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ANÁLISIS CLÍNICOS GENERALES
3 BACTERIOLOGÍA
CARACTERÍSTICAS GENERALES Y CLASIFICACIÓN DE LAS
BACTERIAS
Definición de bacterias: Las bacterias son diminutos organismos microscópicos,
vegetales y unicelulares que difieren de las plantas superiores por su carencia de
clorofila y que se reproducen por fisión binaria. Se encuentran en gran profusión en
el suelo, el aire, el agua y la leche, en la superficie de las frutas y los vegetales y en
diversas partes del cuerpo, tales como el conducto alimenticio, la piel, etc.
Se ha clasificado a las bacterias de la siguiente manera:
1. Autotróficas que viven sobre materia inorgánica
2. Heterotróficas que viven sobre la materia orgánica
(a) Parásitas, aquellas que requieren materia orgánica viva para su
desarrollo. Entre estas quedan incluidas las patógenas, las cuales
tienen una acción dañina sobre el animal o vegetal (huésped) en el
que viven.
(b) Saprofitas, las que viven sobre materia orgánica muerta.
Agrupamiento morfológico general de las bacterias: Por su forma las bacterias
se clasifican en tres grupos principales:
a) bacilos u organismos en forma de bastón
b) cocos, en forma redonda o esférica
c) espirilos, organismos en forma de coma o espiral móviles.
Bacterias gram-positivas esporulantes anaerobias estrictas
Género Clostridium.
Bacterias anaerobias estrictas, pueden ser patógenas por:
Producción de toxinas (C. tetanii, C. botulinum)
Destrucción de tejidos (C. perfringens)
Son los agentes causantes de la «putrefacción de la carne» (descomposición
anaerobia de las proteínas).
Importancia de las bacterias del género Clostridium en la tecnología de alimentos.
Agentes responsables de intoxicaciones alimentarias agudas
C. botulinum: intoxicación por neurotoxina termosensible
C. perfringens: intoxicación por toxina acumulada debido a tratamiento defectuoso
de alimentos.
Q.F.B. Dinora Bernal Iribe
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ANÁLISIS CLÍNICOS GENERALES
Bacterias Gram-negativas anaerobias facultativas
1.- Características principales del grupo
Bacilos cortos y cocobacilos Gram-negativos
Presentan, por lo general, muy pocos requerimientos nutricionales y son capaces de
sobrevivir en medios relativamente simples
Anaerobios facultativos
Hábitats: comprende bacterias
Bacterias intestinales: grupo entérico:
Bacterias de agua o ambientes exteriores: bacterias anaerobias facultativas capaces
de colonizar ambientes intestinales en situaciones patológicas.
2.- Subdivisión del grupo entérico
Grupo entérico:
Bacterias intestinales: Grupo de Escherichia-Salmonella-Shigella
Habitantes habituales comensales de los intestinos de animales superiores, reptiles,
pájaros y, ocasionalmente, insectos; aunque no son las bacterias predominantes en
estos hábitats.
Se incluyen especies intestinales y patógenas responsables de los brotes
epidémicos transmitidos a través de los alimentos
Escherichia coli
Habitante habitual en individuos sanos, no patógena aunque puede haber cepas
que causan problemas intestinales serios (mortalidad infantil)
Salmonella
Vinculada a procesos patológicos
Tres divisiones dependiendo de su relación con los animales superiores:
Bacterias que infectan sólo a humanos (S. typhi y S. paratyphi)
Bacterias adaptadas a un huésped animal (S. gallinarum, S. abortus-equi, S.
abortus-ovis, S. cholerasuis)
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Bacterias que no presentan preferencia de huésped y son patógenas tanto para
hombres como para animales.
Shigella
vinculadas a procesos patológicos intestinales serias (disentería bacilar).
Bacterias no-entéricas relacionadas con el grupo entérico: bacterias cuyo hábitat
natural es el agua o el suelo pero que ocasionalmente pueden encontrarse en
ambientes intestinales.
Microorganismos Gram-negativos aerobios
1.- Características generales del grupo de Pseudomonas
Las bacterias del grupo al que pertenecen Pseudomonas está constituido por
microorganismos Gram-negativos, siempre móviles con flagelación polar. Se
encuentran normalmente en el suelo, aunque pueden ser patógenos oportunistas en
animales (Ps. aeruginosa) y patógenos de plantas (Ps. syringae).
