agregando sal y midiendo con un densímetro (calibrado entre 1065 y 1100), de tal manera que quede
un recipiente con una solución de una densidad de 1065, otro de
1070, otro de 1075, y así sucesivamente de cinco en cinco hasta
llegar a una solución salina de 1100.
Se colocan cincuenta huevos en cada recipiente, y se anotan la
cantidad de huevos que flotan para cada densidad gravimétrica.
Las cantidades de huevos que flotan se multiplican por su densidad, a la sumatoria de estos resultados se los divide por la cantidad total de huevos analizados, se obtiene así la densidad
específica como promedio ponderado. Para un lote joven debe
estar entre 1080 a 1090.
A medida que baja la gravedad específica aumenta el índice de
huevos cascados y contaminados.
30
ANTERIOR
SIGUIENTE
Huevos contaminados:
En el momento de la postura el huevo está a temperatura corporal, la exposición ambiental lo enfría. Debido a esto la masa
interna disminuye de tamaño, y forma la cámara de aire, produciéndose un vacío, que hace penetrar aire desde el exterior hacia
el interior del huevo (por diferencia de presión), esto favorece la
entrada de bacterias a través de los poros de la cáscara.
Las bacterias involucradas en la contaminación de los huevos
son muy variadas, las más comunes son: Pseudomona spp., E.
Coli, Salmonella spp. etc.. Al momento de la embriodiagnosis
muchos de los huevos ya han explotado en el proceso de la incubación, pero los que quedan en las bandejas de las nacedoras,
tiene un olor fétido y un color que los caracteriza, Foto N° 31-2.
La contaminación debida a hongos da un color verde azulino en
el interior del huevo, Foto N° 31-1.
La primer barrera para evitar la contaminación es la cutícula,
pero como es muy variado su espesor, no llega a ser una buena
barrera.
Las causas de una contaminación de huevos pueden ser por:
$ Densidad específica de los huevos: esto se trató en la calidad
de la cáscara de los Huevos Cascados en este mismo capítulo. Para evitar una mayor penetración bacteriana la densidad
debe ser de 1090.
$ Tiempo de permanencia del huevo en el nido, si este es el problema recolectar con mas frecuencia.
$ Higiene, limpieza y desinfección de los nidos y de la cama en
su interior.
$ Desinfección de los huevos.
$ No incubar a los huevos de piso.
$ Limpieza, higiene y desinfección de los depósitos de huevos
incubables, del transporte. Y de la manipulación de los huevos.
31
ANTERIOR
SIGUIENTE
Mortalidad embrionaria temprana en
Fase I:
Si se encuentran valores por encima del estándar, si bien hay
muchas causas, tal como se verá en el desarrollo de este tema, lo
más inmediato es revisar el manejo del huevo incubable.
Etiología:
Esta fase está relacionada con el manejo del huevo incubable,
(embrión de cincuenta mil células, en plena división), foto N° 2.
Para detener el proceso de división celular, desde la postura hasta
que se coloca en la incubadora - para que ese proceso continúe su
evolución -, se lo debe enfriar a una temperatura que no afecte la
vitalidad celular y que a su vez no la estimule, a esta marca térmica se la denomina “cero fisiológico” y es de 23,9°C en el interior del huevo, a mayor tiempo de almacenaje menor deberá ser
esa temperatura.
Las principales razones para una mala productividad debido a
fallas en esta fase pueden deberse a:
$ Tiempo de almacenamiento del huevo: si al huevo se lo almacena por más de cinco días, la incubabilidad disminuye entre
0,5% a 1,0% por día adicional.
$ Condiciones de la sala de almacenamiento: se deben respetar
la temperatura y humedad de la sala de almacenamiento de
huevos. La temperatura debe estar en 18° C, la humedad relativa que debe estar entre 70 y 75%. Ambos parámetros varían
según el tiempo de almacenamiento de los huevos.
$ Tiempo de almacenaje demasiado corto: se produce una mortalidad embrionaria temprana, por una deficiente posición del
embrión al momento de la incubación. En los primeros
momentos de puesto el huevo, el blastodermo se encuentra en
el centro del mismo, durante el almacenamiento la yema gira
hacia el polo superior, quedando así el blastodermo correctamente ubicado.
32
ANTERIOR
SIGUIENTE
Edad de la gallina: los huevos provenientes de gallinas viejas,
es conveniente incubarlos con menor tiempo de almacenamiento. Si éste debe ser mayor a los siete días, es mejor que
sea de gallinas jóvenes, puesto que se mantiene la calidad del
albumen.
$ Permanencia del huevo en el nido por tiempo prolongado: Si
la temperatura es alta, comienza allí el proceso de incubación,
hasta pueden formarse las estructuras embrionarias anexas, si
luego se lo enfría en la sala de almacenamiento de huevos, el
embrión detiene el crecimiento y muere indefectiblemente. En
la embriodiagnosis se observan las estructuras anexas (Foto
N° 4). Si el huevo se expone a temperatura muy alta o a radiaciones solares, la albúmina puede coagularse, al examinarlos
se observan fácilmente los coágulos Foto N°33.
$ Intenso frío: es otro factor a tener en cuenta en el manejo de
huevo incubable, ya que conduce a una mortalidad embrionaria precoz.
$ Cambios bruscos de temperatura y/o humedad: se deben evitar, puesto que provocan condensación de gotitas de agua en
la superficie de la cáscara del huevo, que favorece la contaminación bacteriana.
$ Desinfección de los huevos: Si se emplean productos contraindicados o altas dosis, como por ejemplo el uso de amoniocuaternario a dosis superiores a 1000 ppm, aumenta la
mortalidad embrionaria precoz. Cuando se emplean soluciones sobre la superficie del huevo, hay que tener en cuenta la
temperatura de la misma, para no provocar cambios bruscos
de las condiciones físicas del embrión.
$ Precalentamiento: se deben seguir las instrucciones precisas
para el precalentamiento, puesto que se deben ofrecer las
correctas condiciones físicas del ambiente y uniformidad a
toda la masa de huevos.
