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UNIVERSIDAD AUTONOMA “GABRIEL RENE MORENO” FACULTAD DE CIENCIAS VETERINARIAS CARRERA: VETERINARIA Y ZOOTECNIA PRÁCTICAS DIRIGIDAS EN EL LABORATORIO DE INVESTIGACIÓN Y DIAGNÓSTICO VETERINARIO (LIDIVET) INFORME FINAL PARA OBTENER EL TÍTULO DE MÉDICO VETERINARIO ZOOTECNISTA ELABORADO POR: FERNANDO OLIVERA CAYO TUTOR: DR. JAIME GUZMÁN CARBAJAL GUIA: DR. HUGO RIBERA CUELLAR Santa Cruz – Bolivia 2010 DEDICATORIA A Dios por permitirme vivir cada día Junto a los seres que tanto amo. Por iluminar con su bendición el camino hacia la verdad, prudencia y sabiduría y por darme las fuerzas para culminar una de las grandes metas de mi vida. A mi querida madre Asunta Con todo mi amor, cariño e infinito agradecimiento. A mi hermana Fely, por el apoyo Incondicional brindado durante todos estos años y a todos mis hermanos que me brindaron apoyo moral Impulsándome a seguir en los momentos difíciles. AGRADECIMIENTOS A Dios por darme la vida, su amor y sabiduría para llevar adelante mis aspiraciones de superación. A la Universidad Autónoma Gabriel René Moreno En especial a la Facultad de ciencias veterinarias, a su plantel docente y administrativo por la formación académica que me brindaron. Al laboratorio de investigación y diagnostico veterinario (LIDIVET), al personal administrativo, profesional y técnico; por hacer posible la ejecución y defensa de este trabajo dirigido. A mi Tutor Dr. Guzmán Jaime, por todo el apoyo prestado y por el tiempo invertido en la corrección del presente trabajo. A mi Guía, Dr. Ribera Hugo, por su paciencia, comprensión y asesoramiento profesional prestado en el presente trabajo dirigido. A los miembros del tribunal asignado, por presente trabajo dirigido. A mis compañeros y amigos de la promoción I / 2009 por la ayuda mutua y por todos los gratos momentos vividos en el transcurso de nuestra vida universitaria. la revisión y corrección del INDICE Contenido pág. TITULO DEDICATORIA ................................................................................................ i AGRADECIMIENTO ........................................................................................ ii INDICE ............................................................................................................. iii I. RESUMEN .................................................................................................... 1 II. INTRODUCCIÓN.......................................................................................... 2 2.1. Objetivo general del trabajo dirigido……………………………………... 3 2.1.1. Objetivos específicos……………………………………………………… 3 III. CARACTERÍSTICAS DE LA INSTITUCIÓN.............................................. 4 3.1. 3.2. 3.3. 3.4. 3.5. 3.6. Misión ....................................................................................................... Visión........................................................................................................ Objetivo General ...................................................................................... Objetivos especificos................................................................................ Directorio de LIDIVET............................................................................... Organigrama de LIDIVET ......................................................................... 4 4 5 5 6 8 IV. NATURALEZA DEL TRABAJO DIRIJIDO................................................ 9 V. DIAGNÓSTICO DE NECESIDADES ........................................................... 10 VI. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA ..................................................................... 11 6.1. Laboratorio ................................................................................................ 11 6.1.1. Análisis de laboratorio ............................................................... 11 6.1.2. Organización de un diagnostico................................................. 11 6.2. Fiebre aftosa ............................................................................................ 12 6.2.1. Concepto..................................................................................... 12 6.2.2. Historia........................................................................................ 12 6.2.3. Distribución geográfica................................................................ 12 6.2.4. Etiología ..................................................................................... 13 6.2.5. Huéspedes.................................................................................. 13 6.2.6. Transmisión. ............................................................................... 14 6.2.7. Patogénesis. .............................................................................. 14 6.2.8. Signos Clínicos. ......................................................................... 15 6.2.8.1. Bovinos .......................................................................... 15 6.2.8.2. Porcinos ......................................................................... 15 6.2.9. Diagnóstico........................................................................ 16 6.2.9.1. Diagnóstico Diferencial................................................... 16 7.2.10. Tratamiento................................................................................ 17 6.2.11. Control ....................................................................................... 17 6.2.11.1. Control por erradicación. ............................................. 17 6.2.11.2. Vacunación.................................................................. 17 6.3. Brucelosis.............................................................................................. 18 6.3.1. Definición .................................................................................... 18 6.3.2. Importancia económica .............................................................. 18 6.3.3. Historia......................................................................................... 19 6.3.4. Etiología ...................................................................................... 19 6.3.5. Vías de infección......................................................................... 19 6.3.5.1. Vía oral ......................................................................... 19 6.3.5.2. Respiratoria .................................................................... 19 6.3.5.3. Cutánea.......................................................................... 19 6.3.5.4. Genital ............................................................................ 20 6.3.6. Signos clínicos ................................................................. 20 6.3.7. Epidemiología.................................................................... 20 6.3.8. Diagnóstico ................................................................................ 20 6.3.8.1 Clínico ........................................................................... 21 6.3.8.2. Laboratorial directo....................................................... 21 6.3.8.3. Serologíco. ..................................................................... 21 6.3.8.4. Diagnóstico diferencial ................................................... 21 6.3.9. Control y Tratamiento ................................................................. 21 6.4. RABIA .................................................................................................... 22 6.4.1. Concepto..................................................................................... 22 6.4.2. Etiología ...................................................................................... 22 6.4.3. Epidemiología ............................................................................ 22 6.4.4. Distribución geográfica................................................................ 23 6.4.5. Patogénesis ............................................................................... 23 6.4.6. Signos clínicos.- se divida clásicamente entres fases: ............... 24 6.4.6.1. Fase prodrómica (2 a 3 días) ........................................ 24 6.4.6.2. Fase furiosa (2 a 4 días)................................................ 24 6.4.6.3. Fase paralítica ( 2 a 4 días).......................................... 24 6.4.7. La enfermedad en el hombre ....................................................... 25 6.4.8. Diagnóstico ................................................................................. 25 6.4.8.1. Diagnóstico diferencial .............................................................. 26 6.4.9. Tratamiento................................................................................. 26 6.4.10. Prevención ................................................................................ 27 6.5. ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AEI) .................................................... 27 6.5.1. Concepto..................................................................................... 27 6.5.2. Etiología ...................................................................................... 27 6.5.3. Transmisión ............................................................................... 28 6.5.4. Signos clínicos ............................................................................ 28 6.5.5. Diagnóstico ................................................................................. 29 6.5.6. Prevención y Control................................................................... 29 6.6. ANAPLASMOSIS ..................................................................................... 30 6.6.1. Concepto...................................................................................... 30 6.6.2. Etiología ...................................................................................... 30 6.6.3. Transmisión .............................................................................. 31 6.6.4. Signos clínicos ........................................................................... 31 6.6.5. Lesiones...................................................................................... 31 6.6.6. Diagnóstico ................................................................................. 32 6.6.7. Tratamiento................................................................................. 32 6.6.8. Prevención .................................................................................. 32 6.7. BABESIOSIS ........................................................................................... 33 6.7.1. Concepto...................................................................................... 