2.- Grupos de bacterias del género Pseudomonas
El grupo de bacterias relacionadas con el género Pseudomonas es muy amplio y
comprende especies patógenas para humanos Pseudomonas cepacia (patógeno
oportunista que puede causar infecciones muy serias con alta tasa de mortalidad,
especialmente han aumentado los datos de infecciones producidas en los pulmones
de pacientes con fibrosis cística) y Ps. aeruginosa. Son capaces de oxidar
alcoholes y tienen importancia industrial en la fabricación de vinagre.
Las patologías asociadas a Pseudomonas suelen presentarse en animales
afectados por algún tipo de disminución, permanente o transitoria, del sistema de
defensa inmune. Por esto, se denominan patógenos oportunistas. El tratamiento de
estas infecciones suele ser difícil debido a la alta resistencia de estas bacterias a la
mayoría de los antibióticos usados normalmente en clínica. Desde el punto de vista
humano, el patógeno principal es Ps. aeruginosa.
Su actividad como agentes alterantes de alimentos
Las Pseudomonas son el grupo de bacterias más frecuente en los alimentos
frescos. Debido a su gran potencial metabólico, las bacterias de estos grupos son
agentes importantes en la alteración de alimentos. Sin considerar los aspectos de
deterioro de vegetales producidos por especies antes citadas, las Pseudomonas son
uno de los principales grupos responsables de la alteración de productos cárnicos
almacenados incorrectamente en condiciones de aerobiosis.
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3.- Su aplicación como agentes descontaminantes ambientales
Varias especies del Pseudomonas contienen plásmidos en los que se encuentran
codificadas enzimas capaces de degradar, al menos parcialmente, compuestos
orgánicos derivados del petróleo o compuestos organoclorados u organofosfatados.
Estas enzimas suelen ser inducibles y la selección de las cepas adecuadas puede
permitir reducir los niveles de contaminación.
La biodegradación de hidrocarburos y de otros compuestos orgánicos es realizada
con eficiencia variable dependiendo de la estructura del hidrocarburo (lineal o
ramificado, alifático o aromático) y de la presencia de átomos substituyentes. Algo
similar ocurre con la biodegradación de compuestos insecticidas, herbicidas y
detergentes y emulgentes.
4.- Bacterias del grupo Neisseria
Las bacterias del grupo Neissera son, prácticamente, los únicos cocos Gramnegativos y son agentes causantes de enfermedades en humanos tales como un
tipo de meningitis (N. meningitidis) y la gonorrea (N. gonorrheae).
BACTERIAS GRAM-POSITIVAS
2.- Género Staphylococcus.
Cocos Gram-positivos de 0,5 a 1  m de diámetro.
Aerobios o anaerobios facultativos: Se diferencian de las bacterias lácticas por la
presencia de catalasas y de pigmentos carotenoides (que dan color a las colonias
por ejemplo en S. aureus) y porque su metabolismo es más versátil.
En preparaciones para el microscopio aparecen formando racimos o parejas.
Inmóviles Son las especies más resistentes a agentes físicos (desecación,
temperatura) y químicos (alcohol)
Forman parte de la flora normal en piel y cavidades
Causa de infecciones e intoxicaciones transmitidas a través de los alimentos
Intoxicación alimentaria causada por enterotoxina termoestable de la que no se
sabe si actúa sólo a nivel intestinal o si también a nivel de sistema nervioso central
una vez absorbida.
La intoxicación no es grave aunque puede ser severa. La toxina no se produce
cuando el alimento se conserva a 4ºC. Los síntomas de la intoxicación aparecen
entre 1 y 7 horas después de la comida y duran unas 12 horas con vómitos,
nauseas y, a veces, diarrea; raramente fiebre.
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ANÁLISIS CLÍNICOS GENERALES
El alimento contaminado puede ser carne o pasteles con crema. También puede
transmitirse por productos lácteos.
Puede causar infecciones en la piel (forúnculos y otras heridas infectadas); de ahí
puede pasar a los alimentos cuando la higiene del manejo de éstos no es completa.
MEDIOS DE CULTIVOS
Es una sustancia que constituye un ambiente nutritivo para el crecimiento de
microorganismos.
Los medios de cultivo mas comunes :




Agar nutritivo
Estracto de carne
Peptona de gelatina
Agar cerebro corazón
PREPARACIÓN:
1.- Colocar en un matraz de 50 ml un poco de agua destilada.
2.- Se pesa 1.2 gr. de medio de cultivo y se agrega al matraz.