$ Condiciones de la incubadora: afectan a los embriones la inadecuada temperatura, de ventilación y volteo.
$
33
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SIGUIENTE
Calidad de la cáscara de los huevos.
$ Deficiencia nutricional de la ración de reproductoras.
$ Micotoxinas.
$ Enfermedades del plantel de reproductores: Como es el caso
de la Enfermedad de New Castle, Enfermedad Respiratoria
Crónica, Difteroviruela.
$
34
ANTERIOR
SIGUIENTE
Mortalidad embrionaria media o en
Fase II:
Pude deberse a:
$
Cambios bruscos de la temperatura o de la ventilación en la
incubadora.
$
Volteo inadecuado o ausente.
$
Baja temperatura o alta humedad en la incubadora.
$
Falta de oxígeno o el exceso de dióxido de carbono, en la sala
de incubación.
$
Cáscara del huevo muy delgada.
$
Contaminación del huevo.
$
Mala nutrición o estado sanitario de los reproductores.
$
Deficiencia de Riboflavina, Vitamina B12 y D3.
35
ANTERIOR
SIGUIENTE
Mortalidad embrionaria tardía o en
Fase III:
Puede deberse a:
$ Alta humedad o baja temperatura en el período de incubación: Los embriones se los encuentra muertos en un huevo
con la cámara de aire muy reducida, los tarsos enrojecidos
(Foto N° 35), el pico sangrando (Foto N° 35), el tejido celular
subcutáneo edematoso, en la zona de la nuca del pollito puede
haber un trasudado gelatinoso (Foto N° 36).El saco vitelino
está muy abultado. Para completar el diagnóstico de esta
situación, se puede medir la pérdida de humedad de los huevos durante el período de incubación. Para ello se pesan los
huevos al momento de colocarlos en la incubadora y luego
nuevamente, en el momento de la transferencia. La perdida
de un 12% del peso de los huevos es una medida correcta.
Esto asegura el intercambio gaseoso junto con el hídrico. El
exceso de dióxido de carbono en el embrión conduce a su
muerte por acidosis. Los embriones que no llegan a morir en
este período, tampoco eclosionarán, puesto que la cámara de
aire tan reducida los conduce a picar muy arriba, y muchos
morirán en ese intento, tal como se discute en Picados No
Nacidos, mas adelante.
$ Alta temperatura o baja humedad durante la incubación: los
embriones son más pequeños de lo habitual, puede haber
pollitos muy secos y deshidratados. El saco vitelino está más
reducido que lo normal. La pérdida de humedad durante los
primeros dieciocho días ha sido superior al 12%. La tolerancia a la pérdida de humedad es mayor que a la poca pérdida.
$ Embriones infectados por distintos agentes etiológicos.
$ Alta humedad en la nacedora.
$ Huevos enfriados excesivamente.
$ Deficiencias: la deficiencia de Biotina, produce mortalidad
36
ANTERIOR
SIGUIENTE
embrionaria entre los diecinueve y veintiún días de incubación. La deficiencia de Vitamina D, como origina mala calidad de cáscara, lleva a una gran pérdida de humedad, al igual
que una ración pobre en Calcio. La falta de Manganeso ocasiona extremidades cortas y plumón anormal en embriones
encontrados sin eclosionar en este período. En la deficiencia
de Zinc, las aves carecen de rabadilla, y de algunas partes del
esqueleto. La sobredosis de Selenio produce pollitos débiles.
$ Temperatura muy alta en la nacedora.
$ Falta de ventilación.
37
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SIGUIENTE
Picados No Nacidos o PNN:
Son pollitos que alcanzan a picar la cáscara del huevo en forma
parcial, y que no pueden eclosionar al momento del nacimiento.
Posibles causas:
$ Inadecuada alimentación de las reproductoras.
$ Enfermedad de los reproductores, Salmonelosis,
Micoplasmosis, Encefalomielitis, etc..
$ Genes letales.
$ Huevos colocados al revés.
$ Huevos de cáscara delgada.
$ Traumatismos durante la transferencia, Foto N° 34.
$ Problemas con el volteo durante las primeras semanas de
incubación.
$ Humedad baja durante los veinte y veintiún días de incubación.
$ Mala circulación de aire o alta concentración de CO2 durante
los veinte y veintiún días de incubación.
$ Transferencia muy tardía.
$ Fumigación con exceso de formalina durante el picado de los
huevos en la nacedora.
$ Alta humedad o baja temperatura en el período de incubación:
ver la discusión de este mismo tema en Mortalidad en Fase
III. La pérdida de humedad en el período de incubación es
inferior al 12%, los pollitos pican muy arriba del polo superior del huevo, Foto N° 35, Hay sangrado en el pico a raíz del
esfuerzo, tienen los tarsos enrojecidos (Foto N° 35-2).
$ Registros de temperatura, o bien altos o bajos, por períodos
cortos.
38
ANTERIOR
SIGUIENTE
Malformaciones:
Fotos N°: 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43 y 44.
Son aquellos defectos morfológicos de los embriones, que afectan a un 0,3% de la población. Algunos pollitos llegan a nacer
(ver Patología perinatal).
Las causas que pueden producir estos defectos son muy
variadas:
% Factores hereditarios.
% Factores ambientales durante la incubación: Como los tejidos
embrionarios tienen distinto cero fisiológico, al momento en
que se produzcan los cambios de temperatura marcará determinado defecto, según la etapa del desarrollo en que se
encuentre el embrión. El exceso de calor produce encefalocele Foto N° 39.
% Las deficiencias vitamínicas y minerales: La de Vitamina D3
produce anormalidades en el esqueleto del embrión. La deficiencia de Riboflavina produce dedos torcidos. La deficiencia
de Biotina pico de loro, la de Vitamina B12, dedos torcidos y
pico corto. La deficiencia de Manganeso produce anormalidades en el esqueleto y pico de loro. La Vitamina B2, su deficiencia produce pollitos con el pico superior hendido.
% Almacenamiento de los huevos por más de siete días.
