Download MANEJO INTEGRADO DE LAS PLAGAS DEL CHILE Y JITOMATE

INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES
FORESTALES, AGRICOLAS Y PECUARIAS
CENTRO DE INVESTIGACION REGIONAL DEL NORESTE
CAMPO EXPERIMENTAL EBANO
MANEJO INTEGRADO
DE LAS PLAGAS DEL CHILE Y
JITOMATE EN LA ZONA MEDIA
DE SAN LUIS POTOSI
FOLLETO PARA PRODUCTORES No. 5
NOVIEMBRE DE 2003
SECRETARIA DE AGRICULTURA, GANADERIA,
DESARROLLO RURAL, PESCA Y ALIMENTACION
SECRETARIO
Sr. Javier Bernardo Usabiaga Arroyo
SUBSECRETARIO DE AGRICULTURA Y GANADERIA
Ing. Francisco López Tostado
SUBSECRETARIO DE DESARROLLO RURAL
Ing. Antonio Ruíz García
SUBSECRETARIO DE FOMENTO A LOS AGRONEGOCIOS
Dr. Roberto Newell García
COMISIONADO NACIONAL DE ACUACULTURA Y PESCA
Ing. Ramón Corral Avila
INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES
FORESTALES, AGRICOLAS Y PECUARIAS
DIRECTOR GENERAL
Dr. Jesús Moncada de la Fuente
COORDINADOR GENERAL DE INVESTIGACION Y DESARROLLO
Dr. Ramón A. Martínez Parra
DIRECTOR GENERAL DE INVESTIGACION AGRICOLA
Dr. Sebastián Acosta Núñez
DIRECTOR GENERAL DE INVESTIGACION PECUARIA
Dr. Carlos A. Vega y Murguía
DIRECTOR GENERAL DE INVESTIGACION FORESTAL
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DIRECTOR GENERAL DE TRANSFERENCIA DE PRODUCTOS Y SERVICIOS
Dr. Edgar Rendón Poblete
DIRECTOR GENERAL DE ADMINISTRACIÓN
Dr. David Moreno Rico
CENTRO DE INVESTIGACION REGIONAL NORESTE
DIRECTOR REGIONAL
Dr. Luis Angel Rodríguez del Bosque
DIRECTOR DE INVESTIGACION
Dr. Jorge Elizondo Barrón
DIRECTOR DE ADMINISTRACION
C.P. José C. González Flores
DIRECTOR DE COORDINACION Y VINCULACION
EN SAN LUIS POTOSI
M.C. José Luis Barrón Contreras
JEFE DEL CAMPO EXPERIMENTAL EBANO
M.C. Eduardo Céspedes Torres
INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES
FORESTALES, AGRICOLAS Y PECUARIAS
CENTRO DE INVESTIGACION REGIONAL DEL
NORESTE
CAMPO EXPERIMENTAL EBANO
MANEJO INTEGRADO
DE LAS PLAGAS DE CHILE Y
JITOMATE EN LA ZONA MEDIA
DE SAN LUIS POTOSI
M.C. Enrique Garza Urbina
Investigador del área de Entomología
Campo Experimental Ebano
Ing. Ausencio Rivas Monge
Director Técnico del Centro Regional de Estudios y
Reproducción de Organismos Benéficos de Cd. Fernández,
S. L. P.
Folleto para Productores Núm. 5
San Luis Potosí, S.L.P., México. Noviembre de 2003
MANEJO INTEGRADO DE LAS PLAGAS DEL CHILE Y
JITOMATE EN LA ZONA MEDIA DE SAN LUIS POTOSI
No está permitida la reproducción total o parcial de este
folleto, ni la transmisión de ninguna forma o por cualquier
medio ya sea electrónico, mecánico, por fotocopias, registro
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Derechos reservados © 2003, Instituto Nacional de
Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias.
Serapio Rendón No. 83
Col. San Rafael
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Tel. (55) 5140-1600
Primera edición
Tiraje 500 ejemplares
Impreso en México
Clave INIFAP/CIRNE A - 278
Folleto para Productores Núm. 5. Noviembre de 2003
CAMPO EXPERIMENTAL EBANO
Km. 67 Carretera Valles -Tampico
Apdo. Postal # 87
Ebano, San Luis Potosí, México
Tel. y Fax (845) 263 3090
E-mail: [email protected]
La cita correcta de este folleto es:
Garza U. E. y A. Rivas M. 2003. Manejo integrado de las
plagas del chile y jitomate en la Zona Media de San Luis
Potosí. INIFAP-CIRNE. Campo Experimental Ebano. Folleto
para Productores Núm. 5. San Luis Potosí, México. 47 p.
CONTENIDO
Página
INTRODUCCION
SITUACION ACTUAL DEL CONTROL DE
PLAGAS
PLAGAS DEL CHILE Y JITOMATE
MOSQUITA BLANCA
Importancia Económica
Descripción Morfológica
Biología, Hábitos y Daños
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Control Mecánico
Control Biológico
Control Químico
PULGON SALTADOR
Importancia Económica
Descripción Morfológica
Biología, Hábitos y Daños
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Control Mecánico
Control Biológico
Control Químico
PULGON VERDE
Importancia Económica
Descripción Morfológica
Biología, Hábitos y Daños
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Control Mecánico
Control Biológico
Control Químico
BARRENILLO DEL CHILE
Importancia Económica
Descripción Morfológica
Biología, Hábitos y Daños
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Control Mecánico
Control Biológico
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Control Químico
MINADOR DE LA HOJA
Importancia Económica
Descripción Morfológica
Biología, Hábitos y Daños
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Control Mecánico
Control Biológico
Control Químico
ARAÑA ROJA
Importancia Económica
Descripción Morfológica
Biología, Hábitos y Daños
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Control Mecánico
Control Biológico
Control Químico
GUSANO DEL FRUTO
Importancia Económica
Descripción Morfológica
Biología, Hábitos y Daños
GUSANO ALFILER
Importancia Económica
Descripción Morfológica
Biología, Hábitos y Daños
GUSANO SOLDADO
Importancia Económica
Descripción Morfológica
Biología, Hábitos y Daños
GUSANO DEL CUERNO
Importancia Económica
Descripción Morfológica
Biología, Hábitos y Daños
GUSANO FALSO MEDIDOR
Importancia Económica
Descripción Morfológica
Biología, Hábitos y Daños
MANEJO DE POBLACIONES DE
PLAGAS DEL ORDEN LEPIDOPTERA
Control Cultural
Control Mecánico
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Control Biológico
Control Químico
IMPACTO Y DOMINIO DE RECOMENDACION
SINONIMIAS
APENDICE
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MANEJO INTEGRADO DE LAS PLAGAS DEL
CHILE Y JITOMATE EN LA ZONA MEDIA
DE SAN LUIS POTOSI
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Enrique Garza Urbina
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Ausencio Rivas Monge
INTRODUCCION
Los cultivos de chile Capsicum annuum y de
jitomate Lycopersicon esculentum son las hortalizas de
mayor importancia en la Zona Media de San Luis Potosí por
la derrama económica que deja a los productores y por ser
fuente de empleo para la gente de campo, ya que se
necesitan más de 200 jornales por hectárea en actividades
que van desde la siembra y labores de cultivo hasta la
cosecha, selección, empaque y venta del fruto; además, es
una fuente importante de divisas para el país. En esta
región se sembraban de 2,000 a 4,000 hectáreas anuales
en los municipios de Rioverde, Cd. Fernández, San Ciro de
Acosta, Cerritos y Villa Juárez, S.L.P. Sin embargo, en la
década de los noventa del siglo pasado, el cultivo se vio
afectado por diferentes plagas, principalmente mosquita
blanca, la cual transmite enfermedades virales que impiden
el desarrollo de las plantas y llegan a dañar hasta el 100 %
de la producción, lo que originó la disminución de la
superficie sembrada.
SITUACION
PLAGAS
ACTUAL
DEL
CONTROL
DE
El control de las plagas de chile y jitomate en la
Zona Media Potosina, ha dependido principalmente del uso
de insecticidas órgano sintéticos, lo que origina el fenómeno
de la resistencia debido a la alta presión de selección
ocasionada por un mayor número de aplicaciones, al uso de
1
2
M.C. Investigador del Campo Experimental Ebano. CIRNE-INIFAP
Ing. Director Técnico del CREROB. Cd, Fernández, S. L. P.
1
mezclas de insecticidas y por el incremento de las dosis
iniciales efectivas; además todo esto causa problemas de:
residuos tóxicos en las cosechas, eliminación de la fauna
benéfica, incremento de los costos de producción y
contaminación ambiental.
El presente folleto tiene como objetivo orientar a los
productores en: a) El conocimiento de las plagas y de
métodos prácticos y económicos para detectar y evitar el
daño que ocasionan a estos cultivos. b) El uso correcto de
los insecticidas y otras formas de control, dentro de una
estrategia de Manejo Integrado de Plagas (MIP).