3.- Calentar ligeramente, agregar agua destilada lo suficiente como para completar
50 ml.
4.- Colocar tapón de algodón y esterilizar.
5.-
Se pasa la flama por la caja Petri y se vacía el medio de cultivo.
6.- Se deja 24 horas a temperatura ambiente.
Preparar la siembra de las cajas por los métodos ya conocidos y esperar por 3 días
a temperatura de 37º C
Pasados los tres días se tiene que identificar y clasificar las bacterias posibles
encontradas, para ello se utiliza el método de tinción de GRAM cuya técnica se da a
continuación.
a) Se prepara el frotis bacteriano
b) Por el reverso del portaobjetos cerca de uno de los extremos y utilizando
marcador se anotan las iniciales de la persona que lo preparó y en el otro
extremo el número de la zona ( donde se tomó la muestra)
c) Se cubre la preparación con el colorante cristal violeta por un minuto,
desechar y lavar con agua corriente con gotero.
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d) Eliminar el exceso.
e) Se cubre la preparación con lugol durante un minuto y medio y desechar el
exceso.
f) Se cubre el frotis con safranina durante medio minuto. Eliminar y enjuagar
con agua corriente, y secar a condiciones del laboratorio.
g) Observar al microscopio con objetivo de inmersión (100X), para identificar
las formas mas comunes de bacterias, y dependiendo de la coloración serán:
 azul violeta: gram positivas
 Rosa o rojo: como gram negativas
2.1 COPROCULTIVO:
INTRODUCCIÓN: Las enterobacterias representan la mayor parte de la flora
microbiana del tracto intestinal del hombre. En ella se incluyen gérmenes
comensales (proteus y bacilos coliformes) así como patógenos del género
salmonella y shigella. Pueden estar también estreptococos intestinales
(enterococos), clostridia levaduras (incluso cándida albicans), y ocasionalmente
estaphilococos patógenos. El vibrión colérico puede ser aislado en casos de cólera;
ocasionalmente es necesario tratar de aislar mycobacterium tuberculosis en materia
fecal.
2.1.1 MEDIOS DE CULTIVOS, MATERIAL Y EQUIPO
-Se prepara medio de cultivo de
propagación con agar nutritivo en caja
de petri deshechable
-Eosin metilene Blue (EMB)
-SS agar
-desoxicolato citrato agar (DCA)
-tetrationato o caldo GN(Hajna)
-Kligler
0-119, 0-124, 0-125, 0-126, 0-127, y 0128, salmonellas y shigellas.
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-SIM
-Urea y sacarosa (surraco)
-Verde brillante agar (VBA), sulfito de
bismuto
-Agar sangre con azida de sodio
-Antisueros para identificar E coli
patógenos: 0-26, 0-55, 0-86, 0-111, 0112,
-Material y equipo habitual en un
laboratorio
de
microbiología
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MATERIAL BIOLÓGICO:
toma de muestra. Hay varios métodos:
-Raspado rectal con hisopo
-Materia fecal evacuada recientemente y llevada al laboratorio en frasco de boca
ancha
-Papel filtro impregnado de materia fecal.
TÉCNICA :
Con el hisopo se inocularán los medios siguientes: EMB, Agar Sangre, Dca,
además se le agregará al tubo que contiene el hisopo 2mm. del medio de
enriquecimiento tetrationato mas 0.04 de solución de lugol .
Se inoculan todos estos medios a 37º por 24 hrs. y se observa el desarrollo.
2.1.2
IDENTIFICACIÓN DE CEPAS PATÓGENAS
Colonias de color azul negro con brillo metálico en EMB, y agar sangre son
características de escherichia coli, y si la materia fecal es de un niño con diarrea,
se escogen de 8 a10 colonias y se resiembran en medio blood agar base (BAB)
a 37º por 24 hrs. y se indica la existencia de E. coli patógena por métodos
serológicos.
Las colonias de Shigella son pequeñas y transparentes en EMB, con ellas se
hacen estudios de fermentación de azúcares despues se hacen estudios
serológicos para determinar si son Salmonellas o Schigellas.
