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Instituto Politécnico Nacional Centro de Estudios Científicos y Tecnológicos No. 6 “Miguel Othón de Mendizábal” BACTERIOLOGIA COPROCULTIVO Profesor: Miguel Ángel Morales Gil Integrantes: • Álvarez Bonifacio Yeredid • Bello Reyes Saúl Joshafat • García Salinas Karen • Martínez Hernández Daniel • Mayen Bernal Viridiana • Quintero Andrés Fabiola Janet • Rosales Hernández Diana Carolina • Sandoval Rosas Eduardo Equipos: 4-A y 4-B Fecha: 09 – Mayo – 2012 G: 4101C COPROCULTIVO Importancia clínica El médico, frente a un paciente que acude por presentar un cuadro diarreico, debe decidir cuál es la posible etiología y qué tipo de tratamiento debe dar, por lo que recurre al laboratorio a fin de obtener un diagnóstico microbiológico que permita realizar un abordaje racional de la enfermedad. Infecciones gastrointestinales [Coprocultivo] [Anexo 1] [Anexo 2] [Anexo 3] Afecciones gastrointestinales La ingestión de patógenos causa muchas afecciones, que pueden quedar delimitadas al tracto gastrointestinal o comenzar en el intestino para diseminarse después hacia otras partes del organismo. Los términos utilizados más comúnmente para describir las enfermedades del tracto gastrointestinal son: Diarrea: eliminación fecal anormal caracterizada por heces frecuentes y/o liquidas, habitualmente se debe a enfermedad del intestino delgado, e implica un aumento de la perdida de líquidos y electrolitos. Disentería: Trastorno inflamatorio del tracto gastrointestinal asociado frecuentemente a presencia de sangre y pus en las heces y acompañado por síntomas de dolor, fiebre y calambres; de modo habitual se debe a enfermedad del intestino grueso. AGENTES ETIOLOGICOS DE DIVERSOS SINDROMES DIARREICOS SINDROMES CARACTERISTICAS AGENTES ETIOLOGICOS. Diarrea aguda liquida Mecanismo no inflamatorio, medido por enterotoxinas. Rotavirus Escherichia coli enterotoxigenica (ETEC) E. coli enteropatogénica (EPEC) Salmonella spp. Cryptosporidium. Vibrio cholerae. Clostridium perfringens. Bacillus cereus. Staphylococcus aureus. Vibrio parahemoyiticus. Giardia lamlbia Virus Norkwalk. Adenovirus 40, 41. Campylobacter jejuni. Acampylobacter coli. Diarrea con sangre Mecanismo inflamatorio por invasión del epitelio intestinal, denominado usualmente como disentería. También hay presencia de moco y leucocitos en las heces. Diarrea crónica/ Mal absorción. Interferencia del agente infeccioso con la actividad normal del tracto gastrointestinal, pero sin un daño aparente en pacientes no inmunodeficientes. Fiebre enterica. Mecanismo invasivo con penetración a través de la mucosa intestinal y diseminación hematógena a todo el organismo. Colonización del epitelio gástrico con ulceración. Gastritis o atrofia gástrica. Adaptado de: Valdespino JL y Col., 1994 (36) ¿Qué es coprocultivo? • El coprocultivo o cultivo de heces Shigella spp. Entamoeba histolytica. E. coli enterohemorragica (EHEC) E. coli neteroinvasiva (EIEC) Campylobacter jejuni ± Salmonella (S. enteritidis, S. choleraesuis, S. parathypi) Vibrio parahemolyticus. Yersinia enterocolitica. Trichinellaspiralis. Schistosoma japonicum Balantidium coli. Clostridium difficile ± Giardia lamblia. Ascaris lumbricoides. Necatos americanus Strongyloides stercoralis Trichuris trichura. Cryptosporidium Isopora belli Enterocytozoon bieneusi Salmonella typhi Yersinia enterocolitica Campylobavter fetus subsp. Fetus Salmonella paratyphi A y B Salmonella choleraesuis. Yersinia pseudotuberculosis Helicobacter Pylory Es un estudio cuyo propósito es buscar bacterias patógenas que causan afecciones gastrointestinales. Mecanismos que causan diarrea o disentería La fisiopatología de los síndromes diarreicos o disentéricos afecta 3 mecanismos diferentes: 1. Toxinas (Entero toxinas) Algunas baterías como el Vibrio cholerae y ciertas cepas de Escherichia coli después de adherirse a las epiteliales mucosas del intestino delgado producen entero toxinas que activan la adenilsiclasa (AMP cíclico). El AMP cíclico es un nucleótido cíclico presente en las membranas celulares que amplifica la acción de las hormonas y otros compuestos biológicamente activos en diversas células blanco. La actividad por entero toxinas del AMP cíclico en las células epiteliales mucosas del intestino delgado causa un bloqueo de la absorción de sodio lo que lleva a una diarrea acuosa hipertónica profusa. No existe inflamación mucosa y no se observan leucocitos en la materia fecal. 