PLAGAS DEL CHILE Y JITOMATE
En esta publicación se presentan las principales
plagas que ocasionan daños económicos a los cultivos de
chile y jitomate en la región; se describen las características
más importantes de su morfología, biología, tipos de daños
que producen y sus métodos de control; estas pertenecen al
Phylum artropoda, especialmente a las clases: Insecta y
Aráchnida; dentro de la clase insecta a los ordenes
Homóptera, Coleoptera, Díptera y Lepidóptera y en
Aráchnida al orden Acarina.
MOSQUITA BLANCA Bemisia tabaci y B. argentifolii
Orden: HOMOPTERA
Familia: ALEYRODIDAE
Importancia Económica
La mosquita blanca es una plaga que en los últimos
años ha incrementado su incidencia en la Zona Media. Son
varias las causas por las que se deriva su importancia, una
de ellas, es el daño directo, ya que al succionar la savia de
las plantas las debilita y puede ocasionar su muerte, sobre
todo en sembradíos en los que se presentan altas
poblaciones; sin embargo, el daño mayor está relacionado
2
con la transmisión de enfermedades de tipo viral
(geminivirus), para lo cual no es necesaria la presencia de
poblaciones altas para propagar la enfermedad.
Descripción Morfológica
Huevo. Los huevecillos son elípticos y alargados,
con el polo superior más agudo que el inferior y llevan en
esta parte un pedicelo corto. Son de color verde pálido
recién ovipositados y después adquieren una coloración
café obscura.
Ninfa. Las ninfas son de forma oval, de color
amarillo pálido o amarillo verdoso, pasan por cuatro
estadios, el primero posee patas y es el único móvil, los
demás son ovalados y sin patas; en vista dorsal el cuerpo
es más ancho en la parte anterior (Figura 1 del apéndice).
Después de que la ninfa ha empezado su alimentación pasa
por dos instares ninfales más, los cuales se parecen a
“escamas”. Al terminar el tercer instar pasa a un periodo de
inactividad y latencia denominado “pupa”, durante el cual no
se alimenta hasta que llega al estado adulto.
Adulto. Los adultos miden 1.5 milímetros de
longitud, son de color blanco amarillento (Figura 2 del
apéndice), se les encuentra en el envés de las hojas y
cuando se les disturba vuelan rápidamente.
Biología, Hábitos y Daños
La hembra de la mosquita blanca oviposita más de
300 huevecillos en el envés de las hojas, los cuales son
colocados desordenadamente en posición vertical. La ninfa
pasa por cuatro estadios, en los cuales se alimenta en el
envés, en el primero se desplaza distancias cortas hasta
seleccionar un sitio donde alimentarse y ahí se establece
hasta llegar a adulto.
El daño directo lo ocasionan las ninfas y los adultos
al succionar la savia de las plantas lo que ocasiona el
3
amarillamiento, moteado y encrespamiento de las hojas,
seguido de necrosis y defoliación; otro daño es la excreción
de mielecilla sobre las hojas en la cual se desarrolla una
fungosis negra llamada fumagina, la cual interfiere con la
fotosíntesis y baja la calidad de la cosecha. Sin embargo, el
daño mayor de esta plaga está relacionado con la
transmisión de enfermedades de tipo viral, las cuales
afectan el rendimiento y calidad de las cosechas, con daños
que varían de 20 a 100 %.
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Selección del sitio de siembra. La siembra se
deberá realizar en áreas que no tengan huertas
abandonadas de chile y de jitomate, ya que en estas se
reproducen los virus y las plagas, de ahí se dispersan a las
nuevas plantaciones. Seleccionar lotes con buena fertilidad
y sin problemas de drenaje, con una pendiente mínima del
0.25 %, con la finalidad de evitar encharcamientos que
estresan y debilitan a las plantas, las cuales son más
susceptibles a las plagas y a los geminivirus.
Fecha de siembra. En el cultivo de chile se
sugiere realizar la siembra del almacigo en el período
comprendido del 15 de noviembre al 31 de diciembre y el
0
trasplante del 1 de febrero al 15 de marzo; para el cultivo
de jitomate sembrar el almacigo durante el mes de enero y
el transplante se debe realizar del 15 de febrero al 15 de
marzo, períodos en los que se obtienen los máximos
rendimientos y se tiene la menor incidencia de las plagas.
Se recomienda proteger los almácigos o producir la planta
en invernaderos para que lleguen al campo libres de virus y
no realizar siembras escalonadas que favorezcan la
reproducción del inoculo y de las plagas.
Control de maleza. El control de maleza y de
hospedantes alternos de las plagas y de los virus en la
huerta, en los alrededores y la eliminación de plantas
4
virosas del cultivo ayudan a reducir el inoculo y la incidencia
de las plagas.
Fertilización. La fertilización con la dosis 180-90-00
y el manejo óptimo de la humedad del cultivo hace más
tolerantes a las plantas del ataque de virus y de las
diferentes plagas que afectan este cultivo, ya que se
optimiza el crecimiento de las plantas.
Rotación de cultivos. La rotación con cultivos que
no son afectados por las plagas del chile y jitomate y en los
cuales no se reproducen los virus, como es el caso del
maíz, ayuda a reducir la fuente de inoculo y la incidencia de
plagas y de enfermedades de estos cultivos.
Destrucción de residuos del cultivo. Se sugiere
destruir los residuos de plantas inmediatamente después del
último corte mediante métodos de labranza, con la finalidad
de impedir el incremento de las poblaciones de plagas y la
fuente de inoculo de virus.
Control Mecánico
Uso de trampas. El uso de trampas adhesivas de
color amarillo es una técnica para monitorear y para
trampeo masivo, con la finalidad de reducir la incidencia de
la mosquita blanca y de otras plagas. Estas trampas se
pueden elaborar con botes, tarjetas o tiras de plástico de
color amarillo, a las cuales se les unta una capa delgada de
grasa automotriz; para monitoreo se utilizan cuatro trampas
por cada cinco hectáreas, ubicadas en las orillas del predio
en cada punto cardinal. Para trampeo masivo se rodea el
lote con tiras de plástico de 30 centímetro de ancho. Sin
embargo, también son atraídos otros insectos por este color;
en parcelas de transferencia de tecnología con la estrategia
de MIP, se han observado grandes cantidades de fauna
benéfica en estas trampas, por lo que en caso de que esto
suceda será necesario eliminar el trampeo masivo.
5
Control Biológico
Conservación de la fauna benéfica. En la
estrategia de MIP se deben tener las precauciones
necesarias para conservar la fauna benéfica que se
presenta de manera natural en la región, ya que la mayoría
de los insecticidas afectan las poblaciones de estos
insectos, por lo que solamente deberán utilizarse productos
autorizados, con buena efectividad y selectivos en el control
de la plaga, los cuales se mencionan en el apartado de
control químico.
En la Zona Media se tiene alta incidencia de
insectos benéficos cuando se implementa esta estrategia,
debido a que durante los primeros 90 días del ciclo del
cultivo no se generalizan las aplicaciones de insecticidas y a
que los productos sugeridos presentan bajo o nulo impacto
sobre las poblaciones de insectos parásitos y depredadores;
con este manejo, se conserva la fauna benéfica nativa,
entre las que destacan por su abundancia: parasitoides del
tercer estadio ninfal de mosquita blanca de los géneros
Encarsia y Eretmocerus, la mosquita bailarina Drapetis sp.,
depredador de adultos de esta misma plaga, crisopas
Chrysopa spp., chinche pirata Orius spp., chinche
Macrolophus sp. y arañas (Figuras 24, 25, 26, 27, 28 y 29
del apéndice). Es por esto que durante el muestreo de
plagas, se debe contabilizar la incidencia de esta fauna
benéfica, además de colectar muestras de las plagas para
determinar el porcentaje de parasitismo.
Uso
de
entomopatógenos.
El
uso
de
microorganismos entomopatógenos que incluyen hongos,
bacterias, virus, protozoarios y nemátodos, se ha
desarrollado de manera diferente al control biológico clásico,
ya que son utilizados como tratamientos repetitivos y no
como un organismo capaz de perpetuarse por si mismo, es
decir, se manejan como insecticidas biológicos, los cuales
difieren en forma significativa de los plaguicidas
convencionales, debido a que son organismos vivos que
generalmente regulan la población plaga más que
6
eliminarla, tienen un impacto retardado y son muy
selectivos.
Para el control de la mosquita blanca los mejores
resultados se han obtenido con el hongo Paecilomyces
12
fumosoroseus y Verticillium lecanii en dosis de 2.4 X 10
conidias por hectárea, es decir 1.0 litro de producto
comercial, con reducciones superiores al 80 y 70 % en
ninfas y adultos respectivamente, superando a los hongos
Beauveria bassiana y Metharizium anisopliae.
