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Transcript
ESPAÑOL
Thermo Scientific™ Richard-Allan Scientific Chromaview® – Tinción Avanzada
Tinción de Gram Extensión
Instrucciones de uso
Análisis técnico
Probable modo de acción
Preparación
Frotis de única capa sobre portaobjetos de vidrio limpio.
Fijación
Impregnación del portaobjetos con metanol absoluto o fijación por calor con llama.
Control de calidad
Se recomienda el uso de un portaobjeto de control con organismos Gram positivos y organismos Gram
negativos conocidos.
Las bacterias se pueden clasificar en dos familias según el grosor de la pared celular, compuesta de peptidoglucano. Las bacterias gram positivas tienen una pared celular gruesa de peptidoglucano. Las bacterias gram
negativas tienen una pared celular delgada de peptidoglucano. Tanto las bacterias gram negativas como gram
positivas se tiñen con el colorante-laca creado por la tinción violeta cristal y el mordiente de yodo. Sin embargo,
durante el aclarado con la solución decolorante, el colorante-laca es eliminado completamente de la delgada
bacteria gram negativa. La pared celular se contrateñirá con la solución de tinción Safrina O. La corta duración
del aclarado con la solución decolorante permite que el colorante-laca permanezca dentro de la pared celular,
más gruesa, de las gram positivas. Tenga cuidado al aclarar el portaobjetos con la solución decolorante. Un
aclarado amplio con la solución decolorante puede hacer que el colorante-laca cristal violeta salga de la gruesa
pared celular de las bacterias gram positivas así como de la de las gram negativas.
Procedimiento técnico
Protocolo de tinción estándar
1. Colocar el frotis en una solución de Violeta Cristal durante 1 minuto.
Paso opcional: Agregar 5 gotas de una solución de Bicarbonato de Sodio al frotis para mejorar la
retención del violeta cristal.
2. Enjuagar el exceso de tinción con agua desionizada durante 30 segundos.
3. Colocar el frotis en una solución de Yodo de Gram durante 1 minuto.
4. Enjuagar el exceso de tinción con agua desionizada durante 30 segundos.
5. Diferenciar el frotis con la solución decolorante.
6. Enjuagar con agua desionizada durante 30 segundos.
7. Colocar el frotis en una solución de tinción de Safranina O durante 1 minuto.
8. Enjuagar el exceso de tinción con agua desionizada durante 30 segundos.
9. Secarel portaobjetos con papel absorbente.
10. Examinar con microscopio.
Referencias
1. Bancroft, J.D. y Stevens, A. Theory and Practice of Histological Techniques. Churchill Livingstone, New York, NY,
1977.
2. Volk, W.A. Essentials of Medical Microbiology. J.B. Lippincott Company, Philadelphia, PA, 1982.
3. Manual of Clinical Microbiology of the American Society for Microbiology, 30-45: 1970.
4. Hucker G.J. y Conn, H.J. Further Studies on the Methods of Gram Staining. NY Agric Exp Stain Technology
Bulletin. No. 128, 1927.
5. Cutlin, B.W. 1975. Cellular Elongation Under the Influence of Antibacterial Agents: Way to Differentiate
Coccobacilli from Cocci. J. Clin, Micro 1:102-105.
Información para pedidos
Producto
Tamaño
Cant.Ref.
Kit de tinción de Gram (Extensión)
1 Kit
1
87101
Solución de Violeta Cristal
500 ml
1
88101
Solución de Yodo de Gram
500 ml
1
88102
Organismos Gram positivos: Azul
Organismos Gram negativos: Rojo
Solución de tinción de Safranina O
500 ml
1
88103
Solución decolorante
500 ml
1
88104
Análisis
Solución de Bicarbonato de Sodio
8 ml
2 un
88116
Resultados
Todos los reactivos de tinción deben almacenarse a temperatura ambiente. Los reactivos de tinción de Gram
son solo para uso “In Vitro”. Consulte las Hojas de datos de seguridad de los materiales para conocer la
Información de salud y seguridad. Todos los reactivos son estables y no deben formar precipitados de aplicarse
los parámetros de almacenamiento habituales. Estas tinciones no deben diluirse; están listas para su uso.
Todos los colorantes utilizados en estas formulaciones están certificados por la Biological Stain Commission.
Comentarios técnicos
De ocurrir una precipitación en la solución de Violeta Cristal, colóquela en una estufa (aproximadamente
35 °C) y agite. La solución de Yodo de Gram puede demostrar una disminución en la potencia con el tiempo.
La muestra obtenida es estable indefinidamente. Cuando se realizan tinciones de Gram con un medio de
cultivo, uno debe considerar la edad del cultivo. Esto puede afectar el grado de tinción positiva de Gram.
Los tratamientos antibacterianos también pueden afectar la tinción positiva de Gram. Se debe tener cuidado
porque lo más probable es que se produzca una decoloración en exceso.
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