33 6.7.2. Etiologia ....................................................................................... 33 6.7.3. Transmisión y epidemiología .................................................... 33 6.7.4. Signos Clínicos ........................................................................... 34 6.7.5. Diagnóstico ................................................................................. 34 6.7.5.1. Métodos directos ........................................................... 34 6.7.5.2. Métodos indirectos ........................................................ 34 6.7.6. Tratamiento y control .................................................................. 35 6.8. MASTITIS BOVINA .................................................................................. 35 6.8.1. Introducción ................................................................................. 35 6.8.1. Concepto ..................................................................................... 36 6.8.1.1. Mastitis clínica ............................................................... 36 6.8.1.2. Mastitis subclínica ......................................................... 36 6.8.2. Etiología ..................................................................................... 36 6.8.3. Diagnóstico ................................................................................. 36 6.8.3.1. Clínico: .......................................................................... 36 6.8.3.2. Laboratorial: .................................................................. 37 6.8.4. Síntomas..................................................................................... 37 6.8.5. Prevención ................................................................................. 37 XII. DESCRIPCIÓN DE LAS ACTIVIDADES.................................................. 39 8.1. DESCRIPCIÓN DE CADA SALA Y SU DIAGNÓSTICO QUE SE REALIZA PARA EL RESULTADO FINAL. .................................................... 39 8.1.1. Recepción de las Muestras ....................................................... 39 8.1.2. Sala de Esterilización ................................................................ 40 8.1.3. Sala de virologia para el diagnostico de rabia ............................ 40 8.1.3.1. Prueba de inmunofluorescencia .................................... 40 8.1.4. Sala de biología molecular.......................................................... 41 8.1.5. Sala de hematología .................................................................. 42 8.1.6. Sala de bacteriologia y micologia................................................ 43 8.1.7. Área de Necropsia ...................................................................... 44 8.1.8. Sala de calidad de la leche ......................................................... 45 8.1.8.1. Programa de Medicina Preventiva ................................. 45 8.1.8.1.1. Control de “Mastitis subclínica” calidad higiénica y sanitaria de la leche ...................................................... 45 8.1.8.1.2. Objetivos........................................................... 45 8.1.9. Sala de Aftosa............................................................................. 48 8.1.9.1. Uso de la técnica de las pruebas inmunoenzimaticas I-ELISA 3ABC y EITB. ................................................................ 48 8.1.10. Sección de Serologia Brucelosis .................................... 48 8.1.11. Sección de Patología Aviar .......................................... 50 8.1.12. Sala de parasitología...................................................... 51 8.1.13. Seccion de Virologia ....................................................... 52 IX. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES............................................. 56 9.1. CONCLUCIONES ..................................................................................... 56 9.1.1. RECOMENDACIONES……………………………………………………...56 X. BIBLIOGRAFIA ........................................................................................... 58 ANEXOS .......................................................................................................... 61 INDICE DE CUADROS Cuadro 1. Cronograma de actividades…………………………………………………. Pág. 38 2. Resultados de inmunofluorescencia ........................................................... 41 3. Hemogramas completos y la observación de hemoparasitos en sección de hematología. .................................................................................. 43 4. Resultados de cultivos bacteriológicos en distintas especies. ..................... 43 5. Numero de necropsias realizadas por especie. ........................................... 44 6. Rol de monitoreo de lecherías ..................................................................... 46 7. Resultado de muestras según procedencia, en la sala de calidad de la leche............................................................................................................. 47 8. Porcentaje de muestras por categoría, en muestras de leche procedentes de la “ PIL” ................................................................................... 47 9. Resultado de fiebre aftosa procesadas con I-ELISA 3ABC/EITB................ 48 10. Resultados de la prueba bufferada ............................................................ 49 11. Resultados de la prueba C- ELISA............................................................. 49 12. Resultados de la prueba anillo en leche en la sección de serología brucelosis ......................................................................................................... 50 13. Muestras procesadas en la sala de patología aviar ................................... 50 14. Muestras procesadas por el método de aglutinación rápida en placa (sala de patología aviar)................................................................................... 51 15. Muestras procesadas en la sala de parasitología. .................................... 52 16. Muestras procesados mediante la técnica de inmunodifucion en gel agar. ................................................................................................................ 52 17. Número de muestras procesadas por sección durante el periodo de prácticas........................................................................................................... 53 18. Número de muestras procesadas por especie........................................... 54 1 PRÁCTICAS DIRIGIDAS EN EL LABORATORIO DE INVESTIGACIÓN Y DIAGNÓSTICO VETERINARIO (LIDIVET).1 Olivera Fernando2; Guzmán C. Jaime3; Ribera Hugo4 FACULTAD DE CIENCIAS VETERINARIAS U.A.G.R.M I. RESUMEN En el periodo de las prácticas del 05 de enero al 03 de julio de 2009, efectuadas en el Laboratorio de Investigación y Diagnostico Veterinario (LIDIVET), se realizaron los siguientes análisis de laboratorio: un total de 6.644 muestras, 2623 fueron de solicitudes para el diagnóstico de brucelosis correspondiendo el (39%); 2128 (81%) por el método screening, 291 (11%) con C- ELISA y 204 (7,7%con el método de anillo en leche. En la sección de patología aviar se procesaron 1611 muestras representando el (34%) de los cuales 1076 por el método de ELISA, para el diagnostico de enfermedades víricas y 535 fueron de solicitud para el diagnóstico de micoplasma y salmonella con la técnica de aglutinación rápida en placa. En la sección de rabia 41 (0,6%) muestras de cerebro fueron de solicitud para el diagnostico de rabia utilizando anticuerpos fluorescentes (IFD), reportando un porcentaje de positividad del 29%.; sala de aftosa 264 (4%) muestras con I-ELISA 3ABC/ EITB; Bacteriología 643 (9,7%) cultivos; sala de tecnología de la leche 1163 (17,6%) muestras de leche y 2 asistencias al campo. En sala de necropsia se practico 236 (3,5%) necropsias principalmente de aves; 11 (0,2%) muestras para anemia infecciosa equina y 35 (0,5%) muestras de materia fecal para la observación huevo de parásitos gastrointestinales, pulmonares y fasciola hepática. 1 Trabajo Dirigido presentado por Fernando Olivera Cayo, para obtener el título de Médico Veterinario y Zootecnista Urbanización Terracor I, Mza. 20, Calle 2; Telf.: 74922635, Santa Cruz – Bolivia 3 Médico Veterinario Zootecnista: Docente Titular de Patología Clínica Veterinaria de la F.M.V.Z. Guía Dr. Jaime Guzmán C. 4 Médico Veterinario Zootecnista: Encargado de la Sala de Hematología de LIDIVET, Dr. Hugo Ribera C. 2 2 II. INTRODUCCIÓN Una de los principales desafíos para superar las limitaciones relacionadas con la productividad constituye la presencia de enfermedades que afecta a la población ganadera y animal en general. Santa Cruz es un departamento de clima cálido y húmedo, siendo esto un ambiente adecuado para la proliferación y difusión de diversas enfermedades. El productor debe dotar a su explotación de las condiciones necesarias para satisfacer la eficiencia productiva necesaria. Por ello se hace imprescindible el uso del laboratorio para el diagnóstico, pronóstico y control de las diferentes enfermedades animales, con objeto de asegurar el éxito económico del productor. Es difícil dar un diagnóstico definitivo solo con el examen clínico de los animales, por eso es necesario completar con medios auxiliares como son los análisis laboratoriales. Los primeros diagnósticos se basaron principalmente en la historia clínica y el examen físico de los pacientes. Con los avances de la medicina comenzaron a utilizarse medios auxiliares para la exploración clínica como ser el estetoscopio, fonendoscopio, termómetro, etc. La invención del microscopio revoluciono los diagnósticos permitiendo observar estructuras y organismos no detectados por la vista del hombre. A diferencia de la medicina humana, el clínico veterinario actual tiene como objeto de estudio una cantidad variada de especies animales, por lo cual es imprescindible la necesidad de conocer las características de cada tipo animal, sus padecimientos específicos. En países desarrollados el avance de la medicina veterinaria fue a la par de la medicina humana, en nuestro medio no ocurrió esto pero el clínico hoy en día esta empezando a 3 utilizar todo los medios de ayuda como el laboratorio y equipos como la ecografía, endoscopia, radiología, electrocardiograma y otros. 2.1.- Objetivo general del trabajo dirigido Profundizar y ampliar los conocimientos teóricos y prácticos en el área de diagnostico laboratorial de enfermedades, mediante el uso del laboratorio. 2.1.1.