Control Químico
Muestreos y Umbral de Aplicación
En el almacigo. La etapa de almacigo es
considerada la más crítica, ya que las plántulas son más
susceptibles al virus trasmitido por mosquita blanca, por lo
que se recomienda que estos se encuentren protegidos con
malla y tratar la semilla como se menciona en el apartado
de aplicación de insecticidas. En esta etapa se deben
2
muestrear un mínimo de 50 plántulas por 10 m de almacigo
por lo menos tres veces por semana o colocar trampas
adhesivas de color amarillo para monitorear la población de
insectos. La incidencia de mosquita blanca, pulgones,
diabróticas, trips y minador de la hoja, deja de tener
importancia en esta etapa al ser controladas con el
tratamiento de la semilla.
Del trasplante al inicio de floración. Durante esta
etapa se deben revisar en forma visual o con la ayuda de un
visor por lo menos 50 plantas por cada cinco hectáreas,
distribuidas en cinco o más sitios o con la ayuda de las
trampas adhesivas. La incidencia de insectos vectores de
virus y plagas como trips, diabróticas y larvas de minador de
la hoja no son de importancia al ser controladas por la
aplicación de imidacloprid al cuello de la planta; al encontrar
estos insectos es importante observar su comportamiento,
ya que sus movimientos son lentos, no responden al ser
disturbados o no pueden volar, indicios de que el producto
7
está funcionando y no hay necesidad de complementar el
control.
De la floración a la cosecha. Continuar con los
muestreos como se menciona en el apartado anterior. Una
forma de verificar si el producto utilizado al inicio de la
temporada esta funcionando, es muestreando la presencia
de estados inmaduros de la mosquita blanca; si se detecta
la incidencia de ninfas de segundo a cuarto instar, será
necesario complementar el control con algunos de los
productos mencionados en el apartado de aplicación de
insecticidas.
Aplicación de Insecticidas
Dentro de la estrategia del MIP en chile y jitomate,
el control químico se inicia con el tratamiento de la semilla
con el insecticida imidacloprid (Gaucho) en dosis de 49
gramos de ingrediente activo (g I. A.) por kilogramo de
semilla. Inmediatamente después del trasplante realizar una
aplicación dirigida al cuello de la planta con este mismo
insecticida, en su presentación Confidor, en dosis de 350 g
I. A./ha o Thiamethoxam (Actara) en dosis de 150 g I. A./ha.
Debido a que estos productos son sistémicos, son
absorbidos por las raíces y ascienden con la corriente de
savia, protegiendo las plantas contra insectos vectores de
virus por más de 30 y 60 días para la primera y segunda
aplicación respectivamente; es decir, tienen un efecto
prolongado y una vez que los insectos se alimentan de las
plantas tratadas, estos dejan de alimentarse y aunque estén
presentes no causan más daños, poco después mueren.
Por lo anterior, durante 60 días después de la
segunda aplicación, no es necesario complementar el
control de insectos vectores de virus como mosquita blanca,
pulgón saltador y pulgones, ni para plagas secundarias
como trips, diabróticas, pulga saltona y minador de la hoja.
8
Para el control de la mosquita blanca después de
este período, se sugiere la aplicación de los hongos
mencionados en el apartado uso de entomopatogenos, o
cualquiera de los siguientes insecticidas: Endosulfán en
dosis de 716 g I. A./ha, Pymetrozine 250 g I. A./ha, Sales
potásicas de ácidos grasos en dosis al 2%, es decir 4.0
litros del producto en 200 litros de agua, Buprofezin 446 g I.
A./ha para el control de ninfas, Aceite parafínico de petróleo
en dosis de 1200 g I. A./ha o Pyriproxifen 41.2 g I. A./ha.
PULGON SALTADOR Paratrioza cockerelli
Orden: HOMOPTERA
Familia: PSILLIDAE
Importancia Económica
La importancia de este insecto radica en la
transmisión de un patógeno conocido como fitoplasma, el
cual origina la enfermedad conocida como “Permanente del
jitomate”, esta ha ocasionado en los últimos años perdidas
en la producción de esta hortaliza, hasta de un 45% a nivel
nacional.
Descripción Morfológica
Huevo. Son ovalados y de color anaranjado
amarillento brillante, presentan en uno de sus extremos un
pedicelo corto con el que son adheridos a las hojas (Figura
3 del apéndice).
Ninfa. Son de forma oval, aplanada y semejante a
escamas con los ojos de color rojo y con glándulas de cera
en los márgenes del cuerpo. El primer instar ninfal es de
color amarillo claro, el cual cambia a café claro en el
segundo, a café con tintes verdes en el tercer instar y a
verde con tintes café en el cuarto y quinto instar. El
desarrollo de los paquetes alares no se nota del primero al
tercer instar, solo se observa del cuarto al quinto instar
(Figura 4 del apéndice).
9
Adulto. Son muy parecidos a una cigarra, pero de
un tamaño pequeño, mide alrededor de 2 milímetros de
longitud. Su color cambia gradualmente de amarillo claro a
verde pálido recién emergido, café o verde dos o tres días
después, hasta alcanzar un color gris o negro a los cinco
días de edad. Presentan una banda ancha blanca en el
primer segmento abdominal y una “v” invertida blanca en el
último segmento (Figura 5 del apéndice).
Biología, Hábitos y Daños
La hembra del pulgón saltador oviposita más de 500
huevecillos en el envés y bordes de las hojas, los cuales
son adheridos a estas por un pequeño pedicelo, los
huevecillos requieren de un período de incubación de tres a
15 días, la ninfa pasa por 4 instares en un tiempo de 14 a 17
días; se requieren alrededor de 30 días desde la copula
hasta la formación del nuevo adulto. Esta plaga causa dos
tipos de daños al jitomate: el primero cuando el insecto se
alimenta de las plantas y succiona de sus jugos e inyecta
una toxina que daña a las células que producen la clorofila
lo que ocasiona que las plantas queden amarillentas y
raquíticas y como transmisor de la enfermedad conocida
como “Permanente del jitomate” ocasionada por un
organismo infeccioso identificado como fitoplasma, el cual
ha ocasionado daños que fluctúan del 45 al 60 %.
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Los métodos de control cultural para el pulgón
saltador son los mismos que se mencionan en el apartado
de mosquita blanca, haciendo mucho énfasis en la fecha de
siembra y en el manejo general de la huerta, ya que una
planta sana y vigorosa es difícil que sea atacada
severamente por esta plaga.
10
Control Mecánico
Uso de trampas. Una alternativa para cuantificar la
población del pulgón saltador y de otros insectos es el uso
de trampas adhesivas de colores naranja o verde
fluorescente, como se menciona en el apartado de control
mecánico de mosquita blanca con trampas amarillas, las
cuales deben ser orientadas para recibir la luz del sol y
colocadas a una altura superior al de las plantas de jitomate,
además, puede ser de gran ayuda ya que los pulgones
capturados no volverán a hacer daño al cultivo.
Control Biológico
Es una de las mejores alternativas para regular las
poblaciones de esta plaga; en la Zona Media se han
observado diferentes insectos depredadores de huevecillos
y ninfas del pulgón saltador, dentro de estos a la catarinita
Hippodamia convergens, crisopas Chrysopa spp., la chinche
ojona Geocoris sp. y diferentes especies de chinches
asesinas y arañas verdaderas (Figuras 30, 31, 32, 33 y 34
del apéndice).
En esta misma región se ha observado al final del
ciclo del cultivo un parasitismo del 80 a 90% de las ninfas
del pulgón saltador por la avispita Tamarixia triozae (Figura
35 del apéndice) en huertas donde se ha establecido el MIP;
por otra parte el hongo entomopatogeno Beauveria
bassiana presenta buena efectividad en el control de esta
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plaga en dosis de 2.4 x 10 conidias por hectárea, es decir
1.0 litro de producto comercial.
Control Químico
Muestreos y umbral de aplicación. Los muestreos
y umbral de aplicación para el pulgón saltador en las etapas
de almacigo, del transplante al inicio de floración y de la
floración a la cosecha son iguales a los mencionados para
la mosquita blanca.
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Aplicación de insecticidas. La aplicación de
insecticidas para el control de esta plaga al inicio de la
temporada es el mismo que se realiza para el manejo de la
mosquita blanca.
Una vez que pasa el efecto del Imidacloprid o
Thiamethoxam, será necesario complementar el control con
los siguientes insecticidas y dosis por hectárea: Endosulfán
716 g I. A./ha, Pymetrozine 250 g I. A./ha, Spinosad 36 g I.
A./ha o Azufre elemental en dosis de 2000 g I. A. /ha.
PULGON VERDE Myzus persicae
Orden: HOMOPTERA
Familia: APHIDIDAE
Importancia Económica
El pulgón verde es el vector de virus en vegetales
más dañino del mundo, es capaz de transmitir más de 120
enfermedades que afectan a más de 500 plantas
hospedantes, donde se incluyen gran número de plantas de
importancia económica.
Descripción Morfológica
Huevo. En regiones templadas este pulgón inverna
en estado de huevo, éstos son de color negro brillante y
frecuentemente son depositados en la corteza de árboles
frutales.
