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Reporte Epidemiológico Cochinilla rosada del hibisco No. 002 Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria SINAVEF, Universidad Autónoma de San Luis Potosí UASLP Sierra Leona No. 550 Lomas II Sección, San Luis Potosí, S.L.P., 01 (444) 825 60 45 [email protected] San Luis Potosí, S.L.P. Mayo de 2011 Introducción La CRH actualmente se encuentra presente en 67 países, incluyendo México donde tiene un estatus de distribución restringida (CABI, 2011, SAGARPA, 2007) (Figura 1). Está ampliamente distribuida en regiones tropicales y semitropicales del mundo, aunque también se ha llegado a localizar en zonas templadas. En México, las condiciones ambientales de preferencia para el establecimiento del insecto abarcan una extensión de 57 millones de hectáreas y corresponden a las selvas cálido secas y cálido húmedas, por lo que el país es altamente vulnerable a la expansión del insecto, sobre todo en la temporada de huracanes, ya que el viento puede ser un medio de transporte de la cochinilla, ya sea de países cercanos a México, o de los sitios del interior del país (Figura 2). Se cree que la Cochinilla Rosada del Hibisco (CRH) Maconellicoccus hirsutus (Green) es originaria del sur de Asia y/o Australia, fue descrita originalmente en la India en 1908 como Phenecoccus hirsutus. Presenta una amplia distribución mundial, ubicándose en las zonas tropicales y subtropicales. Se informa en 23 países de Asia y el Medio Oriente, en 19 países del África, y en 6, entre Australia e Islas del Pacífico (Williams, 1996). A mediados de la década de 1990 invadió las islas del Caribe y entre 1999 a 2000 se detectó en Belice, México (Mexicali), EE.UU. (California y Florida) y Venezuela (Cermeli et al, 2002). El mecanismo de infestación se presenta durante la alimentación del insecto, ya que su aparato bucal penetra y succiona la savia de la planta. La CRH puede atacar cualquier parte de las plantas, aunque prefiere áreas en crecimiento como brotes foliares y florales, frutos, pero en infestaciones severas pude atacar ramas, hojas maduras y troncos. Los daños se observan en las hojas que se tornan arrugadas y torcidas, las flores se secan y los frutos se quedan pequeños y, al igual que las hojas, pueden llegar a caerse (Francis y Ellis, 1995). La CRH tiene una simbiosis con varias especies de hormigas, las cuales protegen a las colonias de sus enemigos naturales reduciendo la efectividad de éstos (Mani, 1989). 1 Figura 1. Distribución mundial de Cochinilla Rosada del Hibisco (CRH) Maconellicoccus hirsutus (Green) Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria 2 Reporte Epidemiológico En México. Hospedantes Esta plaga se detectó por primera vez en 1999, en Mexicali, Baja California y hasta mayo de 2011, se ha reportado, como parte del programa de vigilancia, que se encuentra presente en 38 municipios de diez estados; 8 de ellos situados en las costas del océano pacífico (Baja California, Sinaloa, Nayarit, Jalisco, Colima, Guerrero, Oaxaca y Chiapas), mientras que en la parte del Golfo de México y Mar Caribe se localiza en Yucatán y Quintana Roo (Cuadro 1 y Figura 2). Actualmente no existe un consenso general sobre la cantidad de hospederos de la cochinilla debido a la condición polífaga de la especie. En la literatura las cifras varían entre 100 y 360 especies de plantas, tanto silvestres como cultivadas, que pueden ser hospederas (CABI, 2010; Scalenet, 2010; González, 2009; Mayerdirk, 2003; Ben-Dov, 1994; Ghose, 1972). Cultivos hospedantes en México Cuadro 1. Detecciones realizadas de CRH de junio de 2010 al 6 En México, se han determinado 40 especies de plantas como hospedantes de la CRH (Cuevas-Arias, 2005); sin embargo, la DGSV ha identificado 23 cultivos de importancia divididos de acuerdo con el nivel de preferencia del insecto para establecerse en ellos (SAGARPA, 2009a) (Cuadro 2). Estos cultivos abarcaban una superficie cultivada en el año 2008 de cerca de 2.7 millones de ha, que produjeron