- Objetivos específicos Conocer y comprender los procedimientos y fundamentos de las diferentes pruebas de laboratorio que se desarrollan en dicho laboratorio. Intervenir activamente en los diferentes análisis de laboratorio. Interpretar los resultados de laboratorio. Adquirir responsabilidad, seriedad y lealtad en el área laboral al realizar las prácticas. III. CARACTERÍSTICAS DE LA INSTITUCIÓN El laboratorio de Investigación y Diagnostico Veterinario (LIDIVET) está ubicado en la Av. Ejercito Nacional # 153 de la ciudad de Santa Cruz de la sierra Bolivia. 4 El laboratorio LIDIVET es una institución pública dedicada a la investigación y diagnostico de enfermedades de animales como también las que afectan a humano (zoonosis). La cual cuenta con diferentes salas de especialización de diagnostico diferenciado en enfermedades para distintas especies animales, mediante técnicas aprobadas por la Oficina Internacional de epizootias OIE, por tal motivo tiene la cualidad de de ser un laboratorio de referencia Nacional e Internacional. El Laboratorio de Investigación y Diagnostico Veterinario “LIDIVET” está compuesto por las siguientes áreas: Bacteriología, Parasitología, Histopatología, Patología aviar, Hematología, F. Aftosa, Brucelosis, Rabia, Recuento de células somáticas, Necropsia, PCR, Esterilización y medios de cultivo. 3.1. Misión Investigar y diagnosticar las diferentes enfermedades animales que restringen la producción animal y constituyen un peligro para la salud humana, además de coadyuvar en la prevención de estas enfermedades animales a través de servicios de medicina preventiva. 3.2. Visión Mantenerse como laboratorio LIDER con reconocido prestigio nacional e internacional, en el campo de la investigación y diagnostico veterinario, que satisfaga las expectativas y requerimiento de los sectores productivos; manteniendo el carácter oficial y central de referencia, para la red nacional de laboratorios de salud animal de Bolivia, con acreditación internacional. 3.3. Objetivo general de la institución 5 Diagnostico e investigación de las enfermedades que afectan la ganadería y a la salud humana, a través de un servicio de alta calidad en beneficio de los sectores pecuarios del departamento y del país. 3.3.1. Objetivos específicos Mantener y fortalecer el concejo de coordinación de LIDIVET, el cual agrupa a entidades públicas y privadas del quehacer pecuario regional. Potenciar al laboratorio para que preste un servicio ágil y efectivo al sector pecuario del departamento y del país. Proyectar los servicios de laboratorio en forma directa a los productores pecuarios de Santa Cruz, tanto en el área integrada como en las otras provincias, a través de proyectos específicos con organismos nacionales e internacionales. Apoyar, coordinar y asesorar a los laboratorios y servicios veterinarios nacionales del ministerio de asuntos campesinos, indígenas y agropecuarios y SENASAG, con fines de mejorar la investigación y diagnostico de las enfermedades animales. Coordinar actividades con instituciones nacionales e internacionales a fines, para participar en los esquemas de control de las enfermedades. Coadyuvar en forma activa con los programas de erradicación de las enfermedades de gran importancia como la fiebre aftosa, brucelosis, tuberculosis, rabia y otras que afectan a la ganadería y al ser humano. 3.4. Directorio de LIDIVET LIDIVET está manejado por un Consejo de Coordinación compuesta por las siguientes instituciones: 6 Servicio Nacional de Sanidad agropecuaria e Inocuidad Alimentaria– SENASAG Cámara Agropecuaria del Oriente – CAO Federación de Ganaderos de Santa Cruz – FEGASACRUZ Federación de Productores de Leche – FEDEPLE Asociación Departamental de Porcicultores - ADEPOR Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia – UAGR Colégio de Médicos Veterinários SC. – COMVETCRUZ El consejo de Coordinación es el organismo que apoya y supervisa todo el trabajo que realiza LIDIVET. La Prefectura del departamento apoya al laboratorio con un presupuesto asignado para sueldos de nivelación. Los sectores productivos FEGASACRUZ y FEDEPLE, realizan aportes económicos para los servicios de Medicina Veterinaria Preventiva LIDIVET, tiene convenio con organismos internacionales como ser: Universidad de Edimburgo – Gran Bretaña Agencia Internacional de Energía Atómica – OIEA. 7 Agencia de Cooperación Internacional de Japón – JICA 8 3.6. Organigrama de LIDIVET ASESORÍA INTERNACIONAL Directorio Director Ejecutivo Secretaría Dpto. de Servicios de Laboratorio Dpto. de Investigación y Extensión Dpto. Administrativo y Financiero Encargos de Laboratorio Chofer Mensajero Responsable de Prog. Medicina Preventiva Fuente: LIDIVET, 2009 Auxiliares de Laboratorio Apoyo Administrativo Encargado de Almacén Encargado de Recepción y Caja Portero y Sereno 9 IV. NATURALEZA DEL TRABAJO DIRIJIDO El trabajo dirigido es una de las modalidades de titulación de la Universidad Autónoma Gabriel René Moreno, permite a los estudiantes elegir un área de su preferencia, ya sean empresas públicas o privadas, en la que aplica y amplia sus conocimientos adquiridos durante su formación académica, con el objetivo de desenvolverse en las aéreas seleccionadas con un mayor conocimiento, bajo la supervisión constante de un profesional del área relacionada con las Ciencias Veterinarias. Previo acuerdo entre la Facultad con la Institución se realizó un convenio y se decidió realizar el presente trabajo dirigido en las instalaciones de “LIDIVET” teniendo como guías al Dr. Ribera Hugo C; encargado de la sala de hematología en “LIDIVET” y como tutor el Dr. Jaime Guzmán Carvajal, docente titular de la materia de Patología Clínica en la Facultad de Ciencias Veterinarias de la UAGRM quienes me brindaron sus conocimientos y experiencia para llevar a cabo los objetivos trazados. 10 V. DIAGNOSTICO DE NECESIDADES LIDIVET dentro de sus actividades rutinarias esta expuesto a diferentes agentes patógenos como: Rabia, Hepatitis, Brucelosis, Tétanos, etc. Entonces es necesario que se incorpore un programa de inmunización al personal y pasantes. Además equipos y vehículos e infraestructura por el tiempo transcurrido necesitan un recambio remodelación para estar acorde a los requerimientos por organismos internacionales o en lo que respecta la bioseguridad. Seria importante la incorporación de nuevas áreas de diagnostico en sanidad animal como también en toxicología de los alimentos, para lo cual seria necesario la inversión en infraestructura, equipos, formación y adiestramiento de técnicos especialistas en el área de diagnostico correspondiente. 11 VI. REVISIÓN BIBLIOGRÁFICA 6.1. Laboratorio Definición: Un laboratorio es un lugar equipado con diversos instrumentos de medida o equipos donde se realizan experimentos o investigaciones diversas, según la rama de la ciencia a la que se dedique. También puede ser un aula o dependencia de cualquier centro docente acondicionada para el desarrollo de clases prácticas y otros trabajos relacionados con la enseñanza. 6.1.1. Análisis de laboratorio Los análisis de laboratorio son un conjunto de técnicas analíticas, instrumentales, que tienen por finalidad la confirmación de sospechas de diagnostico presuntivo y contribuir a su interpretación. Estas técnicas pueden ser de diferentes tipos. (Guzmán. 2007) 6.1.2. Organización de un diagnostico Para llegar a un diagnostico correcto deben seguirse las siguiente secuencia de pasos. Los mismos son los siguientes: Historia clínica completa (datos del paciente). Examen físico del paciente y obtención de la muestra. Análisis e investigación para el diagnostico. Interpretación de los resultados y dar el diagnostico definitivo Todas las secuencias deberán coincidir exactamente y tener coherencia, sobre la base del conocimiento netamente técnico. (Guzmán. 2007). 6.2. FIEBRE AFTOSA 12 6.2.1. Concepto La fiebre aftosa es una enfermedad generalizada y altamente contagiosa, propia de los animales, biungulados de evolución aguda y febril en la mayoría de los casos, en el curso de la cual se desarrollan vesículas y erosiones característicos en el revestimiento epitelial de la mucosa del aparato digestivo, en el surco y rodete de las uñas y en otros lugares desprovistos de pelo. (Joachim, 1967) 6.2.2. Historia En América del Sur fue identificada por primera vez en 1.870 en la región Sur Oriental del Continente. Desde entonces se ha ido expandiendo gradualmente hasta hallarse en forma endémica en la mayor parte de Sudamérica. Hasta el advenimiento de las primeras campañas de lucha, en la década de 1.950 y comienzo de 1.960, la enfermedad solía ocurrir en ondas periódicas que afectaban gravemente un alto porcentaje de la población bovina en regiones extensas. (CPFA, 1993). La existencia de la fiebre aftosa en Bolivia data de 1912, cuando se reportaron casos de esta enfermedad en el departamento de Cochabamba; en 1962 se registra la enfermedad en este mismo departamento identificándose al virus tipo “A” como causante de la ocurrencia; luego a finales del año 1968 hasta 1969 se presenta en casi todos los departamentos episodios de esta enfermedad tipificándose al virus tipo “O” en el departamento de Santa Cruz; en 1971 nuevamente se identifica al virus tipo “O1” y al virus tipo “C”. 6.2.3. Distribución geográfica La fiebre aftosa se encuentra y generalmente se considera enzoótica en Asia, África, gran parte de Europa y Sudamérica. Se consideran libres de fiebre aftosa: Norteamérica, Centroamérica, Islas del Caribe, Australia, muchas pequeñas islas de Oceanía, Guyana Francesa y países de gran producción ganadera como Nueva Zelandia, Japón, Filipinas, Suecia, Islandia, Dinamarca, Finlandia, 13 Noruega, Irlanda, Chile, Argentina, Venezuela y Uruguay. Debido a un gran movimiento realizado por los gobiernos con la finalidad de establecer programas de erradicación se encuentran libres con vacunación Argentina, Paraguay y dos estados del Sur de Brasil. En Colombia la región Noroccidental del país, en el departamento de Chocó tiene las características de zona libre de la enfermedad. (OPS, 1.996). 