MEDIOS PARA ESTUDIAR LA FERMENTACIÓN DE LOS AZÚCARES POR
LAS BACTERIAS
En medio de Kliger:
Fondo amarillo: fermenta la glucosa
Superficie amarilla: fermenta la lactosa
Formación de burbujas en el medio y elevación del mismo: produce gas
Urea Sacarosa (Surraco) En este medio se puede observar la fermentación de la
sacarosa ( color amarillo) y la hidrólisis de la urea ( color morado)
BIOQUÍMICAS DE ENTEROBACTERIAS
E.coli
Citrobacter (E freundii)
Enterobacter aerobacter
Paracolobactrum
Salmonela
S. dysenteriae
A
S flexneri
B
S boydii
C
S sonnai
D
Proteus mirabilis
proteus vulgaris
proteus morgonii
proteus retigeri
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movilidad
+o+
+o+o+
+
+(-)
-
Gluc.
+
+
+
+
+
+
+
+
lact.
+
+
+o+
-o+
-
Sac.
+o+o+
+o-o+
V
+
-(+)
+
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Manitol
+
+
+
+
++
+
+
+
Indol
+(-)
V
+oV
V
V
+
V
+
H2S
+
+
+
+
-
Urea sac.
-o+
-o+
+
+
+
+
Gas
+
++
V
+
+
+
- +
ANÁLISIS CLÍNICOS GENERALES
Pseudomonas aeroginosa
Alcaligenes
Vibrio
Klebsiela
+(-)
+
+
-
+
+
+
+o+
+
+
+
+
++
-
-
++-
+
V = Variable
VALORES NORMALES: Generalmente se encuentran: Escherichia coli,
Paracolon, Proteus, Bacteroides y Clostridia.
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ANÁLISIS CLÍNICOS GENERALES
2.1.3 ANTIBIOGRAMAS
Se utilizan para la observación del antibiótico que inhibirá el desarrollo de
las bacterias y determinar el tipo de antibiótico que se le administrará al
paciente.
Nombre del paciente:_______________________________________________
Resultado:_______________________________Revisado:________________
Nombre del alumno:________________________________fecha:___________
2.2 EXUDADO FARÍNGEO Y NASAL
Estas pruebas se realizan con el fin de identificar a los microbios mas frecuentes
como: Estreptococos,
D. pneumoniae, Staphilococos. aureus, Neisseria,
Escherichia, Corrynebacterium diphteriae, Cándida, Klebsiella, Haemophilus,
Actinomyces Mycobacteria, etc.
Material:
*Caja de petri * hisopos estériles * agar nutritivo de propagación *antibiograma.
Técnica:
Este material se recoge con torundas, aunque en los casos sospechosos de tos
ferina, se prefiere una asa de platino larga y curva para alcanzar la nasofaringe.
Una desventaja del empleo de la técnica en la recolección de las muestras, es
que las superficies no son muy húmedas y la torunda se seca muy
rápidamente. Para resolver este problema se sugiere conservar la torunda en un
tubo que contenga aproximadamente 0.5 ml de caldo de soya tripticasa
conservándose juntos en el tubo de transporte.
Para el uso se aplica sobre la zona problema la torunda humedecida en el caldo,
luego se regresa el tubo. Al llegar al laboratorio se exprime la torunda contra las
paredes del tubo para que el material que contiene caiga en el caldo.
2.2.1 MEDIOS DE CULTIVO:
Los medios de cultivos mas empleados son: gelosa sangre, infusión cerebro
corazón, agar, gelosa chocolate y Staph 110
Se preparan cultivos de agar sangre que se incuban a 37º en CO2 al 10%.
En caso de difteria se preparan cultivos en tubo inclinado de Loeffler y en medio
de telurita.
2.2.2 IDENTIFICACIÓN DE CEPAS PATOLÓGICAS
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Estaphilococos crecen con facilidad en la mayoría de los medios de cultivo
ordinarios, dando colonias redondas lisas elevadas y brillantes, aureus color
amarillo, citreus verde limón y albus de color blanco.
las colonias virulentas de estreptococos tienen aspecto mate.
Se preparan con la torunda frotis que se tiñen con gram y se examinan al
microscopio. A veces permiten establecer el diagnostico de anginas de Vincent o
de Muguet, puede teñirse el frotis con azul de metileno en caso de difteria.
2.2.3 ANTIBIOGRAMA
Si en el medio de cultivo hay desarrollo bacteriano, elaborar un frotis con el
método de tinción de gram, anotar las características morfológicas de la bacteria
mas las características de la colonia determinada. desarrollar un antibiograma
gram positivo o gram negativo de acuerdo a los resultados del frotis (bacterias
gram positivas = frotis teñidos de azul o violetas bacterias gram negativas =
frotis teñido de rosa o rojiso)
Nombre del paciente:______________________________________________
Resultado:_______________________________Revisado:________________
Nombre del alumno:________________________________fecha:___________
2.3
REACCIONES FEBRILES
FUNDAMENTO:
La demostración de anticuerpos en el suero contra las especies de salmonella,
brucella, y enfermedades por ricketsias se conocen como reacciones febriles.