2. Invasión Causado por invasión bacteriana directa de la mucosa intestinal que produce inflamación y leucocitosis. Especies de Shigella algunas cepas de E. coli muchas cepas no S. typhi de Salmonella, Campylobacter jejuni invaden directamente la mucosa y submucosa por producción de entero toxinas que poseen mecanismos diferentes a los del V. cholerae. Se halla gran número de neutrofilos segmentados, mucina y algunas veces sangre en la materia fecal. 3. Penetración de la pared celular Comprende la penetración profunda de la pared intestinal por parte de los microorganismos como Salmonella typhi , Yersina enferilitica y Campylobacter fetusi. Habitualmente esto da como resultado una leve inflamación mucosa intestinal. Sin embargo un aspecto puede ser una intensa inflamación necrotizante en ganglios linfáticos mesentéricos regionales. Sintomatología de las enfermedades gastrointestinales Algunos síntomas que los pacientes con enfermedades infecciosas a menudo experimentan son: Fiebre: Es el aumento temporal en la temperatura del cuerpo en respuesta a alguna enfermedad o padecimiento. • Un niño tiene fiebre cuando su temperatura está en o por encima de 37.2° C. • Un adulto probablemente tiene fiebre cuando la temperatura está por encima de 37.2 37.5° C, dependiendo de la hora del día. Deshidratación: Significa que el cuerpo no tiene tanta agua y líquidos como debiera. Boca pegajosa o reseca. Letargo o coma (con deshidratación severa) Ausencia o disminución del gasto urinario; la orina aparece de color amarillo oscuro. Ausencia de lágrimas. Ojos hundidos. Fontanelas hundidas (el punto blando en la parte superior de la cabeza) en el bebé Se clasifica en leve, moderada o severa sobre la base del porcentaje de líquido corporal que se ha perdido o que no se ha repuesto. La deshidratación severa es una situación de emergencia potencialmente mortal. Letargo: Es una sensación de falta de energía, de agotamiento o de cansancio. Que se caracteriza por un estado de somnolencia profunda y prolongada. Torpeza, insensibilidad, enajenamiento del ánimo relacionado a dicho estado como comportamientos asociados ya que nuestro organismo relaja todo nuestro cuerpo. Toma de muestra Para efectuar un coprocultivo pueden utilizarse las siguientes muestras: Heces frescas Hisopo rectal Indicaciones para el paciente: No es necesario el ayuno. No se requiere dieta especial. No estar bajo tratamiento con antibióticos o tener más de 72 hrs de haber concluido el tratamiento. En caso de no ser posible ninguna de estas dos opciones, eespecificar en la solicitud del estudio que antibiótico se están tomando y cuantos días lleva haciéndolo. Indicaciones para la toma y condiciones de la muestra La toma de muestra se deberá realizar lo antes posible luego del comienzo de la enfermedad (preferiblemente dentro de los cuatro primeros días). La recolección se efectúa en un recipiente de boca ancha estéril y con tapa de rosca. Las muestras de consistencia formada deberán ser de 4-6 gramos (tamaño de una nuez), en caso de ser liquidas entre 5 y 1O ml. Debe evitarse la contaminación con orina. Si no se pueden enviar las muestras de manera inmediata se pueden refrigerar sin exceder 4 hrs. ya que a medida que la muestra fecal se enfría, la caída de pH llega a ser suficiente para inhibir el crecimiento de muchas especies Shigella y algunas de Salmonella. Las muestras deben examinarse y cultivarse lo antes posible después de la recolección, si el cultivo se hace dentro de las dos horas después de tomada la muestra, no se requiere medio de transporte, pasado este periodo se recomienda usar el medio de transporte Cary & Blair, caldo selenito o Tioglicolato. En general no se recomienda el uso de hisopados rectales pero pueden ser necesarios para obtener muestras fecales de neonatos o adultos mayores. El hisopo rectal debe insertarse