Clasificación:
Embriones unidos o fusionados:
Se producen por una división incompleta del embrión en dos
partes, durante el período de desarrollo de la línea primitiva
(Foto N° 3). Se trata en general de gemelos monocigóticos unidos.
Se utiliza el sufijo pago (que significa atado), a continuación del
término que indica la región anatómica en que se produce la
39
ANTERIOR
SIGUIENTE
fusión, por ejemplo si están unidos por el tórax, se los denomina toracopago. Si la fusión es por el abdomen, se lo denomina
abdominopago. Los unidos por la región cefálica, cefalopago.
Ver la Foto N° 44.
Duplicaciones:
Se presentan duplicaciones de las estructuras anatómicas del
embrión. Cuando la duplicidad afecta regiones anteriores o craneales del embrión, se las describe como: duplicidad anterior,
tal como se puede ver en la Foto N° 42.
Cuando se afecta la región posterior del embrión, se la denomina: duplicidad posterior, tal como se observa en la Foto N° 43.
A este tipo de malformaciones para denominarlas se les agrega
el prefijo di, tri, tetra, etc., agregado a la región anatómica involucrada. Por ejemplo, dicéfalo (Foto N° 42), que es cuando el
embrión tiene dos cabezas..
La duplicidad posterior, se observa mayormente en los miembros, por ejemplo el caso de triplopodia de la Foto N° 37-1. El
tipo de duplicidad anterior más frecuente es la duplicidad del
pico en su valva superior, como se observa en la Foto N° 37-2.
Malformaciones del encéfalo:
La malformación más frecuente de observar en el embrión de
pollo es el encefalocele, Foto N° 39.
Consiste en una hernia del tejido cerebral con o sin meninges.
Se produce por un exceso de temperatura durante la incubación
afectando la formación de la bóveda craneal. Esta malformación
se puede encontrar tanto en embriones, como en pollitos que
han eclosionado.
40
ANTERIOR
SIGUIENTE
Malformaciones oculares:
Ciclopía, se trata de embriones que tiene un solo ojo (Foto N°
40), hay una sola órbita ocular situada en la línea media, que
puede contener un solo ojo normal, o dos fusionados.
Anoftalmía: es la ausencia de los globos oculares (Foto N° 41),
se produce por fallas en el crecimiento de la cúpula óptica, puede
ir acompañado de malformaciones faciales, tal como se observa
en la foto citada, (malformación en la valva superior del pico).
Malformaciones de las extremidades:
Cuando la malformación es por ausencia de una parte de las
extremidades del embrión, se escribe el defecto como prefijo y a
continuación la palabra melia, que significa miembro.
Si el miembro está ausente: amelia. Si el miembro es menor al
tamaño normal micromelia (Foto N° 38). Si los dedos son más
cortos de lo normal braquidactilia (Foto N° 38), si los dedos
estuvieran fusionados sindactilia.
41
ANTERIOR
SIGUIENTE
6
Capítulo
PATOLOGÍA
PERINATAL
42
ANTERIOR
SIGUIENTE
Patología perinatal, Pollitos de Descarte:
La falta de productividad de una planta de incubación, no solo
se afecta por los pollitos que no alcanzaron a eclosionar, sino
que también por aquellos que han nacido, pero que no serán viables en la granja de crianza, motivo por el cual se los considera
de descarte. Este tipo de Patología Perinatal se la identifica de la
siguiente manera:
%
%
%
%
%
Pollitos con el ombligo congestivo: Se produce por variaciones de temperatura, la mayoría de las veces por temperatura
muy alta, en las etapas previas al nacimiento. Puede tratarse
de onfalitis (Foto N° 50), que se trata más adelante.
Pollitos con el ombligo mal cicatrizado: Foto N° 49. La temperatura entre los once y dieciocho días de incubación fue
demasiado alta. O bien, la humedad alta, que no permite que
las membranas se contraigan, al momento de la absorción del
vitelo.
Pollitos con botones negros en el ombligo: Foto N° 49. Esto
se debe a que parte del saco vitelino y tejidos extraembrionarios no pudieron ser correctamente absorbidos, al momento
de obturarse el orificio umbilical. Esto es por haber tenido un
desarrollo embrionario más rápido que la madurez esperada,
puede ocurrir por alta temperatura de incubación o por un
rango metabólico más alto.
Pollitos con el ombligo congestivo sin cerrar: Foto N° 48. Se
debe a alta temperatura o a variaciones de la misma. También
por humedad de la nacedora muy alta.
Pollitos con onfalitis: Foto N° 50. Es una infección del
ombligo, que presenta los signos de la inflamación. Se debe a
la confluencia de dos factores:- uno es debido a problemas de
la incubación, tanto de temperatura como de humedad en la
incubadora, que llevan a una mala cicatrización del ombligo.
- la otra causada por la presencia de bacterias patógenas que
43
ANTERIOR
SIGUIENTE
%
%
%
%
%
producen una infección en el lugar, esto se controla al diminuir la contaminación de los huevos y con prácticas de higiene en la planta de incubación.
Pollitos pegajosos: Foto N° 53. Se debe principalmente a una
temperatura promedio baja, alta humedad, ventilación inadecuada, o explosión de huevos en la nacedora (por contaminación de los huevos).
Pollitos secos, con los cascarones de los huevos pegados: Se
debe a baja humedad en el almacenamiento de huevos. Volteo
inadecuado durante la incubación. Baja humedad en la nacedora.
Pollitos muertos en las bandejas de las nacedoras, deshidratados, y de un tamaño menor a lo normal: Su causa es la pérdida de humedad más allá de lo esperado (pérdida de peso
superior al 12% en el período de incubación) en los primeros
dieciocho días de incubación.
Pollitos que jadean y heces frescas en las bandejas de la
nacedora: Permanencia de los pollitos por tiempo prolongado
en las nacedoras.
Pollitos que nacen con defectos: Fotos N° 38, 39, 45 y 46.
