Download Guía de identificación y manejo de plagas en piña y enfermedades

Guía Identificación y MIP
“Reduciendo el escurrimiento
de plaguicidas al mar Caribe”
Guía de identificación y
manejo integrado de plagas y
enfermedades en piña
Proyecto demostrativo “Evaluación del
sistema de producción de piña
y la
implementación tecnológica de BPA en la
Región Nor-atlántica de Costa Rica”
I
Guía Identificación y MIP
Contraportada
Edición
Ing. Agr. Mérilyn Rodríguez Murillo
Asistente Coordinadora Proyecto REP-Car BANACOL
Colaboradores:
Departamento de Asistencia Técnica y Agricultura (DATA) BANACOL
Ing. Agr. Milton Vásquez Salazar
Ing. Agr. Eliécer Arce Ramírez
Ing. Agr. Rodolfo Rodríguez Rojas. M. Sc
Ing. Agri. Andrés Araya Alpizar.
Coordinación Regional Proyecto REP-Car
Dr. Alexander Cooman
PNUMA/UCR/CAR
Unidad de Coordinación Nacional
Dr. Elidier Vargas Castro (Coordinador MINAET)
M.Sc. Luis Matarrita Díaz (Coordinador MAG)
Dra. Pilar Alfaro Monge (REPCar)
Coordinador proyecto PNUMA-Banacol
Ing. Abel García Muñoz
Director del DATA BANACOL
Equipo Técnico de Proyectos Demostrativos
Ing. Agr. Abel García Muñoz
Ing. Agr. Mérilyn Rodríguez Murillo
Otros colaboradores
Ing. Agr. Pedro Vargas Sánchez
Ing. Agr. Julios Mbuga
Finca Agrícola Industrial San Cayetano
II
Guía Identificación y MIP
Índice
Contraportada...............................................................................................III
Índice ............................................................................................................III
Presentación ...................................................................................................V
Introducción ................................................................................................VII
1
Ciclo de vida del cultivo .......................................................................... 1
2
Muestreos................................................................................................ 3
2.1 Diseños de muestreos......................................................................................................... 4
2.2 Muestreos realizados ......................................................................................................... 5
3
Plagas...................................................................................................... 8
3.1 Cochinilla harinosa: (Dysmicoccus brevipes (Cochinilla rosada),
Dysmicoccus neobrevipes (Cochinilla gris)) ................................................................... 8
3.2 Sinfílidos (Hanseniella spp, Scutigerella spp, Symphylella spp) ............ 11
3.3 Caracol (Opeas pumilum, Cecilioides aperta)................................................... 13
3.4 Picudo (Metamasius dimidiatipennis) ..................................................................... 14
3.5 Nemátodos (Meloidogyne, Rotylenchulus, Helicotylenchus,
Pratylenchus y Criconemoides) .............................................................................................. 17
3.6 Thecla o Barrenador del fruto (Strymon basilide) ....................................... 20
3.7 Gusano soldado (Elaphria nucicolora) ................................................................. 22
4
Enfermedades ....................................................................................... 25
4.1 Pudrición del cogollo (Phytophthora parasitica), Pudrición del fruto
(Phytophthora cinnamomi)............................................................................
......................................................................................................................................................... 25
4.2 Fusarium (Fusarium sp)................................................................................................ 29
4.3 Hoja de tamal (Erwinia carotovora), Pudrición bacterial del fruto
(Erwinia chrysanthemi) ............................................................................................................... 32
4.4 Pudrición del tallo ............................................................................................................. 34
4.5 Pudrición acuosa o fruta bofa (Thelaviopsis paradoxa) ........................... 37
III
Guía Identificación y MIP
5
Problemas fisiológicos .......................................................................... 39
5.1 Quema por sol: .................................................................................................................... 39
5.2 Toxicidad:................................................................................................................................ 39
5.3 Estrés hídrico: ...................................................................................................................... 40
5.4 Deficiencias o exceso de nutrientes: ...................................................................... 40
6
Malezas ................................................................................................. 43
6.1 Descripción de la plaga: ................................................................................................ 43
6.2 Caminadora (Rottboellia cochinchinensis)......................................................... 43
6.3 Cizaña (Asystasia gangetica) ....................................................................................... 44
6.4 Mimosa (Mimosa pigra).................................................................................................. 44
6.5 Borreria (Spermacose alata)........................................................................................ 45
6.6 Tomatillo (Solanum torvum) ........................................................................................ 45
6.7 Bejuco (Mikania micrantha) ......................................................................................... 46
6.8 Paja Blanca (Saccharum spontaneum) .................................................................. 46
6.9 Golondrina (Commelina benghalensis)................................................................. 47
6.10 Zacate kikuyo (Pennisetum clandestinum) ......................................................... 47
6.11 Métodos de control:.......................................................................................................... 48
7
Combate de la Mosca del establo.......................................................... 50
7.1 Descripción de la plaga: ................................................................................................ 50
7.2 Ciclo de vida: ........................................................................................................................ 51
7.3 Habito y daño:...................................................................................................................... 51
7.4 Métodos de control:.......................................................................................................... 53
8
Bibliografía........................................................................................... 56
9
Glosario................................................................................................. 57
IV
Guía Identificación y MIP
Presentación
BANACOL de Costa Rica, es una empresa comprometida con la
producción de piña limpia, amigable con el ambiente y la salud de las
personas, de allí su interés en apoyar proyectos de investigación, que
promuevan la búsqueda de alternativas para el manejo del cultivo, sin
afectar los índices de producción, pero con un menor impacto sobre
nuestros recursos agua y suelo.
En procura de este compromiso, el Departamento de Asistencia
Técnica y Agricultura de BANACOL, división piña, estableció una
alianza con el Ministerio de Ambiente, Energía y Telecomunicaciones MINAET, el Ministerio de Agricultura y Ganadería – MAG, y el
Programa de las Naciones Unidas para el Medio Ambiente – PNUMA,
en el marco del proyecto “Reduciendo el Escurrimiento de Plaguicidas
al Mar Caribe”- REPCar, con el fin de tratar de disminuir el impacto
generado por los residuos de agroquímicos que día a día escurren
hacia nuestras costas.
El objetivo del proyecto REPCAR-BANACOL financiado por el Fondo
Mundial para el Medio Ambiente (GEF), se basó en la mejora del
sistema de producción de piña tradicionalmente utilizado por la
empresa, mediante la validación de nuevas prácticas sostenibles, que
redujeran el uso de plaguicidas, y fortalecieran la cultura ambiental en
zonas de alta producción de piña, en Costa Rica. El componente de
capacitación dentro del proyecto, permitió compartir los resultados
obtenidos y las lecciones aprendidas con el resto del gremio piñero.
La Guía “Identificación y manejo integrado de plagas y enfermedades
en piña” es una más de las herramientas que preparó BANACOL para
transmitir los conocimientos adquiridos durante la ejecución del
proyecto dentro del sector. El objetivo de este documento es
proporcionar a los productores piñeros un instrumento para la
V
Guía Identificación y MIP
identificación en el campo, de las principales plagas y enfermedades
que puedan afectar su cultivo y a la vez sugerir una estrategia de
manejo integrado, con lo que se asegure la protección de la salud
humana y el medio ambiente, sin que esto repercuta sobre la
economía del productor.
GABRIEL MONTOYA ARISTIZABAL
Gerente General BANACOL
ELIDIER VARGAS CASTRO
Coordinador REPCar/MINAET
NELSON ANDRADE COLMENARES
Coordinador PNUMA-UCR/CAR
ALEXANDRE COOMAN
Coordinador Regional REPCar
VI
Guía Identificación y MIP
Introducción
La palabra “plaga”, en la agricultura se refiere a todos los animales, plantas y
microorganismos que tienen un efecto negativo sobre la producción agrícola
(FAO, 1995). El Manejo Integrado de Plagas y Enfermedades (MIPE) es una
estrategia que involucra una serie técnicas (físicas, mecánicas, químicas,
biológicas, genéticas, legales y culturales) complementarias entre sí, que buscan
controlar de forma efectiva las plagas y enfermedades del cultivo de piña; de
modo que la utilización de plaguicidas se reduzca al mínimo necesario para
mantener la población de la plaga o la incidencia de la enfermedad, en niveles
inferiores a los que producirían daños o pérdidas inaceptables desde un punto
de vista económico.
Dentro de la filosofía del MIPE, los productores buscan nuevos métodos para el
