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COPROCULTIVO
El coprocultivo es un estudio clínico que
pertenece al área de bacteriología y que consiste
en hacer un cultivo de heces fecales de los
pacientes que presenten alguna infección en el
tracto gastrointestinal.
 Las principal utilidad que tiene este estudio, es la
identificación de enterobacterias ( E. Coli, Vibrio
cholerae, shigella, salmonella, campylobacter
jejuni, Yersinia enterolitica), que son siempre las
principales causantes de una enfermedad
gastrointestinal.

TOMA DE MUESTRA.
La muestra del coprocultivo será tomada en un
vaso especial para recolectar muestra que el
paciente puede conseguir en la farmacia, es un
frasco de boca ancha que debe de estar estéril.
 La muestra se tomara en el momento en el que el
paciente este defecando, se colocara el vaso
debajo del ano y se depositara una muestra de
heces del tamaño aproximado de una nuez, (5 a
10 ml en caso de que el paciente defeque liquido).

No se requiere ayuno ni dieta especial
 No se debe de estar ingiriendo antibióticos
 En adultos mayores y niños la toma se muestra
con un hisopo.
 Enviar al alboratorio en no más de dos horas
para su procesamiento, o refrigerar, por no más
de 4 horas

La flora intestinal es numerosa. Esta integrada
principalmente
por
bacterias
entéricas,
clostridiales, levaduras, lactobacilos y otras.
Frecuentemente pueden originarse desequilibrios
por la presencia de microorganismos patógenos.
 El cultivo de las heces es de gran ayuda en la
determinación del agente etiológico de la diarrea,
asi como el estado de portador (Salmonella, Shigella
y Arizona).
 La identificación final puede realizarse por métodos
bioquímicos y serológicos.
 El coprocultivo se fundamenta en el equilibrio del
aparato gastrointestinal (diarrea, moco y sangre en
las
heces)
ocasionado
por
las
bacterias
mencionadas.

MEDIOS
Medios para aislamiento
-Agar eosina y azul de metileno (EMB)
-Agar de Salmonella y Shigella (S.S)
-Agar Mac Conkey
-Agar verde brillante (VBA)

S.S.
McConkey
EMB
Verde
Brillante
Medios de enriquecimiento
-Caldo selenito
-Caldo tetrationato

tetrationato
selenito
Medios para identificación (pruebas
bioquímicas)
-Kligler
-Caldo urea
-Descarboxilación de la lisina (LIA)
-Citrato de Simmons
Kligler
Caldo
urea
LIA
Citrato de
Simmons
Identificación serológica
 Antisueros para identificar escheriachia coli
(polivalente I, II, III)
 Antisueros para identificar salmonella del
subgrupo I
 Antisuero para identificar shigellas (A, B, C y D)
 Antisuero para identificar vibrio cholerae

DESARROLLO
 Inocular directamente la muestra en una serie de
las placas de agar proporcionadas. Incubar a 37ºC
de 24 a 48 horas.
 Inocular la muestra en un tubo con caldo de
enriquecimiento. Incubar a 37ºC durante 18 a 24
horas. Subcultivar una serie de placas de agar.
 Observar las características más relevantes de la
morfología colonial en cada uno de los medios
inoculados, a fin de seleccionar el crecimiento del
posible patógeno.
 Describir la morfología colonial del posible
patógeno y realizar la inoculación a las pruebas
bioquímicas.

Materia
Agua peptonada
TCBS
Seleccionar
colonias
amarillas y
sembrar en TSI,
LIA, MIO,
caldo peptonado
y arginina
Reacción de
aglutinación con
suero anti Vibrio
cholerae O1
Campy-Bap
Seleccionar
colonias y
sembrar en TSI,
Hacer pruebas
de acetato de
plomo y de
hidrólisis de
hipurato
McConkey o
EMB
Seleccionar
colonias y
sembrar TSI,
LIA y MIO
Reacciones de
aglutinación con
sueros anti A, B,
C y D de Shigella
Campylobacter
fecal
Caldo
tetrationato
Tinción de
Kinyoun
Coproparistoscópico
Sulfito de bismuto,
SS ó Verde Brillante
Seleccionar
colonias y
sembrar en
TSI, LIA y
MIO
Escherichia coli
Tipificar con
antisueros
Yersinia
Pruebas
rápidas
Tipificación de
Salmonella con
sueros anti A, B,
C1, C2, D y E
Identificación de
Coccidias
Detección de
Rotavirus
Identificación
de quistes de
protozoarios ,
huevecillos y
larvas de
helmintos
AGAR EOSINA Y AZUL DE METILENO