exactamente más allá del esfínter rectal, evitando el contacto directo con materia fecal en el recto. Estos hisopados deben inocularse de inmediato en medios de cultivo o colocarse en un sistema de transporte adecuado para impedir el desecamiento. En pacientes en edad pediátrica que usan pañales las muestras deben ser tomadas preferentemente de sus glúteos y no del pañal seleccionando las partes mucosas, purulentas y/o sanguinolentas y colocarlas en frasco estéril. Examen macroscópico Una vez llegadas las heces al laboratorio, es primordial efectuar un examen macroscópico de las mismas, ya que esta puede proporcionarnos una orientación. En este se observa: Consistencia (solidas, diarreicas, liquidas); este puede indicar los estados de protozoarios presentes. Normalmente la deposición debe de ser solida Color; indica la abundancia y la calidad del flujo biliar. Normalmente y con dieta mixta la deposición es de color pardo o marrón, oscureciéndose a medida que pasa el tiempo expuesto al aire, las heces de las personas que sufren estreñimiento son más oscuras y duras. Presencia de sangre, pus, moco; puede envolver a todo o una parte del bolo fecal, o bien, estar íntimamente mezclado con esta masa. La aparición del moco suele ser reconocible macroscópicamente. Fragmentos de tejidos o restos alimenticios sin digerir Olor Bacterias causantes de diarrea ESCHERICHIA E. coli es la especie de bacteria recuperada con mayor frecuencia en los laboratorios clínicos y ha sido incriminada en enfermedades infecciosas que afectan casi cualquier tejido y sistema orgánico humano. Ciertas cepas de E. coli pueden producir enteritis o gastroenteritis por 6 mecanismos distintos que conducen a 6 síndromes clínicos diferentes. Estas cepas incluyen E. coli enterotoxigenica (ETEC), E. coli enteropatogena (EPEC), E. coli enteroinvasiva (EIEC), E. coli enterohemorragica (EHEC), E. coli enteroagregante(EAEC) y E. coli difusamente adherente (DAEC). Los aislados de EPEC, EAEC y DAEC, se caracterizan por sus distintos patrones de adherencia a las células epiteliales in vitro. Las cepas EPEC se unen a las células huésped en un patrón denominado adherencia local, en el cual se forman microcolonias sobre las superficies de las células. Las cepas DAEC están definidas por un patrón de adherencia difusa en el cual las bacterias cubren difusamente la totalidad de la superficie celular. En la mayoría de los casos no es necesario identificar un patógeno especifico de E. coli en un paciente particular. En casi todos los pacientes con gastroenteritis debido a E. coli la diarrea se resuelve antes de buscar atención médica o luego del tratamiento con antibióticos empíricos administrados para otras diarreas bacterianas. La Identificación de especies patógenas de E. coli se realiza con antisueros. CARACTERÍSTICAS CLAVES DE E. COLI DIARREICOGÉNICA termino E. coli enterotoxigenica abreviatura Fenotipo patógeno ETEC Elaboración de enterotoxinas termolábiles y/o termoestables secretoras que no dañan el epitelio mucoso e. coli enteropatógena EPEC E. coli enteroinvasiva EIEC E. coli enterohemorrágica EHEC Se adhieren a las células epiteliales intestinales en microcolonias localizadas que producen lesiones histopatológicas características conocidas como “lesiones de fijación y desprendimiento” La mayoría de las cepas son inmóviles, fermentadoras tardias o no fermentadoras de la lactosa y anaerogenas. Elaboración de toxinas shiga Signos y síntomas Asociado con los sindromas clínicos “diarrea del destete” y “diarrea del viajero”. Tienen inicio brusco típico, casi siempre sin sangre, moco ni pus. La deshidratación y vómitos ocurren en algunos casos. Habitualmente ocurre en lactantes, se caracteriza por fiebre, vómitos, diarrea acuosa con gran cantidad de moco y en algunas ocasiones se observan leucocitos en las heces. Se presenta principalmente como diarrea acuosa, se tiene necesidad imperiosa de defecar, presencia de moco, sangre y muchos leucocitos en las heces. Diarrea sanguinolenta sin leucocitos, dolor E.coli enteroagregante EAEC E.coli difusamente adherente DAEC Se adhieren a las células epiteliales y producen una toxina (EASTI) Se