control de las plagas y enfermedades, como es la aplicación de programas
preventivos de aplicación de agroquímicos, que reduzcan los efectos de estos
problemas sobre la cantidad y calidad del producto final. Sin embargo, existen
otros métodos de control relacionados con las características intrínsecas de las
plagas y enfermedades, y su relación con el cultivo y las condiciones
edafoclimáticas adversas. Con el manejo de los mismos, se puede continuar
reduciendo el uso de agroquímicos durante la producción.
En esta Guía de identificación de plagas y enfermedades se resume la
experiencia de BANACOL durante más de 20 años de producción de piña,
además de una revisión bibliográfica exhaustiva sobre el tema. En ella se
sugieren alternativas de control tendientes a minimizar el impacto ocasionado
por el cultivo intensivo de piña. Las imágenes que se pueden observar son el
resultado del trabajo de los muestreadores y técnicos en el manejo fitosanitario,
en las diferentes fincas de piña de BANACOL.
El objetivo de este documento desarrollado por BANACOL de Costa Rica, es
ofrecer una herramienta de consulta en campo, y toma de decisiones, para
pequeños, medianos y grandes productores, en el control de plagas y
enfermedades, con el fin de incentivar la reducción del uso de agroquímicos y
promover la producción de piña sostenible y amigable con el ambiente.
VII
Guía Identificación y MIP
1
Ciclo de vida
Ciclo de vida del cultivo
El MIP se aplican en tres etapas: prevención, observación y control. La
prevención combina el conocimiento del cultivo, el ambiente y la plaga
para aplicar estrategias que limiten ataques iniciales de los agentes de
plagas, malezas y enfermedades.
La fenología es uno de los aspectos más importantes dentro del
manejo preventivo de plagas. Este concepto se refiere a los cambios
estacionales de los cultivos, determinados por los factores físicos del
ambiente y por mecanismos de regulación internos de las plantas.
La susceptibilidad del cultivo al daño causado por plagas, varía de
acuerdo con su estado de desarrollo. A su vez, la incidencia de las
plagas está en función de los factores ambientales y de la condición
del cultivo (CATIE 1990).
El conocimiento de las etapas fenológicas de un cultivo y su relación
con las plagas que lo atacan permite mejorar la perspectiva del
productor en la identificación de etapas claves para el control
preventivo de las plagas y, de esta forma, planear y establecer
métodos de control ajustados a cada situación.
En la figura 1 y 2 se presenta un esquema de las etapas fenológicas
del cultivo y la relación con la frecuencia de aparición de las
principales plagas. Las zonas más oscuras representan una mayor
probabilidad de presencia de la plaga o enfermedad dentro del cultivo.
1
Guía Identificación y MIP
Ciclo de vida
Figura 1. Relación entre la fenología de la piña y las principales plagas que afectan el cultivo.
Figura 2. Relación entre la fenología de la piña y las principales enfermedades que afectan el cultivo.
2
Guía Identificación y MIP
2
Muestreos
Muestreos
Un componente importante del MIP es la observación. Esta se realiza
por medio de muestreos, los cuales son una herramienta para
determinar características cuantificables de la población de una plaga
o enfermedad dentro del cultivo, con la finalidad de definir la
necesidad de alguna medida de control.
En todo proceso de muestreo, los elementos de la muestra deben
escogerse adecuadamente, de tal manera que los resultados que se
observen en ella, sean representativos del resto de la población a la
que pertenece la muestra. Para ello debe tenerse en cuenta que el
tamaño de la muestra sea el adecuado, dependiendo de la
homogeneidad de la población, y que el diseño de muestreo permita
que todos los miembros de la población tengan la misma probabilidad
de ser seleccionados como parte de la muestra.
Algunos de los parámetros utilizados al muestrear plagas son
“incidencia” y “severidad”. Incidencia es el número de plantas con
individuos de la plaga o visiblemente enfermas, sobre el total de
plantas evaluadas (porcentaje). La severidad es el número de
individuos de la plaga por planta evaluada y, para el caso de
enfermedades, es el porcentaje de la superficie de la planta afectada,
en relación a la superficie total. Estos datos le permiten al agricultor
definir niveles de daño, en los cuales es necesario realizar alguna
medida de control para detener el avance de la plaga.
El personal de campo que realiza los muestreos debe ser conciente de
la importancia de su trabajo en la toma de decisiones, para la
aplicación de medidas de control sobre plagas. Para un adecuado
monitoreo todo muestreador debe contar con un mapa o
representación gráfica del área o lotes a muestrear que les permita
ubicarse y distribuir los puntos de muestreo de acuerdo al diseño
establecido.
3
Guía Identificación y MIP
Muestreos
2.1 Diseños de muestreos
Al azar:
En este diseño todas
las plantas del cultivo
tienen
igual
probabilidad de ser
seleccionadas,
su
ventaja es la facilidad
de selección de los
sujetos
de
la
muestra.
La
Figura 3. Diseño al azar del muestreo dentro de
desventaja es que
una sección de un lote.
necesita un mayor
tamaño de muestra para que sea representativo.
Sistemático:
Este muestreo se realiza caminando sobre una ruta establecida a
través del campo, tomando muestras a distancias especificas, puede
ahorrar tiempo y
servir para hacer
máximo uso de un
número
fijo
de
muestras.
Se
selecciona una línea
de trayecto, cuya
distancia total se
divide por el número
de muestras a tomar.
Figura 4. Diseño sistemático del muestreo dentro de La forma del trayecto
es variable y puede ir
una sección de un lote.
desde
líneas
4
Guía Identificación y MIP
Muestreos
diagonales a través del campo, en zig-zag (Figura 4) o hasta diseños
que representan letras del alfabeto como en “X”.
2.2 Muestreos realizados
Los muestreos en las plantaciones de piña se realizan de forma
calendarizada, evaluando al mismo tiempo las plagas y las
enfermedades que afecten el cultivo. Dirigiendo el muestreo en la
etapa de desarrollo de plantas hacia la raíz y la planta, y en la etapa
de desarrollo de fruta, hacia la fruta.
Cuadro 1. Fechas de muestreo, tipo de muestreo y plagas a muestrear.
Edad
Etapa
45
DP
90
DP
120
DP
50
60
DF
DF
70
DF
80
90
DF
DF
110
DF
Muestreo
Muestreo Plagas de raíz y
enfermedades
Muestreo Plagas de raíz y
enfermedades
Muestreo Plagas de raíz y
enfermedades
Muestreo de plagas en Fruta
Muestreo de plagas en Fruta
Muestreo de plagas en Fruta y
enfermedades
Muestreo de plagas en Fruta
Muestreo de plagas en Fruta
Muestreo de plagas en Fruta y
enfermedades
Dirigido
Sinfílidos, caracoles,
picudos, nemátodos.
Phytophthora parasitica,
Fusarium, Erwinia
caratovora , PTD.
Thecla, gusano soldado,
Phytophthora
solanacearum,
Thelaviopsis.
*DP: desarrollo de plantación, DF: desarrollo de fruta.
Muestreo de plagas de raíz:
Este muestreo permite evaluar la calidad y cantidad de raíces que
presenta la plantación y determinar la presencia de plagas en el área
cercana a las raíces. El diseño de muestreo puede ser en forma en
zig-zag, que incluya toda el área de la sección a evaluar. Por cada
punto de muestreo se puede evaluar de 3 a 5 plantas, sin repetir la
cama de siembra en los diferentes puntos de muestreo.
5
Guía Identificación y MIP
Muestreos
Se extrae la planta completa y se realiza una determinación subjetiva
de la calidad del sistema radical por su largo y volumen. Además se
hacen observaciones entre las raíces y las hojas secas en la base del
tallo (Figura 5), con el fin de
identificar
y
cuantificar
las
principales plagas de esta etapa, las
cuales son: Cochinilla harinosa,
Sinfílidos y Caracol.
Figura 5. Muestreo de plagas en
raíz.
El muestreo se puede realizar al
primer, tercer y quinto mes después
de la siembra; con un tamaño de
muestra entre 0,5 a 1% del total de
las plantas del área a muestrear.
Muestreo de enfermedades:
El muestreo de enfermedades se
puede realizar al mismo tiempo que el muestreo de raíz, de forma
calendarizada, un ejemplo son las fechas propuestas en el Cuadro1.
Al inicio de cada sección se identifican las enfermedades presentes y
bajo este criterio se evalúa el resto de la plantación.
Es importante que dentro de la hoja de anotaciones exista una casilla
de plantas muertas, para reportar las plantas que por su condición de
avanzada descomposición de los tejidos no permite identificar
claramente la causa original.
Muestreo de plagas en fruta:
El diseño y el tamaño de este muestreo es muy similar al muestreo de
plagas en raíz. Se realiza con la intención prevenir daños en el fruto, y
evitar la presencia de individuos de la plaga en el momento del
empaque, lo cual podría ser motivo de rechazo.
Para determinar la presencia del gusano soldado (Elaphria nucicolora)
se realiza una búsqueda exhaustiva y conteo por planta, de las larvas
6
Guía Identificación y MIP
Muestreos
en la base del fruto, y entre las hojas ubicadas en la unión con el
pedúnculo.
Para el caso de la cochinilla el
muestreo se realiza de igual manera
que para el gusano soldado en la base
de la fruta. Además se debe realizar
un muestreo interno de la fruta para
determina la presencia de las
cochinillas en los “ojos” de la fruta
(Figura 6). El total de frutas a sacrificar
por sección puede ser de un 0,1%.
El objetivo es disminuir la posibilidad Figura 6. Muestreo interno de
de que la fruta llegue a empaque Cochinilla en la fruta de piña.
infestada con este insecto, el cual es
motivo de rechazo en los países de destino, y con cero tolerancia
(interna y externa) para el Servicio Fitosanitario del Estado.
En el muestreo de la thecla (Strymon basilides) se cuantifican no solo
las larvas que se observen, sino también los daños en fruta que se
observen.
Se puede realizar también un muestreo después de la aplicación
preventiva de algún insecticida, con el fin de determinar la eficiencia
de la aplicación, sobre la presencia de las principales plagas. Cuando
se da el fenómeno de la floración natural se debe realizar los
muestreos varias veces en la misma área, según sea el desarrollo de
las infrutescencias.
7
Guía Identificación y MIP
3
Muestreos
Plagas
3.1 Cochinilla harinosa: (Dysmicoccus brevipes (Cochinilla
rosada), Dysmicoccus neobrevipes (Cochinilla gris))
Taxomomía:
Homoptera:Pseudococcidae
Descripción de la plaga:
Figura 7. Hembras de D.