Éstas son de mucho valor en el diagnóstico de enfermedades tales como: fiebre
tifoidea, paratifoidea, brucelosis e infecciones por proteus.
La demostración de estas reacciones serológicas se hacen fundamentadas por
la reacción antígeno - anticuerpo.
MÉTODO: Reacción de Widal, Reacción de Weil Felix y reacción de hudlesson.
1.- REACCIÓN DE WIDAL.- Incluye reacciones con:
a) Antígeno tifico “O”
b) Antígeno tifico “H “
c) Antígeno paratifico “A”
d) Antígeno paratifico “B”
2.- Reacción de Weil Felix
a) Antígeno proteus OX 19
3.- Reacción de hudlesson
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a) Antígeno Brucella Abortus
MATERIAL:
*placa Macini *aplicadores de madera *pipeta *microscopio
MATERIAL BIOLÓGICO
Suero
2.3.1 ANÁLISIS CUALITATIVO
1.- Con una pipeta serológica se colocan en cada una de las concavidades de la
placa Macini una del suero del paciente.
2.- A cada gota de suero añadir una gota de cada antígeno.
3.- Mezclar con un aplicador de madera diferente para cada área, después hacer
oscilar la placa por 4 minutos.
4.- Sobre una fuente de luz opaca, observar la aglutinación microscópicamente,
si estos son dudosos de preferencia observar con la ayuda de un microscopio
con objetivo 10X.
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:
Si existe aglutinación la reacción es positiva, si no aglutinó la reacción es
negativa.
2.3.2 ANÁLISIS CUANTITATIVO
Cuando existe una reacción positiva se repite la técnica descrita anteriormente,
efectuándose una serie de diluciones del suero las cuales se obtienen con el uso
de las siguientes cantidades:
Mililitros de suero
Dilución
0.08........................................................... 1:20
0.04............................................................1:40
0.02............................................................1:80
0.01..........................................................1:160
0.005.........................................................1:320
Con la cuantificación se puede valorar la evolución de la enfermedad, la cual ha
sido de gran ayuda para el diagnóstico serológico de bastantes enfermedades
infecciosas.
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ANÁLISIS CLÍNICOS GENERALES
INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:
Se hace la misma observación que en la prueba cualitativa.
El informe del resultado se hace tomando en consideración la dilución mas alta
en la que se observa una reacción positiva y el antígeno que reaccionó.
Nombre del paciente:______________________________________________
Resultado:_______________________________Revisado:________________
Nombre del alumno:________________________________fecha:___________
2.4
UROCULTIVO
FUNDAMENTO:
La orina de pacientes con pielonefritis tiene mayor número de leucocitos que el
normal, y el número de bacterias viables de la porción media de la micción
excede de 10,000 en un ml. El uso de la sonda para obtener la muestra de orina,
aún bajo las mejores condiciones de asepsia, puede producir infecciones en las
vías urinarias.
2.4.1 MEDIOS DE CULTIVO
Gelosa sangre
Solución salina al 0.85%
Solución de merthiolate al 1:10,000
Solución de cloruro de benzalconio
MATERIAL Y EQUIPO:
-Asas calibradas portaobjetos
-Cubreobjetos
-Matraces E.M
-Tubos de centrífuga de 15 ml.
-Lámpara de alcohol
-Torundas
-Pinzas
-Equipo habitual en un laboratorio de microbiología
MÉTODO:
1.-El material biológico es la orina, obtenida del siguiente modo: Se dan
instrucciones a la persona para que se presente en el laboratorio sin haber
orinado al levantarse. Se asean con agua y jabón los órganos genitales externos
y en seguida se aplica en la región que rodea al meato urinario una solución de
merthiolate o de cloruro de benzalkonio.
Una vez que empieza la micción se desecha la primera orina que arrastra los
organismos contaminantes; se interrumpe la micción para recoger en un matraz
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22
ANÁLISIS CLÍNICOS GENERALES
estéril unos 10 ml. de orina de la porción media de la micción, se desecha el
resto de la orina.
El urocultivo debe hacerse dentro de la hora siguiente a la recolección de la
orina, o bién si esto no es posible debe guardarse la orina en el refrigerador a
4ºC hasta que pueda cultivarse.