Ninfas. Los pulgones inmaduros son llamados
ninfas, son de color amarillo pálido, con tres líneas obscuras
en la parte posterior del abdomen que no están presentes
en el adulto (Figura 6 del apéndice). Pasan por cuatro
estados ninfales, período que es completado en 6 a 11 días.
Adultos. Los adultos ápteros varían en color, de
verde a amarillo pálido, los alados son verdes con manchas
negras o café oscuro en el abdomen, son de tamaño
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pequeño a mediano, de 1 a 2 mm de longitud y sus antenas
son tan largas como el cuerpo (Figura 7 del apéndice). Las
hembras adultas dan nacimiento a aproximadamente 50
ninfas.
Biología, Hábitos y Daños
El ciclo biológico comprende cuatro instares ninfales
y el estado adulto, el cual puede ser alado o áptero; este se
completa en aproximadamente 10 días; en la Zona Media,
durante el desarrollo del cultivo solo hay reproducción
partenogenética y no se producen machos; las hembras son
vivíparas y pueden producir hasta 100 ninfas. Las aladas se
producen en respuestas a condiciones de hacinamiento,
falta de alimento o senescencia de los tejidos. Son visitadas
por hormigas, las cuales se alimentan de la mielecilla que
excretan, estas pueden mover a las ninfas a plantas que no
están infestadas y establecer nuevas colonias.
Las ninfas y los adultos se alimentan en grandes
colonias sobre el envés de las hojas. El daño es ocasionado
por todos los estadios al succionar la savia de las hojas y
brotes, al alimentarse inyectan una saliva tóxica que
distorsiona las hojas, el daño causa reducción del vigor de
la planta, achaparramiento, marchitez, amarillamiento,
encrespamiento y caída de las hojas, así como fumagina
que crece en la mielecilla que excretan, la cual ennegrece
las hojas y se reduce la fotosíntesis. Sin embargo, el daño
mayor es como vector de enfermedades de tipo viral.
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Los métodos de control cultural para el pulgón verde
son los mismos que se mencionan en el apartado de
mosquita blanca, haciendo mucho énfasis en la fecha de
siembra y en el manejo general de la huerta, ya que una
planta sana y vigorosa es difícil que sea atacada
severamente por esta plaga.
13
Control Mecánico
Uso de trampas. Una alternativa para
cuantificar la población de insectos alados del pulgón verde
y de otros insectos es el uso de trampas adhesivas de color
amarillo, como se menciona en el apartado de control
mecánico de mosquita blanca, las cuales deben ser
colocadas a una altura superior a la de las plantas de chile y
jitomate, además, pueden ser de gran ayuda ya que los
pulgones capturados no volverán a hacer daño al cultivo.
Control Biológico
Es una de las mejores alternativas para regular las
poblaciones de esta plaga; en la Zona Media se han
observado diferentes insectos depredadores de ninfas y de
adultos del pulgón verde, dentro de estos a la catarinita
Hippodamia convergens, crisopas Chrysopa spp., arañas y
parasitoides como las avispitas de los géneros Lisiphlebus y
Aphidius (Figuras 27, 30, 34 y 36 del apéndice); por otra
parte el hongo entomopatógeno Verticillum lecanii presenta
buena efectividad en el control de esta plaga en dosis de 2.4
12
x 10 conidias por hectárea, es decir 1.0 litro de producto
comercial.
Control Químico
Muestreos y umbral de aplicación. Los muestreos
y el umbral de aplicación para el pulgón verde en las etapas
de almacigo, del transplante al inicio de floración y de la
floración a la cosecha son iguales a los mencionados para
la mosquita blanca.
Aplicación de insecticidas. La aplicación de
insecticidas para el control de esta plaga al inicio de la
temporada es el mismo que se realiza para el manejo de la
mosquita blanca. Una vez que pasa el efecto del
Imidacloprid o Thiamethoxam, será necesario complementar
el control con Pymetrozine en dosis de 250 g I. A./ha.
14
BARRENILLO DEL CHILE Anthonomus eugenii
Orden: COLEOPTERA
Familia: CURCULIONIDAE
Importancia Económica
El barrenillo es una de las principales plagas del
cultivo de chile, debido a la resistencia que ha desarrollado
a diferentes grupos de insecticidas que normalmente lo
mantenían bajo control, su manejo se complica dado que
ataca los frutos desde el inicio de la fructificación hasta el
final de la cosecha, provocando pérdidas que pueden ser
hasta del 100 %.
Descripción Morfológica
Huevo. Los huevecillos son depositados en las
yemas florales y frutos tiernos, son ovalados, pero pueden
tomar la forma de la cavidad en que están situados, su
superficie es lisa, correosa y flexible, de color blanco
aperlado cuando están recién ovipositados y después se
tornan amarillentos, miden aproximadamente 0.5 mm de
longitud y 0.4 mm de diámetro.
Larva. Las larvas no tienen patas, son robustas y
curvadas, recién eclosionadas miden de 0.8 a 1.5 mm de
longitud. Su cuerpo es de color blanco brillante, la cabeza
es grande, blanca con el extremo negro y las mandíbulas de
color café. Después de la muda la larva mide de 1.3 a 2.6
mm de longitud, con la cabeza amarillo claro y las
mandíbulas de color café oscuro o negro. El tercer estadio
larval mide de 2.2 a 5.0 mm de longitud con un promedio de
3.3 mm, de color gris blancuzco, con la cabeza café y las
mandíbulas negras (Figura 8 del apéndice).
Pupa. Este estado biológico inicia cuando la larva
hace una cavidad ovalada dentro de la fruta y su cuerpo
comienza a acortarse y ensancharse, en este momento su
color es blanco brilloso. Pocas horas después la pupa
desecha su piel larval y sufre cambios en apariencia, los
15
ojos se manchan y comienzan a mostrar un tinte amarillo. A
los dos ó tres días los ojos se obscurecen, el pico toma una
coloración café amarillenta con el extremo negro y las
antenas y élitros toman un color gris.
Adulto. Los adultos recién emergidos son de color
café claro y se obscurecen a gris o café rojizo a negro en
dos ó tres días, tienen el cuerpo ovalado, y cubierto con
pubescencia de color amarillo claro, principalmente sobre el
pronoto y élitros, miden de 2.0 a 3.5 mm de longitud (Figura
9 del apéndice). A dos tercios del extremo de la tibia tienen
una coloración anaranjada amarillenta. Los adultos tienen el
pico característico de los picudos, el cual en el barrenillo del
chile es un sexto más grande que la cabeza y el protorax, su
aparato bucal es masticador. Las antenas son largas,
delgadas y la clava oblonga, los élitros tienen surcos de
punturas.
Biología, Hábitos y Daños
La hembra deposita más de 300 huevecillos en
forma individual en orificios que realiza en los botones
florales y frutos inmaduros, los cuales requieren de tres a
cinco días para su eclosión. Prefiere ovipositar en frutos
tiernos y los orificios que realiza son sellados con un fluido
amarillo claro, el cual endurece a los pocos minutos.
La larva después de una a cuatro horas de la
eclosión se alimenta de la semilla y de la pulpa del fruto
tierno. La primer muda ocurre en un promedio de dos días y
la larva de segundo instar se alimenta por otros dos días
antes de volver a mudar. El tercer estadio larval se alimenta
por un período de 3.5 días y luego se prepara para el estado
de pupa, el cual inicia cuando la larva hace una cavidad
ovalada dentro de la fruta, que a su vez es alineada con
excremento hasta formar una celda. Este estado dura de
tres a seis días y un promedio de 4.5 días, durante este
período la celda se mantiene cerrada.
16
El adulto completamente desarrollado requiere de
tres a cuatro horas para emerger, para lo cual realiza un
orificio redondo en el fruto. Después de que emerge, se
alimenta inmediatamente en los botones florales y frutos
inmaduros.
El daño primario es causado por las larvas en
botones florales y frutos inmaduros; los primeros síntomas
de un fruto infestado son pedúnculos amarillos y cenizos,
los cuales llegan a marchitarse en el punto de unión con la
planta, lo que ocasiona la caída de la fruta.
Los frutos infestados se tornan rojos o amarillos
prematuramente y pueden quedar deformes y pequeños
antes de caer al suelo. Estos tienen la semilla y la pulpa
ennegrecidos como resultado de la alimentación de las
larvas. Los adultos también ocasionan un daño al picar los
botones y frutos inmaduros para su alimentación.
Este daño por alimentación no afecta la calidad de
los chiles secos, pero sí la de chiles para enlatar o para
consumo en fresco. Los frutos maduros no son susceptibles
al ataque del barrenillo debido a las propiedades de su
epidermis. Por otra parte, los orificios realizados a los frutos
por oviposición, emergencia de adultos o alimentación,
favorecen la entrada de microorganismos que ocasionan
infecciones internas como el del moho causado por el hongo
Alternaria alterna.