neobrevipes en piña.
HUEVO
6 a 8 días
NINFAS
35 a 45 días
ADULTO
90 días de vida
Figura 8. Ciclo de vida de
la cochinilla.
Es una de las plagas más importante
en el cultivo de piña. Son pequeños
insectos blancos del orden de los
Homópteros, que se localizan en las
axilas de las hojas inferiores de la
planta, las raíces y en el fruto Las
hembras de este insecto son ápteras
ovales, de 2-6 mm de diámetro,
amarillentas o rosadas, cubiertas con
una capa de cera con prolongaciones
que se proyectan hacia los lados
(Figura 7). Los machos poseen dos alas
y un par de filamentos posteriores; son
suaves y blancos. Los huevos son
blancos, puestos en grupos hasta de
300, bajo una capa algodonosa de cera
(Saunders et al , 1998).
Ciclo de vida:
La cochinilla tiene un ciclo de vida
incompleto y es ovovivíparo. Los huevos
para madurar y alcanzar su desarrollo
8
Guía Identificación y MIP
Muestreos
pueden durar entre 6 y 9 días. En su
ciclo de vida muda tres veces, en un
periodo que tarda aproximadamente
entre 34 a 45 días (Figura 8). El periodo
de vida es de aproximadamente 90
días, de los cuales 56 los pasa en el
periodo adulto (Gullan y Martín 2003).
Habito y daño:
Esta plaga ataca cualquier parte de la Figura 9. Síntomas en
planta durante todo el ciclo del cultivo. parches.
Las hembras maduras y ninfas chupan
savia de los tallos y raíces, secretando toxinas que provocan el retardo
del crecimiento y el desecamiento de la planta. Los síntomas de la
presencia de esta plaga se distribuyen en parches en la plantación
(Figura 9).
Las cochinillas son vectores del
Pineapple Mealybug Wilt-associated
virus (PMWaV), conocido como el virus
de Wilt, que provoca un desecamiento
del ápice hacia la base de la hoja y un
enrollamiento en el borde de las hojas
más afectadas.
La plaga puede ingresar por las flores
abiertas al interior de cada frutículo, lo
que representa un problema de rechazo Figura 10. Hembras de D.
en planta empacadora de difícil control brevipes en interior del fruto
(Figura 10), por este motivo el período
crítico de control se localiza entre la semana 7 y 10, después de la
inducción floral.
Las cochinillas presentan una relación simbiótica con hormigas del
género Solenopsis sp (hormiga de fuego), Pheidole sp (hormiga
9
Guía Identificación y MIP
Muestreos
cabezona) y Iridomyrmex sp (hormiga
argentina), donde las primeras son
cuidadas y transportadas a mejores
lugares de alimentación por las
hormigas, mientras las hormigas se
alimentan
de
las
secreciones
azucaradas
que
producen
las
cochinillas (Figura 11).
Figura 11. Hormigas
transportando cochinillas en
piña.
Métodos de control:
 Procurar una adecuada preparación
de terreno para reducir la presencia
de colonias de hormigas.
 Realizar monitoreo de las poblaciones de hormigas, en callejones y
alrededores de los lotes de siembra. Para el monitoreo se utiliza
pequeñas cantidades de cebo colocadas en vasos plásticos. Para el
control de la hormiga se realizan la aplicación de cebos como las
moléculas hidrometilnona y octaborato de sodio.
 Realizar una adecuada selección de áreas para semilleros, en los
que no exista presencia de la plaga. La desinfección del material de
siembra por inmersión, se realiza usualmente con el insecticida
Diazinón.
 Se ha probado la utilización de cepas del hongo entomopatógeno
Beauveria bassiana con buenos resultados para el control de
adultos de la cochinilla.
 Mantener limpio de malezas los alrededores de la plantación para
prevenir la presencia de colonias de hormigas.
 Monitoreo de la población de cochinillas en plantación y en frutas,
para definir aplicaciones no programadas.
10
Guía Identificación y MIP
Muestreos
 Realizar aplicaciones preventivas de moléculas como endosulfan
(por ratificación en Convenio de Estocolmo Costa Rica debe buscar
opciones para sustituir su uso), etoprofos, diazinón, aceite agrícola
y sales potásicas (solamente los últimos 3 productos se pueden
utilizar en la etapa de desarrollo de fruta).
3.2 Sinfílidos
(Hanseniella
Symphylella spp)
spp,
Scutigerella
spp,
Taxonomía: Synphylla: Myriapoda
Descripción de la plaga:
Los sinfílidos son pequeños artrópodos
blancos, de cuerpo blando y antenas
largas (Figura 12), que se mueven muy
rápido en el suelo. Los adultos miden
entre 2 a 6 mm, y presentan 6 pares de
patas cuando eclosionan y 12 cuando
están desarrollados.
Figura 12. Sinfílido adulto.
Habito y daño
Los sinfílidos son una plaga de suelo
distribuidos
mundialmente.
Se
alimentan de las secciones más jovenes
de las raíces, provocando el síntoma de
escoba de bruja (Figura 13), con lo que
se afecta la absorción de elementos
nutritivos, y por tanto se reduce el
crecimiento y los rendimientos del
cultivo. Pueden vivir por varios años y
resistir meses sin comer. Los suelos
Figura 13. Daño de raíz
húmedos, profundos, sueltos y con alto
(escoba de bruja).
contenido
de
materia
orgánica
favorecen
su
reproducción.
Los
11
Guía Identificación y MIP
Muestreos
primeros 3 meses de desarrollo de
plantación son críticos para el control
de esta plaga, su presencia se observa
en la plantación como parches
grandes y en caso avanzado los
síntomas son generalizados en todo el
cultivo (Figura 14).
Métodos de control:
Figura 14. Síntomas de alta
incidencia de sinfílidos en
plantación.
 Realizar una adecuada preparación
de terreno, que permita controlar que
la humedad del suelo no sea excesiva,
e
incorporar
los
residuos
de
plantación.
 Construcción de drenajes eficientes dentro de las plantaciones para
el control de humedad.
 Realizar muestreos de población en plantaciones jóvenes.
 Eliminar plantas de piña en crecimiento en etapas de preparación
de terreno (plantas voluntarias).
 Las aplicaciones programadas de nematicidas permite el control
cruzado de esta plaga.
12
Guía Identificación y MIP
Muestreos
3.3 Caracol (Opeas pumilum, Cecilioides aperta)
Taxonomía: Achatinoide: Subulinidae
Descripción de la plaga:
Los adultos de la especie O. pumilum
pueden medir entre 6 a 9 mm (Figura
15), mientras que los de la especie C.
aperta entre 4 a 6 mm. Los huevos
son blancos y de menos de 1mm. Los
caracoles
son
hermafroditas
y
presentan
autofecudación,
cada
individuo
puede
aproximadamente
35
mensuales.
producir
huevos
Figura 15. Caracoles en planta
de piña.
Habito y daño:
Los caracoles se localizan en los primeros 10 centímetros de suelo,
cerca de las raíces donde se alimentan de los ápices principalmente.
Se alimenta también de raíces de
malezas
como
Rottboellia
cochinchinensis, Eleusine indica y
Emilia sp. Su daño provoca síntomas
de enanismo, des-uniformidad en la
plantación (parches) (Figura 16),
coloración rojiza y hojas angostas. Su
ciclo de vida es de 64 días. Los
ambientes húmedos con material en
descomposición
favorecen
su
reproducción. Las etapas iniciales Figura 16. Síntomas del daño del
(primeros 4 meses) son las más caracol: en plantación y en la
raíz.
susceptibles a su daño.
13
Guía Identificación y MIP
Muestreos
Métodos de control:
 Realizar muestreos de los niveles de las poblaciones y del daño,
para prevenir una incidencia mayor.
 Un manejo adecuado de la humedad de los terrenos con
construcción de drenajes u otras prácticas.
 Eliminación de hijos voluntarios que sirvan de alimento en etapas de
preparación de terreno.
 Una adecuada preparación de terreno que permita la eliminación de
los residuos vegetales de la superficie del suelo.
 Realizar una aplicación preventiva con etoprofos o carbofuran en
los primeros meses de desarrollo de plantación, para lotes con
historial de presencia de la plaga (productos de uso restringido en
Costa Rica, que solamente se puede adquirir bajo receta
profesional).
3.4 Picudo (Metamasius dimidiatipennis)
Taxomomía: Coléoptera: Curculionidae
Descripción de la plaga:
El adulto es de unos 2 cm de largo de
color negro en la parte trasera y
anaranjado de la mitad de su cuerpo
hacia delante, con dos puntos negros
a sus lados y un tercer punto en su
cabeza (Figura 17).
Figura 17. Adulto del M.
dimidiatipennis.
La larva es blanca con la cabeza
oscura y sin patas. En el estado pupal
o capullo, la larva se rodea de una
cápsula fibrosa hasta convertirse en
adulto de nuevo.
14
Guía Identificación y MIP
Muestreos
Ciclo de vida:
Es un insecto de metamorfosis completa, es decir, pasa por cuatro
estadios durante su ciclo de vida (Figura
18).
El ciclo del picudo se desarrolla por
completo dentro de la planta de piña, los
huevos se localizan en las axilas de las
hojas y en los tallos, las larvas se
alimentan de tallos, coronas, hijos y
frutos, y el adulto succiona savia de las
hojas ocasionando excoriaciones.
Habito y daño:
Larva
30 a 35 días
Huevo
4 a 6 días
Pupa
10 a 12 días
Adulto
44 a 55 días
Es una plaga esporádica en el cultivo de
la piña, se produce en plantaciones
abandonadas, o cuando existe un mal Figura 18. Ciclo de vida del M.
manejo, donde se dejan en campo hijos dimidiatipennis.
de siembra o frutas. Al comenzar a
descomponerse atrae a los adultos por
el olor.
Su mayor efecto se observa en la
etapa de establecimiento de cultivo
donde las larvas penetran y hacen
galerías al tallo, causando pudriciones
y posteriormente la muerte de la planta
(Figura 19). Este síntoma es una
advertencia de la presencia de la plaga
dentro del cultivo. Las larvas incluso
Figura 19. Daño del picudo en
pueden atacar el fruto y la corona
tallo de la planta de piña.
tierna. El adulto raspa las hojas y
puede perforarlas.
15
Guía Identificación y MIP
Muestreos
Métodos de control:
 El control de las larvas y las pupas es difícil debido a que se
encontran dentro de los tallos, por lo que las medidas de control se
concentra sobre los adultos.
 La forma de diseminación de esta plaga es por medio de los hijos
en semilleros mal asistidos, por
eso es importante mantener los
semilleros limpios de esta plaga y
realizar una desinfección por
inmersión de todo el material de
siembra, con algún insecticida
registrado para piña.
Figura 20. Control con
feromonas del M. dimidiatipennis.
 Se debe procurar la adecuada
destrucción de los residuos de
cosecha y plantación, incorporando
los rastrojos en la etapa de
preparación de terreno, evitando
tener
piñales
cercanos
mal
asistidos que sean reservorio de la
plaga.
 Es importante realizar muestreos
en horas tempranas de la mañana
para
establecer
niveles
de
población. Se pueden utilizar de 2
a 3 trampas con feromonas de
agregación, para determinar el