2.- CUENTA DE LEUCOCITOS:
El número de leucocitos se determinan en el sedimento urinario; para ello se
depositan 20 ml. de orina en un tubo de centrífuga graduado, se centrífuga a
2000 rpm. durante 5 min, se desecha el sobrenadante y se resuspende en la
gota de orina residual el sedimento, de esta se toma una gota, la cual se
deposita en un porta objeto limpio y se cubre con un cubreobjeto.
Se observa en el microscopio con objetivo seco fuerte y se cuenta el número de
leucocitos por campo.
3.-CUENTA DE BACTERIAS:
Método con asa calibrada para inocular. Se toma una asada de la orina y se
hace una siembra por estrías en toda la superficie de la placa. Como en las
infecciones del tracto urinario pueden encontrase bacterias gram positivas y
bacilos gram negativos, es conveniente sembrar la orina en una placa de agarsangre y en uno de los medios selectivos para las bacterias gram negativas.
En ambas placas se debe de examinar después de 24 a 48 horas. Se multiplica
por 100 el número de colonias que aparecen el la placa, para determinar el
número de bacterias que existen en un ml. de orina. ordinariamente se hace
antibiograma a las bacterias encontradas en el urocultivo.
4.- MÉTODO DE DILUCIONES: (solo en casos especiales)
Con solución salina al 85% se hacen diluciones 1:10, 1:100,1:1000 y 1: 100,000
de la orina, en tubos que contiene 13 o 15 ml. de BHI, triptosa-agar o cualquier
otro medio nutritivo, el cual se fundirá y cuando se encuentre a 37ºC poner 1 ml.
de cada una de las diluciones de orina, agitar por rotación y practicar la técnica
de vaciado en la placa, incubar a 37ºC durante 24 hrs. y hacer la cuenta de las
colonias que desarrollaron al cabo de este tiempo:
2.4.2 INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS:
Estimación cuantitativa de colonias: En general cuentas de menos de 10,000
bacterias por mililitro de orina indican contaminación, cuando el número esta
entre 10,000 y 100,000 se sospecha infección, y si es mayor de 100,000 se
confirma la sospecha.
Las infecciones bacterianas del tracto urinario pueden presentarse en pacientes
de cualquier edad y cualquier sexo.
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ANÁLISIS CLÍNICOS GENERALES
Debido a que las muestras de orina frecuentemente se contaminan en su
recolección, el desarrollo de microorganismos, aún de los patógenos conocidos,
no establece necesariamente el diagnóstico de infección del tracto urinario.
VALORES NORMALES:
La flora bacteriana de las orinas normales difiere de las orinas con
microorganismos patógeno. En el primer caso los microorganismos encontrados
con mas frecuencia son:
Leucocitos en orina
Adultos....................................Hasta 100 en un mm.
Niños .......................................hasta 50 en un mm.
Nombre del paciente:______________________________________________
Resultado:_______________________________Revisado:________________
Nombre del alumno:________________________________fecha:___________
Tinción GRAM: Bacterias
Gram-Negativas
Cocos Gram-negativos
Diplococos: forma usual de Neiseria sp, como
N. meningitidis
También Moraxella sp y Acinetobacter sp
aparecen con morfología de diplococos.
Acinetobacter puede ser pleomórfico, y a
veces aparece como coco Gram-positivo.
Bacilos Gram-negativos
Bacilos
finos:
forma
usual
de
enterobacteriaceae, como E. Coli
Cocobacilos: forma usual de Acinetobacter
sp, que puede ser Gram-positivo o Gramnegativo, y, a menudo, Gram-variable.
Cocobacilos: forma usual de Haemophilus sp,
como H. influenzae
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ANÁLISIS CLÍNICOS GENERALES
Curvados: forma usual de Vibrio sp, como V.
cholerae, y Campylobacter sp, como C.
jejuni
Tinción GRAM: Bacterias
Gram-Positivas
Bacilos Gram-positivos
Gruesos: forma típica de Clostridium sp,
como C. perfringens, C. septicum
Cocos Gram-positivos
Racimos: forma típica de Staphylococcus sp,
como S. aureus
Finos: forma típica de Listeria sp
Cadenas: forma típica de Streptococcus sp,
como S. pneumoniae, Streptococcus grupo
B
Ramificados: forma típica de Actinomycetes y
Nocardia, como A. israelii
Tetradas: forma típica de Micrococcus sp
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ANÁLISIS CLÍNICOS GENERALES
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