Las causas de las malformaciones son muy variadas y ya se
han tratado en el capítulo anterior, aquí solo se tratan los
defectos de los pollitos nacidos. Tanto el volteo como la ventilación inadecuada tienen un papel importante en estas patologías. La temperatura en el proceso de incubación debe ser
tenida en cuenta, puesto que más allá del cero fisiológico de
los distintos tejidos, hay una secuencia en relación con el
momento en que se produjo la falla térmica de la incubadora,
con respecto a la aparición de malformaciones.
La nutrición inadecuada puede causar ciertos defectos en los
pollitos, tales como, pico de loro (por deficiencia de manganeso o biotina), anormalidades en el esqueleto (por deficiencia de Vitamina D3, biotina o calcio), dedos torcidos (por
deficiencia de Riboflavina, Vitamina B12). Hay, además, factores hereditarios que son causa de malformaciones.
44
ANTERIOR
SIGUIENTE
%
%
%
%
%
Pollitos despatarrados: Foto N° 45. Se debe principalmente
al piso resbaladizo de las bandejas de las nacedoras, además
puede ser causado por baja humedad, o por deficiencias nutricionales.
Pollitos con signos nerviosos: Foto N° 46. De etiología muy
variada, puede ser originado tanto por causa genéticas, nutricionales y ambientales (temperatura alta o humedad baja en la
incubación). Si el porcentaje de pollitos con signos nerviosos
es muy alto, se puede corregir aumentando la humedad en la
incubación, pero esto siempre es bueno comprobando la
merma de peso de los huevos en ese período tal como se
explica en el Capítulo 5. Ciertas enfermedades pueden causar signos nerviosos en los pollitos, como la Aspergilosis
cerebral (Foto 51-2), la Encefalomielitis, que son más problemas de la primer semana de vida del pollito en la granja de
engorde.
Pollitos con hernia cerebral: Foto N° 39. Se denomina también encefalocele, puede haber distintas causas, pero mayormente se lo relaciona con temperatura alta durante el período
de incubación, y en algunos casos por volteo incorrecto.
Pollitos que no se pueden parar: Ventilación inadecuada,
sobrecalentamiento, en algún momento de los veintiún días de
incubación. Alta humedad durante los primeros diecinueve
días.
Pollitos deshidratados: Huevos cargados muy temprano.
Baja humedad entre los veinte y veintiún días de incubación.
Pollitos que han permanecido en la nacedora por mucho tiempo. Un signo característico de un pollito deshidratado es la
sequedad de la piel de la pata y la visualización de la vena,
Foto N° 52-2. También la gota o síndrome úrico (Foto N° 52),
que más bien es una patología de la primer semana del pollito, está relacionado con la deshidratación severa, causada por
baja humedad o alta temperatura en la nacedora o en la sala
de pollitos, por una permanencia excesiva en las nacedoras,
45
ANTERIOR
SIGUIENTE
%
%
%
%
%
%
%
%
%
o en la planta. El ácido úrico precipita en forma de uratos,
tanto en las articulaciones (Foto N° 52-1), causando la denominada gota articular, o en los órganos internos, gota visceral.
Pollitos muy pequeños: Huevos cargados de poco peso y
tamaño. Baja humedad de almacenamiento e incubación. Alta
temperatura de incubación.
Pollitos grandes con el abdomen abultado y blando (fofos):
Bajo promedio de temperatura. Mala ventilación de la nacedora o incubadora. Alta humedad, sobre todo en el período de
la incubadora.
Pollitos débiles: Alta temperatura en la nacedora. Mala ventilación. Fumigación excesiva con formalina en la incubadora.
Mal estado nutricional o sanitario de los reproductores.
Pollitos con plumón corto, seco y ojos pegados: Foto N° 54.
Temperatura alta, humedad baja, exceso de ventilación en la
nacedora.
Pollitos con la parte superior del pico sangrando y tarsos
rojos: Foto N° 35. La pérdida de humedad del huevo durante
la incubación ha sido baja y el pollito tiene que picar más arriba (la cámara de aire es más pequeña de lo normal) y la falta
de absorción del saco vitelino aumenta el esfuerzo realizado.
Este tema se trata en el Capítulo 5.
Nacimientos prematuros: Debido a alta temperatura durante
el almacenamiento de los huevos. Precalentamiento incorrecto. Alta temperatura de incubación o baja humedad en el nacimiento.
Nacimientos atrasados: Baja temperatura durante la incubación.. Falta de precalentamiento. Almacenamiento de los huevos por tiempo prolongado y a bajas temperaturas. Huevos
demasiado grandes.
Cascarones de los huevos manchados con sangre en su interior: los pollitos salieron del huevo antes que sus ombligos
cicatricen, es debido a que las nacedoras están trabajando a
alta temperatura.
Aspergilosis: Foto N° 51.Es una enfermedad del pollito recién
nacido causada por un hongo, que se lo encuentra amplia46
ANTERIOR
SIGUIENTE
%
mente distribuido en la naturaleza: Aspergillus fumigatus. La
contaminación puede provenir del huevo, de todos los lugares con los que tuvo contacto y de la planta de incubación. La
aspergilosis puede presentarse de diferentes formas:Aspergilosis bronquial: se caracteriza por boqueo, cianosis
de mucosas, uñas y pico. A la necropsia se encuentra un tapón
caseoso-amarillento que obtura la luz de los bronquios. Aspergilosis pulmonar: se encuentran nódulos amarillos en el
parénquima pulmonar (Foto 51-3), o bien en la serosa (Foto
51-1). En los casos más graves de esta enfermedad se pueden
presentar en la masa encefálica (Foto 51-2)
Pollitos con pericarditis, coagulación del contenido del saco
vitelino y congestión hepática: Se trata de un proceso infeccioso bacteriano por lo que es conveniente hacer un diagnóstico de laboratorio en busca de enterobacterias (Salmonella
spp, E. coli, etc.)
47
ANTERIOR
SIGUIENTE
7
Capítulo
DESARROLLO
EMBRIONARIO Y
NACIMIENTO
48
ANTERIOR
SIGUIENTE
HUEVO
INFÉRTIL
1
El blastodisco se encuentra sobre la yema y lo cubre la membrana vitelina (A), tomando esta posición por la menor densidad
con respecto al contenido vitelino de la yema.