nivel de infestación en el cultivo
Figura 21. Adulto de M.
hemipterus afectado por B.
(Figura 20). Se considera un nivel
bassiana. Fuente: Universidad Nacional de
bajo en una trampa de 0-5 picudos,
Colombia
un nivel medio de 5-20 y un nivel
alto más de 20 adultos por trampa por semana.
16
Guía Identificación y MIP
Muestreos
 En caso de presentarse alta infestación de la plaga se pueden
utilizar las trampas con feromona de forma masiva (de 5 a 7
trampas por ha) para el control de la plaga sin perjudicar el medio
ambiente.
 En control biológico del picudo con la aplicación del hongo
entomopatógeno Beauveria bassiana da muy buenos resultados
(Figura 21). Es importante utilizar altos volúmenes de agua (hasta
800 galones por hectárea) para garantizar una adecuada mojadura
de la planta y utilizar un coadyudante que le dé adherencia y
protección solar a las esporas del hongo, como el pinolene o aceite
agrícola.
 En caso de altas infestaciones difíciles de controlar se puede
realizar aplicaciones de insecticidas aprobados en piña como
carbaril, diazinón o Ethoprophos (este último producto es de uso
restringido en Costa Rica, que solamente se puede adquirir bajo
receta profesional), con volúmenes altos de agua (620 a 800
galones/ha), a las dosis recomendadas por la etiqueta del producto
o por un especialista del área.
3.5 Nemátodos
(Meloidogyne,
Helicotylenchus, Pratylenchus
y Criconemoides)
Rotylenchulus,
Taxonomía: Tylenchida: Tylenchoidea
Descripción de la plaga:
Los
nematodos
son
gusanos
redondeados
generalmente
microscópicos, bilateralmente simétricos
y cilíndricos en su sección transversal
(Figura 22). Un grupo de especies, entre Figura 22. Nematodo del
ellas Meloydogyne y Rotylenchulus género Helicotylenchus vistos
presenta un dimorfismo sexual marcado, a 400X.
17
Guía Identificación y MIP
Muestreos
donde la hembra adulta se modifica, y puede observarse en forma de
limón, pera, riñón entre otras; convirtiéndose en un parásito
sedentario. Los nematodos parásitos de plantas o fitonematodos
tienen una longitud entre 0.5 y 6.5. mm.
En la mayoría de los nematodos, la reproducción es sexual. Algunas
especies son partenogenéticas, capaces de producir huevos sin
fertilización. El ciclo de vida puede ser entre los 20 y 45 días
dependiendo de la especie. Las hembras ponen masas de huevos que
contiene hasta 2000 huevos.
Habito y daño:
De acuerdo al modo de alimentación, se clasifican en endoparásitos,
si penetran completamente en la raíz, se alimentan, maduran y
depositan sus huevos dentro de las raíces. En este grupo se incluyen
los nematodos de las agallas o de los nódulos de las raíces
(Meloidogyne spp.) y los nematodos de la lesión de las raíces
(Pratylenchus spp.). Si se alimentan penetrando solamente la parte
anterior de su cuerpo en la raíz son semiendoparásitos como es el
caso de Rotylenchulus reniformes y Helicotylenchus spp.
Son extremadamente activos en
condiciones favorables y sobreviven
bien en condiciones desfavorables.
Figura 23. Agallas de
Meloidogyne en raíz de piña.
Los síntomas que provocan una alta
incidencia
de
nemátodos
en
plantaciones de piña son: disminución
del crecimiento, pérdida de turgencia
en bordes y puntas de hojas, flacidez
del pedúnculo y frutos pequeños. En
las raíces afectadas se observan
secciones necrosadas, deformaciones,
agallas y podredumbre (Figura 23).
18
Guía Identificación y MIP
Muestreos
Las partes de la raíz afectadas por los nematodos ofrecen puntos de
entrada de hongos tales como Fusarium spp, Verticillium spp y
Pythium spp.
Métodos de control:
 Seleccionar un suelo libre de nemátodos, o al menos con muy bajas
poblaciones, realizar una adecuada preparación de terreno y
eliminación de material vegetal del ciclo anterior.
 Realizar muestreos para determinar niveles de infestación de la
población, y tomar medidas correctivas cuando estas poblaciones
sean muy altas. Los umbrales económicos mencionados en la
literatura de las principales géneros que afectan el cultivo de piña
son: de 1-5 nematodos / 200 ml de suelo para Meloidogyne; para
Pratylenchus 1000 nemátodos /10 gr de raíz y para Rotylenchulus
de 300-310 nemátodos /250cm3 de suelo (Hernández, sf).
 Eliminar plantas muy afectadas, que presentan marchites y
amarillamiento.
 La utilización de enmiendas con materia orgánica tiene efectos
directos e indirectos sobre las poblaciones de nematodos, al
aumentar
la
actividad
de
organismos antagónicos como
hongos, bacterias y otros.
 En terrenos donde se presenten
altas poblaciones se puede realizar
entre
2
a
3
aplicaciones
preventivas de nematicidas, una
granular al suelo en el primer mes
después de siembra (Figura 24), y
una o dos más (dependiendo del Figura 24. Aplicación de
nivel
infestación
en
ciclos nematicida granular.
anteriores) entre el segundo y
19
Guía Identificación y MIP
Muestreos
cuarto mes después de siembra. Se debe tomar en cuenta que los
productos utilizados estén debidamente autorizados a nivel nacional
e internacional para su uso en piña. Además es importante rotar
periódicamente los nematicidas utilizados, para reducir la
resistencia que la plaga puede adquirir al producto.
3.6 Thecla o Barrenador del fruto (Strymon basilide.)
Taxonomía:
Lycaneidae
Lepidóptera:
Descripción de la plaga:
Es una pequeña mariposa de 2 cm
de envergadura (Figura 25). Se
reconoce esta familia por su
prolongación en las alas, colocadas
en el extremo posterior de éstas. El
Figura 25. S. basilides adulto en
fruta de piña.
Huevo
4 y 5 días
Larva
8 a 12 días
adulto es color gris azulado con
puntos anaranjados con negro en los
extremos inferiores de las alas. El
huevo es elíptico de color claro y
mide menos de 1mm. La larva es
rosada y robusta, la pupa es obtecta
(característica de los lepidopteros) y
de color café brillante.
Ciclo de vida:
Adulto
20 a 27 días
Pupa
8 a 10 días
Figura 26. Ciclo de vida de S.
basilides
El género Strymon; al igual que todos
los lepidopteros, presenta una
metamosfósis completa, la cual
comprende las diferentes etapas
desde el huevo, la larva con 4 a 5
estadíos, la pupa y el adulto (Figura
26).
20
Guía Identificación y MIP
Muestreos
Habito y daño:
Estas mariposas son diurnas, se
encuentran cerca de áreas boscosas,
y
donde
existen
malezas,
principalmente Heliconeas, de las
cuales chupan el néctar de las flores.
En las plantaciones de la piña el
adulto es atraído por las flores entre
la semana 7 a 12 después de forza
(inducción floral). Las hembras
colocan los huevos en las brácteas
de la fruta antes de que se abran las
flores. Las larvas de color rosado
penetran por la base carnosa de la
bráctea, llega a las bases florales, y
por último penetra al fruto causando
cavidades internas. Los frutos
afectados presentan una exudación
gomosa de color ámbar (Figura 27) la
cual se endurece al contacto con el
aíre. Al salir la larva deja un orificio Figura 27. Síntomas de daño de
la tecla en fruto de piña.
en el fruto, el cual puede servir de
entrada a hongos o bacterias.
El daño de las larvas de la thecla en la mayoría de las fincas, oscilan
entre un 5 y 10%, no obstante algunos lotes han alcanzado pérdidas
de hasta el 50% cuando el control no se realiza adecuadamente.
Métodos de control:
 Monitoreo y trampeo de los adultos con bolsas de color rojo
impregnadas de sustancias adhesivas, principalmente alrededor de
zonas cercanas a bosques o tacotales.
21
Guía Identificación y MIP
Muestreos
 Eliminar de los alrededores de las plantaciones plantas hospederas
de la thecla, como son las Heliconias.
 Respetar franjas sin cultivo alrededor de las zonas con bosque o
tacotales de aproximadamente 15 metros.
 Aplicación de insecticida al inicio de la floración, entre las semanas
9 y 11 después de la inducción floral, cada 10 días. Se puede
utilizar insecticidas químicos (como diazinón o carbaril) alternados
con insecticidas a base de Bacillus thuringiensis.
3.7 Gusano soldado (Elaphria nucicolora)
Taxonomía: Lepidóptera: Noctuidae
Descripción de la plaga:
El adulto posee unas alas anteriores color café claro y las posteriores
blancas, mide 1,5 cm.
El huevo de E. nucicolora es cilíndrico, de color blancuzco, con un
anillo color marrón en la parte superior. La larva presenta varios tonos
de café y negro, rayas y formas triangulares más oscuras, mide hasta
3 cm de largo.
Ciclo de vida:
Huevo
5-7 días
Adulto
24 a 32 días
Larva
12 a 17 días
Pupa
12 a 15 días
Figura 28. Ciclo de la E.
nucicolora.
El huevo inicia la transformación a larva
después del cuarto día y puede emerger
entre los 5 y 7 días, pasando por tres
estadíos larvales, que duran entre 12 y
18 días para iniciar la etapa de pupa. En
los primeros estadíos la larva puede
confundirse con las de Spodoptera
frugiperda, pero no se desarrolla tanto
como ésta.
La pupa mide aproximadamente 1 cm y
usualmente se pueden encontrarse en
22
Guía Identificación y MIP
hojas bajeras, brácteas y algunas
veces en el suelo. La pupa es de un
color café claro en sus inicios,
pasando por tres estadíos y
posteriormente cambia a color café
negruzco, luego se rodea de una
cobertura sedosa hasta llegar a la
etapa adulta. Todo el proceso dura
12 a 15 días hasta la salida del adulto
(Figura 29).
Habito y daño:
Muestreos
Figura 29. Adulto de E.
nucicolora.
El adulto de esta especie es de hábitos nocturnos; las larvas son muy
activas en la noche, pero también atacan en el día. La hembra
deposita sus huevos principalmente en las hojas bajeras y en las
brácteas del fruto.
Las larvas prefieren ambientes muy húmedos y se pueden encontrar
en la base de la fruta, en el pedúnculo y los rebrotes, donde también
realizan el proceso de empupar. Es
común observar gran cantidad de
excremento en la base de la fruta
(pequeñas pelotitas negras).
Las poblaciones de esta plaga se
incrementan fácilmente, si no se
controlan de la forma adecuada, el
problema se puede presentar a partir
de la segunda semana después de
forza y hasta la cosecha.
Las
larvas
raspan
y
comen
superficialmente la cáscara de la fruta,
Figura 30. Daño externo e
interno provocado por la larva
de E. nucicolora.
23
Guía Identificación y MIP
Muestreos
alrededor de los ojos las lesiones producen una gelatina o goma que
puede ir de transparente a café oscuro. En la pulpa la lesión parece un
golpe y se presenta oxidación del tejido (Figura 30).
La mayoría poblacional de larvas se puede observar a los 95 días
después de forza.
Métodos de control:

Esta plaga se comporta muy similar a la thecla, se puede
encontrar cercana a bordes montañosos, por lo que no es
recomendable sembrar cerca de estas áreas.

Realizar muestreos semanales de larvas en la base de la fruta,
desde la semana 6 después de forza hasta 2 semanas antes de
cosecha, para evaluar la fluctuación de la población.

La utilización de la bacteria Bacilus thurigiensis ha dado muy
buenos resultados para el control de la larva de E. nucicolora. Se
puede intercalar conjuntamente con insecticidas químicos como el
diazinón y realizar aplicaciones en conjunto, durante el control de
thecla.
24
Guía Identificación y MIP
4
Enfermedades
Enfermedades
4.1 Pudrición del cogollo (Phytophthora parasitica),
Pudrición del fruto (Phytophthora cinnamomi)
Taxonomía: Oomycota: Pythiaceae
Descripción
enfermedad:
de
la
Históricamente ésta ha sido la
enfermedad más importante de
la
piña,
ampliamente
diseminada
y
comúnmente
presente en las plantaciones.
2
1
4
3
Phytophthora es un hongo
imperfecto, oomycete, saprofito,
que se reproduce mediante
clamidiosporas,
esporangios
(zoosporas) y oosporas (Figura
31).
Figura 31. Estructuras reproductivas
del hongo Phytophthora: 1)
esporangios, 2) zoosporas, 3) oospora,
4) clamidiospora.
La P. parasitica es común que se presente en etapas de aceleración
del crecimiento de las plantas, entre los 45 y 60 días, y de los 5 a los 7
meses después de la siembra. Adicionalmente esta especie presenta
mayor incidencia en temporada lluviosa, preferiblemente en días
calurosos con precipitaciones.
Por su parte la especie P. cinnamomi presenta mayor incidencia
después de forza, principalmente en fruta después de la apertura de
las flores, también se da en plantaciones ya desarrolladas. La
presencia de esta enfermedad en la fruta requiere de condiciones de
alta humedad y baja luminosidad, en plantación puede presentarse
tanto en época seca como en la lluviosa.
25
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
Síntomas:
Los síntomas se presentan generalmente
en parches, principalmente en bordes de
camino, bordes de cunetas y microollas,
es muy común en sitios donde se
maltrata más la plantación, por donde
pasa la maquinaria o el personal.
Síntomas de P. parasitica:
- Follaje:
clorosis
o
amarillamiento
progresivo, hasta necrosis de las
puntas de las hojas apicales,
desprendimiento fácil de las hojas del
centro de la planta, halo necrótico de 1
a 2 pulgadas, superior al punto del
desprendimiento, corte de desgarre
marcado, olor fuerte a descomposición
del material vegetal necrótico (Figura
32).
- Fruta:
poca ocurrencia de esta
enfermedad en fruta, necrosis basal
progresiva, fruta momificada que al
partirla presenta un halo necrótico
(Figura 32).
- Tallo: el corte longitudinal del tallo
presenta un halo en la periferia del
punto de emergencia de las hojas,
avance progresivo muy acelerado del
daño en este punto, llega a pudrir
antes que el follaje (Figura 32).
Figura 32. Síntomas de P.
parasitica en: follaje, fruta y
tallo.
26
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
- Raíz: comúnmente se desprende al intentar sacar la planta, raíz
necrótica no funcional.
Síntomas de P. cinnamomi:
- Follaje: clorosis de avance lento hacia
necrosis de las puntas de las hojas
apicales, desprendimiento no tan fácil
de las hojas del centro de la planta,
halo necrótico 1 a 2 pulgadas superior
al punto del desprendimiento pero más
irregular, corte de desgarre marcado,
olor a descomposición menos fuerte
que con P. parasitica (Figura 33).
- Fruta: presencia de tejido blando,
necrótico, momificado. Generalmente
los síntomas inician de forma basal,
pero puede presentarse el inicio
apicalmente, en estos casos las hojas
de la corona se desprenden fácil, y
hay presencia de halo. Cuando existe
humedad alta se presenta un micelio
blanco que cubre la fruta, esto es un
signo característico para el diagnóstico
de la enfermedad (Figura 33).
- Tallo: el corte longitudinal presenta un
halo necrótico que circunscribe un
tejido blanco, duro y momificado, lo
cual es una característica para su
Figura 33. Síntomas de P.
diagnostico (Figura 33).
cinnamomi en: follaje, fruta y
- Raíz: comúnmente se desprende al tallo.
intentar sacar la planta. La raíz se
presenta
necrótica
no
funcional.
27
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
Métodos de sobrevivencia y dispersión:
Este hongo puede sobrevivir en la materia orgánica, rastrojos, ñongas
e hijos voluntarios.
Sus esporas necesitan humedad para germinar
transportarse por agua, aire (polvo) y vectores.
y
pueden
Métodos de control:
 El control de esta enfermedad
inicia
con
una
adecuada
preparación
de
terreno,
y
construcción
de
drenajes
eficientes
que
permitan
la
eliminación
del
exceso
de
humedad en los lotes de
producción.
Figura 34. Desinfección
mecánica de la semilla en el
campo.
 Se debe seleccionar semilla
limpia, que provenga de lotes que
no hayan presentado incidencia de
esta enfermedad. Además es
importante
realizar
una
desinfección del material de
siembra utilizando un fungicida
específico para oomicetes (Fosetil
al o metalaxyl) (Figura 34).
 Es importante evitar provocar
lesiones en las hojas de las
plantas, ya que las heridas son el
punto de ingreso de la enfermedad
Figura 35. Control químico de
Phytophthora en campo.
a la planta. Una forma de lograr
esto, es prohibiendo el ingreso del
personal a lotes que presenten
28
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
síntomas de esta enfermedad.
 El uso de inductores de resistencia como el fosfito de potasio
reducen el efecto de la enfermedad sobre la planta
 Existe restricción en el mercado de moléculas eficaces para el
control de hongos oomycetes, comúnmente se emplea de forma
preventivamente el fosetyl Al y curativa el metalaxyl (Figura 35).
4.2 Fusarium (Fusarium sp)
Taxonomía: Hypocreales: Nectriaceae.
Descripción de la enfermedad:
Fusarium es el hongo fitopatógeno de mayor dispersión mundial,
recientemente se identificó en el cultivo de la piña en Costa Rica,
aunque aún no se determina la especie especifica que ataca este
cultivo. Se presenta en muy alta incidencia en las plantaciones y a
nivel mundial existen especies muy agresivas para la piña, como es el
caso de F. guttiforme en Brasil, que provocó el cierre de plantaciones.
El Fusarium es un hongo ascomiceto, saprofito, capaz de ingresar a la
planta aún en ausencia de heridas. Este hongo se caracteriza por
producir tres tipos de esporas: las micronidias, macronidias y
clamidosporas, estas últimas tienen paredes muy gruesas, lo cual las
hace muy resistentes a condiciones ambientales desfavorables, y a la
ausencia de hospedantes.
La presencia de la enfermedad en campo se relaciona con
condiciones que ocasionan problemas en la raíz, ya sea por hipoxia o
anoxia o daño mecánico ocasionado al sistema radical.
Las condiciones climáticas necesarias para que se desarrolle esta
enfermedad son: temperatura entre 23 y 28ºC, mucha lluvia y alta
humedad relativa.
29
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
Síntomas:
- Follaje: clorosis de hojas basales, también puede afectar hojas
apicales. Esta enfermedad es de avance lento, no en bandas
marcadas y la necrosis que presenta es lenta para apreciarse. No
hay desprendimiento foliar, ni olor
característico.
Se
presentan
síntomas de deshidratación foliar,
similar
a
déficit
hídrico:
acucharamiento del follaje y
emisión de espinas. Si la
infección se da de forma
temprana pueden ocasionar la
muerte de la planta (Figura 36).
Figura 36. Síntomas foliares de
la presencia de Fusarium en
planta de piña.
- Fruta: pobre desarrollo de la fruta,
tamaño pequeño, momificación, y
puede generar problemas internos
en la fruta cuando existe
interacción con otros patógenos.
- Tallo: lesión basal central que
genera
decoloración,
amarillamiento a necrosis del
tejido; generalmente con forma
de avance oval que puede ser
asintomática a nivel de follaje.
Avance de la lesión llega a podrir
el tallo y ocasionar hasta la
muerte (Figura 37).
- Raíz: las plantas
presentan
escaso
desarrollo radical, raíces necrosadas no funcionales.
Figura 37. Síntomas de
Fusarium en el tallo de la piña.
afectadas
o
nulo
30
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
Métodos de sobrevivencia y dispersión:
Este hongo presenta una muy amplia gama de hospedantes. Puede
sobrevivir en hijos, frutas, corona, materia orgánica o persistir en el
suelo por medio de las clamidosporas. Se considera que este hongo
una vez establecido en un lugar es imposible de erradicar
La forma de diseminación de la enfermedad es a través de partículas
de suelo, viento, lluvia, insectos, semillas y material vegetal.
Métodos de control:
Realizar una adecuada preparación de terreno que permita la
incorporación total de los rastrojos de plantación y reduzca la
presencia de exceso de humedad.
Seleccionar lotes para semillero libres de la enfermedad. Procurar
utilizar semilla limpia realizando aplicaciones en los lotes de semillero
con algún funguicida aprobado para
el cultivo.
La
aplicación
del
hongo
biocontrolador Trichoderma, en la
etapa de preparación de terreno, o en
los primeros meses de desarrollo de
la plantación ha dado muy buenos
resultados para reducir la incidencia
de Fusarium en el cultivo. La dosis de
aplicación
depende
de
la
concentración del producto utilizado, Figura 38. Desarrollo de cepas
de Trichoderma para el control de
se puede utilizar de 400 a 620 Fusarium.
galones de agua por hectárea
dependiendo de las condiciones climáticas imperantes.
Para el control químico se puede aplicar de forma preventiva las
moléculas carbendazina, prochloraz y propiconazole, a la dosis y
frecuencia que establezca un profesional del área agropecuaria.
31
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
4.3 Hoja de tamal (Erwinia carotovora), Pudrición bacterial
del fruto (Erwinia chrysanthemi)
Toxanomía: Enterobacteriales: Enterobacteriaceae
Descripción de la enfermedad:
Todas las especies del género Erwinia son patógenas de plantas. Es
una bacteria gram negativa, flagelada y móvil.
Se considera la segunda enfermedad
más conocida en el cultivo de piña,
después de Phytophthora. Su incidencia
puede ser de leve a moderada y
generalmente se presenta en puntos de
maltrato mecánico de las plantaciones
como son: bordes, sitios de ingreso de
personal o de maquinaria.
Para la especie E. carotovora el mayor
momento de susceptibilidad del cultivo
es aquel comprendido entre los meses 6
- 7 después de siembra, que es cuando
se presenta la mayor tasa de
crecimiento. Por su parte la especie E.
chrysanthemi se presenta principalmente
en fruta y hojas basales y brácteales,
principalmente en fruta que ya empieza
a transformar los almidones en
Figura 39. Síntomas foliares y
azucares.
en el tallo de E. carotovora.
Esta enfermedad afecta a la piña en los
momentos de transición climática, con humedad suficiente y altas
temperaturas (por ejemplo cuando se realiza riego en verano).
32
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
Síntomas:
Síntomas de E. carotovora:
- Follaje: puede iniciar en hojas basales (más común) o en el pito. En
el pito se inicia con un doblamiento de las hojas apicales sin
decoloración del follaje, con desprendimiento del pito sin desgarre,
ni corte marcado, el punto basal de estas hojas se presenta
“licuado” y con olor intenso a amoniaco
(orina). Posteriormente, sobre las
hojas se presenta una necrosis sin
amarillamiento de avance rápido, con
levantamiento de la epidermis en la
parte basal (hoja de tamal) (Figura 39).
- Tallo: inicialmente se presenta un
ablandamiento leve del tallo con una
muy leve decoloración. Con forme
avanza la enfermedad los tejidos se
ablandan
(licuados)
hasta
su
descomposición (Figura 39).
Síntomas E. chrysanthemi:
- Fruta: externamente en la parte basal
con avance apical se presenta una
necrosis húmeda del tejido, que
ablanda y licua la pulpa, al partir la
fruta no se observan halos de avance,
pero si la lisis del tejido. La fruta puede
almacenar amoniaco dentro de la
pulpa y expulsar este en forma de
burbujas externamente (Figura 40).
Figura 40. Síntomas en la
fruta y hojas de E.
chrysanthemi.
- Follaje: las hojas brácteales pueden llegar a presentar el
levantamiento de la epidermis (hoja de tamal) (Figura 40).
33
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
- Tallo: la lisis de tejido avanza desde el pedúnculo hasta el tallo,
ablandandolos.
Métodos de sobrevivencia y dispersión:
Esta bacteria presenta múltiples hospederos como: hortalizas,
ornamentales, musaceas, entre otras.
Su inóculo se moviliza por medio del agua, a través de vectores, en
partículas de suelo y puede sobrevivir varias semanas en suelos
secos.
Métodos de control:
 Siempre es importante iniciar con una adecuada preparación de
terreno y construcción de drenajes, que permita el desalojo del
exceso de agua de los terrenos.
 Posteriormente, una adecuada selección de semilla limpia,
desinfectada con algún producto bactericida; esto reduce el riesgo
de introducción de la enfermedad.
 Existen varios bactericidas en el mercado, los cuales no son
empleados en el cultivo por sus restricciones en uso y el costo que
representan. Generalmente se emplea de forma preventiva
cicatrizantes como extractos de semilla de cítricos, y para un control
curativo se utiliza sulfato de cobre.
4.4 Pudrición del tallo
Descripción de la enfermedad:
El agente causal de esta enfermedad se considera que es una
bacteria, pero no se conoce clasificación taxonomíca.
Dentro de la plantación es mucho más común encontrar plantas
afectadas en puntos de depresión del terreno, donde existe mal
drenaje y exceso de agua.
34
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
Las infecciones se dan en los periodos de
mayor crecimiento vegetativo, desde su
infección a la muerte la planta pueden
pasar de 40-50 días. Los síntomas son
más evidentes después de forza, y en
épocas de verano se puede afectar el
sistema vascular.
Síntomas:
- Los síntomas externos no siempre
Figura 41. Síntomas en
coinciden en severidad con los plantación de PDT.
síntomas internos.
- Follaje: quema de puntas en hojas
medias, que al avanzar afecta las hojas
más activas (Hoja D), hasta llegar a
afectar en condiciones severas, a las
hojas centrales (Figura 41). La necrosis
avanza con el tiempo al resto de la hoja,
en la que se presenta una clorosis
generalizada. En estas hojas se aprecia
una necrosis de los haces vasculares y
en la base de las mismas se observan
Figura 42. Síntomas en
unas estrías incoloras paralelas, que
hojas.
llegan a necrosar, estas hojas no
presentan pudriciones acuosas, y son de difícil desprendimiento en
los estados no severos (Figura 42).
- Fruta: generalmente la planta muere antes de cosecha, pero si la
infección es tardía podría aprovecharse la fruta, condiciones
intermedias generan una fruta momificada.
- Tallo: exudado al poner en agua, forma una necrosis de los heces
vasculares y una pudrición seca y necrótica de color café cerca del
rizoma, la cual en algunos estados de severidad muy leves no es
35
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
perceptible, pero que tiende a formar un halo alrededor del tallo.
Esta lesión tiene un olor similar al aserrín.
- Raíz: necrosis radical, muy poca presencia de estas.
Métodos de sobrevivencia y dispersión:
Presenta muchos hospedandes alternos como son: ornamentales,
hortalizas, musaseas, yuca, entre otros. Puede sobrevivir en los
rastrojos.
Su diseminación se realiza por medio del agua, el suelo o vectores
asociados al cultivo.
Métodos de control:

Erradicación de plantas que presenten síntomas dentro de la
plantación.

Construir y mantener buenos drenajes que permitan la evacuación
eficiente del exceso de agua.

Realizar un adecuado manejo de los rastrojos de plantación: con
incorporación del material vegetal en la etapa de preparación de
terreno, y aplicación de microorganismos para acelerar su
descomposición.
36
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
4.5 Pudrición acuosa o fruta bofa (Thelaviopsis paradoxa)
Taxonomía: Ascomycota: Dematicaceae
Descripción de la enfermedad
Thielaviopsis paradoxa es un hongo que produce dos tipos de
esporas: conidioesporas y clamidoesporas, estas últimas pueden
sobrevivir durante mucho tiempo en el suelo.
Se puede presentar en el campo, pero
principalmente es un problema de
poscosecha donde se pueden presentar
pérdidas de hasta el 70% de las frutas
para exportación en fresco. El inicio de la
enfermedad se relaciona directamente
con la presencia de heridas en las
plantas o frutas, y en el caso de
poscosecha con temperaturas muy altas
de almacenamiento (Bartholomew et al,
2003). En campo se presenta la
enfermedad cuando hay heridas en las
frutas o estas están muy maduras.
Figura 43. Síntomas en los
hijos de T. paradoxa.
Esta enfermedad afecta también el material de siembra, si no ha sido
secado propiamente, o fueron almacenados con poca aireación.
37
Guía Identificación y MIP
Enfermedades
Síntomas:
Afecta el material de siembra, tallo, hojas y
frutos. Penetra a través de las heridas, por
un manejo bajo condiciones de alta
temperatura y humedad. La presencia de
este hongo en los hijos de siembra se
distingue por un color gris oscuro en la
base (Figura 43), y se presenta un
moteado blanco. En los frutos esta
enfermedad se caracteriza por una
pudrición suave y acuosa, que inicia en un Figura 44. Síntomas internos
punto y se desarrolla por toda la fruta. Los en la fruta de T. paradoxa.
tejidos del hongo se vuelven negros con el
tiempo por la esporulación del micelio (Bartholomew et al, 2003)
(Figura 44).
Métodos de control:

Realizar un adecuado secado del corte de los hijos antes de ser
utilizados.

Eliminar en campo las frutas que presenten esta enfermedad, para
no ser llevadas a la planta empacadora.

Desinfectar los hijos de piña antes de la siembra.

Desinfectar adecuadamente las áreas de empaque donde se
prepara y acondicionan los frutos para la exportación.

En los frutos que se destinan para la exportación se recomienda
desinfectar la sección del pedúnculo.

Empacar todas las frutas cosechadas antes de las 8 horas de
haber sido cosechadas.
38
Guía Identificación y MIP
5
Problemas fisiológicos
Problemas fisiológicos
Las plantas de piña, como cualquier organismo vivo son susceptibles
al medio que las rodea. Estas están expuestas a una serie de factores
ambientales y de manejo que pueden originar serias alteraciones en
sus funciones vitales; estas alteraciones se conocen con el nombre de
enfermedades fisiológicas o no parasitarias; siendo las más
importantes: la toxicidad por aplicaciones mal realizadas, las carencias
de elementos nutritivos, la falta o exceso de agua, o las temperaturas
extremas.
5.1 Quema por sol:
En épocas de mucha radiación solar se
produce la quema externa en las hojas
y los frutos, de la planta de piña. Este
daño se evidencia en los bordes de la
plantación,
en
bandas
de
amarillamiento marcadas, generalmente
localizadas en una misma dirección, en
función de la posición del sol,
generalmente las hojas con exposición
del haz hacia el oeste son las que Figura 45. Fruta afectada
suelen mostrar estos problemas, esta por quema de sol.
característica
también
se
puede
observar en la fruta.
5.2 Toxicidad:
La toxicidad más común se da por agroquímicos, ya sea por
sobredosis, incompatibilidades o momentos de aplicación inadecuados
Los síntomas más comunes son: amarillamientos o quemas en las
plantaciones, quema en las puntas, o manchas o spots en las plantas.
Cuando el origen de la toxicidad es la fertilización excesiva, es común
39
Guía Identificación y MIP
Problemas fisiológicos
observar los pitos quemados. Las toxicidades por herbicidas tienden a
presentar amarillamientos más generalizados, o en forma de salpique
en el follaje. La distribución en el campo es en parches marcados.
5.3 Estrés hídrico:
Esta condición puede observarse en condiciones de anegamiento o
deshidratación. En el primer caso (hipoxia), es muy común
encontrarse plantaciones con amarillamientos generalizados en
parches, decaimiento de la planta, escaso o nulo desarrollo radical,
condición muy favorable para el desarrollo de enfermedades como
Phytophthora parasitica, muy relacionado con la calidad de la
preparación de terreno y la presencia de microollas.
El déficit hídrico (anoxia), suele originar
acucharamiento y
decaimiento del follaje, muchas espinas es sus hojas, escaso
desarrollo radical, mayor susceptibilidad a quema por sol, Fusarium y
Phytophthora cinnamomi en tallo. En ambos casos, el desarrollo de la
plantación es inferior a una plantación bajo condiciones de humedad
adecuadas.
5.4 Deficiencias o exceso de nutrientes:
Es posible que se produzcan efectos en las plantas por el déficit o
exceso de elementos nutricionales, y su identificación requiere de
conocimiento específico de los diferentes elementos. En el Cuadro 2
se resumen las sintomatologías mostradas por los elementos más
importantes para el cultivo.
40
Guía Identificación y MIP
Problemas fisiológicos
Cuadro 2. Síntomas de déficit o exceso de los principales elementos
nutricionales en piña.
Elemento
Nitrógeno
Fósforo
Potasio
Calcio
Déficit
Exceso
Desarrollo pobre o retardado. Elemento
móvil, hojas viejas primeras en manifestar
síntomas. Desarrollo de color verde pálido o
amarillamiento (clorosis). Pobre desarrollo de
tallos, hojas y escaso desarrollo de hijos.
Mayor desarrollo de espinas en el follaje y la
corona. A nivel de fruta, bajo peso, bajo nivel
de ácidos, mayor relación Brix/ácidos, fruta
muy dulce.
Desarrollo pobre o retardado. Plantas con
número limitado de hojas, muy angostas y de
color verde olivo, presencia de quema de
puntas en hojas bajeras. Tendencia a la
acumulación de antocianinas en el follaje, lo
que le da una tonalidad rojiza a las hojas.
Presencia de mancha grasienta, típico en
plantaciones jóvenes, angostamiento de la
hoja. Muy mal desarrollo radical, pobre
desarrollo de hijos. Fruta muy pequeña, alta
translucidez, pH alto, bajo nivel de ácidos,
retraso en la floración.
Planta con quema de puntas en las hojas
bajeras, iniciando en márgenes, crecimiento
foliar retardado. Una vez forzada, la
deshidratación es muy acelerada y se secan
las hojas aún con la fruta. Fruta pequeña
pero con corona grande, muy bajo brix y
ácidos, mayor susceptibilidad al Internal
Browning (desorden fisiológico de
postcosecha que provoca ennegrecimiento
del corazón de la fruta).
Follaje tiende a ser más angosto, con una
leve incidencia de quema de puntas. Follaje
susceptible a daño mecánico y
ablandamiento de tejidos. Fruta con bajo
contenidos de ácidos, fruta dulce, muy
Alto porte de plantación.
Tejido muy suculento y
blando. Susceptible a
heridas y doblamiento
del follaje. Inhibe o
retrasa la floración,
dificulta forzamiento.
Mala reacción de
maduración.
Excesos de Fósforo
puede generar
deficiencias de Hierro y
Zinc.
Fruta más susceptible a
translucidez alta y daño
por golpe de agua.
Menor resistencia al frío,
mayor susceptibilidad de
floración natural.
Carencia de Calcio y
Magnesio en fruta.
Deficiencia de Potasio y
Magnesio
41
Guía Identificación y MIP
Elemento
Problemas fisiológicos
Déficit
Exceso
susceptible a golpe de agua y translucidez
alta, alta presencia de ojo pardo en fruta.
Magnesio
Zinc
Boro
Tejido con coloración pálida principalmente
en hojas bajeras y en los márgenes de las
hojas. Hojas quebradizas. Fruta con bajo
nivel de ácidos y susceptible a fermentación.
A nivel de follaje no se presenta síntomas
claros, a veces se observa una leve clorosis
en hojas jóvenes. A nivel de fruta se tiende a
presentar corona torcida
No se observan deficiencias claras a nivel de
follaje. A nivel de fruta, se presenta corona
grande, igualmente se puede presentar
corchosis y subir levemente el brix.
Las plantaciones con déficit de hierro tienden
a presentar toxicidades de manganeso,
follaje angosto y pálido.
Hierro
Las plantaciones con déficit de manganeso
tienden a presentar toxicidades de Hierro.
Manganeso
No se reportan síntomas.
Aluminio
Deficiencia de Calcio
Deficiencia de Hierro
Bajo nivel de
Manganeso,
acumulación de Hierro
radical. Limitada
presencia de pelos
absorbentes, color verde
olivo en follaje.
Moteados verdes
oscuros en el follaje.
Bajo nivel de Hierro,
follaje verde pálido,
acumulación de
Manganeso radical,
limitada presencia de
pelos absortes.
Amarillamiento tenue
general, crecimiento
limitado, escaso
desarrollo radical.
42
Guía Identificación y MIP
6
Malezas
Malezas
6.1 Descripción de la plaga:
Las malezas o arvenses son especies vegetales que crecen junto con
el cultivo y compiten por el espacio, nutrientes y luz. Otro aspecto
perjudicial es que pueden ser hospederas de plagas y enfermedades
que afecten el cultivo. Además la presencia de semillas de malezas
cuarentenarias en la corona de la piña, es un motivo de rechazo del
embarques completos de el mercado destino, por ello la importancia
de tomar medidas preventivas para evitar la colonización de los
terrenos con este tipo de plantas.
Entre las principales malezas cuarentenarias están:
6.2 Caminadora
cochinchinensis)
(Rottboellia
Taxonomía: Poales: Poaceae
Diseminación: fácil diseminación por el
hombre, maquinaria, agua.
Descripción:

Semilla: racimo en forma de espiga
cilíndrica.

Planta: gramínea anual, raíces
fibrosas y fuertes con presencia de
raíces adventicias, tallos fuertes,
erectos y pubescentes, la planta puede
alcanzar hasta 4 m de altura.
Figura 46. Planta de R
cochinchinnesis.
43
Guía Identificación y MIP
6.3
Malezas
Cizaña (Asystasia gangetica)
Taxonomía:
Acanthaceae
Scrophulariales:
Diseminación:
sexualmente,
transportada por agua, animales, entre
otros.
Descripción:

Semilla:
inflorescencias
en
racimos, de color blanca violeta,
semilla aplastada, irregular, de crema
a café.
Figura 47. Presencia de cizaña
en plantación de piña.

Planta: planta agresiva, perenne,
herbácea de hasta 1 m de altura,
hojas de ovaladas a elípticas.
6.4 Mimosa (Mimosa pigra)
Taxonomía: Fabales: Mimosaceae
Diseminación: por medio del fruto.
Descripción:
Figura 48. Fruto y hojas de
M. pigra.

Semilla: fruto en forma de vaina,
semilla
oblonga
de
un
color
amarillaceo a rojizo claro.

Planta: arbusto leguminoso de hasta
6 m de alto, con presencia de espinas
en sus ramas, hojas biplumadas y
sensibles al tacto.
44
Guía Identificación y MIP
Malezas
6.5 Borreria (Spermacose alata)
Taxonomía: Rubiales: Rubiaceae
Diseminación: sexualmente por
lluvia, animales, movimiento de tierra,
etc.
Descripción:

Semilla: inflorescencia axilar con
flores sésiles y blancas, fruto en
cápsula globosa, graba y bifurcada.

Planta: planta herbácea de 20 a
50 cm, tallo cuadrangular con
ángulos
muy
sobresalientes,
pubescentes y poco ramificados,
hojas opuestas largas y elípticas.
Figura 49. Planta y flores de S.
alata.
6.6 Tomatillo (Solanum torvum)
Taxonomía: Solanales: Solanaceae
tomatillo, tomate de árbol, naranjilla.
Diseminación: Aves y murciélagos
comen los frutos y dispersan las
semillas.
Puede
propagar
por
esquejes.
Descripción:

Semilla: El fruto globoso, de
hasta 14 mm de diámetro, primero
verde, luego amarillo al madurar.

Figura 50. Planta, flores y fruto
de S. torvum.
Planta: arbusto cubierto de pelos
estrellados, armado de espinas dispersas rectas o algunas
45
Guía Identificación y MIP
Malezas
recurvadas; hojas escasamente lobadas, cubiertas con pelos
estrellados; flores blancas.
6.7 Bejuco (Mikania micrantha)
Toxonomía: Asterales: Asteracea
Diseminación: fácil diseminación por
el viento y animales.
Descripción:

Semilla:
inflorescencias
terminales, flores blancas y semillas
negras.

Planta: enredadera o bejuco de
rápido crecimiento, tallos delgados,
hojas acorazonadas dispuestos en
pares opuestos.
Figura 51. Planta de M.
micrantha.
6.8 Paja Blanca (Saccharum spontaneum)
Taxonomía: Poales: Poaceae
Diseminación: Fácil diseminación por
el viento.
Descripción:


Figura 52. Planta de S.
spontaneum.
Semilla: inflorescencia Terminal
grande y de color blanco, semillas
pequeñas con abundantes pelos
blancos y largos.
Planta: Tipo de caña de tallo
delgado, especie perenne, de hasta 5
m de altura, muy invasora.
46
Guía Identificación y MIP
Malezas
6.9 Golondrina (Commelina benghalensis)
Taxonomía:
Commelinaceae.
Commelinales:
Diseminación: vegetativa o sexual.
Descripción:

Semilla: flores terminales azules a
lilas, pueden presentarse en racimos,
semillas rectangulares, de borde
Figura 53. Planta de C.
aserrado, color marrón a café.
benghalensis.
 Planta: anual o perenne, de hábito
rastrero y prefiere sitios húmedos, de hojas ovaladas a lanceoladas,
tallos de hasta 90 cm de longitud, tallo en forma helicoidal.
6.10 Zacate kikuyo (Pennisetum clandestinum)
Taxonomía:
Diseminación: vegetativa y semillas;
estás sobreviven al tracto digestivo de
los animales.
Descripción:
Semilla: solo se pueden ver los
estambres cuando florecen, las semillas
son muy pequeñas y están escondidas
entre las vainas.
 Planta : planta perenne, rastrera que Figura 54. Planta de P.
puede ser trepadora, con rizomas clandestinum.
fuertes y estolones.