adhieren a las células epiteliales en un patrón difuso abdominal frecuente. Diarrea con moco, fiebre leve y poco o nada de vomito. Diarrea en la mayoría de las veces sin presencia de sangre ni leucocitos Agar EMB [Eosina Azul de Metileno] Fundamento Por la combinación de estos dos colorantes y los dos hidratos de carbono se pueden distinguir algunos géneros. Las bacterias lactosa-negativas y sacarosa negativas (Salmonella y Shigella) dan colonias incoloras, mientras que las lactosa y/o sacarosa-positivas dan colonias púrpura-violeta negruzco con/sin un centro oscuro y quedan rodeadas de una zona incolora. Por el efecto de estos mismos colorantes también queda inhibido el crecimiento de la microflora acompañante, sobre todo la Gram-positiva. Este medio se siembra en la superficie del medio. Incubar entre 35º y 37ºC de 18 a 24 horas. En la siguiente imagen se muestra el desarrollo se Escherichia coli (Colonias Púrpura-violeta con brillo verde metálico) Agar MacConkey: Por la presencia de las sales biliares y el cristal violeta se inhibe el crecimiento de las bacterias Gram-positivas. Por la presencia de la lactosa, las bacterias capaces de fermentarla acidifican el medio, cambiando el color del rojo neutro y formando colonias rojas o rosadas, pudiendo presentar un halo turbio correspondiente al precipitado biliar. Las bacterias lactosa-negativas dan colonias incoloras. Para aislar las colonias Sembrar la muestra por estría en la superficie de la placa preenriquecida en MacConkey, Caldo. Incubar a 35-37 ºC de 18 a 72 horas. En la siguiente imagen se muestra el desarrollo de E. coli [Color Rosa-rojo (precip. biliar)] SHIGELLA Características microbiológicas. Taxonomía. Shigella es un bacilo Gram negativo perteneciente a la familia Enterobacteriaceae, que se encuentra estrechamente relacionada con el género Escherichia, por sus propiedades bioquímicas, serológicas y por similitudes genéticas. Se caracteriza por no fermentar la lactosa, ser inmóvil, no produce lisina decarboxilasa y raramente produce gas a partir de hidratos de carbono. Su identificación se basa en características bioquímicas y antigénicas. En base a ello se describen cuatro especies (cuadro 1), todas ellas pueden causar disentería, aunque con diferente gravedad. AGAR SS Fundamento Por la presencia de las sales biliares, verde brillante y citrato se consigue la inhibición de las bacterias Gram-positivas. Por el mismo citrato conjuntamente con el tiosulfato se frena notablemente el desarrollo de Coliformes y Proteus que podrían acabar cubriendo todo el cultivo. Las bacterias que no fermentan la lactosa dan colonias incoloras, mientras que las que la fermentan hacen virar el rojo neutro por la producción de ácido y quedan claramente diferenciadas. También se diferencian los microorganismos productores de Hidrógeno Sulfuro que da un precipitado negro de Hierro(II) Sulfuro, que se observa en el centro de la colonia. La peptona y el extracto de carne son aportes nutritivos suficientes para estas especies patógenas, aunque algunas Shigellas muy exigentes se desarrollen lentamente. Las colonias sospechosas de Shigella crecidas en AgarSalmonella-Shigella son transparentes, translúcidas u opacas y suelen ser lisas. En este medio las colonias de otros microorganismos que fermentan la lactosa (coliformes) son colonias rojizas y en muchos casos mucoides. AGAR SULFITO BISMUTO Fundamento El Bismuto Sulfito y el Verde Brillante inhiben conjuntamente a las bacterias Grampositivas y Coliformes, no restringiendo en absoluto el crecimiento de las Salmonellas. A su vez por la presencia de azufre en el medio, los microorganismos capaces de producir Hidrógeno Sulfuro precipitan Hierro(II) Sulfuro, que da lugar a tonalidades marrones más o menos oscuras e incluso negras. También se puede reducir el bismuto a metal dando un brillo metálico alrededor de las colonias correspondientes. Es recomendable hacer un enriquecimiento previo en caldo. Sembrar por estría el material objeto de estudio o el procedente del caldo de enriquecimiento en este caso con caldo tetrationato. Incubar a 35±2ºC de 24 a 48 horas. Shigella flexneri ATCC 12022 Crecimiento (Nulo-escaso) Color ( Marrón) SALMONELLA Nos enfocaremos a la identificación de Salmonella y Shigella en los siguientes medios: Agar McDonnell Agar SS Agar Vede Brillante Agar EMB Estos dos últimos enriquecidos con caldo tetrationato para favorecer su crecimiento... Casi todas las especies de Salmonella crecen bien en presencia de sales biliares. Las especies de Salmonella y Shigella son mucho menos inhibidas, entran en una fase de crecimiento logarítmico y son más fáciles de aislar en las muestras fecales. AGAR McCONKEY: -Sembrar la muestra por estría cruzada. -Incubar a 37º 24 horas. - Este agar contiene cristal violeta y sales biliares como inhibidores de organismos Gram positivos. -Las colonias aisladas de bacterias que fermentan la lactosa son rosadas y pueden estar rodeadas de una zona de precipitado de sales biliares el cual es debido a una caída en el pH por la fermentación de la Lactosa. Las colonias que no fermentan la lactosa (como las de S. tipi, S. paratyphi y S. disentería) permanecen incoloras. (Lado derecho) AGAR SS: - Medio altamente selectivo, la lactosa es el único hidrato de carbono y el rojo neutro es el indicador para la detección de acido. - Siembra por el método de estría cruzada para obtener colonias aisladas. - Incubar las placas a 35-37 °C durante 24 a 48 horas y examinar el crecimiento. - Las enteras bacterias pueden ser diferenciadas en base a su capacidad de fermentar la lactosa. Las especies de Salmonella y Shigella son no fermentadoras de la lactosa y forman colonias incoloras. Las especies de Salmonella que son productoras de sulfuro de hidrógeno desarrollan colonias con centro obscuro. AGAR VERDE BRILLANTE: - Sembrar por el método de estría cruzada. - Incubar las placas a 35°C durante un lapso de 18 – 24 horas - En este medias las peptonas y el extracto de levadura proporcionan la fuente de nitrógeno, vitaminas y minerales. La lactosa y la sacarosa son los carbohidratos fermentables. El rojo de fenol es un indicador de las variaciones de pH y cambia el color del medio a amarillo en presencia del ácido derivado de la fermentación de los carbohidratos. El verde brillante actúa como inhibidor de bacterias Gram positivas y de la mayoría de bacterias Gram negativas. - Las colonias típicas de Salmonella aparecen como colonias de color rosa a blanco, opacas rodeadas por el rojo brillante del medio. Los pocos microrganismos que crecen en este medio que son fermentadores de lactosa o sacarosa, son fácilmente identificables debido a la formación de colonias amarillas- verdes rodeadas de una intensa zona de color amarilla-verdosa. - Este medio no es adecuado para el aislamiento de S. Tipi ni de Shigella, sin embargo algunas cepas de S. Tipi pueden desarrollar dando colonias rojas. AGAR EMB: - Sembrar por el método de estría cruzada. - Incubar las placas 35- 37°C durante 18 a 24 horas. - El uso de la eosina y del azul de metileno permite la diferenciación de las colonias fermentadoras de lactosa. - Además de diferenciar a Salmonella nos permitirá identificar otros organismos lactosa negativos de organismos doliformes. - Las peptonas proveen la fuente de nitrógeno, la eosina y el azul de metileno son colorantes que se combinan para formar un precipitado a pH ácido. Los colorantes actúan como inhibidores e indicadores. Los carbohidratos proporcionan la fuente de energía, los fosfatos actúan como buffer. - Las colonias de Salmonella y Shigella son translúcidas, de color ámbar o incoloras. VIBRIO Vibrio Cholerae Es un bacilo Gram (-) curvo que posee un flagelo polar produce oxidasa y fermenta glucosa. Las cepas de esta bacteria a su vez se pueden clasificar de diversas maneras: Método de clasificación Características de Vibrio cholerae Asociados con No asociados con epidemias epidemias Serogrupos Biotipos 1 Clásico, El Tor Serotipos Inaba, ogawa,Hikojima Toxina Producen la toxina del Cólera No 01 (serogrupos 02-0138) Biotipos no aplicables a cepas no 01 Estos 3 serotipos no son aplicables a cepas No 01 Habitualmente no producen la toxina de cólera; a veces producen otras toxinas Aislamiento en el Laboratorio Clinico Ya que V. Cholerae necesita tener un medio