El blastodisco se observa como una formación blanquecina con
un diámetro que oscila entre 3 a 4 mm. Hallándose constituido
por una vesícula germinal rodeada por un círculo polar. El círculo interno del periblasto presenta mayor densidad óptica,
mientras que el periblasto es de menor densidad. Rodeando a
toda esta formación se encuentra el círculo externo del periblasto. En el área del periblasto se encuentran las lagunas.
FOTO
1
A
6
49
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SIGUIENTE
HUEVO
FÉRTIL
2
A simple vista se observa la formación del blastodermo (1). Al
momento de la postura es un embrión de varias células. No se
encuentran las lagunas del periblasto, aparece en cambio un área
interna o pelúcida, que es una formación embrionaria oval en el
centro del blastodermo. En la periferia se ubica el área opaca.
FOTO
1
50
ANTERIOR
SIGUIENTE
PRIMERAS
HORAS DE INCUBACIÓN
Se diferencian claramente el área opaca (1) del área pelúcida (2)
y la línea primitiva (3). En las cuatro primeras horas el área
pelúcida (que en el futuro será la zona craneal del embrión)
comienza a tener un engrosamiento y adquiere una apariencia
triangular.
3
FOTO
2
3
1
51
ANTERIOR
SIGUIENTE
PRIMER
DÍA DE INCUBACIÓN
Luego de las veinte horas de incubación comienza a desaparecer
la línea primitiva. El mesodermo aparece a cada lado del área
pelúcida, se forman los cuernos del mesodermo, constituyéndose el falso proamnios. Se forman las estructuras anexas del
embrión, que serán responsables de la nutrición del futuro
embrión.
4
FOTO
52
ANTERIOR
SIGUIENTE
SEGUNDO
DÍA DE INCUBACIÓN
En este momento se forman la mayoría de los futuros órganos
del embrión. Se aprecia muy bien la formación de los vasos sanguíneos sobre el saco vitelino. El embrión comienza a girar hacia
el lado izquierdo. En la porción proximal se observan los vasos
sanguíneos intraembrionarios (1) que se originan en la aorta. Los
vasos sanguíneos extraembrionarios (2) unirán el embrión con el
saco vitelino. Se notan los latidos y se ve como un anillo vascular (1).
5
FOTO
2
1
53
ANTERIOR
SIGUIENTE
TERCER
DÍA DE INCUBACIÓN
Comienza la formación del amnios que rodea al embrión. La flexión cráneo caudal es ahora más profunda. A las cincuenta y
cuatro horas de incubación se forman los arcos aórticos y la torsión del corazón sobre sí mismo. Comienza la formación de
alas, patas, nariz y alantoides. Los vasos sanguíneos (1) y el
órgano pulsátil (2), se observan fácilmente, se observan los latidos.
6
FOTO
2
1
54
ANTERIOR
SIGUIENTE
CUARTO
DÍA DE INCUBACIÓN
En este momento el embrión está bien separado del saco vitelino, debido a ello ha quedado doblado hacia su lado izquierdo,
quedando fijado por el pedículo vitelino. En este momento se
forma la bolsa amniótica. Se inicia la formación del estomodeo
(futura boca) y lengua del embrión. Se comienza a notar la formación del ojo (1).
7
FOTO
1
55
ANTERIOR
SIGUIENTE
QUINTO
DÍA DE INCUBACIÓN
Se pueden observar a simple vista los ojos (1). No se observan
patas, pico ni las alas. Aquí comienza la diferenciación sexual,
se forman la molleja y el proventrículo. Los cartílagos comienzan a osificarse (formación ósea). Continúa en la Foto N° 9.
8
FOTO
1
56
ANTERIOR
SIGUIENTE
QUINTO
DÍA DE INCUBACIÓN
Continuación de la Foto N° 8. Se observa muy bien el saco
amniótico (1). La alantoides se hace funcional. Hay una gran
curvatura en la zona cefálica.
9
FOTO
1
57
ANTERIOR
SIGUIENTE
SEXTO
DÍA DE INCUBACIÓN
Comienzan los movimientos voluntarios del embrión. Inicio de
la formación del pico, se observa la estructura denominada diamante del pico (1).
10
FOTO
1
58
ANTERIOR
SIGUIENTE
SÉPTIMO
DÍA DE INCUBACIÓN
Rotación del embrión. Se observa muy bien la vascularización
del vitelo (1). Los movimientos voluntarios son muy notables.
Se visualizan las patas, alas y pico. El embrión se encuentra
todavía sobre la superficie del saco vitelino.
11
FOTO
1
59
ANTERIOR
SIGUIENTE
SÉPTIMO
DÍA DE INCUBACIÓN
El amnios (1) se visualiza como una estructura serosa transparente, que envuelve al embrión. El saco vitelino (2) es un área
ópticamente más densa y vascularizada. La alantoides (3) es
menos vascularizada y menos densa. El abdomen es más prominente por el desarrollo de las vísceras en su interior. El pico tiene
forma de pico de loro.
1
12
FOTO
2
3
60
ANTERIOR
SIGUIENTE
OCTAVO
DÍA DE INCUBACIÓN
El embrión se ubica lateralmente al vitelo (1), se notan los dedos
y las patas.
13-1
FOTO
1
61
ANTERIOR
SIGUIENTE
OCTAVO
DÍA DE INCUBACIÓN
Se inicia la formación de los folículos de las plumas. El pico
tiene forma de diamante (1).
13-2
FOTO
1
62
ANTERIOR
SIGUIENTE
NOVENO
DÍA DE INCUBACIÓN
Las patas se orientan hacia la cámara de aire (1).
14-1
FOTO
1
63
ANTERIOR
SIGUIENTE
NOVENO
DÍA DE INCUBACIÓN
El embrión tiene forma de ave y se observa la abertura bucal (1).