47
Guía Identificación y MIP
Malezas
6.11 Métodos de control:
 Utilización de semilla de piña (hijos) limpia,
proveniente de lotes que no presenten
malezas
cuarentenarias
y
no
cuarentenarias,
para
evitar
su
diseminación. Es importante no utilizar
hijos de piña muy pequeños (menor de
250 gramos), para evitar un periodo muy
prolongado de exposición del suelo, que le
permita a las malezas emerger y competir
con el cultivo (Figura 55).
Figura 55. Pesaje de los
hijos de siembra para
utilizar
tamaño
adecuado.
 Realizar una adecuada limpieza de la
maquinaria utilizada en la preparación de
terreno, cuando se cambia de lotes, para
evitar el traslado de semillas de malezas.
 Control oportuno de las malezas antes de que florezcan, para evitar
aumentar el banco de semillas del terreno. Una vez que las malezas
alcanzan su estado reproductivo se recomienda realizar un control
manual, recolectando las malezas en sacos o bolsas para su
eliminación, en un lugar apartado de la plantación.
 Control manual de malezas cuarentenarias y colocación en sacos o
bolsas plásticas para su posterior eliminación (entierro) en fosas, en
lugares alejados de las plantaciones.
 Realizar capacitación del personal encargado del control de
malezas, sobre identificación de las principales malezas
cuarentenarias para la exportación de la piña.
 Utilización de coberturas o barreras vivas en drenajes permanentes
como pasto vetiver, para crear condiciones de sombra sobre los
drenajes, que controlen las malezas.
48
Guía Identificación y MIP
Malezas
 El uso de cobertura plástica en las plantaciones permite un control
casi total de la emergencia de malezas, reduce el uso de herbicidas,
y minimiza el riesgo de contaminación de las frutas con semillas de
malezas cuarentenarías (Figura 56).
 Una adecuada preparación de
terreno que permita la eliminación
de residuos vegetales, y una
estructura fina del suelo para la
aplicación
de
un
herbicida
preemergente
con
buenas
condiciones. Además se requiere
que el suelo presente un nivel de
humedad a capacidad de campo
(1/3 atmosferas) al aplicar el
herbicida,
para
una
buena
adherencia en los coloides del
suelo.
Figura 56. Utilización de
cobertura plástica para el control
de malezas en plantación.
 Escogencia de herbicidas adecuados al tipo de malezas que se
presente en el cultivo.
 Las principales moléculas disponibles en el mercado son: ametrina
y diuron, que se utilizan en pre y posemergencia con un máximo de
tres aplicaciones por ciclo de cultivo. El bromacil para el control de
cyperaceas y hojas anchas en postemergencia. El fluazifop-p-butyl
se pueden realizar de una a dos aplicaciones en el ciclo de cultivo
cuando existan presión de malezas tipo poaceas. Y el glifosato que
se puede utilizar para el control de malezas poaceas en rondas y
caminos.
 Las dosis y frecuencias dependen de la presión de malezas que se
presente en la plantación, lo mejor es seguir la recomendación de
un ingeniero agrónomo.
49
Guía Identificación y MIP
7
Mosca de establo
Combate de la Mosca del establo
7.1 Descripción de la plaga:
La mosca del establo (Stomoxys calcitrans) (Diptera: Muscidae) es
una plaga veterinaria de amplia distribución mundial; en nuestro país
se encuentra en todas las áreas de producción ganadera, y más
severamente en las zonas donde se presenta un mal manejo de
rastrojos de cosechas de algunos cultivos y desechos de la
agroindustria.
Esta mosca es un problema indirecto
de las empresas productoras de piña
ya que desarrolla una parte de su
ciclo de vida en materia vegetal en
descomposición o en desechos de
animales, y ha encontrado un nicho
en los rastrojos de la piña para su
reproducción (Figura 57).
Los huevos de la mosca del establo
son blancos, muy similares a los de la
mosca doméstica común, estos son
Figura 57. Larva de S.
calcitrans en rastrojo de piña.
depositados en pequeños grupos. Una
hembra suele poner hasta 800 huevos,
por lo regular en grupos de 25-50 después de una ingesta de sangre.
Para una producción continua de huevos se necesitan repetidas
ingestas de sangre.
Las larvas de la mosca del establos son blancas, cilíndricas, ahusadas
en su parte anterior, y muy similares a las de la mosca doméstica
común.
La mosca del establo adulta presenta una coloración gris y tiene
franjas oscuras en el protórax; su tamaño es muy similar al de la
50
Guía Identificación y MIP
Mosca de establo
mosca doméstica (6 mm), pero puede ser fácilmente distinguida por
las piezas bucales, en donde S. calcitrans presenta una probóscide
robusta de color negro, que usa para perforar la piel y succionar
sangre.
7.2 Ciclo de vida:
Los adultos depositan sus huevos en
material vegetal en descomposición y
en 3 días eclosionan las larvas. Estas
larvas duran entre 8 a 10 días, y pasan
por 3 estadios larvales. El estado de
pupa dura de 8 a 10 días. El ciclo de
vida dura entre 2 y 3 semanas
viéndose favorecido por condiciones
de calor y humedad. La vida media de
un adulto de S. calcitrans es de 100
días (Figura 58) (Rojas et al, 2006)
Larva 8 a 10 días
Pupa
8 a 10 días
Huevo
3 días
Adulto
100 días
Figura 58. Ciclo de vida de
S. calcitrans.
7.3 Habito y daño:
Las moscas no provocan ningún daño al cultivo de la piña, sin
embargo existen leyes nacionales (Ley Nº 7664, de Protección
Fitosanitaria y Ley SENASA N°8495) que exigen a toda explotación
piñera, el realizar un manejo adecuado de sus residuos de plantación,
para evitar el desarrollo de esta mosca.
Si se comprueba que una finca no cumple los requerimientos
establecidos en la legislación para el manejo de desechos orgánicos, y
esto origina la reproducción de S. calcitrans dentro de la finca, el
Servicio Fitosanitario del Estado (SFE) en conjunto con el Servicio
Nacional de Salud Animal (SENASA), tienen la potestad de paralizar
las labores de la finca, e impedir la extracción de fruta hasta que se
51
Guía Identificación y MIP
Mosca de establo
resuelva la situación. Si el productor se niega a colaborar en el
cumplimento de las exigencias impuestas, estos entes puede aplicar a
los productores sanciones económicos y penales, si el hecho lo
amerita.
La mosca del establo constituye un importante parásito externo
hemátofago de los bovinos y equinos. La presencia de este tipo de
moscas en áreas de producción animal representa un problema
veterinario sanitario, provocando irritabilidad a los animales
domésticos, reducción de los niveles de producción de carne y leche
en el ganado, transmitiendo enfermedades, entre otros (Martínez y
Lumaret, 2006). Las moscas adultas se las localizan sobre todo en las
patas, en los flancos y en el lomo de las reses. Machos y hembras
chupan sangre 2 o 3 veces al día, durante unos cinco minutos cada
vez. Las moscas adultas pueden volar distancias de hasta 40
kilómetros.
Por lo anterior existen constantes demandas de los ganaderos hacia
las zonas productoras de piña, estos atribuyen la responsabilidad de
la presencia de este insecto, a las fincas piñeras, sin embargo esto
que no siempre es cierto, ya que S. calcitrans se desarrolla en
cualquier tipo de materia orgánica en descomposición. Estas
demandas han provocado el cierre momentáneo de las empresas por
parte del SFE y perdidas importantes en fruta que no se permitió
exportar.
52
Guía Identificación y MIP
Mosca de establo
7.4 Métodos de control:
 El manejo de los residuos de la
piña debe ser muy estricto para
evitar la emergencia de la mosca
del establo. Una recomendación
dada por el SFE/SENASA (Rojas
et al, 2006) es primeramente
realizar quema química con un
herbicida en los lotes que están
en renovación y posteriormente Figura 59. Trituración de material
quemar con fuego para reducir el acordonado.
material vegetal. Los tallos
restantes se acordonan, se trituran e incorporan con pases
consecutivos de rastras, en lapsos no mayores a 5 días entre cada
uno, para romper el ciclo de la mosca.
 Si se presentan condiciones de altas precipitaciones es mejor no
triturar por la dificultad de introducir maquinaria en los lotes para
incorporar lo triturado.
 También es posible utilizar una alternativa con un menor impacto
para el ambiente, esta es: la trituración e incorporación de los
residuos de la plantación en verde (sin aplicación de herbicida
desecante), con pases consecutivos de rastras y subsolador. Esto
depende del tipo de suelo y las condiciones del clima imperantes,
que permitan el ingreso de la maquinaría sin que provoque
compactación en el terreno.
 Una vez triturados los residuos de la plantación es importante
realizar observaciones semanales en campo, de los tejidos en
descomposición para evaluar la presencia de larvas y coordinar a
aplicación de un insecticida en caso que se presenten altas
densidades. Se deben realizar las aplicaciones con una frecuencia
53
Guía Identificación y MIP
Mosca de establo
de dos veces por día por tres días seguidos para evitar el desarrollo
masivo de moscas adultas, según las recomendación del Plan de
acción SFE/ SENASA para el control de la mosca de establo (Rojas
et al, 2006).
 Se recomienda la aplicación de
microorganismos eficientes (Figura
60),
que
aceleren
la
descomposición de la materia
orgánica y reduzcan el tiempo de
exposición de la misma a la mosca
del establo. Estos productos se
pueden aplicar antes de la
trituración,
sobre
los
tallos
acordonados o sobre los residuos Figura 60. Microorganismos
entre los pases de rastra.
descomponedores activados.
 El control biológio con el
parasitoide de pupas de moscas, Pachicrepoides vindemmiae, ha
dado buenos resultados en liberaciones masivas en el sur de Costa
Rica, para el control de mosca doméstica y mosca del establo en
residuos industriales de palma aceitera. Su cría requiere de una
tecnología muy sencilla y de bajo costo, y se obtienen muy buenos
porcentajes de parasitismo (69.5 % en promedio).
 La elaboración de abonos orgánicos como el bocachi con los
rastrojos de la piña, es una opción que permite aprovechar la
materia orgánica en la mejora continua de los suelos y eliminar el
problema de la mosca; ya que el proceso de descomposición eleva
la temperatura impidiendo a la mosca de establo desarrollarse
dentro del material. Para desarrollar este proceso es necesario que
el productor cuente con un espacio techado en el que pueda
realizar el proceso y además que tenga disponible la maquinaria
para movilizar los rastrojos antes y después del proceso.
54
Guía Identificación y MIP
Mosca de establo
 Para monitoreo y captura
masiva de los adultos de S.
calcitrans se utilizan trampas.
Estas consisten en bolsas
plásticas impregnadas con una
goma atrayente, que se colocan
alrededor de las áreas en
renovación.
Es
importante
realizar esta labor entre los
primeros 8 días después de la
Figura 61. Trampa con alta
quema física, para evitar que la
presencia de adultos de S.
mosca adulta coloque sus
calcitrans.
huevos sobre los tallos de piña.
Estas trampas se pueden colocar cada 20 m una de la otra. En caso
de presentarse altas incidencias de la plaga se puede aumentar las
trampas a cada 10 m y remplazarlas cuando se encuentren
saturadas de moscas adultas (Figura 61) o cuando el material haya
perdido su adhesividad por las condiciones climáticas o presencia
de polvo.
55
Guía Identificación y MIP
8
Bibliografía
Bibliografía.
Bartholomew, DP; Paull, RE; Rohrbach, KG (eds). 2003. The pineapple:
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Turrialba, C.R., CATIE. Serie Técnica/CATIE, No. 151. 138 p.
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Gullan, P: Martín, J. 2003. Sternorrhyncha (jumping plant lice, whiteflies, aphids,
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manejo. Instituto de Investigaciones en Fruticultura Tropical. Ciudad
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http://www.fao.org/docs/eims/upload/cuba/5007/cuf0122s.pdf
http://wvw.nacion.com/ln_ee/2007/julio/02/economia1149095.html.
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56
Guía Identificación y MIP
9
Glosario
Glosario
Control cruzado: el es control que ejerce un plaguicida sobre la
población de una plaga que no era el objetivo de la aplicación.
Forza: se le dice al proceso hormonal de inducir la floración de la
planta de piña al aplicar los productos conocidos como Etephon y
Etileno con carbón activado sobre las plantas que presente un peso
entre 4,5 y 6 libras.
Microollas: depresiones dentro del terreno ya preparado, que
presenta acumulación de humedad en el suelo, lo que provoca un
menor crecimiento de la plantación.
Nivel de daño económico (NDE): se define como la cantidad de
daño que iguala el costo de las medidas de control, requeridas para
mitigar la plaga. El propósito del manejo integrado de plagas es
controlar la plaga antes de que alcance este nivel (umbral
económico).
Obtecta: Pupa o crisálida que poseen los lepidópteros, en la cual las
alas y los apéndices están comprimidos sobre el cuerpo y casi la
mayoría de los segmentos abdominales son inmóviles.
Ovovíparo: Animal que se reproduce por huevos, pero que no salen
del cuerpo materno hasta que está muy adelantado su desarrollo
embrionario.
Plaga cuarentenaria: Plaga de importancia económica potencial para
el área en peligro cuando aún la plaga no existe o, si existe, no está
extendida y se encuentra bajo control oficial.
57
Guía Identificación y MIP
Glosario
Plantas voluntarias: son aquellas plantas de especies cultivadas que
nacen espontáneamente a partir de residuos de cosechas anteriores.
El resultado de esta situación es que las plagas tienen un sitio donde
alimentarse y sobrevivir, sirviendo de fuente de infección a otros
campos.
Umbral Económico (UE): El umbral económico se define como la
densidad de población a la cual debe ser iniciada una acción de
control para impedir que una creciente población de plaga alcance un
nivel de daño económico.
58
Guía Identificación y MIP
Glosario
Parque empresarial Forum 1 edificio H piso 1 Pozos Santa Ana,
Apartado .Postal 9066155Central telefónica 2504 5000 Fax
2504 5050
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