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Se sugiere establecer el cultivo dentro de la fecha
de siembra recomendada, la cual se menciona en el
apartado de control cultural de mosquita blanca, con la
finalidad de evitar siembras continuas que favorecen el
incremento de las poblaciones de esta plaga y efectuar la
destrucción de las plantas de chile, mediante métodos de
labranza tan pronto como se realice la última cosecha,
17
además, es necesario eliminar las plantas de hierba mora
dentro y alrededor de las huertas, ya que sirven como
reservorio de esta plaga.
Por otra parte, es conveniente recoger los frutos
caídos y enterrarlos o hervirlos en agua para eliminar las
larvas, pupas y adultos que se encuentran dentro de ellos,
de lo contrario se tendrán poblaciones continuas de la
plaga.
Control Mecánico
Uso de feromonas. En el caso del barrenillo del
chile, el uso de trampas con feromonas sintéticas sirve para
atraer machos y hembras (feromona de agregación), con la
finalidad de detectar la presencia temprana de la plaga y así
tomar las medidas de control oportunas. La que se utiliza es
la trampa de color amarillo con feromona (Figura 42 del
apéndice), con dispositivos de lenta liberación (3 - 4
semanas), se deben utilizar 2 trampas por hectárea
colocadas en la periferia del cultivo, las aplicaciones se
pueden iniciar cuando se detecte el primer adulto en la
trampa; el monitoreo se debe de realizar desde el inicio de
la floración hasta el final del ciclo. Estas trampas y la
feromona sintética se adquieren en tiendas de agroquímicos
especializadas en productos biológicos.
Control Biológico
En Hawaii se han liberado y establecido los agentes
de control biológico Eupelmus crushmani y Catolaccus
hunteri Crawford; además, se han realizado liberaciones de
Bracon vestiticida Vier pero no se ha logrado establecer; en
la Zona Media de San Luis Potosí se han observado larvas
parasitadas por una avispita de la familia Braconidae.
18
Control Químico
Muestreos y Umbral de Aplicación
Las aplicaciones de insecticida se deben iniciar
cuando se encuentre un adulto por cada 200 plantas,
inspeccionando un mínimo de dos yemas florales, botones o
flores por planta, a partir de la etapa de inicio de floración y
durante toda la fructificación o cuando se detecte el primer
adulto en las trampas de feromona.
Aplicación de Insecticidas
Los productos más adecuados para su control son
Clorpirifós etil, Oxamil y Fipronil en dosis de 720, 520 y 50 g
I. A. /ha; es importante evitar el uso de insecticidas
inefectivos y la mezcla de estos, aumentar las dosis iniciales
efectivas, o realizar aplicaciones preventivas sin un
muestreo previo, ya que se propicia la resistencia genética a
los mismos y se dificulta el control de ésta y otras plagas.
MINADOR DE LA HOJA Liriomyza spp.
Orden: DIPTERA
Familia: AGROMYZIDAE
Importancia Económica
Este insecto solo alcanza el nivel de plaga primaria
en los cultivos de chile y jitomate cuando se recurre al uso
calendarizado de insecticidas generalistas para combatir las
plagas, ya que con esta práctica se eliminan los enemigos
naturales que normalmente lo mantienen bajo control.
Descripción Morfológica
Huevo. Los huevecillos son ovalados de color
blanco crema, miden 0.25 milímetros de longitud.
19
Larva. Las larvas no tienen patas y son de color
amarillo, miden de 2 a 4 milímetros de longitud y 0.5
milímetros de ancho cuando están completamente
desarrolladas (Figura 10 del apéndice).
Pupa. La pupa es de color amarillo anaranjado,
tornándose a café amarillento en su etapa más avanzada,
de forma ovalada, estrechándose al final y distintamente
segmentada.
Adulto. El adulto es una mosca pequeña de unos 2
milímetros de longitud, de color negro con manchas
amarillas en el escutelo y en la parte de las patas y
abdomen (Figura 11 del apéndice).
Biología, Hábitos y Daños
Las mosquitas insertan sus huevecillos en las hojas
tan pronto como se trasplantan las plantitas; las larvitas al
nacer minan las hojas formando galerías sinuosas, al final
de las cuales salen y se transforman en pupa en la base del
tallo. El daño principal es ocasionado por las larvas, que
forman minas y galerías al alimentarse y desarrollarse
dentro de la hoja. En infestaciones fuertes, la planta toma
una coloración blanquizca y detiene su desarrollo normal,
las infestaciones severas pueden ocasionar la defoliación
del plantío con la consecuente reducción en el rendimiento y
el tamaño de los frutos y finalmente quemaduras de la fruta
por el sol. Los adultos también pueden causar daño al
ovipositar y alimentarse, lo que se manifiesta en diminutas
picaduras sobre la superficie de la hoja, que sirven de
entrada a bacterias y hongos.
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Antes del transplante se debe revisar el estado
sanitario de las plantas en el almacigo. Cuando los cultivos
hospedantes del minador de la hoja no están presentes en
20
el campo, esta plaga se encuentra en una variedad de
plantas, principalmente maleza de hoja ancha, que le sirven
como reservorio. La destrucción de esta maleza y de los
residuos de los cultivos inmediatamente después de la
última cosecha, son medidas de prevención muy
importantes para reducir las poblaciones de este insecto.
Control Mecánico
El uso de trampas adhesivas es una técnica para
muestrear y reducir la incidencia de plagas, se ha
observado que el minador de la hoja es muy atraído por el
color blanco y el uso de tiras de plástico de este color,
untadas con una capa muy delgada de grasa automotriz
ayuda a capturar grandes cantidades de adultos de esta
plaga. Estas trampas se deben utilizar como se menciona
en al apartado de control mecánico de mosquita blanca.
Control Biológico
Un programa de manejo integrado de plagas que
utiliza como principal táctica la conservación de enemigos
naturales, controla exitosamente las poblaciones del
minador de la hoja.
A nivel mundial, se han encontrado varios
parasitoides del minador de la hoja, principalmente de las
familias
Braconidae,
Chalcididae,
Eulophidae,
y
Pteromalidae. En la Zona Media Potosina se han observado
los géneros: Opius, Diglyphus y Dacnusa (Figuras 37, 38 y
39 del apéndice).
Estos insectos atacan a las larvas del minador de la
hoja mientras se alimentan del tejido de la hoja, las larvas
parasitadas eventualmente quedan inmóviles en sus minas,
hinchadas y de color negro mientras el parasitoide se
desarrolla internamente. Las larvas parasitadas que llegan
al estado de pupa pueden quedar dentro o fuera de las
hojas y solo se desarrolla una larva de parasitoide por larva
de minador. Las pupas de los parasitoides permanecen en
21
los remanentes de sus hospedantes, son de color negro
brillante y no están cubiertas de seda.
Control Químico
En los cultivos de chile y jitomate las aplicaciones
de insecticidas se deben iniciar después de los 60 días del
trasplante, siempre y cuando el 20 % de las hojas presenten
una o más minas con larvas vivas. Antes de este período la
plaga es controlada con la aplicación de Imidacloprid
(CONFIDOR) o Thiamethoxam (ACTARA) que se realiza a
la base de la planta para el control de insectos vectores de
virus; además, con este manejo se reduce la aplicación de
insecticidas para el control de ésta y otras plagas, lo que
permite que los parasitoides del minador de la hoja se
establezcan en las huertas de estos cultivos.
En la Zona Media ésta plaga es altamente resistente
a la mayoría de los insecticidas convencionales, el uso de
éstos ocasiona problemas más grandes, ya que se reducen
las poblaciones de parasitoides. Los productos más
adecuados para su control son abamectina (AGRIMEC) y
cyromacyna (TRIGARD) en dosis de 5.4 y 75 g I.A./ha
respectivamente, los cuales deben ser utilizados en forma
alterna para reducir los riesgos inherentes al desarrollo de la
resistencia; estos productos tienen poca o nula efectividad
sobre adultos, por lo que cuando se detecte una alta
población en actividad de alimentación y oviposición, es
necesario aplicar clorpirifós etil en dosis de 750 g I. A./ha.
ARAÑA ROJA Tetranychus urticae
Orden: ACARINA
Familia: TETRANIQUIDAE
Importancia Económica
La importancia de esta plaga se ha incrementado en
los últimos años como consecuencia de una mayor
intensificación de los cultivos, un aumento de la fertilización
22
nitrogenada y sobre todo por el empleo indiscriminado de
productos fitosanitarios. Es una plaga polífaga, se desarrolla
sobre más de 150 especies cultivadas. Su importancia se
debe al daño que ocasionan las ninfas y adultos en el envés
de las hojas al succionar la savia.
Descripción Morfológica
Huevo. Los huevecillos tienen el cascarón liso, son
esféricos y de color blanquecino, ámbar o anaranjado,
tornándose amarillentos en el momento de la eclosión.