específico para poder crecer, es necesario que antes de sembrar nuestros medios de cultivo se enriquezca nuestra muestra. Enriquecimiento de la muestra: Agua peptonada Alcalina, pH 9.0, de 6-8 horas a 37° C AGUA PEPTONADA ALCALINA Uso: Para el enriquecimiento de Vibrio cholerae y otros Vibrios a partir de diversas muestras. Fundamento: El medio contiene peptona de gelatina, proporciona los nutrientes para la supervivencia y crecimiento abundante. El cloruro de sodio mantiene el equilibrio osmótico del medio. El pH elevado, favorece el desarrollo de microorganismos que tienen la capacidad de crecer en este medio, inhibiendo a la flora acompañante. Sembrado: Medio de cultivo TCBS, mantener a 37°C y revisar entre las 18-24 horas. Seleccionar colonias de color amarillo para Vibrio Cholerae. AGAR TCBS Uso: Medio selectivo para el crecimiento de Vibrio cholerae, Vibrio parahaemolitycus y otras especies patógenas a partir de diversas muestras. Fundamento: El contenido de peptonas y extracto de levadura proporcionan al medio la fuente de nutrientes necesarios para el desarrollo de los microorganismos; el contenido de sales biliares y el colato de sodio inhiben el desarrollo de Gram positivos sobre todo a los enterococos. La alta concentración de tiosulfato de sodio y citrato, así como el elevado pH, inhiben notablemente a las enterobacterias. La sacarosa es el carbohidrato fermentable, utilizando como indicador de la variación de pH, el azul de bromotimol y el azul de timol, se presenta un vire amarillo por la producción de ácido incluso en un medio altamente alcalino como el Agar TCBS. Vibrios no colericos: o o o o o o V. Parahemolyticus V. Mimicus V. Metschnikovil V. Hollisae V. Furnisae V. Fluviales YERSINIA La especie Yersinia corresponde a la familia Enterobacteriaceae, las bacterias se ven pequeñas y con forma cocobacilar. Las colonias pueden ser pequeñas y puntiformes en agar MacConkey, en particular con ciertas cepas de Y. pestis y Y. pseudotuberculosis. Las colonias tienden a ser puntiformes después de 24 horas de incubación en agar-sangre. El crecimiento óptimo ocurre en temperaturas entre los 25 a 32º C. Esta familia de bacterias son las responsables de gastroenteritis, diarrea y linfadenitis mesentérica. En la familia Yersinia se encuentran dos principales bacterias, la principal es la Y. enterocolitica, y la segunda y no tan frecuente es la Y. pseudotuberculosis. Y. enterocolitica: Se siembra en MacConkey Agar. Esta presenta síndromes característicos como la diarrea con sangre. La mayoría de las cepas de Y. enterocolitica creccen en agares entéricos selectivos y se presentan como pequeñas colonias lactosa negativas en agar McConkey y agar SS en 48 horas. La Y. enterocolitica en particular puede recuperarse de muestras fecales que se incuban a 25ºC. Ya que lo que se busca es obtener colonias aisladas, su método de siembra es por estría cruzada. No se recomienda el uso de EMB porque Y. enterocolítica es sacarosa positiva y aparase como un coliforme en este medio. Y. enterocolitica en Agar MacConkey CAMPILOBACTER Morfología y características fisiológicas: Se trata de bacterias gram negativas, pequeñas (0.3-0.6 μm de diámetro, 0.5-5 μm de ancho), no esporuladas, con una forma distintiva curva o en espiral, con aspecto de vibrio, cuando se observan a partir de cultivos jóvenes; con más de 48 horas de incubación o tras prolongada exposición al aire adoptan una forma cocoide. Casi todas las especies son sensibles al oxígeno y sólo pueden desarrollar en condiciones de reducción de oxígeno, habitualmente en atmósfera microaerófila(510% de oxígeno). Todas las especies son capaces de desarrollar a 37ºC, pero C.jejuni tiene una temperatura óptima de crecimiento de 42ºC, por lo que es práctica habitual en el laboratorio la incubación a esta temperatura con el fin de facilitar el aislamiento selectivo del principal patógeno humano del género. Su velocidad de desarrollo es más lenta que la de las bacterias de la flora normal entérica, por lo que para su aislamiento a partir de materias fecales se requieren medios de cultivo selectivos que inhiban esta flora. Aislamiento e identificación: Para