alrededor de 29.4 millones de toneladas de productos con un valor estimado en el mercado de 58 mil millones de pesos; de ahí su importancia para considerar a esta plaga como de importancia nacional (SIAP, 2008;) (Figura 3) de mayo de 2011 Fecha Estado Municipio Hospedante (s) 25/06/2010 25/06/2010 25/06/2010 25/06/2010 25/06/2010 02/09/2010 02/09/2010 04/09/2010 22/11/2010 22/11/2010 18/12/2010 18/12/2010 29/01/2011 14/02/2011 Guerrero Guerrero Guerrero Guerrero Guerrero Yucatán Oaxaca Yucatán Jalisco Jalisco Quintana Roo Quintana Roo Yucatán Yucatán Atoyac de Alvarez Coyuca de Benítez José Azueta San Marcos Técpan de Galeana Mérida Juchitán de Zaragoza Mérida La Huerta Casimiro Castillo Solidaridad Felipe Carrillo Puerto Mérida Mérida 15/02/2011 Yucatán Mérida 15/02/2011 Yucatán Mérida 15/02/2011 Yucatán Mérida 15/02/2011 Yucatán Mérida 15/02/2011 Yucatán Mérida 04/03/2011 04/03/2011 04/03/2011 04/03/2011 04/03/2011 04/03/2011 04/03/2011 04/03/2011 04/03/2011 14/03/2011 Yucatán Yucatán Yucatán Yucatán Yucatán Yucatán Yucatán Yucatán Yucatán Yucatán Mérida Mérida Mérida Mérida Mérida Mérida Mérida Mérida Mérida Mérida 14/03/2011 Yucatán Mérida 15/03/2011 Yucatán Mérida 17/03/2011 Yucatán Mérida 17/03/2011 17/03/2011 Yucatán Yucatán Mérida Mérida 18/03/2011 Yucatán Mérida 24/03/2011 Yucatán Mérida Tulipan Tulipan Tulipan Tulipan Tulipan Guanabana Tulipan Tulipan Tulipan Tulipan Tulipan Tulipan Tulipan Varios Cítricos, guanabana, mamey, aguacate, otros Guanabana, cítricos, limonaria, heliconias, toronja Tulipán, saramuyo, almendro, otros Tulipán, guanabana, cítricos Limón, naranja dulce, bugambilia, pino, tulipán Varios Erytrina Cuch Cuch, Tzalam, malezas Malezas Maleza, Cuch, Wuaxin Tulipan, Monedita Malezas Tulipan Plantas de ornato, frutales Plantas de ornato, pino, almendra Plantas de ornato, frutales Naranja agría, cocinera, aguacate, limonaría, limón mexicano Galán de noche Algarrobo Saramullo, caimito, plantas de ornato, naranja agría, limón mexicano, mango Pino, naranja agría, bugambilia, naranja dulce, mango, algarrobo Cochinilla Rosada del Hibisco-002 Recientemente, se ha estudiado la distribución de los hospedantes de la CRH en el Estado de Nayarit, en donde se han determinado 103 especies pertenecientes a 27 familias de plantas. Los hospedantes en la región de Bahía de Banderas (Nayarit y Jalisco), en los que la CRH desarrolló altas infestaciones al inicio de su establecimiento, fueron el obelisco (Hibiscusrosa-sinensis), la teca (Tectona grandis, la guanábana (Annona muricata), la guayaba (Psidium guajava), la yaca (Artocarpus heterophyllus); y en áreas marginales en conchas (Acacia spp), parotas (Enterolobium spp), rabos de iguana, jarretaderas (Acacia spp) y majahuas (Hibiscus pernambucensis). Mientras que con niveles de infestación de bajos a medios, se encontraron el mango (Mangifera indica) y el carambolo (Averrhoa carambola) (González, 2010). 3 Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria Figura 2. Estatus actual de la Cochinilla Rosada del Hibisco (CRH) Maconellicoccus hirsutus (Green). 4 Reporte Epidemiológico Cochinilla Rosada del Hibisco-002 Cuadro 2. Hospederos de la CRH bajo control fitosanitario. Altamente preferente nombre científico nombre común órgano vegetal afectado con riesgo para su movilización. Hibiscus pernambucensis Majahua Planta Annona muricata Guanábana Fruto y Planta Hibiscusrosa-sinensis Obelisco, Tulipán Planta Tectona grandis Teca Planta y Tronco con corteza Enterolobium cyclocarpum Parotao Huanacaxtle Planta y Fruto Artocarpus heterophyllus Yaca Fruto Averrhoa carambola Carambolo Fruto Hibiscus sabdariffa Jamaica Planta y Flores frescas Annona cherimola. Chirimoya o Anona Fruto Psidium guajava Guayaba Fruto y Planta Medianamente preferente Mangifera indica Mango Fruto, Planta y Tronco con corteza Spondias dulcis= S. cytherea Ciruelo agrio Fruto y Planta Spondias mombin Ciruela amarilla, jobo Fruto y Planta Spondias purpurea var. Lutea Ciruelo, jocote Fruto y Planta Phaseolus