6.2.4. Etiología La fiebre aftosa es causado por un enterovirus de la familia picornaviridae, género aphthovirus. Se han identificado por lo menos siete tipos inmunológicamente distintos. Estos tipos comprenden A, O, C, (SAT) 1, 2, 3, y ASIA 1. Dentro de los siete se han identificado más de 60 subtipos, algunos de los cuales son suficientemente diferentes, antigénicamente. (Merck, 1988) 6.2.5. Huéspedes Son sensibles en mayor grado los animales de pezuña hendida, aunque en distintos grados según la especie. El primer lugar lo ocupa el ganado vacuno, con una morbilidad de casi el 100%, Sigue el cerdo. La oveja, la cabra, así como los animales silvestres como venado, corzo, gamo, jabalí, alce, reno, rebeco, antílope, yack, bisonte, búfalo, camello, llama, jirafa, etc. También se ha diagnosticado la glosopeda en elefante. En condiciones excepcionales y solo de modo esporádico, enferman también el perro y el gato, así como el conejo, rata y el erizo. Igualmente es muy poco sensible el hombre, si bien en toda gran epizootia siempre se observan casos aislados. (Joachim, 1967) 6.2.6. Transmisión 14 La transmisión de la Fiebre Aftosa se hace principalmente por medio del animal infectado, especialmente durante la fase febril temprana cuando el virus está presente en la sangre y en todos los órganos, tejidos secreciones y excreciones. (CPFA, 1.972). El virus se elimina por la saliva, orina, moco intestinal, nasal y el semen. Por tanto cuando hay un animal infectado, la diseminación de la enfermedad es rápida. Todos los equipos y las instalaciones se contaminan y sirven como fuente de infección para los otros animales del lote. 6.2.7. Patogénesis El sitio primario usual de la infección con virus de fiebre aftosa y su replicación inicial ocurre en las células de las membranas mucosas de la cavidad nasal, faringe y esófago. Desde allí el virus invade las células adyacentes, entra en el sistema circulatorio a través de los vasos sanguíneos y linfáticos, causando diferentes infecciones en la cavidad oral, patas, ubre y rumen. Después de las 48 – 72 horas el animal comienza a desarrollar la fiebre y aparecen las vesículas en la cavidad oral, patas, ubre y rumen. También existe una salivación, descarga nasal y claudicación del animal. (Panaftosa, 2009) 6.2.8. Signos clínicos 6.2.8.1. Bovinos: Se inicia con decaimiento general, pérdida del apetito y fiebre. Es frecuente que lo primero que se note sea la salivación y la cojera de los animales, debidas a las lesiones que causa el virus en las patas. 15 Las lesiones de la boca, hacen que los animales tengan mucha salivación (babeo) con chasquido de dientes. Se forman vesículas especialmente en la lengua, hocico y encías que impiden comer adecuadamente. Los pezones de las vacas también se afectan, dificultándose el ordeño por las aftas o vesículas que se rompen y dejan áreas sangrantes y dolorosas. La mastitis o inflamación de la ubre es una complicación segura y la disminución en la producción de leche es drástica. El virus ocasiona lesiones en todo el tubo digestivo y como consecuencia, se disminuye la absorción de nutrientes, se desperdicia el forraje y se pierde producción de carne. En los animales jóvenes (terneros) la mortalidad se aumenta por las lesiones cardiacas que causa el virus. (Antiaftosa, 2009). 6.2.8.2. Porcinos: En los cerdos, el primer signo llamativo es la claudicación. La lesión ungular se inicia con manchas rojas en la parte anterior de la almohadilla plantar y cerca de los talones. En otros casos, se puede encontrar vesículas en el rodete coronario, con inflamación extensa de la piel de la región y desprendimiento de las pezuñas, sobre todo en cerdos de mucho peso. De esta forma los cerdos se ven obligados a permanecer echados y con dificultad para alimentarse. (Acha, 1986) 6.2.9. Diagnostico Uso de las técnicas de las prueba I-ELISA 3ABC/ EITB en las investigaciones sobre virus aftoso. Debido a las características que presenta fiebre aftosa, la demostración fehaciente de ausencia de actividad viral se torna esencial para acompañar el progreso de los programas de erradicación. 16 Estos ensayos, están diseñados para permitir la evaluación de la actividad viral en poblaciones animales, la prueba inicial esta basado en la detección de anticuerpos contra la proteínas no capsidales 3ABC, y la prueba confirmatorio en la detección de anticuerpos de las proteínas no capsidales 3ABC, 3D, 2C, 3B y 3A como marcadores de exposición al virus activo, independientemente del animal haber sido o no vacunado. (LIDIVET 2005) La prueba Elisa ha sido utilizada para probar anticuerpos contra virus aftoso contenido en distintas especies animales y para identificar, cuantificar, subtificar el virus y para comparación de antígeno del virus. (CPFA, 1.972) 6.2.9.1. Diagnostico diferencial Estomatitis vesicular Enfermedad vesicular del cerdo Exantema vesicular del cerdo 6.2.10. Tratamiento Dada la alta morbilidad y la rápida difusión de la epizootia, así como la escasa influencia que tienen las medidas terapéuticas en la enfermedad, el tratamiento de los animales ocupa un lugar secundario. No se conoce una curación para la enfermedad y, aunque el tratamiento puede aliviar los signos, no impide que se difunda la infección. (Joachim, 1987) 6.2.11. Control 17 Los utilizados con más frecuencia son control por erradicación y por vacunación, o una combinación de ambos En los países donde la enfermedad es enzoótica, la incidencia de la enfermedad es controlada por programas de vacunación. En un creciente número de países la vacunación es obligatoria, en otros es voluntaria. En los países que generalmente están libres de FA, ésta es erradicada por medio de sacrificio, siguiendo con una total desinfección de predios. En estos casos, los animales sacrificados son generalmente destruidos por incineración o enterramiento. Económicamente, éste ha sido el método más efectivo para combatir un brote. 6.2.11.1. Control por erradicación. El éxito de un programa de erradicación depende de la minuciosidad con que se aplique. Tan pronto como se formule el diagnostico, todos los animales de pezuña hendida de los grupos expuestos deben sacrificarse inmediatamente, y después ser incineradas o enterrados. (Blood, 1992) 6.2.11.2. Vacunación. La vacunación periódica contra la glosopeda ya es algo común en la mayor parte del mundo. Son de uso general las vacunas muertas trivalentes (que poseen cepas O, A y C), pero debido a la frecuencia cada vez mayor de subcepas antigénicamente distintas se esta haciendo cada vez más común la producción de vacunas a partir de virus aislado localmente. Las vacunas con coadyuvante oleosas e inactivadas son prometedoras para producir una inmunidad mayor, y solo requieren vacunación anual en bovinos adultos y bianual en ganado de corta edad. (Blood, 1992) 6.3. BRUCELOSIS 18 6.3.1. Definición Es una enfermedad reproductiva, infectocontagiosa caracterizada por producir abortos, retención de placenta y problemas de fertilidad en diferentes especies animales hembras como también en machos. Es contagioso para el hombre por lo que es una enfermedad zoonotica y de gran importancia económica. (LIDIVET 2.008) 6.3.2. Importancia económica La brucelosis bovina esta ampliamente distribuida en todo el mundo, sobre todo en América Latina, donde se producen grandes pérdidas económicas, existiendo en tasas de infección entre los países. La Brucella abortus es la mas ampliamente distribuida. Brucella melitensis y Brucella suis tiene una distribución irregular. Brucella neotomae, su distribución se limita a los focos naturales. La infección por Brucella canis se ha comprobado actualmente en muchos países de varios continentes y puede afirmarse que su distribución es universal. Brucela ovis parece estar distribuido en los países donde la cría de ovinos es importante. (Acha, 1986) 6.3.3. Historia En la isla de malta y en casi todos los países de la costa del mediterráneo en la india, China e Inglaterra, existía una enfermedad febril que atacaba al hombre y especialmente al ganado caprino y que durante mucho tiempo se confundió con la fiebre tifoidea, paludismo y otros síndromes febriles, siendo esta una enfermedad que era transmitida por la brucella. (Acha, 1986) 6.3.4. Etiología 19 La brucelosis es producid por las bacterias del genero Brucella cuyas especies son B. abortus, B. ovis, B. mellitensis, B. suis, B. neotomae, Y B. canis. (LIDIVET, 2.008). 6.3.5. Vías de infección 6.3.5.1. Vía oral.- cuando el animal ingiere los restos de la placenta, también lame a la cría o las partes genitales de otros animales infectados; por la ingestión de de alimentos o agua contaminada. 6.3.5.2. Respiratoria.- cuando la madre u otros animales huelen al ternero o los restos después del parto. 6.3.5.3. Cutánea.- cuando se ponen en contacto con un animal que abortó. 6.3.5.4. Genital.- a través de la copula o la inseminación artificial con semen proveniente de animales infectados. (LIDIVET, 2008) 6.3.6. Signos clínicos El aborto es la manifestación más obvia de la enfermedad. También se puede apreciar una disminución de un 20 % de la producción de leche, nacimiento de terneros débiles o muertos y retención de placenta. En los machos tiene predilección por los órganos reproductivos, provocando orquitis, epididimitis y la inflamación de las glándulas accesorias ocasionando infertilidad. (LIDIVET, 2.008) 6.3.7. Epidemiología 20 Algunos de los reservorios naturales son los bovinos, caprinos, ovinos, cerdos y mamíferos marinos, pero se han encontrado brucellas en una inmensa cantidad de mamíferos tan dispares como pequeños roedores, cánidos, camélidos y cetáceos. Cabe destacar que la enfermedad se puede presentar, con distinta sintomatología, dependiendo del huésped y la especie de Brucella en cuestión. Las vías de contagio suelen ser: mucosas, heridas en la piel y la vía digestiva. La bacteria puede incluso entrar por las vías respiratorias mediante aerosoles. Muchas infecciones provienen de la manipulación de animales contaminados, por ingesta de leche o de sus productos no pasteurizados y de carnes poco cocidas. En países desarrollados es una enfermedad típicamente ocupacional donde las personas más expuestas son veterinarios, peones de campo y trabajadores de la industria de la carne. (Wikipedia, 2009) 6.3.8. Diagnostico 6.3.8.1 Clínico: historia clínica y a través de las fallas reproductivas. 6.3.8.2. Laboratorial Directo.- aislamiento e identificación del germen, a partir de restos de placenta o fetos abortados. 6.3.8.3. Serológico Aglutinación rápida en placa con antígeno bufferada. Anillo en leche ELISA (confirmativa) PCR 21 De todas estas pruebas mencionadas el laboratorio (LIDIVET), utiliza la prueba de aglutinación en placa como prueba tamiz, y como prueba confirmativa la prueba de ELISA competitiva, a demás de la prueba de anillo en leche. (LIDIVET 2008). 6.3.8.4. Diagnóstico diferencial La brucelosis se debe diferenciar de otras enfermedades que producen aborto, retención de placenta o desarreglos reproductivos, tales como IBR, Leptospirosis, vibriosis, Deficiencia de minerales y otros. 6.3.9. Control y tratamiento Los esfuerzos están dirigidos a la detección, dado que no está disponible ningún tipo de tratamiento practico. La erradicación de la enfermedad se basa en ensayos y eliminación de los reactores. En humanos se usan muchos antibióticos como la tetraciclina, sulfas, estreptomicina y otros en combinación. El hato infectado se somete a pruebas a intervalos regulares, hasta que se obtengan dos o tres pruebas sucesivas negativas. (Merck, 2000) 6.4. RABIA 6.4.1. Concepto Encefalitis viral aguda. Es una enfermedad natural de los perros, gatos, murciélagos, y carnívoros salvajes. Sin embargo, todos los animales de sangre caliente son susceptibles. (Merck, 1988). Infección viral que se transmite a través de la mordedura de algunos animales de sangre caliente. Ataca el sistema nervioso y si no se trata, es 100 por ciento fatal en los animales. (Sharpen, 2009) 6.4.2. Etiología 22 Virus tiene forma de bala, de genoma ARN. El virus de la Rabia pertenece a: Familia: Rhabdoviridae. Genero: Lyssa virus. Tipo: Virus Calle (4 tipos). Serotipo 1 = Virus de la Rabia (Rv). Serotipo 2 = Virus de murciélagos. Serotipo 3 = Virus Mokola. Serotipo 4 = Duvenhague. (Cruz, 2.007). 