el aislamiento a partir de materias fecales, los medios de cultivo selectivos más comunes se basan en agar sangre y antibióticos; los más usados son Skirrow, Butzler y Campy-BAP. Las colonias pueden apreciarse en las placas en 24-48 horas, aunque a veces pueden ser necesarias 72-96 horas. En este medio la bacteria Campylobacter jejuni crece presentando colonias grises con posible propagación. Campylobacter jejuni en Medio Butzler IDENTIFICACION HASTA ESPECIE La identificación hasta especie se realiza a partir de pruebas bioquímicas. Para las bacterias que se encuentran en el coprocultivo normalmente estas pruebas se realizan con los siguientes medios de cultivo: TSI LIA MIO Citrato de sodio Urea Agar Hierro de Kligler (La lectura e interpretación de las mismas se explican en los anexos correspondientes.) Anexo [4] Anexo [5] IDENTIFICACION FINAL [La detección directa de antígenos de rotavirus en materia fecal es particularmente útil porque el virus no puede recuperarse en cultivo]. En un laboratorio diagnostico, la combinación de la historia clínica y el efecto citopático (CPE) produce información suficiente para identificar algunos virus o bacterias. La identificación completa de los aislamientos, incluyendo la serotipificación, requiere la caracterización inmunológica de los antígenos virales o bacterianos. El método tradicional para preparar antisueros ah sido inyectar el antígeno en un animal (cordero, conejo, caballo, cuyo, cabras, etc…). El animal genera entonces anticuerpos policlonales a una variedad de determinantes (epítopes) del antígeno. Aunque los epítopes con los que reaccionan los reactivos monoclonales están estrechamente definidos, puede haber reacciones cruzadas si el epítope es compartido por otros antígenos. Si los reactivos monoclonales están estrechamente definidos, pueden no detectar todos los aislamientos. La identificación de un aislamiento viral o bacteriano desconocido se lleva a cabo mediante el análisis del grado en el cual los antisueros de reactividad conocida previenen la infección viral o bacteriana de las células de cultivos celulares, huevos o animales. Para caracterizar un aislamiento viral o bacteriano se utiliza un suero de referencia conocida. Tipos de reacciones inmunológicas: PRIMARIAS: Interacción directa entre antígeno y anticuerpo. SECUNDARIAS: Hay reacciones observables, como precipitación, aglutinación o fijación del complemento. TERCIARIAS: se refieren a ciertos efectos biológicos como opsonizacion, fagositosis y quimiotaxis. Se dispone de varias técnicas de laboratorio para medir cada uno de los 3 tipos de interacciones inmunológicas. Los antisueros se inyectan a los animales para que estos se pongan en contacto con las bacterias y se generen anticuerpos (específicos para las bacterias que se inocularon en los animales). Posteriormente estos anticuerpos se extraen de la sangre de los animales para ser utilizadas en la identificación de bacterias aisladas de muestras biologías. Cuando hay formación de precipitados da positivo a la bacteria en particular. En el caso de E.coli hay 6 antisueros diferentes. En el caso de Shigella son 4 (A,B,C y D). Para Salmonella hay 6 (A, B, C1,C2,D y E). Para Vibrio cholerae hay 1 (01) ANTIBIOGRAMA El antibiograma es aquel estudio que se le realiza a una cepa, siempre y cuando sea identificada como patógena, para saber su sensibilidad a diversos antibióticos, y así conocer con cual y que dosis se va a combatir a dicho patógeno. En coprocultivo ocuparemos el siguiente método: Método de Bauer-Kirby Consiste en realizar el antibiograma en una placa de medio Mueller Hinton, el cual es un medio enriquecido, es decir en él crecen tanto Gram (-) como Gram(+) donde por medio de estría masiva se sembrara la colonia o cepa a la cual se le hará el análisis. Una vez realizada la siembra se deja secar el medio e inmediatamente se colocan sobre el medio, los Multidisco, los cuales son una serie de papeles filtro impregnados con diferentes antibióticos. Los medios se incuban a 37 °C durante 24 horas de pues de ello es hora de leer los resultados del antibiograma, lo cual se hace midiendo el diámetro del alo que se