El agar Eosina y azul de metileno es un medio
utilizado para aislamiento y diferenciación de vacilos
entéricos Gram negativos.
Diferencia colonias fermentadoras y no fermentadoras
de lactosa
Permite diferenciar al grupo Salmonella y otros
organismos lactosa negativos de organismos
coliformes
CONTROL DE ACTIVIDAD
MICROORGANISMO
Escherichia coli
Enterococcus faecalis
Salmonella typhimurium
Shigella flexneri
Staphylococcus aureus
Candida albicans
RESULTADO
Colonias azul a
moradas, con brillo
metálico azul verdoso
Inhibición parcial
Colonias incoloras,
transparentes
Colonias incoloras,
transparentes
Crecimiento
parcialmente inhibido o
colonias puntiformes (1)
Colonias plumosas, rosa
pálido atípicas
AGAR SALMONELLA Y SHIGELLA

Las bacterias Gram positivas, algunas especies
de Proteus y bacilos coliformes son inhibidos por
las sales biliares, citrato de sodio y verde
brillante. La diferenciación de los
microorganismos se logra por la lactosa.
CONTROL DE ACTIVIDAD
MICROORGANISMO
Escherichia coli
Salmonella typhimurium
Shigella flexneri
Salmonella typhi
Staphylococcus aureus
Enterococcus faecalis
RESULTADO
Marcada inhibición o
colonias rosa intenso con
halo de precipitación
Colonias medianas,
incoloras transparentes
con centro negro
Colonias pequeñas,
incoloras transparentes
Colonias pequeñas,
incoloras transparentes
con o sin centro negro
Crecimiento inhibido
Crecimiento inhibido o
colonias puntiformes, rosa
opacas
AGAR VERDE BRILLANTE
La selectividad de este medio, se basa en la
concentración del verde brillante, que inhibe
bacterias Gram positivas y la mayoría de los
bacilos Gram negativos, permitiendo el empleo de
inóculos moderadamente abundantes
 La lactosa y la sacarosa permiten diferenciar la
flora acompañante lactosa positiva y lactosa
negativa-sacarosa positiva

CONTROL DE ACTIVIDAD
MICROORGANISMO
Escherichia coli
Salmonella typhimurium
Salmonella enteritidis
Proteus vulgaris
RESULTADO
Crecimiento inhibido
Buen crecimiento,
colonias rosa pálido con
halo rojo brillante
Buen crecimiento,
colonias rosa pálido con
halo brillante
Crecimiento inhibido
AGAR CITRATO DE SIMMONS
Para identificación biquímica de Enterobacterias
en base a la utilización del citrato como única
fuente de carbono.
 El cloruro de sodio mantiene el equilibrio
osmótico del medio. Cuando las bacterias utilizan
el citrato, el medio se alcaliniza y cambia el color
inicial verde.

CONTROL DE ACTIVIDAD
MICROORGANISMO
Escherichia coli
Enterobacter cloacae
Klebsiella pneumoniae
Salmonella typhi
Serratia marcescens
Shigella flexneri
RESULTADO
Negativo
Positivo
Positivo
Negativo
Positivo
Negativo
AGAR DE HIERRO Y TRIPLE AZUCAR
(AGAR TSI)
Para la diferenciación de enterobacterias, en base
a la fermentación de glucosa, lactosa y sacarosa,
así como a su capacidad de producir ácido
sulfhídrico, lo cual permite el reconocimiento y
exclusión del género Proteus.
 La fermentación de lactosa y sacarosa se observa
en la superficie y la de glucosa en el fondo del
medio con formación de ácido, se manifiesta por
cambio de color del Rojo de fenol que vira de
anaranjado rojizo a amarillo. La combinación de
citrato férrico de amonio y tiosulfato de amonio
permite la detección de sulfuro de hidrógeno por
la formación de un precipitado negro.