6.4.3. Epidemiología La importancia de la rabia para la salud pública no radica en el número de casos, relativamente reducido, sino en la alta letalidad, que alcanza al 100% de los enfermos. No menos importante es el impacto psíquico y emocional, el sufrimiento y la ansiedad de las personas mordidas ante el temor de contraer la enfermedad. (Achá, 1986) Todos los animales de sangre caliente pueden enfermar con el virus rábico, siendo los mas susceptibles las mofetas, canidos silvestres, murciélagos, y ganado. Los perros gatos caballos, cabras, ovejas, primates no humanos y personas tienen susceptibilidad intermedia. La situación actual de la rabia en la región, mirada desde sus ángulos epidemiológico, económico y social, configura el perfil epidemiológico de los grupos mas vulnerables de la población y se inscribe en las premisas que sustentan las prioridades de cooperación técnica de la OPS, desde que hace parte sustantiva de los conceptos de la agenda inconclusa, el mantenimiento de los logros y el enfrentamiento de nuevos desafíos. (Pao, 2009) Los animales silvestres son los reservorios primarios, pero los animales domésticos son las principales fuentes de transmisión humana. (Merck, 2000) 23 6.4.4. Distribución Geográfica La enfermedad es universal, excepto en Australia Nueva Zelanda, Nueva Guinea, Suecia, Gran Bretaña y Noruega. Países donde se erradico o que permanecen libres de rabia Canina a causa de protección natural como las islas Canarias, o por aplicar rigurosos reglamentos de cuarentena. Son susceptibles todos los animales de sangre caliente. (OMS, 2005) 6.4.5. Patogénesis El virus de la rabia se transmite por la saliva en una herida por mordedura profunda, desde donde entra al tejido nervioso periférico y se disemina en forma centrípeta a lo largo de los nervios periféricos de la medula espinal y el cerebro. Ocurre la diseminación centrifuga a los largo de los nervios periféricos del cerebro a otros tejidos como las glándulas salivales. El periodo de incubación es extremadamente variable, pero a menudo es de 2 a 8 semanas. La eliminación del virus por la saliva empieza a corto tiempo por lo general menos de 10 días antes de que aparezcan los signos clínicos. (Bichard, 1996) 6.4.6. Signos Clínicos.- se divide clásicamente en tres fases: 6.4.6.1. Fase Prodrómica (2 a 3 diás) Esta fase con frecuencia pasa inadvertida, pero puede haber signos sutiles de cambio de comportamiento, fiebre, reflejos cornéales y palpebrales lentos y morderse el sitio de la lesión. 6.4.6.2. Fase Furiosa (2 a 4 diás) Inicialmente el sistema limbito del sistema nervioso central es invadido, lo que ocasiona signos de comportamiento errático, como irritabilidad inquietud, ladridos, agresión episódica, ataques viciosos a objetos inanimados, pica, gruñidos inexplicables, y 24 comportamiento sexual anormal. Se pueden desarrollar ataxia, desorientación y convulsiones. (Bichard, 1996) 6.4.6.3. Fase Paralítica (2 a 4 diás) Se desarrolla parálisis de las neuronas motoras inferiores que causa signos de paresia y parálisis ascendente de los miembros, parálisis laringe (cambio del ladrido, disnea), parálisis faringea (babeo, disfagia) y parálisis masticatoria (mandíbula caída). Esto va seguido por una depresión, coma y muerte del animal por parálisis respiratoria. (Bichard, 1996) 6.4.7. La enfermedad en el Hombre La enfermedad comienza con una sensación de angustia, cefalalgia, pequeña elevación de la temperatura corporal, malestar y alteraciones sensoriales imprecisas, a menudo relacionada con el lugar de la mordedura. El paciente suele sentir dolor e irritación en la región de la herida. En la fase siguiente de excitación, hay hiperestesia y una extrema sensibilidad a la luz y al sonido, dilatación de pupilas y un aumento de la salivación. A medida que la enfermedad progresa, hay espasmo en los músculos de deglución y la bebida es rechazada violentamente por contracciones musculares. Esta disfunción de la deglución se observa en la mayoría de los enfermos muchos de los cuales experimentan contracciones espasmódicas laringofaringeas. También puede observarse espasmos de los músculos respiratorios y convulsiones generalizadas. La fase de excitación puede ser predominante hasta la muerte o sustituida por una parálisis generalizada. En algunos casos la fase de excitación es muy corta, y en casi todo el curso predomina la sintomatología paralitica. La enfermedad dura de 2 a 6 días, aunque a veces este lapso es mayor, pero de modo casi invariable termina con la muerte. (Achá, 1986) 6.4.8. Diagnóstico La enfermedad debe de ser sospechada a partir de la anamnesis y manifestaciones clínicas. 25 El diagnostico es difícil especialmente en las localidades donde la rabia es frecuente. En los estadios iniciales, la rabia puede confundirse fácilmente con otras enfermedades con tendencias agresivas normales. La prueba de laboratorio de elección es microscópica de inmunofluorescencia en el tejido cerebral fresco, que permite la observación directa de la reacción especifica antígeno – anticuerpo. Cuando se usa del modo apropiado, puede establecer un diagnostico altamente especifico en pocas horas. (Merck, 2000) Aislamiento del virus, Trascripción Inversa - Reacción de Polimerasa en Cadena, en la cual nos mostrará la banda de sensibilidad estandarizada. (Reeme, 2009) 6.4.8.1. Diagnostico diferencial La rabia se debe diferenciar de las siguientes enfermedades: Caninos: Moquillo canino, intoxicación por estricnina. Equinos: Tétanos, Tripanosomiasis. Bovinos: Hipocalcemia, cetosis. (Cruz, 2007) 6.4.9. Tratamiento No existe ningún tratamiento para la rabia una vez que se han presentado los síntomas. En estos casos, el individuo afectado está condenado a la muerte. Sin embargo, sí existen vacunas efectivas para prevenir la enfermedad. Todos los perros deben ser vacunados contra la rabia cuando aún son cachorros. La vacunación se debe 26 repetir periódicamente y el tiempo entre vacunas depende de la vacuna empleada y de la incidencia de la enfermedad en la zona. Existen vacunas que se aplican cada año, otras que se aplican cada dos años y otras que se aplican cada tres años. En todo caso, el programa de vacunación debe ser establecido por el veterinario. (Trigoso, 2009) También se puede utilizar como protección en veterinarios y personas que tienen contacto con animales, antes de que ocurra una exposición. (Healths, 2009) Debido al peligro extremo de la salud publica, todos los animales sospechosos de rabia se podrán en cuarentena o se someterán en eutanasia, y las autoridades del departamento de salud deben ser notificadas de eso. (Bichard, 1996) 6.4.10. Prevención Se vacuna y refuerza a todos los perros y gatos contra la rabia. Se vacuna a los tres meses de edad, algunos autores indican que se deben vacunar los perros desde un mes de edad y su refuerzo a los 6 meses luego una vez al años. Dependiendo de las recomendaciones del producto. (Bichard, 1996) 6.5. ANEMIA INFECCIOSA EQUINA (AIE) 6.5.1. Concepto Enfermedad viral producida por un virus de la familia retroviridae, subfamilia lentaviridae RNA, que afecta a la especie equina (caballos, mula y asnos) se encuentra distribuida en casi todo el mundo, principalmente en regiones tropicales, produce grandes pérdidas económicas. (Blood, 1986) 6.5.2. Etiología Familia: retroviridae 27 Subfamilia: lentabiridae Género: retrovirus Especie: virus de la AIE (Blood, 1986) 6.5.3. Trasmisión De forma mecánica, el contagio de la infección puede darse a través de agujas hipodérmicas, frenos y utensilio de limpieza. Mediante picaduras de moscas y mosquitos (Stomoxys calcitrans, Anopheles Maculipensis, culex, y aedes spp), y garrapatas. Condiciones templadas húmedas y temperaturas elevadas favorecen la presencia de insectos vectores, por lo cual tiende a presentarse con mayor frecuencia en épocas de verano. Puede ocurrir transmisión intrauterina, vía láctea, aunque no es muy común. El virus también puede invadir el organismo por la mucosa nasal o bucal por alimentos contaminados mediante secreciones y excreciones. También es posible la transmisión mediante el coito. (Hutyra, 1973) 6.5.4. Signos clínicos Después de un periodo de incubación de 5 a 30 días, con un promedio de 14 días se presentan los síntomas. Tiene diferentes formas de presentación, que puede ser aguda, subaguda y crónica o inaparente siendo la más común esta última. 28 Entre los signos clínicos se puede evidenciar fiebre recurrente que varia de 40ºc a 42ºc, anemia que es muy peculiar, debilidad progresiva, pérdida de peso y edema. En el hemograma se puede observar trombocitopenia y linfocitosis, el hematocrito puede descender a cifras inferiores del 30%.(Hutyra, 1973) 6.5.5. Diagnóstico Clínico: provisional, basado en la historia, anamnesis, signos clínicos y datos de la necropsia. Laboratorial: hematológico, cultivo celular (aislamiento e identificación). Serología ELISA Prueba de inmunodifusion en gel agar (test de coggins); esta prueba es ampliamente utilizada para el diagnostico de la anemia infecciosa equina, es utilizada con carácter oficial en el mundo. (Merck, 1988) 6.5.6. Prevención y Control No existe ninguna vacuna ni tratamiento etiológico eficaz, el tratamiento sintomático no esta indicado porque el animal sigue expuesto a padecerlas y es un portador permanente. Se combate mediante medidas higiénico-sanitarias preventivas, como evitar la exposición a los vectores y proteger de éstos a los animales; desinfección cuidadosa del material quirúrgico; y limitación, previo diagnóstico, del comercio y el movimiento de équidos. 