Larvas y ninfas. Las larvas son redondeadas, con
tres pares de patas. Las ninfas son bastante parecidas a los
adultos, ya que poseen cuatro pares de patas, con un color
amarillento en el que resaltan los puntos rojos de los ojos y
unas manchas oscuras laterales.
Adulto. La hembra adulta tiene forma elíptica, con
un tamaño de 0.5 a 0.6 mm de longitud, son más oscuras y
de mayor tamaño que los machos. El cuerpo de los machos
es fusiforme, con patas muy largas, lo que les permite tener
más rapidez en sus movimientos (Figura 12 del apéndice).
Biología, Hábitos y Daños
El ciclo completo de la araña roja comprende cinco
estados de desarrollo: huevo, larva, protoninfa, deutoninfa y
adulto. La reproducción es sexual, sin embargo, puede
darse partenogénesis de tipo telitóquico, es decir, los
huevos no fecundados dan lugar a hembras.
La hembra pone más de 100 huevos durante los 22
a 28 días que dura su vida; la vida del macho es
aproximadamente la mitad que la de la hembra y presentan
una relación entre machos y hembras de 1 a 3. El desarrollo
del ciclo biológico es muy rápido, de huevo a adulto tarda de
o
10 a 15 días a 25 C y 80 % de humedad relativa.
23
La araña roja coloniza sobre todo las hojas jóvenes,
aunque en caso de ataques graves se encuentra distribuida
sobre las hojas de toda la planta, donde teje capas de seda,
creando un microclima que la protege de la deshidratación y
de los ataques de sus depredadores.
Los daños son ocasionados por las picaduras de los
adultos, larvas y ninfas al alimentarse. Al clavar los estiletes
absorben los jugos celulares y vacían las células de su
contenido, el tejido afectado toma una coloración
amarillenta, que se torna marrón con el paso del tiempo. Las
colonias de araña roja se localizan en el envés de las hojas,
apareciendo en el haz zonas enrojecidas o amarillentas en
hojas grandes o abombadas en hojas en crecimiento. En
ataques fuertes, todos los órganos de la planta se ven
afectados, se detiene el crecimiento y la planta es cubierta
con densas telas.
Manejo de Poblaciones
Control Cultural
Una de las principales medidas preventivas es la de
asegurarse de que las plantas no vengan contaminadas de
los almácigos. Por otra parte, se debe destruir los residuos
de las cosechas anteriores y mantener el cultivo libre de
maleza, ya que puede actuar como reservorio de la plaga.
Control Mecánico
En la actualidad no existe algún método efectivo de
control mecánico de esta plaga.
Control Biológico
Existen
diferentes
enemigos
naturales,
principalmente insectos y ácaros que puedan atacar a la
araña roja; a nivel regional, se han observado ácaros
depredadores de los géneros Phytoseiulus y Amblyseius
24
(Figura 40 del apéndice) alimentándose de las colonias de
esta plaga.
Control Químico
Muestreo y Umbral de Aplicación
El muestreo se debe llevar a cabo revisando un
mínimo de 200 plantas por hectárea al azar, una o dos
veces por semana, desde el establecimiento del cultivo.
Debido al alto potencial reproductivo de esta plaga conviene
controlarla al detectar el primer foco de infección.
Aplicación de Insecticidas
El insecticida más adecuado para el control de esta
plaga es la abamectina en dosis de 9 g I. A./ha. Existen
otros productos que controlan a la araña roja; sin embargo,
son muy tóxicos para la fauna benéfica y ocasionan el
resurgimiento de otras plagas como el minador de la hoja,
por lo que es importante evitar su uso y no realizar mezclas
de insecticidas, ya que se propicia la resistencia genética a
los mismos y se dificulta el control de ésta y otras plagas.
Por otra parte la aspersiones con azufre elemental son
efectivas cuando se realizan semanalmente en dosis de
2000 g I. A./ha con densidades bajas de este ácaro, o
cuando se aplican en forma preventiva para el control de
enfermedades foliares ya que el producto requiere de una a
dos semanas para efectuar el control.
GUSANO DEL FRUTO Heliothis zea y H. virescens
Orden: LEPIDOPTERA
Familia: NOCTUIDAE
Importancia Económica
Las larvas de estas dos especies son plagas de
importancia del chile y del jitomate, ya que dañan a los
frutos desde la formación hasta la maduración; una vez
25
afectados se pudren a consecuencia de la penetración de
hongos, bacterias e insectos quedando inutilizados para el
mercado.
Descripción Morfológica
Huevo. Los huevecillos son de forma esférica con la
base aplanada, presentan de 22 a 24 estrías
perpendiculares, muy bien definidas, recién ovipositados
son de color blanco cremoso y aproximadamente a las 24
horas se observa una franja de color café oscuro alrededor
del huevo.
Larva. Las larvas de estas especies son muy
similares y solo se pueden diferenciar con la ayuda de un
microscopio; son de colores muy variados, con bandas
longitudinales y usualmente con puntitos negros (Figura 13
del apéndice). Las larvas de H. virescens tienen espínulas
microscópicas en los pináculos cerdígeros I y II en el 1º, 2º y
8º segmentos abdominales y la mandíbula tiene en la parte
interna un retináculo de color oscuro en forma de peine, no
así en H. zea.
Pupa. La pupa es de color café brillante, mide 16
milímetros de longitud y se le encuentra en el suelo dentro
de una celda a una profundidad de 3 a 8 centímetros.
Adulto. Los adultos de estas dos especies son
palomillas muy diferentes, H. zea es un poco más grande,
mide 2.5 centímetros de largo, de color amarillo ocre con
una manchita no bien definida en el centro de las alas
anteriores; H. virescens mide unos 2 centímetros, es de
color amarillo verdoso, con tres bandas oblicuas en las alas
anteriores (Figuras 14 y 15 del apéndice).
Biología, Hábitos y Daños
La hembra deposita los huevecillos en forma
individual en las hojas ubicadas cerca de la inflorescencia.
Cuando hay frutos en la planta, la larva al emerger penetra
26
inmediatamente el fruto, son de hábitos canibalísticos, por lo
que solo se encuentra una larva por fruto. Estas pasan por
seis instares larvarios alcanzando un tamaño de 4
centímetros, generalmente el estado larvario lo completan
en un solo fruto, a menos que sea muy pequeño, entonces
puede dañar varios frutos; después se dirigen al suelo y se
transforman en pupa. De esta emerge el adulto para repetir
el ciclo, el cual se completa en aproximadamente un mes a
temperaturas de 23 a 30º C.
Dada la diversidad de cultivos que hay en la región
en los que estas especies pueden reproducirse, se
presentan varias generaciones al año. Los frutos dañados
por este insecto se caracterizan porque muestran un
aspecto aguanoso con gran cantidad de residuos fecales,
posteriormente esos frutos son afectados por organismos
secundarios que causan su pudrición.
GUSANO ALFILER Keiferia lycopersicella
Orden: LEPIDOPTERA
Familia: GELECHIIDAE
Importancia Económica
Es una de las plagas más importantes del jitomate,
tanto por el daño físico que ocasiona al follaje, tallos tiernos
y al fruto, el cual minan causando su pudrición y pérdida del
valor en el mercado, además de su alta capacidad de
desarrollar resistencia a insecticidas, lo que hace que su
control sea muy difícil y costoso.
Descripción Morfológica
Huevo. Los huevecillos son de forma elíptica, de
color amarillo recién ovipositados y después se vuelven de
color anaranjado antes de la eclosión.
Larva. La larva es de color verde pálido a rosada al
principio, después se vuelve grisácea con manchas
27
púrpuras, mide de 6 a 8 milímetros de largo cuando está
completamente desarrollada (Figura 16 del apéndice).
Pupa. La pupa es de color café claro y
generalmente se encuentra en el suelo dentro de un capullo
cubierto con partículas de tierra, aunque también se puede
encontrar dentro del fruto.
Adulto. El adulto es una palomilla de 5 milímetros
de longitud, de color café sucio con manchas negras en
todo el cuerpo (Figura 17 del apéndice).
Biología, Hábitos y Daños
La hembra deposita los huevecillos en forma aislada
en el haz o envés de las hojas cercanas a las
inflorescencias; las larvitas de primero y segundo instar
minan las hojas produciendo amplias cavidades y en el
tercero usan su seda para doblar la hoja, donde se
protegen, también salen de la mina y se introducen en los
frutos cerca del pedúnculo en donde terminan su estado
larvario, la pupa se encuentra dentro del fruto o en el suelo
en un pupario, después emerge el adulto para repetir el
ciclo, el cual dura 21 días a temperaturas de 30º C. Las
hojas muy atacadas se secan y los frutos se deforman o se
pudren internamente, siendo descartados para su
comercialización.
GUSANO SOLDADO Spodoptera exigua
Orden: LEPIDOPTERA
Familia: NOCTUIDAE
Importancia Económica
Las poblaciones de este insecto se han
incrementado en los últimos años en la Zona Media, su
importancia en los cultivos de chile y jitomate se debe al
daño que ocasionan las larvas en el follaje y al mordisquear
los frutos, los cuales quedan inutilizados para la
28
comercialización; por otra parte, han desarrollado
resistencia a la mayoría de los insecticidas convencionales.