vulgaris Frijol Verdura Fruto Citrus latifolia Limón persa o sin semilla Fruto y Planta Citrus sinensis Naranjo dulce Fruto y Planta Poco preferentes Amaranthus retroflexus Alegría Planta Byrsonima crassifolia Nanche o nance Fruto Citrus aurantiifolia Limón agrio Fruto y Planta Fuente: SAGARPA, 2009a 5 Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria Figura 3. Distribución en México de hospedantes potenciales de la CRH, Maconellicoccus hirsutus (Green). Condiciones climáticas relativa de entre el 77 y 84% para que la cochinilla complete su ciclo biológico (Martínez, 2007). Los registros históricos de detecciones de CRH demuestran que existe un patrón climático en los positivos encontrados, ya que se han localizado sobre climas intertropicales sobretodo los catalogados como Aw, y específicamente sobre los Aw0 y el Aw1 que son las más secos de estos climas, aunque en Chiapas se ha localizado en climas Am(w) con lluvias abundantes todo el año (Figura 4). En este sentido la temperatura y la humedad son factores pueden determinar la duración del ciclo biológico de la cochinilla. En promedio se necesitan entre 20 y 32 grados centígrados y una humedad Las predicciones del Servicio Meteorológico Nacional señalan que en junio las temperaturas estarán en promedio entre 25 y 30 grados centígrados en ambos litorales, mientras que la precipitación se espera que esté por encima de los 60 mm en esas mismas zonas, con humedad relativa de entre 50 y 75% (Figura 4 y 5). Estas condiciones constituyen un factor de riesgo para la proliferación de la plaga, sobre todo a partir de que se presenten las primeras lluvias de consideración (Figura 5). 6 Reporte Epidemiológico Figura 4. Distribución de CRH por tipo de clima 7 Cochinilla Rosada del Hibisco-002 Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria Figura 5. Condiciones climáticas. 8 Reporte Epidemiológico Cochinilla Rosada del Hibisco-002 Mecanismos de movimiento o Acciones de control Existen una serie de enemigos naturales de la CRH; diferendispersión La dispersión de la CRH se puede dar por diversos medios y en diferentes etapas de su desarrollo, pero resulta de mayor cuidado cuando está en etapa de huevecillo y ninfal. En la etapa de huevecillo la cera que los cubre se adhiere fácilmente a personas, aves o animales permitiendo su transporte, lo que se conoce como dispersión pasiva. De igual manera, durante su primer instar ninfal, conocido como migrantes, caminante o rastreadores, la cochinilla puede desplazarse por sus propios medios o ser asistidas por las hormigas en una relación simbiótica, por lo que la presencia de hormigas es un posible indicador de la presencia de la plaga (USDA, 2002, Martínez, 2007). Las lluvias y el viento son elementos que influyen de igual manera en el transporte, sobre todo durante la temporada de huracanes ya que las velocidades y la rotación continua de los vientos favorecen el traslado de insectos, principalmente aquellos que no están sujetos a las superficies de las plantas o que pueden ser movilizados a través de hojas, flores o frutos. Se ha establecido que los huevecillos, las ninfas y los adultos tienen la potencialidad de ser transportados por corrientes de aire en la atmosfera superior a más de 160 km, por lo que estos fenómenos deben considerarse como importantes vías de diseminación (Martínez, 2007, NAPPO, 2006, EPPO, 2005). De acuerdo al modelo Hysplit, los vientos en la costa del Pacífico, durante abril y mayo, tuvieron una dirección predominantemente hacia el Sureste, no así en la región de la Península de Yucatán en donde su desplazamiento fue con dirección noreste, por lo que la dispersión hacia nuevas zonas libres de la plaga fue limitada (Figura 6). Las áreas urbanas es donde más se ha propagado el insecto, sobre todo por la agricultura de traspatio y por la presencia de hospederos que son utilizados como plantas de ornato como obeliscos, majahuas, parotas o guanábanos. En este sentido, la transportación de material vegetal infestado, sin regularización o de manera clandestina, es quizá el mecanismo de dispersión más importante por la cantidad de productos que puede movilizar, por ello las acciones cuarentenarias y la vigilancia en puertos y carreteras constituyen una de las principales barreras para evitar la propagación de la cochinilla (Martínez, 2007). 