29 En caso de brotes se deben aplicar medidas enérgicas de erradicación, con sacrificio inmediato y destrucción sanitaria de enfermos, sospechosos, camas y desinfección, mediante el diagnostico por inmunodifusión y una permanente vigilancia. Es la única solución eficaz, y tanto más cuanto los animales infectados no sirven ni para trabajo ni para reproducción. (Wikipedia, 2009) 6.6. ANAPLASMOSIS 6.6.1. Concepto Antiguamente conocida como hidropesía, enfermedad de los rumiantes causada por un parasito intraeritrocitario obligado del orden Rickettsiales, familia Anaplasmataceae, género Anaplasma. La anaplasma bovina es de importancia económica significativa en la producción de ganado. Presente en regiones tropicales y subtropicales. (Merck, 2000) 6.6.2. Etiología Se conocen cuatro especies del género Anaplasma, como agentes causantes de la anaplasmosis: A. margínale, que es la más patógena para los bovinos. A. céntrale, causante de una relativa forma benigna de anaplasmosis en bovinos. A. caudatum, también en ganado bovino A. ovis, causante de un padecimiento limitado a ovinos y caprinos. (REDVET, 2009) 30 6.6.3. Transmisión Esta enfermedad puede ser transmitida por artrópodos hematófagos tales como algunos géneros de garrapatas, principalmente Boophilus spp. Y Dermacentor spp., moscas de establo, Stomoxys calcitrans y mosquitos, tábanos, Tábanus spp. Otra forma de transmisión es a través de agujas, jeringas, descornadores, mochetas y otros instrumentos empleados en las prácticas rurales cuando los mismos no son desinfectados correctamente y faciliten el pasaje de sangre rápidamente de un bovino infectado a otro susceptible. (Guido, 2009) 6.6.4. Signos Clínicos Anemias progresivas por la destrucción extravascular de eritrocitos infectados y no infectadas. El recuento de eritrocitos y hematocrito están muy reducidos. La dosis infectiva es entre 2 a 8 semanas y parasitemia se duplica cada hora. Presencia de disnea, inapetencia, incoordinación, membranas mucosas pálidas y amarillas, vacas preñadas aborto. (Merck, 2000) 6.6.5. Lesiones El animal esta anémico e ictérico, sangre clara y acuosa con el bazo agrandado y blando. (Merck, 2000) 6.6.6. Diagnóstico 31 El Anaplasma marginale junto con la babesia Bovis y bigemina causan la fiebre por garrapatas. El examen microscópico es el de la tinción de Giemsa realizando un frotis sanguíneo, la sangre con anticoagulante para las pruebas hematológicas. El anaplasma aparece como densas inclusiones azul púrpura teñidos homogéneamente de 0,3 – 1.0 um diámetro ubicado en el margen del eritrocito infectado. (Merck, 2000) 6.6.7. Tratamiento Los tratamientos más eficaces se han logrado con oxitetraciclinas a la dosis de 10 mg/kg de peso de 1 a 3 días cuando se utiliza la formulación simple al 5 % o 10 %; se indica una sola dosis de 20 mg/kg de peso. El imidocarb es otro fármaco de utilidad para la anaplasmosis, a la dosis de 2,5 a 3,5 mg/kg es eficaz para el control de la infección. (Guido, 2009) 6.6.8. Prevención Control de los artrópodos, y eliminación de los vectores como las garrapatas mediante baños acaricidas, pero si es posible realizar prácticas rurales con una higiene controlada que evitará la diseminación de A. marginale por jeringas, agujas, mocheta, etc. (Merck, 2000) 6.7. BABESIOSIS 6.7.1. Concepto Es una infección parasitaria producida por protozoarios del genero babesia clínicamente se caracteriza por fiebre, anemia, hemoglobinuria e ictericia. Son transmitidas por garrapatas 32 de la familia Ixodidae. Tiene gran importancia económica en regiones tropicales y subtropicales y en menor grado en las templadas. (Quiroz, 1984) En la mayoría de las regiones tropicales y subtropicales, el parasito del ganado vacuno es Babesia bigemina o B abesia bovis, transmitida por especies de Boohilus. (FAO, 1.983) 6.7.2. Etiologia Phylum: Protozoa Subphilum: Apicomplexa Clase: Piroplasmasida Subclase: Piroplasmia Familia: Babesiidae Genero: Babesia Especie: En bovinos Babesia bovis, B. bigemina, B.mayor, B. diergens. Ovinos y Caprinos B. motasi, B. ovis. Porcinos B. traumani, B. perroncitoy. Equinos B. equi, B. caballi. (Lapage, 1971). 6.7.3. Transmisión y Epidemiología Los reservorios son los animales domésticos y silvestres. La infección se transmite de un animal a otro, y en forma accidental al hombre, por medio de las garrapatas boophillus spp e ixodes. La babesiosis también puede ser transmitida en forma mecánica por inoculación desangre. La transmisión interhumana no ocurre de modo natural, pero puede producirse por transfusión de sangre, según se ha comprobado en algunos casos. (Achá, 1986). 6.7.4. Signos Clínicos 33 Enfermedad aguda en el curso de una semana existe fiebre 41°C. o mas , inapetencia, aumento de la frecuencia respiratoria, temblor, anemia, ictericia, perdida de peso hemoglobinemia, hemoglobinuria. La babesia bovis puede causar shock por hipotensión. (Merck, 2000) 6.7.5. Diagnóstico 7.7.5.1. Métodos Directos Frotis sanguíneos. La identificación directa de los parásitos de Babesia en la sangre periférica de animales infectados es el método más utilizado. El examen microscópico de frotis teñidos con colorante de Giemsa, ya sea grueso o delgado, preparados con sangre periférica o de órganos viscerales (a la necropsia) es el acercamiento clásico para el diagnóstico de la enfermedad y útil para la identificación en infecciones agudas. Puede hacerse de venas o arterias de oreja y cola. (Snitt, 2009) 6.7.5.2. Métodos indirectos Existe un grupo de técnicas de tipo indirecto que permiten la detección de anticuerpos específicos circulantes, para la identificación de bovinos portadores asintomáticos y reservorio. Estas últimas son serológicas y se aplican a grupos de animales. Todas estas pruebas poseen fundamento inmunológico. Las más comunes utilizadas en la actualidad son: Inmunofluorescencia Indirecta (IFI) y Ensayo Inmunoenzimático (ELISA). (Snitt, 2009) 6.7.6. Tratamiento y Control Tratado con babesidas, sulfato de quimuronio, aceturato de dimimazeno. 3- 5 mg/kg, IM. Cepas vivas atenuadas del parasito. 34 El ciclo se rompe controlando las garrapatas como vector alcanzar la erradicación completa. (Merck, 2000) Los casos más leves de babesiosis se resuelven sin tratamiento, ya que el sistema inmunológico es capaz de neutralizarlo. Para los pacientes con casos más agudos tradicionalmente se venían administrando dos tipos de fármacos, la quinina y la clindamicina; pero no era raro que esta combinación provocase rechazo en los pacientes, por lo que los estudios más actualizados sugieren la combinación de autovacunas y azitromicina, en general más tolerados por el organismo. Además, las transfusiones de sangre permiten sustituir los glóbulos rojos dañados por otros sanos. (Wikipedia, 2009) 6.8. MASTITIS BOVINA 6.8.1. Introducción La Mastitis bovina es un complejo singular de enfermedades, que causa una gran cantidad de pérdidas a nivel mundial y en especial en las regiones con una producción lechera intensiva. La causa más común para un sacrificio temprano de las vacas lecheras son los problemas de salud de la glándula mamaria, además de problemas de Fertilidad. El 26.5% de las vacas lecheras sacrificadas en el continente americano es debido a trastornos ocasionados por la mastitis. (Castañeda, 2009) 6.8.1. Concepto Es la reacción inflamatoria del tejido de la ubre, casi siempre causada por infección de gérmenes patógenos bacterianos. La enfermedad presenta diversos grados de intensidad, pero los casos individuales pueden definirse como clínicos y subclínicos. (LIDIVET, 2.005) 6.8.1.1. Mastitis clínica.- indica que existe condiciones anormales en la ubre y en la leche. Esta puede tener copos, coaguloso un aspecto acuoso, el cuarto afectado puede repentinamente presentar hinchazón y sensible al tacto. 35 6.8.1.2. Mastitis subclínica.- en la que no hay cambios fácilmente detectables en la ubre y no se observa anormalidad aparente en la leche. Sin embargo la presencia de microorganismos en esta puede usualmente demostrados por un cultivo bacteriológico. (LIDIVET, 2.005) 6.8.2. Etiología Un 95% de los casos son causados solo por cuatro géneros de bacterias que son: staphilococus aureus, streptococus agalactiae, disgalactiae y uberis y el restante 5% coliformes,pseudomonas, corynebacterium pyogenes, nocardia, clostridium perfringens, micoplasma, bacilo tuberculoso, brucella. (Cruz, 2006) 6.8.3. Diagnóstico 6.8.3.1. Clínico: Mastitis clínica muy fácil de diagnosticar por los signos encontrados; tanto en la ubre como en la leche. 6.8.3.2. Laboratorial: Aislamiento e identificación del germen causal (bacteriológico). Recuento de células somáticas. California Mastitis Test. Prueba de la taza negra. 6.8.4. Síntomas 36 Hinchazón de la ubre. Fiebre. Leche anormal, disminución de la leche. 6.8.5. Prevención Establecer orden de ordeño, Higiene de ordeño y del establo. Hacer un adecuado sellado de los pezones después de cada ordeña. (LIDIVET, 2009) 37 VII. Actividades CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES (Enero 05 - 03 de Julio 2.009) Cuadro nº 1 Enero ESTERILIZACION DE MATERIALES HEMOGRAMAS X CULTIVOS Y ANTIBIOGRAMAS X Febrero Marzo Abril Mayo Junio Julio X X X X X X X PRUEBAS DE ELISA X X BUFFERADA PARA BRUCELOSIS X X X X X X X ANILLO EN LECLHE INMUNOFLUORESCENCIA DIRECTA y RT-PCR RECUENTO DE CELULAS SOMATICAS X X X PARASITOLOGICOS X X ANEMIA INFECCIOSA EQUINA X X Fuente: elaboración propia 38 XIII. DESCRIPCIÓN DE LAS ACTIVIDADES El presente informe del trabajo dirigido esta realizado y basado en las siguientes salas: Rabia, hematología, bacteriología, necropsia, calidad de la leche, fiebre aftosa, brucelosis, patología aviar, anemia infecciosa equina y parasitología, del laboratorio LIDIVET. Comprendido desde el 05 de enero de 2009 al 03 de julio del 2009, en las secciones de diagnostico de rabia mediante las pruebas de Inmunofluorescencia y PCR. Sala de hematología comprendiendo el diagnostico de hemoparásitos, sala de Aftosa para el diagnostico de la fiebre aftosa mediante ELISA 3ABC/ EITB, sección serología brucelosis utilizando la prueba de aglutinación en placa como prueba screening y C-ELISA como confirmatorio, sala de control de calidad de la leche en el cual se realizan los muestreos de las diferentes lecherías que están inscritas en el programa para el control de medicina preventiva de mastitis subclínica, sala de bacteriología en el diagnostico de enfermedades bacterianas y micoticas, mediante aislamiento y posterior identificación, sala de parasitología para determinar cargas parasitarias en poblaciones animales, sala de patología aviar en el diagnostico de enfermedades víricas, serológia para el diagnostico de anemia infecciosa equina, mediante el uso del test de Cogging y sala de necropsia de donde se reparten las muestras a las distintas salas para su investigación y diagnostico correspondiente. 8.1. DESCRIPCION DE CADA SALA Y SU DIAGNÓSTICO QUE SE REALIZA PARA EL RESULTADO FINAL. 8.1.1. Recepción de muestras Es donde llegan las muestras que van a ser procesadas para emitir luego un diagnóstico certero, el recepcionista es el que anota la historia clínica si la muestra no la tuviera, toma tanto los datos de dueño como del animal. 8.1.2. Sala de Esterilización 39 Es una de las salas de particular importancia, ya que es de ahí donde se utiliza todo el material para las diferentes pruebas en las distintas áreas con las que cuenta el laboratorio LIDIVET. Durante el periodo de mi pasantía por dicha sala participe en todas las actividades, es decir en todos los pasos o procedimientos de esterilización de los materiales, que ingresan de la diferentes salas o secciones del laboratorio. 