14-2
FOTO
1
64
ANTERIOR
SIGUIENTE
DÉCIMO
DÍA DE INCUBACIÓN
El pico comienza a endurecerse (1). En este momento el embrión
está separado del saco vitelino, y flota libremente en el líquido
amniótico, se pueden observar los poros de la piel. Se consume
la albúmina.
15
FOTO
1
65
ANTERIOR
SIGUIENTE
UNDÉCIMO
DÍA DE INCUBACIÓN
El cuerpo del embrión crece rápidamente, el párpado (1)
comienza a cubrir el ojo. Se comienzan a notar las proporciones
anatómicas.
16
FOTO
1
66
ANTERIOR
SIGUIENTE
DUODÉCIMO
DÍA DE INCUBACIÓN
17-1
FOTO
Se percibe el plumón (1) en alas, muslos y cuello.
1
67
ANTERIOR
SIGUIENTE
DUODÉCIMO
DÍA DE INCUBACIÓN
Los dedos están completamente formados. Se produce la mineralización ósea y comienza el desarrollo de las escamas en la piel
de las patas.
17-2
FOTO
68
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMOTERCER
DÍA DE INCUBACIÓN
En este momento comienza la absorción de la proteína que contiene el líquido amniótico. Aparecen la cresta, barbillas y escamas de las patas (1).
18-1
FOTO
1
69
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMOTERCER
DÍA DE INCUBACIÓN
En este momento el plumón (1) cubre a todo el embrión.
18-2
FOTO
1
70
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMOCUARTO
DÍA DE INCUBACIÓN
En este momento las proporciones corporales son las características de un pollo, el embrión efectúa una rotación y altera su
posición con relación al eje longitudinal del huevo. La cabeza
gira en dirección de la cámara de aire. Nótese como el pico (1)
aparece con la punta córnea hacia el polo superior del huevo.
19
FOTO
1
71
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMOCUARTO
20-1
DÍA DE INCUBACIÓN
FOTO
El plumaje es evidente (1),
se observa muy bien el pico córneo (2).
2
1
72
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMOCUARTO
DÍA DE INCUBACIÓN
Se evidencian las escamas en la piel de las patas y dedos (3), las
uñas (4) están presentes. Obsérvese el color de la piel, que
comienza a ser más amarillo, ya que el embrión comenzó a utilizar el contenido lipídico del vitelo.
20-2
FOTO
3
4
73
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMOQUINTO
DÍA DE INCUBACIÓN
La albúmina ha desaparecido en su totalidad. Si se encuentran
vestigios de ésta, es por humedad alta, o temperatura baja, o
ambas situaciones, en la incubadora. El intestino comienza (1)
a penetrar al interior de la cavidad abdominal.
21-1
FOTO
1
74
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMOQUINTO
DÍA DE INCUBACIÓN
Proceso de penetración del intestino en la cavidad abdominal.
21-2
FOTO
75
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMOSEXTO
DÍA DE INCUBACIÓN
Se observa muy bien la presencia de plumas en todo el embrión.
El vitelo (1), tiene un rol muy importante en este momento, si la
temperatura de la incubadora sube a valores muy altos, se desnaturalizan las proteínas afectando así su valor nutritivo. Las
uñas y pico se endurecen más aún. En el saco alantoideo aparece un acúmulo de material oscuro, producto de las excreciones
del metabolismo del embrión.
22
FOTO
1
76
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMOSÉPTIMO
DÍA DE INCUBACIÓN
El embrión ha absorbido todo el líquido amniótico y alantoideo.
Se ubica en posición normal para nacer, con el pico debajo del
ala derecha. Se prepara para el nacimiento.
23
FOTO
77
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMOCTAVO
DÍA DE INCUBACIÓN
El embrión ha completado totalmente su crecimiento, el pico se
orienta hacia la derecha. Comienza la absorción de la yema,
junto con la entrada del saco vitelino (1) en la cavidad abdominal.
24-1
FOTO
1
78
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMOCTAVO
DÍA DE INCUBACIÓN
Si se retira la cáscara del polo superior del huevo, se observará
que la cámara de aire no ha sido picada aún (1). Algunos embriones adelantados comienzan la ruptura del amnios.
24-2
FOTO
1
79
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMONOVENO
DÍA DE INCUBACIÓN
El embrión ocupa todo el espacio del huevo, excepto la cámara
de aire. En este momento comienza la respiración pulmonar. La
absorción del vitelo, tal como se observa en las siguientes tres
fotos, se va produciendo paulatinamente, hasta que penetra totalmente en la cavidad abdominal. Durante este proceso de absorción, el embrión comienza a sufrir contracciones espasmódicas,
haciendo que la cabeza se impulse hacia fuera, el pico se dirige
hacia arriba y a la derecha, se rompe el alantoides, como consecuencia aumenta la concentración de dióxido de carbono, siendo
el estímulo para el comienzo de la respiración pulmonar.
25-1
FOTO
80
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMONOVENO
DÍA DE INCUBACIÓN
Continuación del proceso de penetración del saco vitelino en la
cavidad abdominal.
25-2
FOTO
81
ANTERIOR
SIGUIENTE
DECIMONOVENO
DÍA DE INCUBACIÓN
Finalización del proceso de penetración del saco vitelino en la
cavidad abdominal.
25-3
FOTO
82
ANTERIOR
SIGUIENTE
VIGÉSIMO
DÍA DE INCUBACIÓN
El embrión, luego de romper la cámara de aire, ocupa todo el
espacio disponible y comienza a picar (1).
26-1
FOTO
1
83
ANTERIOR
SIGUIENTE
VIGÉSIMO
DÍA DE INCUBACIÓN
En este momento el saco vitelino ya fue totalmente incorporado
a la cavidad abdominal y comienza la cicatrización del ombligo.
26-2
FOTO
84
ANTERIOR
SIGUIENTE
VIGESIMOPRIMER
DÍA DE INCUBACIÓN
El embrión, luego de permanecer veinticuatro horas con respiración pulmonar, comienza con los esfuerzos para eclosionar. Pica
la cáscara del huevo (1), en forma rotativa y en sentido inverso
a las agujas del reloj. Los pollitos nacen mojados y agotados por
el esfuerzo realizado (2).