9 tes autores listan cerca de 24 parasitoides representados por diversos géneros siendo el más recurrente Anagyrus con 9 especies, 41 depredadores en su mayoría coleópteros coccinélidos, algunos neurópteros, además de un entomopatógeno (Meyerdirk, 2000). Desde finales de 2004 y principios de 2005 el programa de manejo integrado de CRH ha teniendo como base el control biológico, mediante la liberación de la avispita Anagyrus kamali y del depredador Cryptolaemus montrouzieri. Este programa se ha aplicado en estados como Baja California (Mexicali), Chiapas (Arriaga) y Sinaloa (Escuinapa), hasta julio de 2009, las infestaciones de CRH fueron de un nivel medio (11 a 12.2 CRH/ brote) y restringidas a áreas urbanas. En los dos últimos estados, estos niveles medios de infestación, por haber sido nuevos brotes, posiblemente requieran de más tiempo para que el control biológico se establezca y tenga un mayor impacto en la densidad poblacional de la CRH. Recientemente se han iniciado el programa de liberación de A. kamali en otros estados: Baja California, Sinaloa, Nayarit, Jalisco, Colima, Guerrero, Oaxaca, Chiapas, Quintana Roo y Yucatán (Figura 7). Después de la llegada de la CRH en el año 2004 a los municipios de Nayarit y Jalisco, se implementó un Plan Regional Emergente contra la CRH y se creó una red de trampeo y monitoreo que abarca zonas urbanas, marginales y agrícolas. Actualmente, 23 municipios de seis estados se encuentran bajo control fitosanitario y siete estados han sido declarados con estatus de protección con el fin de evitar la propagación del insectov Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria Figura 6. Modelo Hysplit 10 Reporte Epidemiológico Figura 7. Sitios de liberación de Anagyrus kamali 11 Cochinilla Rosada del Hibisco-002 Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria Riesgo De acuerdo con el modelo Maxent, que permite observar las condiciones climáticas análogas a donde se localizan los puntos positivos de la cochinilla y el modelo de grados días que muestra las zonas donde las condiciones de temperatura permiten el desarrollo generacional del insecto, se observa que las zonas costeras ya reúnen las condiciones para el establecimiento de la CRH. Maxent utiliza la probabilidad para localizar zonas que cumplen condiciones climáticas parecidas a las encontradas donde hay detecciones positivas a través de la correlación de 19 variables climáticas (Figura 8); mientras que los grados días de desarrollo muestra el numero de generaciones que Figura 8. Modelo Hysplit 12 se pueden desarrollar en el país de acuerdo con parámetros de temperatura mínima y máxima de confort de la plaga (Figura 9). En este sentido, el ciclo biológico de la cochinilla muestra que para huevos son necesarios 101.7 Grados Día de Desarrollo (GDD), 230 GDD para el desarrollo ninfal de las hembras y 245.1 GDD para el de los machos. Para el desarrollo completo de las hembras y machos se requieren de 347.2 y 363.6 GDD, respectivamente. Con estas características y tomando una temperatura mínima base de 17.5 grados centígrados, es posible que se puedan llegar a desarrollar más de 10 generaciones en un año en el país, necesitando, bajo condiciones idóneas, entre 24 y 26 días para completar su ciclo biológico (Meyerdirk et al. 1998). Reporte Epidemiológico Cochinilla Rosada del Hibisco-002 Figura 9. Grados días de desarrollo para CRH Con estos datos, aunados a las condiciones pronosticadas para junio, es de notar que es de especial atención la costa del Pacífico, desde Chiapas hasta Sonora, sobre todo porque es en esta vertiente donde se han detectado los mayores brotes de cochinilla y se encuentran más áreas en