8.1.3. Sala de virología para el diagnostico de rabia El diagnostico de rabia es de gran importancia para la salud publica por ser esta una enfermedad zoonotica, en esta sala se manipula muestras de cerebro, cerebelo, medula espinal, liquido cefalorraquídeo, hisopado de cornea y otros. El diagnostico de la rabia, se realiza mediante las técnicas de inmunofluorescencia directa, y un nuevo método de biología molecular que esta siendo estandarizado como es el RTPCR. 8.1.3.1. Prueba de inmunofluorescencia Es un tipo de prueba de unión primaria que se basa en la utilización de colorantes fluorescente que se usan con frecuencia como marcadores, el más importante es el isocianato de fluoresceína (FITC). El fundamento de la prueba es la formación del complejo inmune antígeno – anticuerpo al adicionar el conjugado a las improntas que contienen el antígeno rábico. Se debe enviar la muestra que puede ser la cabeza o el cerebro completo (encéfalo) en un termo de plastoform o bolsa de plástico, en refrigeración (hielo) teniendo el cuidado de cerrar en buena forma para evitar contacto o fuga de líquido. 40 Se puede enviar muestras en congelación, las muestras deberá ir acompañada de un breve historial clínico del animal o datos del animal como ser: especie del animal, raza, edad, sexo, antecedentes de vacunación, si mordió, si fue sacrificado o no, procedencia, lugar o dirección exacta, nombre del remitente: dueño o propietario, numero de teléfono. Cuadro nº 2.- Resultados de inmunofluorescencia directa en la sección de Rabia. Especie Caninos Felinos Bovinos Total general Positivos Negativos 5 1 6 12 23 4 2 29 Total general 28 5 8 41 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 El laboratorio preocupado por el alto porcentaje de muestras positivas a rabia ha venido involucrándose en las reuniones de planificación de normas de control de esta zoonosis que en los últimos años ha cobrado vidas humanas. Es así también que a través de organismos internacionales hemos adquirido una técnica nueva en diagnostico de esta enfermedad, La técnica de RT-PCR que asegura los resultados negativos sean realmente negativos eliminando el problema de los falsos negativos de la prueba de IFD, de la forma más certera y precisa. 8.1.4. Sala de biología molecular La Reacción en cadena de la polimerasa, conocida como PCR por sus siglas en inglés (Polymerase Chain Reaction), es una técnica de biología molecular descrita en 1985 por Kary Mullis, cuyo objetivo es obtener un gran número de copias de un fragmento de ADN particular, partiendo de un mínimo; en teoría basta partir de una única copia de ese fragmento. Esta prueba resulta mucho más fácil identificar con una muy alta probabilidad ya sean virus o bacterias causantes de una enfermedad, identificar personas (cadáveres) o hacer investigación científica sobre el ADN amplificado. 41 RT-PCR como método de investigación donde el molde inicial es ARN y se requiere de una transcriptasa inversa, para realizar la conversión del ARN a un tipo de ADN llamado ADNc (ADN complementario) 8.1.5. Sala de hematología En la sala de hematología se realizan hemogramas completos y detección de hemoparásitos. La observación de los hemoparasitos comprende Anaplasma marginale, Babesia bovis, Babesia bigemina y tripanosomas. Las muestras que se reciben son sangre con anticoagulante u órganos hematopoyéticos para su diagnostico. La técnica realizada es la preparación de frotis sanguíneo con la tinción de Guiensa, y observación en el microscopio con objetivo de inmersión. Todos los análisis se realizan con la ayuda del veterinario encargado de esta sala; comprende la determinación de todos los componentes del hemograma y la observación de hemoparásitos, como Babesia bovis y anaplasma marginale en mayor número de casos en bovinos. Cuadro nº 3.- Hemograma completo y la observación de hemoparásitos en sección de hematología. Tripanosom B. Bigemina (+) B. Bovis(+) a 17 0 2 4 Bovinos 14 0 0 0 Equino 3 0 0 0 Canino Total 34 0 2 4 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 Especie N hemogramas 8.1.6. Sala de bacteriologia y micologia Anaplasma (+) Total 3 3 0 6 17 14 3 34 42 Las funciones más importantes del laboratorio de microbiología es examinar, cultivar muestras en busca de microorganismos, identificar con certeza las especies involucradas en aislamientos importantes y llevar a cabo las pruebas de susceptibilidad (antibiogramas). Estas tares ayudan al clínico en el diagnostico y tratamiento de las enfermedades infecciosas. En esta sala se realiza el diagnostico de diversas enfermedades bacterianas y micóticas, en las distintas especies animales mediante aislamiento y posterior identificación, en medios de cultivos ideales para el desarrollo de los microorganismos y su respectivo antibiograma si así lo requieren los solicitantes. Cuadro nº 4.- Resultados de los cultivos bacteriológicos en distintas especies. Especie Nº Microorganismos encontrados Strep. E.col. Enter. Micc. Pseud. Klep. Prot. Pas. H. SD. Total Gral. 10 178 59 20 23 19 36 9 167 Aves 521 2 56 4 3 2 36 Bovinos 103 2 Caninos 2 2 1 Caprinos 3 1 Equinos 1 Total G. 14 234 63 23 23 19 38 9 207 630 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 8.1.7. Área de necropsia En esta sala se realiza la necroscopia de distintas especies de animales para el diagnostico y control de enfermedades con el fin de establecer un tratamiento, ya sea en una parvada, hato, piara o manada de animales. El área de necropsia también se encarga de repartir muestras a las diferentes salas para sus respectivas pruebas como mencionaremos a continuación: Las muestras se remiten las salas siguientes: bacteriología, hematológica, histopatología, parasicología, rabia y otras según el caso. 43 En el presente cuadro se demuestra el número de animales a los cuales se les practicó la necropsia, realizando toma de muestra , la mayoría de ellas corresponden a las aves importadas por los diferentes productores las que son remitidas desde el Aeropuerto Viru Viru al LIDIVET por los Veterinarios del programa PRONESA- SENASAG para ser trabajadas en las diferentes secciones del laboratorio. Cuadro nº 5.- Numero de necropsias realizadas por especie. Especie Pollitos BB De importación 126 Particulares 95 Vivos 221 Muertos 0 Total general 221 Pollos adultos Porcinos 0 0 7 3 5 2 2 1 7 3 Canino 0 1 1 1 126 105 4 232 Total general 228 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 8.1.8. Sala de calidad de la leche El recuento de células somáticas, es la técnica que se emplea en esta sala, con objeto de establecer la calidad sanitaria e higiénica de la leche. El personal de esta sala también está a cargo del programa de medicina preventiva 8.1.8.1. Programa de medicina preventiva 8.1.8.1.1. Control de “Mastitis subclínica” calidad higiénica y sanitaria de la leche El LIDIVET como laboratorio de referencia nacional en apoyo al sector productivo, tiene el programa de medicina preventiva en diferentes áreas de la producción pecuaria y desde 1987 viene ejecutando en diferentes lecherías del área integrada de nuestro departamento el monitoreo y control de la mastitis subclínica y calidad higiénica-sanitaria de la leche, 44 logrando éxito en mas del 90% de las lecherías inscritas, debido a este resultado estamos seguros de ofertar nuestros servicios de colaboración mutua a todos aquellos quienes requieran contar con el programa, con el fin de apoyar al productor. 8.1.8.1.2. Objetivos Certificar la calidad sanitaria e higiénica de la leche producida en las lecherías. Reducir la mastitis subclínica y clínica en el hato lechero. Controlar la carga parasitaria en el ganado bovino por categorías. Coadyuvar en la erradicación de la brucelosis bovina de su ganadería. Mejorar la rentabilidad de la explotación aumentando la productividad. Cuadro nº 6.- Rol de monitoreo de lecherías Propietario Eduardo Sauto Andrés Parra Aldo Roca Horas de Ordeña Propietario 2:30 10:00 Felipe Mendieta 19:00 5:30 Nicanor Jordán 13:30 4:00 16:00 15:00 – 16:00 Horas de Ordeña 5:30 15:30 5:00 17:00 Carlos Rojas Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 El monitoreo es realizado por Veterinarios de LIDIVET, realizando visitas mensuales a las lecherías inscritas, dicho trabajo consiste en: 45 Asesoramiento e inspección profesional de la técnica correcta e higiénica de ordeño. Elaboración de una encuesta epidemiológica. Control del manejo higiénico de la máquina ordeñadora. Toma de muestras de leche y materia fecales para el diagnóstico laboratorial. La emisión de los resultados va acompañada de recomendaciones realizadas por un conjunto de técnicos a partir de los resultados de laboratorio y la encuesta epidemiológica. Cuadro nº 7.- Resultado de muestras según procedencia, en la sala de calidad de Leche Procedencia PIL ANDINA S.A. PROGRAMA MASTITIS OTROS TOTAL Menos de 500.000 685 Mas de 500.000 443 Total 1128 % según solicitante 97.00 % 18 9 27 2.32 % 4 707 4 456 8 1163 0.68 % 100 % Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 En el cuadro podemos observar que el mayor número de muestras provienen de la PIL con un 97% del total de muestras ingresadas, el 2,32% procedente del programa de mastitis y el 0,68% son remitidos por particulares. Lo cual demuestra con claridad que la mayor parte de los productores de leche están afiliados a la planta industrializadora de Santa Cruz. 46 Cuadro nº 8.- Porcentaje de muestras por categoría, en muestras de leche procedentes de la “PIL” Cel. Somáticas/ml “A”(< 500mil) “B” (500 a 1mill) “C”(1 a 2mill) “C1” (2 a 3mill) Total No. muestras 685 357 79 7 1128 Media por categoría 294 685 1287 2225 501 % de muestras 60,73 31,65 7,00 0,62 100 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 El cuadro indica que del total de muestras ingresadas, el 60,73%tienen menos de 500.000 células somáticas por ml de leche, lo que permite clasificar la leche como categoría “A”. el 31,65% es clasificado como categoría “B” y un 7% clasificado como categoría “C”. 8.1.9. Sala de Aftosa La Fiebre aftosa (FA) es una enfermedad altamente contagiosa, que ataca casi exclusivamente a los animales de pezuña hendida, domésticos y salvajes. Se caracteriza por la formación de vesículas o ampollas y erosiones en el epitelio de la boca, fosas nasales, morros, patas, ubre, pezones y pilares del herbario. 8.1.9.1. Uso de la técnica de las pruebas inmunoenzimaticas I-ELISA 3ABC y EITB, para evaluar la actividad viral en poblaciones animales. Estas pruebas inmunenzimaticas tienen como finalidad la detección de anticuerpos contra proteínas no capsidales del virus de la Fiebre aftosa. Cuadro nº 9.- Resultado de fiebre aftosa procesadas con I-ELISA 3ABC/EITB Dpto. Prov. especie SRZ SRZ SRZ SRZ AIB CHI COR GUAR bovino // // // Resul. 