27-1
FOTO
2
1
85
ANTERIOR
SIGUIENTE
VIGESIMOPRIMER
DÍA DE INCUBACIÓN
Una manera de determinar que el nacimiento de los huevos viables, se ha completado, es calculando el porcentaje de pollitos
con el plumón del cuello mojado. Como índice se calcula que
con un 5% finalizó el nacimiento, retirándose los carros de las
nacedoras.
27-2
FOTO
86
ANTERIOR
SIGUIENTE
8
Capítulo
ALTERACIONES
DE LAS
ESTRUCTURAS DEL
HUEVO Y
PATOLOGÍA
EMBRIONARIA
87
ANTERIOR
SIGUIENTE
COAGULO
DE SANGRE EN EL VITELO.
Es frecuente encontrarlo, no debe confundirse con el desarrollo
embrionario. Es un desprendimiento de tejidos o sangre de la
gallina, en el momento de la ovulación.
28
FOTO
88
ANTERIOR
SIGUIENTE
VITELO
MOTEADO O REVUELTO
Asociado a cuadros tóxicos de la gallina. Por ejemplo intoxicación por nicarbazina, que afecta también el color de la cáscara
del huevo y produce infertilidad. La albúmina y la yema pueden
aparecer mezclados (huevo revuelto).
29
FOTO
89
ANTERIOR
SIGUIENTE
MANCHA
BLANCA EN EL VITELO
Hay manchas blanquecinas (1), relacionadas con estados sanitarios de la gallina. No debe confundirse con el desarrollo prematuro del embrión, que se observa en la Foto N° 4.
30
FOTO
1
90
ANTERIOR
SIGUIENTE
CONTAMINACIÓN
CON HONGOS
31-1
FOTO
La contaminación por hongos produce huevos con un contenido
verdoso azulino. Mayormente producido por Aspergillus fumigatus.
91
ANTERIOR
SIGUIENTE
CONTAMINACIÓN
BACTERIANA
La contaminación bacteriana puede producir explosión de huevos. Pero si ésta no tiene lugar se identifica por huevos de olor
característico y líquidos turbios.
31-2
FOTO
92
ANTERIOR
SIGUIENTE
COLONIA
DE
ASPERGILLUS
SPP.
32
FOTO
Colonia de Aspergillus spp., en un huevo. El más frecuente es
A. fumigatus.
93
ANTERIOR
SIGUIENTE
ALBÚMINA
COAGULADA
En los huevos remanentes que no eclosionaron y que no tienen
desarrollo embrionario, la albúmina está coagulada (1). Esto se
debe a que los huevos estuvieron expuestos a muy alta temperatura, tanto en la granja o durante el transporte a la planta de incubación.
33
FOTO
1
94
ANTERIOR
SIGUIENTE
TRAUMATISMO
DEL EMBRIÓN
Traumatismo, causado durante la transferencia. En huevos cascados durante la transferencia se encuentran las membranas
resecas.
34
FOTO
95
ANTERIOR
SIGUIENTE
BAJA
TEMPERATURA Y/O ALTA HUMEDAD DURANTE EL
PERÍODO DE INCUBACIÓN
35-1
FOTO
La pérdida de peso durante el período de la incubación ha sido
menor al 12%. Los embriones pican muy arriba (1), y en una
franja ancha, o no nacen.
1
96
ANTERIOR
SIGUIENTE
BAJA
TEMPERATURA Y/O ALTA HUMEDAD DURANTE EL
PERÍODO DE INCUBACIÓN
35-2
FOTO
Los pollitos, cuando nacen bajo estas condiciones, presentan los
tarsos muy enrojecidos (1), hiperémicos por el esfuerzo realizado para eclosionar.
1
97
ANTERIOR
SIGUIENTE
POLLITO
(PNN),
CUELLO.
PICADO NO NACIDO
CON EDEMA EN
36
FOTO
En el tejido subcutáneo se encuentra este trasudado gelatinoso,
por el esfuerzo para eclosionar.
98
ANTERIOR
SIGUIENTE
MALFORMACIONES
37-1
Los complejos procesos, que llevan a las malformaciones de las
estructuras anatómicas, en este caso condujeron a la presentación de tres patas en un mismo miembro del embrión, se lo denomina triplopodia.
FOTO
99
ANTERIOR
SIGUIENTE
MALFORMACIONES
37-2
Duplicación del maxilar superior (1).
FOTO
1
100
ANTERIOR
SIGUIENTE
MALFORMACIONES
38
FOTO
Malformación del miembro inferior, puesto que no se ha desarrollado el hueso largo de la pata, siendo el resto del embrión de
características normales.
101
ANTERIOR
SIGUIENTE
MALFORMACIONES
39
FOTO
Encefalocele, también descripta como hernia del cerebro, entre
las malformaciones es la más frecuente. Puede ser un hallazgo
en la embriodiagnosis, o también se lo puede encontrar entre los
pollitos que se descartan en la planta de incubación, puesto que
cierto porcentaje alcanza a eclosionar. Puede tener etiologías
muy diversas, pero la más comúnmente descripta, es el exceso
de temperatura durante la incubación.
102
ANTERIOR
SIGUIENTE
MALFORMACIONES
40
Embrión cíclope. Ambos ojos se fusionan en uno en la línea
media. Es un hallazgo poco frecuente.
FOTO
103
ANTERIOR
SIGUIENTE
MALFORMACIONES
41
Anoftalmía. Es la ausencia total de ojos.
FOTO
104
ANTERIOR
SIGUIENTE
MALFORMACIONES. DUPLICIDAD
ANTERIOR
Se pueden presentar duplicaciones de las estructuras anatómicas.
En este caso se trata de un embrión dicéfalo. La duplicación es
anterior o craneal, por afectar esta parte del cuerpo.
42
FOTO
105
ANTERIOR
SIGUIENTE
MALFORMACIONES. DUPLICIDAD
POSTERIOR
La duplicidad es posterior, cuando las partes anteriores del cuerpo están normales, mientras que la parte posterior o caudal es
doble.