CALDO TETRATIONATO

El tetrationato formado por la adición de yodoyodurado junto con el tiosulfato excedente
inhiben a coliformes. Las bacterias reductoras de
tetrationato como Salmonella y Proteus pueden
multiplicarse con más facilidad. Las sales biliares
inhiben el desarrollo de microorganismos Gram
positivos.
CONTROL DE ACTIVIDAD
MICROORGANISMO
Escherichia coli
Salmonella typhimurium
RESULTADO
CRECIMIENTO EN
SUBCULTIVOS
A las 6 horas
Algunas colonias
moderado
A las 24 horas
inhibido
Bueno
CALDO UREA

Se emplea para la diferenciación de bacterias por
medio de la utilización de la urea como única
fuente de carbono.
CONTROL DE ACTIVIDAD
MICROORGANISMO
Escherichia coli
Salmonella typhimurium
Proteus vulgaris
Proteus mirabilis
Shigella flexneri
Enterobacter aerogenes
CRECIMIENTO
(hidrolisis )
+
+
-
MEDIO MIO
Para la diferenciación de Enterobacterias,
basándose en las pruebas de movilidad, ornitina
descarboxilasa y la producción de indol.
 Las peptonas proporcionan las fuentes de
nitrógeno y carbono, el extracto de levadura
proporciona vitaminas y la dextrosa es la fuente
de energía.

CONTROL DE ACTIVIDAD
MICROORGANISMO
Ornitina
RESULTADO
Escherichia coli
Klebsiella pneumoniae
Proteus mirabilis
Enterobacter aerogenes
Movilidad
+
+
+
Indol
+
-
+
+
+
MICROORGANISMOS
PATÓGENOS CAUSANTES DE
ENFERMEDADES ENTÉRICAS
ESCHERICHIA COLI.
Características:
 Especie recuperada con mayor frecuencia en el
laboratorio
 Incriminada en enfermedades infecciosas que
afectan casi cualquier tejido del cuerpo
 Microorganismo involucrado con mayor
frecuencia en sepsis por gramnegativos y en el
shock inducido por endotoxinas

VIBRIO CHOLERAE
Es el agente etiológico del cólera epidémico y
endémico en los seres humanos .
 Es el prototipo de los síndromes diarreicos en los
cuales la enfermedad no es causada por invasión
tisular de los microorganismos sino a través de
la producción de toxinas que afectan el
intercambio intraintestinal normal de agua y
electrolitos.

SHIGELLA
Carácterísticas:
 Son no fermentadoras de la lactosa
 Tienden a ser bioquímicamente inertes
 En casos típicos, producen gas a partir de hidratos de
carbono,con excepción de ciertos biogrupos de S.
flexneri que son aerógenos
 Pocas cepas de S. sonnei pueden fermentar
lentamente la lactosa(2%), y la scaros(1%) y la
mayoría de las cepas pueden descarboxilar ornitina

CAMPYLBACTER JEJUNI

Es el patógeno humano más importantes entre
las campilobacterias. La enteritis con este
microorganismo se caracteriza por dolor
abdominal, cólico, diarrea sanguinolenta,
escalofríos y fiebre
YERSINIA ENTEROCOLÍTICA

Aunque las especies de Yersinia califican desde el
punto de vista bioquímico para la inclusión en las
enterobacterias, las células parecen pequeñas y
cocobacilares en los frotis teñidos con Gram y
pueden ser pequeñas y puntiformes luego de 24
hrs de incubación en agar MacConkey.
SALMONELLA
Tienen antígenos sománticos (O) que son
lipopolisacáridos y antígenos flagelares (H) que
son proteínas.
 S. typhi tiene también un antígeno capsular o de
virulencia (Vi)
 Sulen ser tanto lactosa negativas como sacarosa
negativas.

BIBLIOGRAFIA
MANUAL DE MICROBIOLOGIA MÉDICA.
QFB. GARCIA ARACELI. UNAM 9 SEMESTRE.
 MICROBIOS Y ENFERMEDADES. PEREZ
TAMAYO. LA CIENCIA/169 PARA TODOS. 200
MEXICO.
 MANUAL DE BACTERIOLOGIA CLINICA.
GERARDO CRUZ JIMENEZ. UNAM. MEXICO
1994. PP. 9-12.

INTEGRANTES
Basurto Cervantes Debanhi
 Garcia Lezama Victor Manuel
 Ibarra Ramirez Sergio
 Lopez Teofilo Alejandra
 Mayorga Ramos Cynthia Paulina
 Mondragón Ledezma Mónica
 Rivas Serrano Ana Karene
 Ramirez Cano Itzel Guadalupe