Descripción Morfológica
Huevo. Los huevecillos se encuentran en masas de
50 a 150 sobre las hojas y están cubiertos con escamas de
color gris del abdomen de la hembra.
Larva. Las larvas chicas son de color verde claro
con la cabeza negra y las grandes son de color verde
oscuro en diversas tonalidades, con bandas claras a lo largo
del cuerpo, alcanzan un tamaño de 2.5 centímetros de largo
(Figura 18 del apéndice).
Pupa. La pupa es de color café brillante, se le
encuentra en el suelo a una profundidad de 1.0 centímetro,
dentro de una celda elaborada con partículas de tierra.
Adulto. El adulto es una palomilla de color café
grisáceo y brillante, mide 2.5 centímetros con las alas
extendidas. Las alas anteriores son de color café grisáceo,
con líneas café oscuro y escamas blancas, con una mancha
redonda color crema con el centro anaranjado; las alas
posteriores son blancas con las venas y el margen color
café (Figura 19 del apéndice).
Biología, Hábitos y Daños
La hembra deposita los huevecillos en grupos
cubriéndolos con escamas de su cuerpo, lo que limita la
acción de los parasitoides. El primer instar se alimenta en
grupos por debajo de una telaraña de seda en el envés de
las hojas que quedan esqueletonizadas; el siguiente hace
perforaciones irregulares en el follaje y hasta el tercer o
cuarto se alimentan de los frutos. La larva pasa por 5 o 6
instares, para después dirigirse al suelo donde se convierte
en pupa, de la cual emergen los adultos para completar el
ciclo, en aproximadamente 30 días. El daño en el fruto
consiste de mordiscos superficiales que se secan al
29
madurar, en ocasiones las larvas recién emergidas penetran
el fruto y ocasionan un daño similar al del gusano del fruto.
GUSANO DEL CUERNO Manduca sexta y M.
quinquemaculata
Orden: LEPIDOPTERA
Familia: SPHINGIDAE
Importancia Económica
Las larvas de estas dos especies pueden ocasionar
defoliaciones severas a los cultivos de chile y jitomate y el
deterioro de los frutos, aunque pocas veces se observan
infestaciones fuertes.
Descripción Morfológica
Huevo. Los huevos tienen forma globular, son de
color verde, miden 1.5 milímetros de diámetro y son
depositados individuamente en el haz de las hojas o sobre
los frutos.
Larva. Las larvas son de color verde claro a oscuro;
las de M. sexta tienen siete líneas blancas oblicuas en cada
lado del cuerpo cerca de los espiráculos; en el último
segmento abdominal posee un cuerno curvado hacia abajo
que inicialmente es verde y luego se torna rojo, llegan a
medir hasta 9.0 centímetros (Figura 20 del apéndice). La
larva de M. quinquemaculata tiene ocho manchas
transversales en cada lado del cuerpo y el cuerno es recto y
de color negro.
Pupa. La pupa es de color pardo rojizo y presenta
una envoltura especial en forma de gancho que alberga la
probosis.
Adulto. Las palomillas tienen la forma típica de los
esfíngidos, miden de 10 a 12 centímetros de expansión alar;
son de color gris, con grandes manchas anaranjadas en los
30
lados del abdomen; M. sexta y M. quinquemaculata tienen
seis y cinco manchas a cada lado respectivamente, de ahí
derivan los nombres científicos de estas especies (Figura 21
del apéndice).
Biología, Hábitos y Daños
La hembra llega a poner más de 300 huevos en el
haz de las hojas en forma individual, después de tres a
cinco días emerge el primero de los cinco estadios larvales,
los cuales se alimentan durante 20 a 30 días en el follaje,
los tallos y los frutos. Al finalizar su desarrollo la larva se
oculta en el suelo y construye una celda laxa con seda,
tierra y restos orgánicos, dentro de la cual transcurre el
período pupal durante 15 a 21 días.
GUSANO FALSO MEDIDOR
Pseudoplusia includens
Trichoplusia
nii
y
Orden: LEPIDOPTERA
Familia: NOCTUIDAE
Importancia Económica
Las larvas pequeñas de estas dos especies se
alimentan de la parte inferior de las hojas del jitomate y
respetan la cutícula superior, en tanto que las más
desarrolladas defólian las plantas y perforan los frutos,
favoreciendo la entrada de microorganismos.
Descripción Morfológica
Huevo. Los huevos de T. nii son puestos
individualmente en el envés de las hojas, son de color verde
pálido y con forma de domo; mientras que los de P.
includens son puestos en el haz, son redondeados y de
color verde.
Larva. La larva de T. nii es de color verde pálido
con rayas laterales de color amarillo o blanco y patas
31
toráxicas siempre blancas. La larva de P. includens es de
color verde amarillento oscuro con pináculos negros y
cabeza con puntos negros; el cuerpo y patas son raramente
de color verde pálido, con franjas longitudinales y laterales
de color blanco. Ambas larvas tienen tres pares de propatas
(Figura 22 del apéndice).
Pupa. La pupa es de color verde claro y por lo
general se encuentran en un capullo tejido en el envés de
las hojas.
Adulto. El adulto de P. includens se reconoce por el
color café o bronce oscuro de sus alas anteriores, que
tienen una mancha color plateado en forma de “Y”, que es
característica de esta especie. El tórax de este insecto
presenta una protuberancia debido a un conjunto de
escamas y setas erectas. El adulto de T. nii se diferencia del
de P. includens porque en sus alas anteriores, moteadas en
gris pardo oscuro, tienen un punto plateado parecido a la
figura de un 8 cerca del centro. El tamaño de ambos es
similar, de 3 a 4 centímetros de longitud (Figura 23 del
apéndice).
Biología, Hábitos y Daños
Las larvas de ambas especies se alimentan del
follaje, aunque también se pueden encontrar perforando
frutos. En altas densidades estos insectos pueden defoliar
por completo una planta; las larvas pequeñas se alimentan
en el envés dando un apariencia de color plateado al follaje
cuando es visto desde arriba, mientras que las más grandes
consumen porciones irregulares del follaje, dejando
solamente las venas grandes de las hojas. Ambas especies
son consideradas como plagas de menor importancia, pero
en poblaciones altas pueden causar daño económico.
32
MANEJO DE POBLACIONES DE PLAGAS DEL
ORDEN LEPIDOPTERA
Control Cultural
Es importante eliminar la maleza dentro del cultivo y
de los alrededores, para evitar que estas plantas actúen
como focos de infección al ser elegidas por las palomillas
para la oviposición, como es el caso del gusano soldado con
la maleza conocida como quelite. Además, se deberán
destruir las plantas de chile y jitomate inmediatamente
después del último corte con la finalidad de reducir las
poblaciones de lepidópteros; por otra parte la eliminación de
frutos que se desechan en los empaques ayuda a disminuir
las poblaciones del gusano alfiler y gusano del fruto.
Control Mecánico
Uso de trampas. El uso de trampas con cebo
alimenticio ayuda a reducir la incidencia y los daños
ocasionados por los gusanos: soldado, del fruto y falso
medidor. Estas trampas deberán colocarse sobre estacas
con una separación máxima de 50 metros en la periferia del
cultivo; consisten de recipientes de plástico (garrafas) a las
cuales se les abre una ventana y se colocan de dos a tres
centímetros de melaza fermentada para la captura de las
palomillas (Figura 43 del apéndice).
Uso de feromonas. El uso de trampas con
feromonas sintéticas en dispositivos de lenta liberación,
sirven para atraer machos en el caso de lepidópteros
(feromona sexual), con la finalidad de detectar la presencia
temprana y así tomar las medidas de control oportunas o
como método de confusión en el apareamiento del gusano
alfiler, las cuales son efectivas en el combate de esta plaga
cuando se realiza en áreas grandes y compactas. Al
distribuirse en el campo, se evita el apareamiento normal de
los adultos y con ello se interrumpe su reproducción y por lo
tanto el daño en el cultivo. Estas trampas y las feromonas
33
sintéticas se adquieren en tiendas de agroquímicos
especializadas en productos biológicos.
Existen dos tipos de trampas para su uso en los
cultivos de chile y jitomate:
Trampa de ala (Figura 44 del apéndice), sirve para
detectar especies de lepidópteros de tamaño pequeño;
como en el caso del gusano alfiler, con sistema de lenta
liberación del atrayente (8 a 10 semanas). Para monitoreo
aislado se usan 2 trampas de ala en 5 hectáreas y para
monitoreo intensivo de 10 a 15 trampas de agua por
hectárea.