43
FOTO
106
ANTERIOR
SIGUIENTE
MALFORMACIONES.
EMBRIONES
44
UNIDOS O FUSIONADOS.
FOTO
Para describirlos se utiliza el sufijo pago (atado), a continuación
el término que se refiere a la región anatómica por donde se
encuentra
fusionado
el
1
embrión. El caso mostrado en
esta foto se denomina cefalotoracópago (1). Cuando los
embriones provienen de un
mismo huevo o cigoto comparten el mismo vitelo, a diferencia de aquellos que se originan de un huevo de doble
yema con distintos cigotos y
que no poseen vitelo en
vitelo
común (2).
2
vitelos
107
ANTERIOR
SIGUIENTE
9
Capítulo
PATOLOGÍA
PERINATAL
108
ANTERIOR
SIGUIENTE
PROBLEMAS
DE PATAS AL NACIMIENTO
45
FOTO
De etiologías muy variadas. Se lo relaciona mayormente por
traumatismos ocasionados por bandejas de las nacedoras, cinta
transportadora, o cajas de pollitos, con los pisos muy lisos y resbaladizos.
109
ANTERIOR
SIGUIENTE
SIGNOS
46
NERVIOSOS
FOTO
Los signos nerviosos al momento del nacimiento de etiologías
muy variadas, tal como se trata en el Capítulo 6.
110
ANTERIOR
SIGUIENTE
POLLITOS
CON LA PARTE SUPERIOR
DEL PICO SANGRANDO
47
FOTO
Es por el esfuerzo que ha tenido que realizar para la eclosión.
Relacionado con la poca pérdida de humedad durante el período
de incubación.
111
ANTERIOR
SIGUIENTE
OMBLIGO
MAL CICATRIZADO
48
FOTO
El orificio umbilical no se ha cerrado totalmente.
112
ANTERIOR
SIGUIENTE
BOTONES
NEGROS EN EL OMBLIGO
49
FOTO
El ombligo está mal cicatrizado, partes del saco vitelino, o tejidos extraembrionarios, no han sido absorbidos completamente al
momento de cerrarse el orificio umbilical.
113
ANTERIOR
SIGUIENTE
ONFALITIS
50
FOTO
Es una infección de origen bacteriano. Se caracteriza porque
están presentes los signos cardinales de la inflamación.
114
ANTERIOR
SIGUIENTE
ASPERGILOSIS
51
FOTO
Se produce por Aspergillus fumigatus. A veces se presentan
cuadros muy severos, en pollitos recién nacidos, en las primeras
semanas de vida. La foto muestra un caso que presenta: nódulos
en las serosas (1), en la masa encefálica(2), y en los pulmones
(3), también pueden encontrarse tapones caseosos en los bronquios.
2
3
1
115
ANTERIOR
SIGUIENTE
DESHIDRATACIÓN
Y
GOTA
52
FOTO
El pollito que sufre deshidratación suele presentar un cuadro de
gota, que puede ser articular (1), cuando los cristales de ácido
úrico se depositan en las articulaciones, o visceral cuando afecta los órganos internos. Un signo característico de deshidratación
de los pollitos es la observación de la vena metatarsiana (2).
2
1
116
ANTERIOR
SIGUIENTE
POLLITOS
PEGAJOSOS
53
FOTO
Puede deberse a baja temperatura o alta humedad, ventilación
inadecuada o a explosión de huevos en la nacedora.
117
ANTERIOR
SIGUIENTE
POLLITOS
CON EL PLUMÓN CORTO, SECO
Y LOS OJOS PEGADOS.
54
FOTO
Puede ser por temperatura alta, humedad baja, excesiva ventilación en la nacedora.
118
ANTERIOR
SIGUIENTE
POLLITOS
CON INFECCIÓN BACTERIANA
55
FOTO
Las más frecuentes son las causadas por Escherichia coli, y por
Salmonella spp. Los pollitos presentan generalmente pericarditis
(1). El saco vitelino se lo encuentra indurado o coagulado (2),
siendo ésta una lesión más fácil de observar en pollitos que
transcurren la primer semana de vida.
1
2
119
ANTERIOR
ATLAS DE PATOLOGÍA DE LA
INCUBACIÓN DEL POLLO
Primera edición digital
Agosto, 2014
Lima - Perú
©
Carlos Mario Plano &
Ana María Di Matteo
PLD 1179
Editor: Víctor López Guzmán
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Lima - Perú
PROYECTO LIBRO DIGITAL (PLD)
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Un libro digital, también conocido como e-book, eBook, ecolibro o libro electrónico, es una
versión electrónica de la digitalización y diagramación de un libro que originariamente es editado para
ser impreso en papel y que puede encontrarse en internet o en CD-ROM. Por, lo tanto, no reemplaza al
libro impreso.
Entre las ventajas del libro digital se tienen:
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incompetencia de nuestras profesoras y profesores de producir libros, ponencias y trabajos de investigación de alta calidad en los contenidos, y, que su existencia no está circunscrita solo a las letras.
Algunos objetivos que esperamos alcanzar:
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• El libro digital bien elaborado, permitirá dar un buen nivel de conocimientos a las alumnas y alumnos
de las universidades nacionales y, especialmente, a los del interior del país donde la calidad de la
educación actualmente es muy deficiente tanto por la infraestructura física como por el personal docente.
• E l p e r s o n a l d o c e n t e j u g a r á u n r o l d e t u t o r, f a c i l i t a d o r y c o n d u c t o r d e p r o y e c t o s
de investigación de las alumnas y alumnos tomando como base el libro digital y las direcciones electrónicas recomendadas.
• Que este proyecto ayude a las universidades nacionales en las acreditaciones internacionales y
mejorar la sustentación de sus presupuestos anuales en el Congreso.
En el aspecto legal:
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Lima - Perú, enero del 2011
“El conocimiento es útil solo si se difunde y aplica”
Víctor López Guzmán
Editor