contingencia. También representa una zona de riesgo la costa del Mar Caribe y el Golfo de México, principalmente la parte que va desde Yucatán hasta Campeche y una pequeña parte de Veracruz ya que ahí la presencia de hospederos potenciales aunado a las condiciones físicas y climáticas pueden favorecer el establecimiento del insecto (Figura 10). bién la sequía limita el ciclo reproductivo de la plaga. Sin embargo, la probable llegada de huracanes y la humedad que generan, asi como los vientos que producen, podrían detonar la dispersión de la CRH, a más áreas, por lo que es importante considerar el incrementar las acciones de vigilancia con el propósito de monitorear el desplazamiento y ejecutar las acciones de control. Los estados en fase de contingencia son: Baja California, Nayarit, Jalisco, Colima, Michoacán y Guerrero, Sinaloa, Oaxaca y Chiapas, la costa de Quintana Roo y la costa de Yucatán, mientras que con riesgo alto se encuentran las zonas libres de la cochinilla que reúnan condiciones para el establecimiento del insecto y están cercanas a zonas infestadas por la potencialidad de ser transportadas por el viento. El estrés en el que se encuentran actualmente los hospedantes, debido a las condiciones de sequía por las que atraviesa la gran mayoría del país, los hacen más susceptibles al ataque de plagas y enfermedades, pero tam- 13 Sistema Nacional de Vigilancia Epidemiológica Fitosanitaria Figura 10. Riesgo fitosanitario para CRH en el mes de junio 14 Reporte Epidemiológico Bibliografía CABI, 2011. Crop Protection Compendium. Maconellicoccus hirsutus. [online] disponible en http://www.cabi.org/cpc /?compid=1&dsid=40171&loadmodule=datasheet&pag e=868&site=161 [mayo de 2011] Cermeli, M., P. Morales V, F. Godoy, R. Romero, y O. Cárdenas. 2002. Presencia de la cochinilla rosada de la cayena Maconellicoccus hirsutus (Green) (Hemíptera: Pseudococcidae) en Venezuela. Entomotropica 17: 103–105. Cuevas-Arias, C. T. 2005. Las especies hospederas de Maconellioccus hirsutus “cochinilla rosada del hibisco” en Bahía de Banderas, Nayarit. Memorias XIII Simposio Nacional de Parasitología Forestal. CONAFOR, SEMARNAT, SME, INIFAP. Noviembre 25-26, Morelia, Mich. Goolsby, J. A., A. A. Kirk, and D. E. Meyerdirk. 2002. Seasonal phenology and natural enemies of Maconellicoccus hirsutus (Hemiptera: Pseudococcidae) in Australia. Florida Entomol. 85: 494–498. EPPO. 2005. Maconellicoccus hirsutus. Data sheets on quarantine pests. Bulletin EPPO No. 35, pp 413-415. González, H. 2010. Ficha técnica Maconellicoccus hirsutus (Green). Inédito Francis-Ellis D. 1995. Paper on background and status of mealybug Maconellicoccus hirsutus in Granada. Ministry of Agriculture, Granada. 7 pp. Martínez, M. A. 2007. La Cochinilla Rosada del Hibisco, Maconellicoccus hirsutus (Green), un peligro potencial para la agricultura cubana. Protección Vegetal. Vol. 22 No. 3, pp. 166-182. Meyerdirk, D.; Warkenin, R.; Attavian, B.;Gersabeck, E.; Francia, A.; Adams, M. y Francis, E. 1998: Biological Control of Pink Hibiscus Mealybug. Project Manual. USDA. Meyerdirk, D.; Warkenin, R.; Attavian, B.;Gersabeck, E.; Francia, A.; Adams, M. y Francis, E. 2000. Manual del Proyecto para el Control Biológico de la Cochinilla Rosada del Hibisco. USDA-IICA. SAGARPA. 2007. Acuerdo por el que se instrumenta el Dispositivo Nacional de Emergencia en los términos del artículo 46 de Ley Federal de Sanidad Vegetal, con el objeto de controlar y mitigar el riesgo de dispersión de la cochinilla rosada del hibisco (Maconellicoccus hirsu- 15 Cochinilla Rosada del Hibisco-002 tus) en México. Secretaría de Agricultura, Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación (SAGARPA). DIARIO OFICIAL DE LA FEDERACIÓN, Primera Sección, pp: 72-80. Diciembre 31 de 2007. Williams, D.J. 1996. A brief account of the hibiscus mealybug Maconellicoccus hirsutus (Hemiptera: Pseudococcidae), a pest of agriculture and horticulture, with descriptions of two related species from southern Asia. Bull. Entomol. Research. 86: 617-