3ABC Resul EITB Neg pos Neg Pos 111 4 4 30 0 0 64 0 0 40 0 0 Total gral 0 0 0 0 115 30 64 40 47 SRZ SRZ Total gral. ÑUF WAR // // 2 13 260 0 0 4 0 0 4 0 0 0 2 13 264 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 Como se puede evidenciar en el presente cuadro, del total de 264 muestras procesadas con I-ELISA 3ABC, resultaros 4 positivos, pero sin embargo estos 4 resultaron negativos a EITB, lo cual nos indica que existe un riguroso control de la fiebre aftosa. 8.1.10. Sección de serología Brucelosis La sala de brucelosis es quizá una de las salas que mayor número de muestras procesa por día. Se apoyó en todas las actividades, desde traspaso de muestras que llegan en jeringas desechables a tubos, centrifugado de las mismas, protocolo adjunto, prueba bufferada traspaso de sueros positivos a bufferada para su posterior confirmación con ELISA de competencia y realización de la prueba anillo en leche para brucelosis. Cuadro nº 10.- Resultados de la prueba bufferada en la sección de serología brucelosis en el periodo de 09 /03 al 09 /04 del 2009) Especie Bovinos Equinos Ovinos Suinos Total general Hemolizados Negativos 2 0 0 0 2 Positivos 1736 3 40 155 1934 189 1 2 192 Total general 1927 3 41 157 2128 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 Según el cuadro podemos observar que durante el periodo de practicas en dicha sala se procesaron un total de 2128 muestras de las cuales 192 resultaron positivos a la prueba bufferada, perteneciendo la mayoría a la especie bovinos. 48 Cuadro nº 11.- Resultados de la prueba C- ELISA en la sección de serología brucelosis. Especie Bovino Suino Negativos Positivos % de positividad Total general 173 116 67 % 289 2 0 % 2 Total general 175 116 67 % 291 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 Se puede evidenciar que de los 192 muestras positivas a la prueba bufferada, mas las muestras de solicitud directa para la prueba confirmativa (C-ELISA) se obtuvo un porcentaje de positividad de 67% a brucelosis, lo cual nos indica que esta prueba es de alta sensibilidad y especificidad, para el control de esta enfermedad que ocasiona grandes perdidas económicas. Cuadro nº 12.- Resultados de la prueba anillo en leche en la sección de serología brucelosis. Especie bovinos Total general Negativos positivos % positividad Total general 159 45 22 % 204 159 45 22 % 204 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 El presente cuadro nos muestra claramente, un 22 % de positividad de las muestras procesadas con la prueba de anillo en leche para brucelosis en hatos lecheros. 8.1.11. Sección de patología aviar Como medida de control se realiza análisis de diferentes enfermedades, en su mayoría pollitos BB, de un día de edad utilizando métodos serológicos como ELISA y aglutinación rápida en placa, los pollitos llegan de importación o particulares y estos son enviados a necropsia y luego los órganos de estos a bacteriología (vesícula biliar, saco vitelino, ciegos y pulmón).suero a la sala de patología aviar. 49 Cuadro nº 13.- Muestras procesadas en la sala de patología aviar Enfermedad Bronquitis Gumboro Influenza A. Micoplasma G. Micoplasma S. Newcastle Reovirus Rinotraqueitis Total general Positivo 114 127 34 74 136 97 20 602 Negativo 3 0 80 120 251 1 0 0 455 Sospechoso 0 0 0 10 9 0 0 0 19 Total general 117 127 80 164 334 137 97 20 1076 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 Según el presente cuadro se procesaron un total de 1076 muestras en la sala de patología aviar, utilizando el método de ELISA, para el diagnostico de las diferentes enfermedades aviares, en los cuales las enfermedades Gumboro, Rinotraqueitis y Reovirus tienen un % de positividad del 100% con relación al numero de muestras remitidas, seguida de Newcastle y Bronquitis que también tienen muy altos porcentajes de positividad y a esto le sigue Micoplasma Sinoviae y Micoplasma Gallisepticum. Cuadro nº 14.- Muestras procesadas por el método de aglutinación rápida en placa (sala de patología aviar). Enfermedad M. Gallisepticum M. Sinoviae Salmonella Total Positivos 0 0 0 0 Negativos Total 119 198 218 535 119 198 218 535 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 Según el presente cuadro vale decir que las diferentes plantas de incubadoras tienen un estricto control sanitario en la producción de pollitos BB ya que todas las muestras salieron negativas a la prueba. 8.1.12. Sala de parasitología 50 En dicha sala se realizan diferentes técnicas para el diagnostico de los parásitos especialmente parásitos gastrointestinales. Una vez llegan las muestras a ésta sala se procede a los siguientes tipos de análisis. Si la muestra es materia fecal, se procede a tres tipos de análisis como ser: Conteo de huevos de parásitos gastrointestinales, pulmonares y fasciola hepática. Si la muestra es músculo, corazón o alguna carcasa se observa al microscopio para la observación de cisticercos, sarcocistis u otros. Cuadro nº 15.- Muestras procesadas en la sala de parasitología para la observación de huevo de parásitos gastrointestinales y fasciola hepática en bovinos. Método Mac máster Sedimentación Total Baja 12 13 25 Moderada Alta 4 1 5 5 0 5 Total 21 14 35 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 Los nematodos gastrointestinales son los parásitos mas frecuentes de los rumiantes, causando gastroenteritis parasitaria, procesos generalmente endémicos, de curso crónico y mortalidad baja, se caracterizan por alteraciones digestivas, retraso del crecimiento, disminución en las producciones y en ocasiones anemia. La intensidad de parasitación varía con la edad de los animales y sobre todo, con el sistema de producción. 8.1.13. Sección de virología para el diagnostico de la anemia infecciosa equina Para este diagnostico se utiliza el método de inmunodifucion en agar gel (test de cogging) Cuadro nº 16.- Muestras procesados mediante la técnica de inmunodifución en gel agar. Especie Positivos Negativos % de positividad total 51 Equinos Total 2 2 9 9 18% 18% 11 11 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 En el periodo de prácticas en la sala de virología para el diagnostico de anemia infecciosa equina se procesaron un total de 11 muestras de suero equinos resultando dos de ellas positivas, haciendo un 18% de positividad, lo que sugiere un mayor interés en cuanto a las medidas de prevención de esta enfermedad. Cuadro nº 17.- Número de muestras procesadas por sección durante el periodo de prácticas. Sección 41 34 630 232 1163 264 2623 1611 Porcentaje (%) 0.6 (%) 0.5 (%) 9.5 (%) 3.5 (%) 17.5 (%) 4 (%) 39 (%) 24 (%) Parasitología 35 0.5 (%) 35 AIE 11 0.2 (%) 11 6644 100 (%) 6644 Rabia Hematología Bacteriología Necropsia Calidad de la leche F. aftosa Brucelosis Patología aviar Total general N° de muestras Total general 41 34 630 232 1163 264 2623 1611 52 Numero de Muestras procesadas por sección durante el periodo de prácticas 0% 0, 1% 1% 24% 1% 9% 3% 18% 4% 39% Rabia Hematología Bacteriología Necropsia Calidad de la leche F. aftosa Brucelosis Patología aviar Parasitología AIE Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 Según el gráfico se puede evidenciar que durante el periodo de prácticas, la mayor cantidad de muestras se procesaron en la sala de Brucelosis (39%); y la menor cantidad corresponde a la sala de Virología para el diagnóstico de Anemia Infecciosa Equina (0,2%). Cuadro nº 18.- Numero de muestras procesadas por especie Especie N de muestras Porcentaje (%) Total general Bovinos Aves Caninos Suinos Caprinos Felinos Equinos 4010 2360 34 162 3 5 29 60,4 (%) 35,5 (%) 0,5 (%) 2,4 (%) 0,05 (%) 0,07 (%) 0,4 (%) 4010 2360 34 162 3 5 29 Ovinos Total general 41 6626 0,6 100 (%) 41 6626 Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 53 Numero de Muestras procesadas por especie durante el Periodo de prácticas 1% 0,07% 2% 0,4% 0,05% 1% 36% Bovinos Aves Caninos Suinos Caprinos Felinos Equinos Ovinos 60% Fuente: elaboración propia, con datos LIDIVET 2009 Durante el periodo de prácticas, vale decir que la mayor cantidad de muestras procesadas por especie, corresponden a la especie bovina (60%), seguido de la especie aviar (36%); y la menor corresponde a la especie Caprina. 54 IX CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 9.1. CONCLUCIONES Como parte de la formación integral del médico veterinario zootecnista, LIDIVET está brindando apoyo a futuros profesionales con prácticas en el área de laboratorio que contribuye en la formación profesional. El presente trabajo fue ejecutado en el periodo de 05 de Enero a 03 Julio del 2009, de acuerdo al cronograma de actividades, se cumplió con los objetivos planteados logrando satisfactoriamente aplicar o profundizar los conocimientos teóricos – prácticos, de manera científica en la profilaxis y terapéutica de las diversas patologías, dando mayor énfasis a patología clínica veterinaria. La practica me permitió adquirir nuevos conocimientos y estar en contacto con un área en la que se desenvuelve el medico veterinario frente a la sociedad y la importancia de que esta se lleve a cabo correctamente porque resultados erróneos pueden tener graves consecuencias. Estas prácticas nos permiten estar en contacto directo con nuestro medio de trabajo, la manera en la cual uno tiene que desenvolverse como profesional empleando sus conocimientos, la importancia de lo que hacemos y por lo tanto el deber nuestro de estarnos actualizando para cumplir correctamente con nuestra labor. 9.1.1. RECOMENDACIONES Es importante que el veterinario clínico este consciente de las ventajas de utilizar medios auxiliares de diagnóstico para mejorar la calidad de sus servicios. 55 Las prácticas como las de trabajo dirigido deben continuar en este establecimiento ya que permite al estudiante adquirir experiencia como futuro profesional. Seguir con el excelente servicio que presta esta institución, por ser el punto de referencia en el desarrollo de nuestra profesión. 56 X. BIBLIOGRAFIA ACHA: P.N. Y SZFRES B. 1986. Zoonosis y Enfermedades transmisibles comunes al Hombre y a los animales. , 2 ed. Washington D, C., EAU. OPS pp. 394 – 395. 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Fase de lavado en la prueba confirmativa EITB aftosa bovino. 63 ANEXO 4 Técnica de Mc Máster para la observación de huevos de parásitos gastrointestinales. Recuento de células somáticas en la sala de calidad de la leche. 64 ANEXO 5 Sección de biología molecular para el diagnostico de rabia Sala de hematología, recuento diferencial de glóbulos blancos 65 ANEXO 6 Sala de esterilización de de los materiales de laboratorio Lectura de test de Coggins para En el diagnostico de anemia infecciosa equina. 66 ANEXO 7 Siembra de cultivo en la sala de bacteriología Identificación de bacterias en la sala de bacteriologia y micología