forme alrededor de los papeles filtro con antibiótico. Dependiendo del tamaño del alo se podrá decir que la bacteria tal es resistente para “equis” antibióticos. Se hace el reporte correspondiente y se desechan los medios ocupados. El antibiograma en coprocultivo, solo se realizara a los géneros de: Escherichia Salmonella Shigella Yersinia GLOSARIO Antisueros: Suero que contiene anticuerpos (inmunoglobulinas) específicos frente a un determinado antígeno o a varios o Suero animal o humano que contiene anticuerpos contra una enfermedad específica, que se utilizan para proporcionar inmunidad pasiva frente a dicha enfermedad. Los antisueros no dan lugar a la producción de anticuerpos. Anticuerpo: Molécula de inmunoglobulina específica de antígeno, producida por un clon de linfocitos B en respuesta a su estimulación por dicho antígeno concreto. Antígeno: 1. Es una sustancia que se combinará con un anticuerpo a raves de sitios de unión específicos. 2. Sustancia capaz de reaccionar con las moléculas específicas propias de una respuesta inmunitaria, es decir, anticuerpos y receptores de linfocitos T. Agente Etiológico: Entidad biológica, física o química capaz de causar enfermedad. Afección - Enfermedad o dolencia de determinada parte del organismo. Constipación - Es la retención exagerada de materia fecal o el retardo mas allá del tiempo fisiológico de evacuación de hasta 48 hs. También demostrada por la retención de forma tal de evacuar menos de tres veces por semana. Determinante antigénico: porción de la molecula de antígeno responsable de la interaccion con moléculas de anticuerpo tipo-especificas. Efecto citopático (CPE): Daño celular causado por la infección de un virus o Daño inducido por los virus en las monocapas. Epitope: porción molécular mas pequeña de un determinante antigénico que reaccionará con un anticuerpo monoclonal. Etiología: Causa de una enfermedad. Fontanelas: son las separaciones existentes entre los huecos del cráneo del bebé, son importantes ya que facilitan que la cabecita pueda amoldarse y atravesar el canal del parto. Fisiopatología: Estudio de los cambios funcionales que se asocian con la enfermedad o lesión. Inmunología: Ciencia biológica que estudia todos los mecanismos fisiológicos de defensa de la integridad biológica del organismo. Dichos mecanismos consisten esencialmente en la identificación de lo extraño y su destrucción. La inmunología también estudia los factores inespecíficos que coadyuvan a los anteriores en sus efectos finales. Infección – Penetración y desarrollo en el organismo de gérmenes patógenos. Síndrome: Es el conjunto de síntomas que caracterizan una enfermedad o el conjunto de fenómenos característicos de una situación determinada. Serotipo: Es la clasificación de un determinado agente infeccioso basada en métodos inmunológicos, empleando generalmente suero de animales vacunados o naturalmente infectados, para hacerlos reaccionar con cepas específicas de campo o del laboratorio para su identificación. Serotipificación: Determinaciones que constituyen una ayuda para comprobar la virulencia potencial, la invasividad, la susceptibilidad antimicrobiana y la constitución genética de varias cepas. Suero: Algunos tipos de líquidos con características y usos específicos o Sustancia acuosa rica en proteínas y sales que se separa de la parte coagulada de algunos líquidos orgánicos, como la sangre, la linfa o la leche. Tipificar: Representar una persona o cosa el tipo de la especie o clase a que pertenece. Tipificación: Ajuste o adaptación de varias cosas semejantes al patrón de un modelo o norma común o Encarnación del modelo de una especie o clase en un representante concreto. REFERENCIAS: Koneman W. Elmer, et.al, “Diagnostico microbiológico, Texto y Atlas Color”, Editorial Panamericana, Tercera edición, México, D.F, 1998, pp: 129, 136-138, 180-182, 203-265, 807, 861-863. García del Valle Araceli [et al]. Manual de microbiología medica. UNAM 1998. Pp 83. Romero Cabello Raul, "Microbiologia y Parasitologia Humana Bases etiologicas infecciosas y parasitarias" Editorial medica Panamerica, 3ra. 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