Trampa de agua (Figura 45 del apéndice), para
captura masiva de lepidópteros de mayor tamaño como es
el caso del gusano soldado, gusano del fruto y gusano falso
medidor, con sistema de lenta liberación del atrayente (3 a 4
semanas). Para monitoreo aislado se utilizan de 2 a 3
trampas por cada 10 hectáreas y para el intensivo de 10 a
15 trampas por hectárea.
Control Biológico
Para reducir la incidencia y los daños ocasionados
por los gusanos: del fruto, alfiler, soldado, del cuerno y falso
medidor, es necesario efectuar liberaciones de 30 mil
avispitas Trichogramma pretiosum (Figura 41 del apéndice)
por hectárea (12 pulgadas cuadradas) con intervalos
semanales, desde el transplante hasta finales del ciclo. Para
lograr un buen control, la distribución de las avispitas debe
ser lo más uniforme posible en un mínimo de diez puntos
por hectárea.
Los insecticidas biológicos a base de la bacteria
Bacillus thuringiensis presentan buena efectividad en el
control de los gusanos del fruto, alfiler, del cuerno y falso
medidor, cuando se aplican sobre los primeros estadios
larvales en dosis de 0.5 a 1.0 kilogramos de producto
34
comercial por hectárea; sin embargo, no han mostrado
buena efectividad en el control del gusano soldado.
El virus de la poliedrosis nuclear de Spodoptera
exigua, ha presentado un control excelente sobre larvas de
primero a tercer instar del gusano soldado, con reducciones
10
superiores al 90 %, en dosis de 1.2 x 10 cuerpos
poliédricos de inclusión por hectárea, es decir 1.0 litro de
producto comercial. Además de controlar al gusano del
fruto, del cuerno y falso medidor.
Estos insecticidas biológicos son muy específicos
para el control de larvas y no afectan a otros organismos,
por lo que son compatibles con programas de MIP.
Control Químico
Para el control de los gusanos soldado, del cuerno,
del fruto, falso medidor y alfiler se deben utilizar los
insecticidas biológicos mencionados en el apartado uso de
entomopatógenos, o los insecticidas spinosad o
tebufenozide en dosis de 48 y 80 g I. A./ha respectivamente;
además de abamectina para gusano alfiler en dosis de 9 g I.
A./ha.
IMPACTO Y DOMINIO DE RECOMENDACION
El control de las plagas del chile y jitomate que
considere un enfoque de manejo integrado de plagas,
reduce la incidencia de enfermedades virales en un 70 %,
logra disminuir el uso de insecticidas y los costos por
concepto de control de plagas hasta en un 50 %; además,
se reduce la contaminación ambiental y los residuos tóxicos
en las cosechas, se impide el desarrollo de poblaciones de
insectos plaga que presenten resistencia múltiple a los
insecticidas y sobre todo se evita el rebrote de otras plagas
consideradas como secundarias, al conservar la fauna
benéfica natural que las mantiene bajo control y finalmente
se incrementan las poblaciones de insectos benéficos que
35
ayudan a la regulación de poblaciones de insectos plaga,
promoviendo así la sostenibilidad del sistema de producción
en la región.
Para el buen funcionamiento de la estrategia, es
necesario que se implemente a nivel regional, es decir, en
toda la Zona Media de San Luis Potosí, la cual comprende
Rioverde, Cd. Fernández, San Ciro de Acosta, Cerritos y
Villa Juárez, S. L. P.
36
SINONIMIAS
Producto
Abamectina
Aceite parafínico
Azufre elemental
Bacillus
thuringiensis
Buprofezin
Clorpirifós etil
Cyromacyna
Endosulfán
Feromonas
Gusano
alfiler
K.
lycopersicella, Gusano
soldado
S.
exigua,
Gusano del fruto: H. zea
y H. virescens, Gusano
falso medidor T. Nii
Nombre Comercial
ABAMECTINA 1.8% CE, ABAMEX QL 1.8
C.E., THUNDER 18 C.E., AGROMEC 1.8 C.E.,
LUCATINA 1.8 C.E., LUC. TOR 1.8 C.E.,
AGRIMEC 1.8.% C.E., AGRIVER 1.8 C.E.,
AGRIVER
1.8
PH.,
AGROMECTIN,
BERMECTINE 1.8% CE, VERTIMEC.
AGRI-DEX, ANASEF-T, SAF-T-SIDE.
AZUFER 71, AZUFRE 93% AGRICOLA,
AZUFRE
HUMECTABLE
90,
AZUFRE
PERFECTO 93, COSMOSUL, FLWAZ 725 L,
KUMULUS-DF, LUCAFLOW, MICROTHIOL,
NOVAZUFRE 720 FW, SULTRON 725,
VELSUL 725.
BACILLUS HD, BACTIVEC, BACTOSPEINE
DF, BIOBIT DF, DIPEL DF, CRYMAX GDA,
LEPINOX WDG, NEWBT-2X WP, RADIUS 48
LV, XENTARI DF, XTREEM DF, XENTARI
GRD.
APPLAUD 40 SC
ANALOR
480,
CLORPIRIFOS
480,
CLORVER 480 CE, CLORVER 50 W,
COMPAS 480, CYREN 480 CE, DINNAFOS
480 CE, KNOCKER 480, LORPAC 480,
LORSBAN 75 WG, LORSBAN 480, LUCABAN
480 CE, MAGNUM L-480, MASTER 25 CS,
POLARIS 40, POL-PIRIFOS 480, PREDATOR
480 CE, PYRINEX 48 CE, VELBAN 480,
VEXTER.
TRIGARD 75 PH
ALGODAN 350,
ENDOCORAL 35%,
ENDOFAN 35%, ENDOSULFAN 50 PH,
FANTOM 35 E, LUCASULFAN 35 CE,
PANTHER, SUFAN 35, THIODAN 35 CE,
THIONEX 35% CE, THIOSULFAN 35%,
TRIDANE 350 TRIDENTE, USULFAN 350 EC,
VELDOSULFAN 35 EC.
BIO LURE TPW
BIO LURE BAW
BIO LURE CEW
BIO LURE TBW
BIO LURE CL
37
Barrenillo del chile A.
eugenii
TRAMPA AMARILLA
Fipronil
Hongos
entomopatógenos
REGENT 200 SC
Verticillium lecanii
Beauveria bassiana
Metarhizium anisopliae
Paecylomyces
fumosoroseus
VERTI-SIN.
BEA-SIN. MICO BAS
META-SIN. MICO-MET
PAE-SIN. MICO PAE
Imidacloprid
CITLALLI 350 FW, CONFIDOR 350 SC,
GAUCHO 70 WS, LUCACLOPRID 350 SC.
Oxamil
VYDATE C LV, VYDATE L
Pymetrozine
Pyriproxyfen
Sales potásicas
de ácidos grasos
Spinosad
PLENUM 50 PH
KNACK
IMPIDE, ROYAL MH-30
Tebufenozide
Thiamethoxam
VPN S. exigua
GF-120, SPINTOR
SPINOACE 480.
CONFIRM 2F
ACTARA 25 WG.
SPOD-X LC
38
12
SC,
TRACER,
APENDICE
39
40
41
42
43
44
45
46
47
La información de esta publicación fue generada por los
proyectos de investigación y transferencia de tecnología:
Número
1330
Número
3103300A
ESTUDIO Y MANEJO INTEGRADO DE LAS
PLAGAS DE CHILEY JITOMATE EN EL
ESTADO DE SAN LUIS POTOSI
TRANSFERENCIA DE TECNOLOGIA DEL
MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS EN LOS
CULTIVOS DE CHILE Y JITOMATE EN LA
ZONA MEDIA DE SAN LUIS POTOSI
En el proceso editorial de esta publicación participó el
siguiente personal:
Comité Editorial del
Campo Experimental Ebano
M.C. Eduardo Céspedes Torres
M.C. Eduardo Aguirre Alvarez
M.C. Enrique Garza Urbina
M.C. Alberto González Jiménez
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Revisión Técnica:
Formación:
Fotografías:
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Dr. Jorge Elizondo Barrón
Dr. Jesús Loera Gallardo
Srita. Carolina Méndez Moctezuma
M.C. Enrique Garza Urbina
Ing. Ausencio Rivas Monge
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Diseño de Portada: L.D.G. Pablo Morales Pérez
Fundación Produce de San Luis Potosí, A.C.
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GOBIERNO DEL ESTADO DE SAN LUIS POTOSI
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DELEGACION ESTATAL DE LA SAGARPA
DELEGADO EN SAN LUIS POTOSI
Ing. José Manuel Rosillo Izquierdo
FUNDACION PRODUCE DE SAN LUIS POTOSI, A. C.
PRESIDENTE
Ing. Antonio Juan Chemas García
SECRETARIO
M. C. José Luis Barrón Contreras
TESORERO
Ing. Carlos Velázquez Osuna
GERENTE
Ing. Horacio A. Sánchez Pedroza
CONSEJO CONSULTIVO REGIONAL
DE LA PLANICIE HUASTECA
PRESIDENTE
Ing. Francisco Flores Constante
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FPSLP
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